25 januari 2016
De registratie van elektro-encefalogram (EEG) en elektromyogram (EMG) bij muizen die zich vrij kunnen bewegen, is een cruciale stap om gedrag en fysiologie te correleren met slaap en waakzaamheid. Het experimentele protocol dat hier wordt beschreven, biedt een kabelgebaseerd systeem voor het verkrijgen van EEG- en EMG-opnamen bij muizen.
Het algemene doel van deze polygrafische opnameprocedure is om de waakzame toestand van muizen te bepalen en de tijd te meten die wordt doorgebracht in waakzaamheid, snelle oogbewegingsslaap of niet-snelle oogbewegingsslaap. Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van sleutelvragen in bijna elk neurowetenschappelijk veld dat gedrag en fysiologie wil correleren met de activiteit van corticale neuronen bij dieren in beweging. Het grote voordeel van deze techniek is dat er veel knooppunten, elektro-encefalogram en elektromyogram kunnen worden geregistreerd en deze kunnen worden gecombineerd met andere hersenimplantaten zoals optische vezels en infusiekanules.
Visuele demonstratie van deze methode is erg belangrijk omdat de implantatie van de elektrode correct moet worden uitgevoerd en de kwaliteit van de elektrode is uiterst kritiek om de fysieke toestanden te beoordelen. Het demonstreren van de procedure zal door Yohko Takata worden gedaan, een postdoc uit mijn laboratorium. Voordat u begint, steriliseer alle chirurgische hulpmiddelen in een hete parelsterielisatiemachine.
Zodra is bevestigd dat de muis verdoofd is door een knijpen in de teen, scheer het haar op het hoofd en de nek. Bevestig vervolgens het huis op het stereotactische frame en fixeer het hoofd tussen de twee oorbeugels. Breng vervolgens oogzalf aan in de ogen om uitdroging te voorkomen.
Ga door met het reinigen van de geschoren huid met alcohol en jodium gebaseerde scrubs. Snijd vervolgens langs de middenlijn met een scalpel om de schedel bloot te leggen en bevestig de huid aan de zijkant met clips om het operatiegebied open te houden. Maak vervolgens twee gaten met een hardmetalen snijder met een 0,8 millimeter boor.
Plaats een gat boven het frontale corticale gebied. Plaats het tweede gat boven het pariëtale gebied van de rechterhersenhelft. Gebruik vervolgens een juwelenschroevendraaier om roestvrijstalen EEG-opnameschroeven in de gaten te schroeven.
Breng de schroeven in met slechts twee tot twee en een halve draai om een epidurale positionering boven de cortex te verkrijgen. De schroeven mogen niet schudden eenmaal geplaatst. Dit is erg belangrijk.
Bevestig nu de elektrodenassemblage met de pinnen omhoog op de schedel. De elektroden moeten rechtop worden bevestigd. Gebruik een wattenstaafje om de positie van de elektrode te helpen bevestigen en lijm de elektrode vast met cyanoacrylaat gevolgd door tandcement.
Maak vervolgens kleine gaatjes in de trapezius en breng de EMG-elektrode in die gaatjes. Naai vervolgens de huid met zijdedraad met een diameter van 0,1 millimeter. Verwijder nu de muis uit het stereotactische frame en plaats deze op een verwarmingspad.
Geef de muis intraperitoneale injecties van ampicilline en meloxicam en monitor de muis totdat deze weer in sternal liggende positie is. Huis de muis vervolgens alleen. Een week na het implanteren van de elektroden, brengt u de muis over naar een experimentele kooi in een geluiddichte opnamekamer.
Bevestig de EEG/EMG-elektrodenassemblage op de muis aan een opnamekabel die is aangesloten op een slipring. Verbind de AD-converterkabel met een EEG/EMG-signaalfilterversterker die is aangesloten op de slipring. Gebruik een AD-converter om het signaal om te zetten in een 128 hertz digitaal signaal en ten slotte het signaal op te nemen op een computer.
Habitueer de muis gedurende twee tot drie dagen in de opnamekamer. Als de EEG/EMG-opname medicijntoedieningen omvat, moet de muis elke dag zachtjes worden behandeld, alsof er een medicijntoediening wordt gegeven. Start vervolgens de EEG/EMG-opnamesoftware.
Om te beginnen, klikt u op het tabblad Informatie over gegevensbestand en klikt u op het vak naast de bestandsnaam. Voer een bestandsnaam in en klik op Opslaan. Selecteer vervolgens in het tabblad Opnamevoorwaarden alle EEG/EMG-kanalen die moeten worden opgenomen.
Selecteer ook de Bemonsteringsfrequentie onder dit tabblad. Controleer nu in het tabblad Kanaalinformatie of de geselecteerde kanalen correct worden weergegeven. Zodra dit is bevestigd, start u de opname door eerst het tabblad Timer-instelling te selecteren.
Klik vervolgens op monitor om EEG en EMG weer te geven. Als de signalen correct worden weergegeven, stelt u de kloktijd in voor het begin en het einde van de opname in het gebied Hoofdtimer. Klik vervolgens op de knop Monitor om de opname te starten.
Neem nu de signalen op onder basislijnomstandigheden en verschillende behandelingsvoorwaarden gedurende meerdere dagen. Wanneer het experiment is voltooid, euthaniseer de muis met pentobarbital. Start de software voor EEG/EMG-analyse.
Open de EEG/EMG-ruwe gegevens, een KCD-bestand. Klik op het tabblad Slaap en stel de Epoch-tijd in op 10 seconden. Selecteer vervolgens Multi-screening om alle tien seconden epochen automatisch in drie fasen te scoren op basis van de amplituden van de EEG en de EMG en op basis van de spectrale analyse van de EEG.
Klik vervolgens op de FFT-voorwaarde voor EEG-tabblad. Stel daar de parameters voor de spectrale analyse in. Gebruik 256 datapunten die overeenkomen met elke twee seconden EEG, gebruik de hamming-vensterfunctie en gebruik een gemiddelde van vijf spectra per epoch.
Klik vervolgens op Ok. Klik nu op Start screening om de automatische screening te starten. Open vervolgens de opgeslagen gegevens, die zijn opgeslagen in een RAF-bestandsindeling, en controleer de resultaten van de automatische screening. Corrigeer indien nodig de resultaten als deze niet aan de standaardcriteria voldoen.
Om een correctie aan te brengen, klikt u op en houdt u de linkermuisknop ingedrukt op een onjuist beoordeelde epoch en sleept u de cursor over de reeks onjuist beoordeelde epochen. Laat de linkermuisknop los en selecteer de juiste gedragstoestand in het pop-upvenster. Onder basislijnomstandigheden vertoonden de muizen een duidelijke circadiane slaap-waakcyclus die consistent was met hun nachtelijke aard.
Tijdens de 12 uur durende lichtperiode sliepen de muizen gemiddeld 6,7 uur NREM-slaap en 0,9 uur REM-slaap. Terwijl tijdens hun 12 uur durende duisternisperiode waakzaamheid overheersend was. Andere
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel beschrijft een polygrafische registratieprocedure voor het beoordelen van de waaktoestand van vrij bewegende muizen via EEG- en EMG-metingen. De methode stelt onderzoekers in staat om gedrag en fysiologie te correleren met slaaptoestanden, wat inzicht biedt in de activiteit van corticale neuronen.
Een nauwkeurige beoordeling van slaap-waaktoestanden in preklinische modellen is essentieel voor het verminderen van risico's bij geneesmiddelkandidaten die op het centraal zenuwstelsel zijn gericht, door gedragstypen te koppelen aan de onderliggende neurale activiteit. Deze polygrafische registratiemethode maakt kwantitatieve, longitudinale monitoring van waaktoestanden bij vrij bewegende muizen mogelijk, wat de mechanistische validatie van slaapmodulerende verbindingen ondersteunt. De techniek biedt translationele continuïteit van target-interactie naar functionele output, wat bijdraagt aan go/no-go-beslissingen in vroege discovery-pipelines.
De methode integreert in het ontdekkingscontinuüm, van hypothesetoetsing tot lead-optimalisatie, en biedt fysiologische read-outs die de brug slaan tussen moleculaire interventie en gedragsmatige output bij de ontwikkeling van neuropsychiatrische geneesmiddelen.