Name: High Throughput Assay to-eierleggende Voorkeuren van de individuele onderzoeken Drosophila melanogaster (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-03-24T13:00:00.000+00:00
Duration: 3 min 58 s
Description: Leer een high-throughput assay om eilegpreferenties van individuele Drosophila melanogaster te onderzoeken. Deze methode identificeert genen en neurale circuits die eenvoudige keuzegedragingen reguleren.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Wij bedanken de Duke Physics Shop, in het bijzonder Phil Lewis, voor het helpen bij het bouwen van de gedragsapparatuur en de bijlagen en het maken van de tekening. Dit werk wordt gefinancierd door de National Institutes of Health onder toekenningsnummer R01GM100027.

1. Voorbereiding Flies te worden getest <ol><li> Cultuur vliegt op standaard melasse / maïsmeel media op incubator ingesteld op 25 ° C en 65% luchtvochtigheid. Zorg ervoor dat de flesjes niet overladen. Bijvoorbeeld, zet 8 vrouwen en 6 mannen in een smalle voedsel flacon. Opmerking: De &quot;narrow eten flesje&quot; hier wordt gebruikt heeft een inwendige diameter van 2,3 cm. Wij doorgaans verdeeld over 10 ml vlieg voedsel in elk flesje. De vlieg voedsel recept we gebruikten is hier beschreven: http://flystocks.bio.indiana.edu/Fly_Work/media-recipes/molassesfood.html. </li><li> 2-3 dagen na verpopping vrouwen, bereid flesjes met verse gistpasta zie figuur 1E. Voeg verse gist pasta door het mengen van 6 g actieve gist met 10 ml 0,5% propionzuur. Gebruik een spatel om de gistpasta toepassing op de zijwand van het eten flesjes. Verzamel 30-35 Bijlage In vrouwtjes samen met 20 - 25 mannen in de flesjes. <ol><li> In het algemeen is het verzamelen van de mannetjes van de zelfde flesjes waar de vrouwtjes worden verzameld(Om tijd en moeite te besparen). Indien er bezorgdheid over de vruchtbaarheid van mannelijke Gebruik WT mannetjes plaats. Ook gistpasta is belangrijk om het eierproductie daarom dagelijks vers bereid. </li></ol></li><li> Handhaaf de verzamelde vrouwtjes / mannetjes bij 25 ° C, 65% vochtigheid, tenzij de vliegen temperatuurgevoelig zijn. </li><li> Na ~ 4-5 dagen, controleer dan de flesjes om te zien of vrouwtjes zijn klaar voor eierleggende experimenten. Ze zijn klaar wanneer het oppervlak van het voedsel medium is nat van larven actief gravende in het eten (zie figuur 1E - F). Opmerking: De vrouwtjes meestal weigeren eieren leggen zodra het eten oppervlak nat en kruipen met larven wordt. Deze stap zorgt ervoor dat vrouwen klaar om te veel eieren te leggen wanneer ze substraten met een gewenste textuur zouden komen (bv., ~ 1% agarose). </li></ol> 2. Chamber Bouw, Vergadering, Assay Setup <ol><li> Heeft u een machine winkel te bouwen acryl-eierleggende kamers (Figuur 1A - D). De technische tekening van de verschillende stukken werden getoond in Aanvullende Figuur 1 -. 3 Hoge resolutie foto&#39;s kunnen ook hier te vinden (http://www.rebeccayang.org/pdf/chamber%20design.pdf). </li><li> Invoegen kunststof vellen in lading (bovenste) deel van de kamer zoals getoond in figuur 1C. Dit dient als de onderkant tijdens het laden vliegt in individuele eierleggende arena&#39;s. </li><li> Verdoven vrouwtjes op een CO 2 pad en laad ze afzonderlijk in elk eierleggende arena. Laat ~ 30 min voor vliegen om te herstellen van de CO 2 en raken gewend aan de nieuwe omgeving. </li><li> Bereid de agarose substraten. <ol><li> Voor het gemak, houdt een premade fles gesmolten 1% agarose in een 55 ° C waterbad. </li><li> Voeg de gewenste hoeveelheid voorraad sucrose oplossing (2 M) in een 50 ml conische buis en mengen met geschikte hoeveelheid agarose. Bijvoorbeeld, de 150 mM sucrose substraat bereiden place 750 ul van 2 M sucrose-oplossing in de buis en vervolgens de buis te vullen met agarose aan de 10 ml markering. </li><li> Bereid de vlakte substraat op dezelfde manier, maar voeg gedistilleerd water in plaats van sucrose-oplossing. Opmerking: De uiteindelijke concentratie van agarose in dit protocol iets minder dan 1%. In onze ervaring, is de precieze concentratie van agarose niet zo lang uit als het wordt geregeld om binnen ~ 0,9-1,1% en dat de twee substraten van dezelfde concentratie agarose. </li></ol></li><li> Neem het substraat (onder) deel van de kamer en pipetteer 1000 pi agarose substraat in elke trog zoals in figuur 1D. </li><li> Sta agarose stollen gedurende ~ 30 minuten. </li><li> Nadat de agarose substraten en vliegen zijn klaar, assembleren alle drie stukken van de eierleggende kamer en neem dan de plastic vellen. </li><li> Plaats de kamers in vlieg incubators. Opmerking: De lengte van eierleggende experimenten kunnen variëren, afhankelijk van ervaproefgroepen behoeften. Wij doorgaans het experiment O / N (14-16 uur). Ook, geen significante impact van de circadiane timing on-eierleggende voorkeuren werd waargenomen. </li><li> Verdoven vrouwtjes door het injecteren van CO 2 in de kamer. Demonteer de kamer, gooi de verdoofde vliegen in fly lijkenhuis (bijv., Kan een lege koffie gevuld met een aantal maïsolie). Neem foto&#39;s van de resultaten voor het bijhouden van gegevens (zie figuur 2). </li><li> Handmatig tellen het aantal eieren en bereken voorkeur indices voor analyse. Bereken voorkeur index als (N a - N b) / (N a + N b) waarbij N a en N b vertegenwoordigen aantal eieren op de site van een vs. plaats b, respectievelijk. </li></ol>

<ol><li>Perisse, E., Burke, C., Huetteroth, W., Waddell, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Shocking+revelations+and+saccharin+sweetness+in+the+study+of+Drosophila+olfactory+memory%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">Shocking revelations and saccharin sweetness in the study of Drosophila olfactory memory.</a> Curr. Biol. 23 (17), 752-763 (2013).</li>
<li>Yamamoto, N. C., Koganezawa, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genes+and+circuits+of+courtship+behaviour+in+Drosophila+males%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Genes and circuits of courtship behaviour in Drosophila males.</a> Nat. Rev. Neurosci. 14 (10), 681-692 (2013).</li>
<li>Zwarts, L., Versteven, M., Callaerts, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetics+and+neurobiology+of+aggression+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Fly%22%5BJournal%5D)">Genetics and neurobiology of aggression in Drosophila.</a> Fly. 6 (1), 35-48 (2012).</li>
<li>Joseph, R. M., Devineni, A. V., King, I. F., Heberlein, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oviposition+preference+for+and+positional+avoidance+of+acetic+acid+provide+a+model+for+competing+behavioral+drives+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci%22%5BJournal%5D)">Oviposition preference for and positional avoidance of acetic acid provide a model for competing behavioral drives in Drosophila.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. 106 (27), 11352-11357 (2009).</li>
<li>Miller, P. M., Saltz, J. B., Cochrane, V. A., Marcinkowski, C. M., Mobin, R., Turner, T. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Natural+variation+in+decision-making+behavior+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Natural variation in decision-making behavior in Drosophila melanogaster.</a> PLoS One. 6 (1), 16436(2011).</li>
<li>Schwartz, N. U., Zhong, L., Bellemer, A., Tracey, W. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Egg-laying+decisions+in+Drosophila+are+consistent+with+foraging+costs+of+larval+progeny%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+One%22%5BJournal%5D)">Egg-laying decisions in Drosophila are consistent with foraging costs of larval progeny.</a> PloS One. 7 (5), 37910(2012).</li>
<li>Yang, C. H., Belawat, P., Hafen, E., Jan, L. Y., Jan, Y. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drosophila+egg-laying+site+selection+a+system+to+study+simple+decision-making+processes%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Drosophila egg-laying site selection a system to study simple decision-making processes.</a> Science. 319 (5870), 1679-1683 (2008).</li>
<li>Kacsoh, B. Z., Lynch, Z. R., Mortimer, N. T., Schlenke, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fruit+flies+medicate+offspring+after+seeing+parasites%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Fruit flies medicate offspring after seeing parasites.</a> Science. 339 (6122), 947-950 (2013).</li>
<li>Wu, C. -L., Fu, T. -F., Chou, Y. -Y., Yeh, S. -R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Single+Pair+of+Neurons+Modulates+Egg-Laying+Decisions+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+one%22%5BJournal%5D)">A Single Pair of Neurons Modulates Egg-Laying Decisions in Drosophila.</a> PloS one. 10 (3), e0121335(2015).</li>
<li>Yang, C. H., He, R., Stern, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Behavioral+and+circuit+basis+of+sucrose+rejection+by+Drosophila+females+in+a+simple+decision-making+task%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Behavioral and circuit basis of sucrose rejection by Drosophila females in a simple decision-making task.</a> J. Neurosci. 35 (4), 1396-1410 (2015).</li>
<li>Gou, B., Liu, Y., Guntur, A. R., Stern, U., Yang, C. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanosensitive+neurons+on+the+internal+reproductive+tract+contribute+to+egg-laying+induced+acetic+acid+attraction+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Rep%22%5BJournal%5D)">Mechanosensitive neurons on the internal reproductive tract contribute to egg-laying induced acetic acid attraction in Drosophila.</a> Cell Rep. 9 (2), 522-530 (2014).</li>
<li>Stern, U., Zhu, E. Y., He, R., Yang, C. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-duration+animal+tracking+in+difficult+lighting+conditions%5BTitle%5D)+AND+%22Sci.+Rep%22%5BJournal%5D)">Long-duration animal tracking in difficult lighting conditions.</a> Sci. Rep. 5, 10432(2015).</li>
<li>Zhu, E. Y., Guntur, A. R., He, R., Stern, U., Yang, C. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Egg-laying+demand+induces+aversion+of+UV+light+in+Drosophila+females%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">Egg-laying demand induces aversion of UV light in Drosophila females.</a> Curr. Biol. 24 (23), (2014).</li>
<li>Branson, K., Robie, A. A., Bender, J., Perona, P., Dickinson, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-throughput+ethomics+in+large+groups+of+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Methods%22%5BJournal%5D)">High-throughput ethomics in large groups of Drosophila.</a> Nat. Methods. 6, 451-457 (2009).</li>
<li>Klatpoetke, N. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Independent+Optical+Excitation+of+Distinct+Neural+Populations%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Methods%22%5BJournal%5D)">Independent Optical Excitation of Distinct Neural Populations.</a> Nat. Methods. 11 (3), 338-346 (2014).</li>
</ol>

De auteurs hebben niets te onthullen.

De kamers en protocollen hier beschreven hebben een aantal verbeteringen ten opzichte van vorige eierleggende assays. Ten eerste, ze verhogen de doorzet van testen voorkeur van enkele dieren aanzienlijk. Elke kamer kan assay 30 alleenstaande vrouwen en het duurt minder dan een uur op te zetten. Ten tweede, ze verhogen de consistentie van de eierleggende voorkeuren ten opzichte van eerdere methoden. De standaardisering van de afmetingen van de arena, grootte van de leg substraten, en de afstand tussen de substraten maakt...

Drosophila melanogaster is een krachtig genetisch modelorganisme om de neurale basis van gedrag te bestuderen. De snelle ontwikkeling van genetische hulpmiddelen om neuronen op een gerichte manier te manipuleren en de opkomst van geavanceerde gedragsanalysetools hebben ons vermogen om de circuitmechanismen die ten grondslag liggen aan de sensorisch-motorische transformatieprocessen van verschillende aangeboren en aangeleerde gedragingen1-3 te ontleden aanzienlijk verbeterd.
Drosophila eierlegging is een geschikt model om de neurale basis van eenvoudige besluitvormingsprocessen te bestuderen. In het bijzonder is aangetoond dat Drosophila-vrouwtjes het vermogen hebben om hun opties te vergelijken en te rangschikken voordat ze zich "verplichten" om een ei op een bepaalde optie te leggen4-8. Wanneer bijvoorbeeld alleen een eenvoudig (suikervrij) substraat of alleen een sucrose-bevattend substraat wordt gegeven, accepteren vrouwtjes beide opties voor het leggen van eieren. Wanneer ze echter beide opties worden gepresenteerd, verwerpen vrouwtjes in sommige contexten robuust het sucrose-substraat7,9,10. Er is echter relatief weinig bekend over de neurale mechanismen die vrouwtjes in staat stellen "het grootste van twee goederen te kiezen". Een grote hindernis is geweest het ontbreken van een efficiënte methode om eierlegvoorkeuren te meten, zodat een systematische genetische screeningsbenadering kan worden gebruikt om dit probleem te bestuderen.
In dit rapport beschrijven we het protocol dat we hebben ontwikkeld en dat het mogelijk maakt om de eierlegvoorkeuren van vrouwtjes met een nauwkeurigheid van één dier te meten en met een aanzienlijk verbeterde doorvoer en consistentie ten opzichte van eerdere methoden. Specifiek bieden we de blauwdrukken voor het bouwen van de door ons ontworpen kamers, het protocol voor het voorbereiden van de vrouwtjes zodat elk is voorbereid om veel eieren te leggen, en het protocol voor het gebruik van de kamers.

<table><tbody><tr><td>UltraPure Agarose&nbsp;</td><td>Invitrogen</td><td>16500-500</td><td></td></tr><tr><td>Sucrose</td><td>Sigma</td><td>S0389</td><td></td></tr><tr><td>Water bath&nbsp;</td><td>Fisher</td><td>15-462-6Q</td><td></td></tr><tr><td>LifeCam Cinema webcam</td><td>Microsoft</td><td>H5D-00013</td><td></td></tr><tr><td>Red LEDs</td><td>Cree</td><td>C503B-RAN-CA0B0AA1</td><td></td></tr><tr><td>Eierleggende kamers</td><td>Op maat gemaakt</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Camerahouders</td><td>Op maat gemaakt</td><td></td><td></td></tr><tr><td>LED-houders</td><td>Op maat gemaakt</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vliegvialen (smal)</td><td>Genesee</td><td>32-116BC</td><td></td></tr></tbody></table>

high throughput assay to-eierleggende voorkeuren van de individuele onderzoeken<em&gt; drosophila melanogaster</em

High Throughput Assay to Examine Egg-Laying Preferences of Individual Drosophila melanogaster

Onlangs, eierleggende voorkeur van Drosophila heeft ontpopt als een genetisch handelbaar model om de neurale basis van eenvoudige besluitvormingsprocessen te bestuderen. Bij het selecteren van sites om hun eieren afzetten, vrouwelijke vliegen in staat zijn om de rangschikking van de relatieve aantrekkelijkheid van hun opties en het kiezen van de &quot;grootste van twee goederen.&quot; Echter, de meeste eierleggende voorkeur assays zijn niet praktisch als men wil een systematische genetische screening aanpak om te zoeken naar het circuit basis ten grondslag liggen aan deze eenvoudige besluitvorming, want ze zijn basis van de bevolking en moeizaam op te zetten. Om de doorvoer te verhogen bestuderen van eierleggende voorkeuren van enkele vrouwtjes ontwikkelden wij aangepaste kamers die elk kunnen tegelijkertijd assay-eierleggende voorkeur tot dertig individuele vliegen en een protocol dat ervoor zorgt elk vrouwtje een hoge eierleggende rate (zodat hun voorkeur gemakkelijk waarneembaar en overtuigender). Onze benadering is eenvoudig uit te voerenen geeft zeer consistente resultaten. Bovendien kunnen deze kamers zijn voorzien van verschillende hulpstukken om de video opname leg dieren en licht leveren voor optogenetics studies. Dit artikel bevat de blauwdrukken voor het vervaardigen van deze kamers en de procedure voor het bereiden van de vliegen te worden getest in deze kamers.

De eierleggende kamers zijn samengesteld uit verschillende stukken: een substraat (bodem) stuk, een verdeler (midden) stuk, een belasting (top) stuk, en 2 schuifdeuren (Figuur 1A - D). Deze stukken worden gebruikt om zelfstandig setup vliegen en substraten voor eierleggende experimenten. Figuur 1F toont hoe flacons moeten uitzien als vrouwtjes klaar zijn voor eieren leggen. Wanneer vliegen kiezen tussen een effen ondergrond en sucrose bevattend substraat...

Dit protocol beschrijft een hoogdoorlaattest voor het testen van ei-legvoorkeuren van Drosophila melanogaster met een nauwkeurigheid per enkel dier. Deze test biedt een eenvoudige, efficiënte en schaalbare platform om genen en circuitonderdelen te identificeren die een eenvoudig besluitvormingsproces controleren.

High Throughput Assay to-eierleggende Voorkeuren van de individuele onderzoeken<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Recently, egg-laying preference of Drosophila has emerged as a genetically tractable model to study the neural basis of simple decision-making processes. ...

Het algemene doel van deze high-throughput assay is om een eenvoudig, efficiënt en schaalbaar platform te bieden voor het identificeren van genen en neuronen die een eenvoudig keuzegeval bij Drosophila reguleren. Het belangrijkste voordeel van deze methode is dat men op een zeer geschikte manier een infectie kan uitvoeren als keuze bij de eitjes en bij een enkel dier. Plaats om het experiment te starten acht vrouwtjes en zes mannetjes in een smal voedingsbuisje gevuld met standaard vliegmedium.Gebruik vervolgens de vrouwelijke nakomelingen die uit dit flesje zijn gegroeid voor de eiafzet-experimenten. Twee tot drie dagen na het uitkomen van de vrouwtjes wordt er verse gistpasta gemaakt door zes gram actieve gist te mengen met 10 milliliter 0,5% propionzuur. Gebruik een spatel om de gistpasta aan de zijwand van de voedingsflesjes aan te brengen.Plaats vervolgens 30 eerder verzamelde uitgekomen vrouwtjes en 20 mannetjes in de vials. Controleer na vier dagen het oppervlak van het voedingsmedium. Als het oppervlak nat is doordat de larven actief in het voedsel graven, zijn de vrouwelijke vliegen klaar voor de eiafzetexperimenten.Zet het experiment voort door eerder geconstrueerde acryllegkamers te gebruiken. Plaats plastic vellen aan de bovenkant en voeg een deel van de kamer toe om als bodemoppervlak te dienen. Narcoseer vervolgens de vrouwtjes op een koolstofdioxidepad en plaats ze individueel in elke legarena.Geef de vliegen 30 minuten de tijd om te herstellen van de koolstofdioxide en te acclimatiseren aan de nieuwe omgeving. Terwijl de vliegen wennen, vult u een buis met agarose tot de markering van 10 milliliter, en bereidt u vervolgens een sucrose-substraat van 150 milliliter voor door 750 microliters van een twee molaire sucrose-oplossing in de buis te plaatsen. Bewaar een fles gesmolten 1% agarose in een waterbad.Bereid het blanco substraat op dezelfde manier, maar vervang de sucrose-oplossing door gedistilleerd water. Neem vervolgens het substraatstuk van de kamer en pipetteer 1.000 µL van het agarose-substraat in elk trogje. Laat de agarose 30 minuten stollen.Zodra de agarose-substraten en de vliegen gereed zijn, assembleert u alle drie de delen van de eiaflegekamer en verwijdert u vervolgens de plastic vellen. Plaats de kamers gedurende de nacht in vliegenincubatoren. Anestheseer de vrouwtjes door koolstofdioxide in de kamer te injecteren.Demonteer de kamer en gooi de gebedeseerde vliegen weg. Maak tot slot foto's van de eieren voor de verslaglegging. De voorkeursindex, of PI, werd berekend als het aantal eieren dat door vrouwelijke vliegen werd gelegd wanneer zij de keuze kregen tussen een gewoon substraat en een substraat dat sucrose bevat.Vrouwtjes gaven een sterke voorkeur aan het onbehandelde substraat voor de ei-afzetting. Na deze procedure bieden andere methoden, zoals radio-registratie, mogelijkheden voor genetisch onderzoek om andere vragen te beantwoorden, zoals het gedrag van de vliegen voorafgaand aan de afzetting van elk ei.

high-throughput-assay-to-examine-egg-laying-preferences-individual

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neurowetenschap

Drosophila melanogaster is een genetisch en gedragsmatig soepel model systeem dat is gebruikt om de moleculaire en cellulaire basis van een groot aantal belangrijke biologische processen meer dan een eeuw een begrip. Drosophila goed is benut om inzicht te krijgen in de genetische basis van vlieg gedrag.

Methoden om Assay Drosophila Gedrag

Deze video beschrijft een eenvoudige methode om vliegbeweging te kwantificeren en toont de uitgevoerde klimtest.  De vliegklimtest is een algemene test van de motorische functie die afhankelijk is van een negatieve geotaxis-respons.

Fly Climbing Assay: een methode om algemene voortbeweging in Drosophila melanogaster te testen

Deze video beschrijft de eilandtest, een gedragsmethode die wordt gebruikt om drosophila-voortbeweging te bestuderen. Het voorbeeldprotocol bevat een installatie voor de test die compatibel is met semi-geautomatiseerde beeldanalyse.

Eilandtest: een methode met hoge doorvoer om drosophila-locomotorisch gedrag te evalueren

Drosophila-vrouwtjes kiezen tussen substraten en selecteren locaties die aantrekkelijk zijn voor het leggen van eieren. Deze video beschrijft een gedragstest die hun besluitvorming test, de zogenaamde eierleggingsvoorkeurstest. De aanbevolen clip demonstreert de procedure met een op maat gemaakte opstelling, waarmee onderzoekers niet alleen het gedrag van veel vrouwen tegelijkertijd kunnen testen, maar ook compatibel zijn met video-opname en optogenetische opstellingen.

Drosophila Egg-Laying Preference Assay: een methode om besluitvorming bij vliegen te testen

C. elegans eierleggedrag kan belangrijke informatie bieden in ontwikkelings-, reproductieve en anatomische studies.  Deze video introduceert de belangrijke stappen van een eierlegtest en toont een monsterexperiment waarbij een medicijn wordt getest op reproductietoxiciteit.

Egg Laying Assay: Een methode om het eierleggedrag van C. elegans te kwantificeren

In deze video artikel beschrijven we een geautomatiseerde test om het effect van honger of verzadiging op olfactorische afhankelijke voedsel zoekgedrag meten de volwassen fruitvlieg Drosophila melanogaster.

A Single-fly test voor foerageergedrag in Drosophila

Hier presenteren we een protocol om de vermijding van gestreste individuen te kwantificeren. Dit paradigma is krachtig maar gebruiksvriendelijk en kan worden gebruikt om de invloed van genen en omgeving op een soort sociale interactie bij Drosophila melanogaster te beoordelen.

Ongecompliceerd Assay voor de kwantificering van Sociale Avoidance in Drosophila melanogaster

Om nieuwe mutaties die de mechanosensatie beïnvloeden te identificeren, ontwierpen we een test die de gedragsreactie op tactiele stimulatie van vliegborsten meet in mutante klonen die gegenereerd zijn door de MARCM-methode. De combinatie van technieken maakt het mogelijk om mechanogevoelige mutaties te identificeren die anders dodelijk zouden zijn.

Een Behavioral Assay voor Mechanosensation van MARCM-gebaseerde klonen in<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Dit artikel beschrijft een gedrags-test die mannetje mating drive in Drosophila melanogaste r om de motivatie te bestuderen gebruikt. Met deze methode kunnen onderzoekers gebruiken geavanceerde fly neurogenetische technieken om de genetische, moleculaire en cellulaire mechanismen die ten grondslag liggen aan deze motivatie ontdekken.

Het meten en de wijziging van Mating Drive in Male<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Dit protocol is ontworpen om de levensvatbaarheid van Drosophila in elke ontwikkelingsfase, van embryo tot volwassene, te beoordelen. De methode kan worden gebruikt om de levensvatbaarheid van verschillende genotypen of groeiomstandigheden te bepalen en te vergelijken.

Een directe en eenvoudige methode om de levensvatbaarheid van Drosophila melanogasterte beoordelen van embryo tot volwassene

Integriteit van de bloed-hersen barrière is essentieel voor de functie van het zenuwstelsel. In Drosophila melanogasterwordt de bloed-hersen barrière gevormd door gliacellen tijdens de late embryogenese. Dit protocol beschrijft methoden voor het testen van de vorming en het onderhoud van de bloed-hersen barrière in D. melanogaster -embryo's en derde instar larven.

Test voor de integriteit van de bloed-hersen barrière in Drosophila melanogaster

Leer een high-throughput assay om eilegpreferenties van individuele Drosophila melanogaster te onderzoeken. Deze methode identificeert genen en neurale circuits die eenvoudige keuzegedragingen reguleren.

High Throughput Assay to-eierleggende Voorkeuren van de individuele onderzoeken

Meer video's verkennen