Name: Turen naar Brain polysomen met Atomic Force Microscopy (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-03-16T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 49 s
Description: Leer hersenpolyribosomen zuiveren en beelden met atoomkrachtmicroscopie zonder fixatie of labelen. Deze methode biedt nanoschaalresolutie voor het bestuderen van translatiecontrole en genexpressie.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit onderzoek werd ondersteund door het AXonomIX-onderzoeksproject gefinancierd door de Provincia Autonoma di Trento, Italië.

Het wordt gebruikt om de muis weefsels te verkrijgen praktijken werden goedgekeurd door het orgaan voor de bescherming van dieren (OPBA) van de Universiteit van Trento (Italië), protocol nr. 04-2015, volgens Art.31 wetsdecreet nr. 26/2014. Alle muizen werden op het modelorganisme Facility van het Centre for Integrative Biology (CIBIO), Universiteit van Trento, Italië onderhouden. Let op: Om RNA degradatie van de monsters te voorkomen, bereiden alle buffers met behulp van DEPC behandeld water voor het minimaliseren van RNase besmetting. 1. Bereiding van polysomen van Whole Brains <ol><li> Verzamelen hersenweefsel (15 min) <ol><li> Euthanaseren wild-type muis stam C57BL / 6 met CO 2 stikken gedurende 5 min 36. Ontleden voorzichtig de hersenen uit de schedel 36, plaatst het weefsel in een 1,5 ml buis en meteen plaats het in vloeibare stikstof. Bewaren bij -80 ° C tot gebruik. </li></ol></li><li> Bereiding van lysaat (30 min) <ol><li> Verpulveren de hele hersenweefsel met behulpeen vijzel onder vloeibare stikstof. </li><li> Breng ongeveer 25 mg poeder een koude microcentrifugebuis onmiddellijk voeg 0,8 ml lysisbuffer (zie tabel 1) en verstoren de cel (het ontdooien van de verpulverde weefsel te voorkomen) door op en neer pipetteren 25 keer snel. </li><li> Centrifugeer de buis bij 12.000 xg gedurende 1 min bij 4 ° C om celresten te pelleteren. </li><li> Breng de supernatant naar een nieuwe microcentrifugebuis en houden de buis op ijs gedurende 15 min. </li><li> Centrifugeer de buis bij 12.000 xg gedurende 5 minuten bij 4 ° C kernen en mitochondriën te pelleteren. </li><li> Breng de supernatant naar een nieuwe microcentrifugebuis. </li><li> Bewaar het supernatant bij -80 ° C maximaal 6 maanden gebruik ze onmiddellijk. </li></ol></li><li> Sucrosegradiënt centrifugering preparaat en (2 uur en 30 min) <ol><li> Was de ultracentrifuge buizen uitgebreid met RNase-vrij water (diethylpyrocarbonaat behandeld water (DEPC-water) of commercieel) eend 3% H 2 O 2 / DEPC H2O oplossing. </li><li> Zet de buizen op ijs en voeg 5,5 ml koude 50% sucrose oplossing onder aan elke buis (zie tabel 1 voor sucrose toegevoegd). Voeg voorzichtig de 15% sucrose oplossing druppelsgewijs blijven dicht bij de interfase om een ​​scherpe interfase behouden, totdat de buis volledig is gevuld. Wanneer de buis volledig is gevuld, sluit met een rubberen stop aan luchtbelvorming voorkomen. </li><li> In een koude ruimte voorzichtig leggen de buizen horizontaal en hou het in deze positie gedurende 2 uur. Na deze tijd, langzaam strek de buizen terug in de verticale positie en leg ze op ijs. De hellingen zijn nu klaar om te worden gebruikt. Als alternatief, de voorbereiding van de 15-50% sucrose gradiënt met behulp van een conventionele gradient voormalig. </li><li> In een koelruimte Haal 1,0 ml van de top van de gradiënt en de overlay sucrose druppelsgewijs met de cytosolische lysaat (dat wil zeggen, de bovenstaande vloeistof verkregen in step 1,2). </li><li> laat de buizen voorzichtig in de emmers van swinging bucket rotor. Centrifugeer de gradiënten van 100 min bij 180.000 xg bij 4 ° C onder toepassing van een ultracentrifuge. </li><li> Na het centrifugeren, laat de buizen in hun bakken gedurende 20 minuten bij 4 ° C te laten verlopen stabiliseren. </li></ol></li><li> Sucrosegradiënt fractionering (2 uur) <ol><li> Haal een ultracentrifuge buis van de ultracentrifuge rotor en monteren op de collector-inrichting van een dichtheidsgradiënt fractionering System. Verzamel 1 ml fracties volgen van de absorptie bij 260 nm met een UV / VIS detector (zie figuur 1 bovenste paneel). Houd de verzamelde fracties op het ijs. </li><li> Aliquots van 30-40 ul van de fracties van belang, bewaar ze op ijs alvorens ze op te slaan bij -80 ° C tot gebruik. Gebruik geen monsters of sucrose fracties die meer dan twee invriezen-ontdooien cycli ondergingen (zie figuur 1 onderste paneel). </li></ol> &lt;/ Li&gt; </ol> 2. Monstervoorbereiding voor Atomic Force Microscopy (3 uur) <ol><li> Met behulp van tape, schil van de mica vellen. </li><li> Was de mica vellen 3-4 keer met DEPC-water en plaats deze in een kleine petrischaal. Dan droog het oppervlak met behulp van lucht. </li><li> Bedek de mica met 200 ui 1 mM NiSO 4 en incubeer gedurende 3 minuten bij kamertemperatuur. </li><li> Verwijder de nikkel-oplossing en daarna droog het oppervlak met behulp van lucht. Voer alle toekomstige stappen bij 4 ° C door het plaatsen van de petrischaal met de mica op het ijs. </li><li> Dooi een hoeveelheid verkregen in 1.4.2 op ijs en voorzichtig al het monster druppel toevoegen door druppel op het mica. Met behulp van een 100-200 pi tip, verspreid het monster op het gehele oppervlak van het mica. Incubeer het monster op ijs gedurende 3 min. </li><li> Bedek de micablad druppelsgewijs met 200 ul koude buffer-AFM (zie tabel 1) en incubeer gedurende 1 uur op ijs. </li><li> Imaging in vloeibare <ol><li> Verwijder zorgvuldig de Buffer-AFM en was de mica vellen 3-4 tijds met 200 ul koud Buffer-AFM om overtollig sucrose te verwijderen. Was daarna de mica platen 3 maal met koude Washing Solution (zie tabel 1), waarbij het ​​mica oppervlak met enkele microliter oplossing. </li><li> Ga naar punt 3 (Afbeelding acquisitie). </li></ol></li><li> Beeldvorming in de lucht <ol><li> Haal de Buffer-AFM en was de mica 3-4 keer met 200 ul koud Buffer-AFM om de overmaat sucrose te verwijderen. Vervolgens was de mica 3 keer met koude Washing Solution (zie tabel 1) en laat het overtollige water met behulp van papier. </li><li> Laat het monster gedroogd onder de chemische kap met de bovenkant van de petrischaal gedeeltelijk open. Na 2 uur, sluit de petrischaal en bewaar bij kamertemperatuur. Meet het monster na 2-3 uur omdat ze stabiel zijn voor jaren. </li></ol></li></ol> 3. Image Acquisition (15 min per beeld na thermische stabilisatie) Noot: polysomen geïmmobiliseerd op mica kunnen worden afgebeeld in lucht of vloeistof, via de AC modus. <ol><li> Bevestig de mica om de monsterhouder met dubbelzijdig tape. </li><li> Schuif de monsterhouder in de AFM etappe volgende aanwijzingen van de fabrikant. Bij beeldvorming in vloeibare, indien mogelijk, proberen het monster op een temperatuur lager dan 25 ° C te polysoomdisplays stabiliteit te verhogen. </li><li> Selecteer een cantilever geschikt voor AC beeldvorming en monteren op de tip houder volgens de aanwijzingen van de fabrikant. Hier, gebruik uitkragingen met geweld constant tussen 2-20 N / m voor de lucht imaging en rond 0,1 N / m voor vloeibare beeldvorming. </li><li> Stel de laser plek op de cantilever en nul het kwadrant detector signalen. </li><li> Selecteer een geschikt rijden frequentie en rijd de cantilever met een amplitude van 10-20 nm. </li><li> Benader het monster totdat de punt aangrijpt op het oppervlak. </li><li> Selecteer een scan gebied van 2x2 micrometer, het verwerven van minstens 512x512 pixel beelden (pixel breedte &lt;4 nm), selecteert u een live achtergrond aftrekken modus en een Z-schaal van 20-25 nm. </li><li> inspecteren thij kijken voor de aanwezigheid van ronde voorwerpen gekenmerkt door de hoogte tussen 10 en 15 nm bij het verwerven luchtmengsel en 25 en 30 nm wanneer in vloeibare en de breedte in het bereik van 25-30 nm. Stel het setpoint en feedback parameters tot scherpe voorwerpen worden gevisualiseerd. De achtergrond moet relatief vlak in goede monsters verschijnen enkele 2-4 nm hoogte voorwerpen (zie figuur 2A en B). </li><li> Als het beeld ziet er goed uit (zoals vermeld in punt 3.8), het verwerven van een aantal (minstens tien) 2x2 micron scans op verschillende sample gebieden. </li><li> (Optioneel). Indien nodig, het verwerven van hoge resolutie beelden van de geselecteerde polysomen (zie Figuur 2C). </li><li> Solliciteer software correcties (vliegtuig aftrekken en lijn per lijn correctie algoritmes) aan de AFM beelden verwijderen van willekeurige tilt en drijven effecten te corrigeren. </li></ol> 4. Data-analyse (30 min per beeld) <ol><li> afbeeldingen Export in ImageJ (optioneel: breng een schaal factor) preferentially met een lossless compressie formaat, bijvoorbeeld de TIFF-formaat (zie figuur 3A). </li><li> Gebruik de ImageJ macro toolset RiboPick.ijm (in de ImageJ macro / toolset subdirectory moet worden gekopieerd) aan ribosomen in polysomen (zie figuur 3B) tellen en berekenen statistische eigenschappen van het monster (zie figuur 3C). <ol><li> Start het laden van een afbeelding met behulp van de &lt;image lezen&gt; tool die het programma geïnitialiseerd. </li><li> Pluk het ribosoom centra met de standaard &lt;selectie Point&gt; ImageJ gereedschap (shift + linker muisknop kan de multi-selectie van ribosomen). Markeer de geselecteerde ribosomen met de &lt;Mark ribosomen&gt; tool. Ribosoom coördinaten zal verschijnen in een aangepaste tekst venster. </li><li> Voeg meer ribosomen dezelfde polysoomdisplays herhalen van de procedure aangegeven in het punt 4.2.2. </li><li> Verwijder ten onrechte gemarkeerd ribosomen met behulp van de &lt;Undo laatste pick&gt; gereedschap (begint het verwijderen van de laatst toegevoegde ribosoom aan de eerste212; in de huidige polysoomdisplays alleen). </li><li> Wanneer de polysoom is voltooid, gebruikt u de &lt;New polysoomdisplays&gt; tool. Aangezien het polysoom wordt toegevoegd als een overlay aan het beeld, wordt het tekstvenster bijgewerkt. </li><li> Gebruik de &lt;Resultaat opslaan en in de buurt&gt; te schrijven het ribosoom coördineert een PNG-afbeelding die de geplukt ribosomen en polysomen een samenvatting van het bestand (de standaard eenheden van het beeld worden gebruikt) en. Het originele beeld is gesloten zonder te worden opgeslagen. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Buttgereit, F., Brand, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+hierarchy+of+ATP-consuming+processes+in+mammalian+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem+J%22%5BJournal%5D)">A hierarchy of ATP-consuming processes in mammalian cells.</a> Biochem J. 312, 163-167 (1995).</li>
<li>Russell, J. B., Cook, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Energetics+of+bacterial+growth%3A+balance+of+anabolic+and+catabolic+reactions%5BTitle%5D)+AND+%22Microbiol+Rev%22%5BJournal%5D)">Energetics of bacterial growth: balance of anabolic and catabolic reactions.</a> Microbiol Rev. 59 (1), 48-62 (1995).</li>
<li>Vogel, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sequence+signatures+and+mRNA+concentration+can+explain+two-thirds+of+protein+abundance+variation+in+a+human+cell+line%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Syst+Biol%22%5BJournal%5D)">Sequence signatures and mRNA concentration can explain two-thirds of protein abundance variation in a human cell line.</a> Mol Syst Biol. 6, 400(2010).</li>
<li>Schwanhäusser, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Global+quantification+of+mammalian+gene+expression+control%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Global quantification of mammalian gene expression control.</a> Nature. 473, 337-342 (2011).</li>
<li>Tebaldi, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Widespread+uncoupling+between+transcriptome+and+translatome+variations+after+a+stimulus+in+mammalian+cells%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Genomics%22%5BJournal%5D)">Widespread uncoupling between transcriptome and translatome variations after a stimulus in mammalian cells.</a> BMC Genomics. 13, 220(2012).</li>
<li>Kondrashov, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ribosome-mediated+specificity+in+Hox+mRNA+translation+and+vertebrate+tissue+patterning%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Ribosome-mediated specificity in Hox mRNA translation and vertebrate tissue patterning.</a> Cell. 145 (3), 383-397 (2011).</li>
<li>Topisirovic, I., Svitkin, Y. V., Sonenberg, N., Shatkin, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cap+and+cap-binding+proteins+in+the+control+of+gene+expression%5BTitle%5D)+AND+%22Wiley+Interdiscip+Rev+RNA%22%5BJournal%5D)">Cap and cap-binding proteins in the control of gene expression.</a> Wiley Interdiscip Rev RNA. 2, 277-298 (2011).</li>
<li>Darnell, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FMRP+stalls+ribosomal+translocation+on+mRNAs+linked+to+synaptic+function+and+autism%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">FMRP stalls ribosomal translocation on mRNAs linked to synaptic function and autism.</a> Cell. 146 (2), 247-261 (2011).</li>
<li>Pircher, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+mRNA-derived+noncoding+RNA+targets+and+regulates+the+ribosome%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cell%22%5BJournal%5D)">An mRNA-derived noncoding RNA targets and regulates the ribosome.</a> Mol Cell. 54 (1), 147-155 (2014).</li>
<li>Simms, C. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+active+role+for+the+ribosome+in+determining+the+fate+of+oxidized+mRNA%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Rep%22%5BJournal%5D)">An active role for the ribosome in determining the fate of oxidized mRNA.</a> Cell Rep. 9 (4), 1256-1264 (2014).</li>
<li>Kraushar, M. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Temporally+defined+neocortical+translation+and+polysome+assembly+are+determined+by+the+RNA-binding+protein+Hu+antigen+R%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Temporally defined neocortical translation and polysome assembly are determined by the RNA-binding protein Hu antigen R.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 111 (36), E3815-E3824 (2014).</li>
<li>van Heesch, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extensive+localization+of+long+noncoding+RNAs+to+the+cytosol+and+mono-+and+polyribosomal+complexes%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Biol%22%5BJournal%5D)">Extensive localization of long noncoding RNAs to the cytosol and mono- and polyribosomal complexes.</a> Genome Biol. 15 (1), R6(2014).</li>
<li>Preissler, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Not4-dependent+translational+repression+is+important+for+cellular+protein+homeostasis+in+yeast%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+J%22%5BJournal%5D)">Not4-dependent translational repression is important for cellular protein homeostasis in yeast.</a> EMBO J. 34 (14), 1905-1924 (2015).</li>
<li>Palade, G. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+small+particulate+component+of+the+cytoplasm%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biophys+Biochem+Cytol%22%5BJournal%5D)">A small particulate component of the cytoplasm.</a> J Biophys Biochem Cytol. 1 (1), 59-68 (1955).</li>
<li>McQuillen, K., Roberts, R. B., Britten, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthesis+of+nascent+protein+by+ribosomes+in+Escherichia+coli%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Synthesis of nascent protein by ribosomes in Escherichia coli.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 45 (9), 1437-1447 (1959).</li>
<li>Wettstein, F. O., Staehelin, T., Noll, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ribosomal+aggregate+engaged+in+protein+synthesis%3A+characterization+of+the+ergosome%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Ribosomal aggregate engaged in protein synthesis: characterization of the ergosome.</a> Nature. 2 (197), 430-435 (1963).</li>
<li>Dimitriadis, E. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tetrameric+organization+of+vertebrate+centromeric+nucleosomes%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Tetrameric organization of vertebrate centromeric nucleosomes.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 107 (47), 20317-20322 (2010).</li>
<li>Allen, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Atomic+force+microscope+measurements+of+nucleosome+cores+assembled+along+defined+DNA+sequences%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Atomic force microscope measurements of nucleosome cores assembled along defined DNA sequences.</a> Biochemistry. 32 (33), 8390-8396 (1993).</li>
<li>Ban, N., Nissen, P., Hansen, J., Moore, P., Steitz, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+complete+atomic+structure+of+the+large+ribosomal+subunit+at+2.4+%C3%85+resolution%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">The complete atomic structure of the large ribosomal subunit at 2.4 Å resolution.</a> Science. 289 (5481), 905-920 (2000).</li>
<li>Schluenzen, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structure+of+functionally+activated+small+ribosomal+subunit+at+3.3+%C3%85+resolution%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Structure of functionally activated small ribosomal subunit at 3.3 Å resolution.</a> Cell. 102 (5), 615-623 (2000).</li>
<li>Ben-Shem, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+structure+of+the+eukaryotic+ribosome+at+3.0+%C3%85+resolution%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">The structure of the eukaryotic ribosome at 3.0 Å resolution.</a> Science. 334 (6062), 1524-1529 (2011).</li>
<li>Anger, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structures+of+the+human+and+Drosophila+80S+ribosome%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Structures of the human and Drosophila 80S ribosome.</a> Nature. 497 (7447), 80-85 (2013).</li>
<li>Brandt, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+native+3D+organization+of+bacterial+polysomes%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">The native 3D organization of bacterial polysomes.</a> Cell. 136, 261-271 (2009).</li>
<li>Myasnikov, A. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+molecular+structure+of+the+left-handed+supra-molecular+helix+of+eukaryotic+polyribosomes%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Commun%22%5BJournal%5D)">The molecular structure of the left-handed supra-molecular helix of eukaryotic polyribosomes.</a> Nat. Commun. 5, 5294(2014).</li>
<li>Afonina, Z. A., Myasnikov, A. G., Shirokov, V. A., Klaholz, B. P., Spirin, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Formation+of+circular+polyribosomes+on+eukaryotic+mRNA+without+cap-structure+and+poly%28A%29-tail%3A+a+cryo+electron+tomography+study%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">Formation of circular polyribosomes on eukaryotic mRNA without cap-structure and poly(A)-tail: a cryo electron tomography study.</a> Nucleic Acids Res. 42 (14), 9461-9469 (2014).</li>
<li>Afonina, Z. A., Myasnikov, A. G., Shirokov, V. A., Klaholz, B. P., Spirin, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Conformation+transitions+of+eukaryotic+polyribosomes+during+multi-round+translation%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">Conformation transitions of eukaryotic polyribosomes during multi-round translation.</a> Nucleic Acids Res. 43 (1), 618-628 (2015).</li>
<li>Viero, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three+distinct+ribosome+assemblies+modulated+by+translation+are+the+building+blocks+of+polysomes%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Three distinct ribosome assemblies modulated by translation are the building blocks of polysomes.</a> J Cell Biol. 208 (5), 581-596 (2015).</li>
<li>Brandt, F., Carlson, L. -A., Hartl, F. U., Baumeister, W., Grünewald, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+three-dimensional+organization+of+polyribosomes+in+intact+human+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell%22%5BJournal%5D)">The three-dimensional organization of polyribosomes in intact human cells.</a> Mol. Cell. 39, 560-569 (2010).</li>
<li>Wu, X., Liu, W. Y., Xu, L., Li, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Topography+of+ribosomes+and+initiation+complexes+from+rat+liver+as+revealed+by+atomic+force+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Topography of ribosomes and initiation complexes from rat liver as revealed by atomic force microscopy.</a> Biol Chem. 378 (5), 363-372 (1997).</li>
<li>Yoshida, T., Wakiyama, M., Yazaki, K., Miura, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transmission+electron+and+atomic+force+microscopic+observation+of+polysomes+on+carbon-coated+grids+prepared+by+surface+spreading%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Electron+Microsc+%28Tokyo%29%22%5BJournal%5D)">Transmission electron and atomic force microscopic observation of polysomes on carbon-coated grids prepared by surface spreading.</a> J. Electron Microsc (Tokyo). 46 (6), 503-506 (1997).</li>
<li>Mikamo, E. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Native+polysomes+of+Saccharomyces+cerevisiae+in+liquid+solution+observed+by+atomic+force+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Struct.+Biol%22%5BJournal%5D)">Native polysomes of Saccharomyces cerevisiae in liquid solution observed by atomic force microscopy.</a> J. Struct. Biol. 151, 106-110 (2005).</li>
<li>Mikamo-Satoh, E. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Profiling+of+gene-dependent+translational+progress+in+cellfree+protein+synthesis+by+real-space+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Biochem%22%5BJournal%5D)">Profiling of gene-dependent translational progress in cellfree protein synthesis by real-space imaging.</a> Anal. Biochem. 394, 275-280 (2009).</li>
<li>Bernabò, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Studying+translational+control+in+non-model+stressed+organisms+by+polysomal+profiling%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Insect+Physiol%22%5BJournal%5D)">Studying translational control in non-model stressed organisms by polysomal profiling.</a> J. Insect Physiol. 76, 30-35 (2015).</li>
<li>Schneider, C. A., Rasband, W. S., Eliceiri, K. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((IH+Image+to+ImageJ%3A+25+years+of+image+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Methods%22%5BJournal%5D)">IH Image to ImageJ: 25 years of image analysis.</a> Nat. Methods. 9, 671-675 (2012).</li>
<li>Lauria, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RiboAbacus%3A+a+model+trained+on+polyribosome+images+predicts+ribosome+density+and+translational+efficiency+from+mammalian+transcriptomes%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">RiboAbacus: a model trained on polyribosome images predicts ribosome density and translational efficiency from mammalian transcriptomes.</a> Nucleic Acids Res. , (2015).</li>
<li>Al Omran, A. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+Imaging+of+the+Ependymal+Cilia+in+the+Lateral+Ventricles+of+the+Mouse+Brain%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Live Imaging of the Ependymal Cilia in the Lateral Ventricles of the Mouse Brain.</a> J Vis Exp. (100), e52853(2015).</li>
<li>Warner, J. R., Rich, A., Hall, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electron+microscope+studies+of+ribosomal+clusters+synthesizing+hemoglobin%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Electron microscope studies of ribosomal clusters synthesizing hemoglobin.</a> Science. 138, 1399-1403 (1962).</li>
<li>Yazaki, K., Yoshida, T., Wakiyama, M., Miura, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polysomes+of+eukaryotic+cells+observed+by+electron+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Electron+Microsc+%28Tokyo%29%22%5BJournal%5D)">Polysomes of eukaryotic cells observed by electron microscopy.</a> J. Electron Microsc (Tokyo). 49, 663-668 (2000).</li>
</ol>

De auteurs hebben geen concurrerende financiële belangen in dit artikel en niets te onthullen.

De structuur van DNA werd bewezen van cruciaal belang voor het proces van transcriptie en de organisatie van de chromatinestructuur geavanceerde ons begrip van transcriptionele regulatie van genexpressie te beschrijven, is het essentieel om de organisatie en structuur van polysomen analyseren de waarheidsgetrouwe begrip verbeteren van de vertaling en de regelgeving. Met de beschreven protocol, een optimale dichtheid van polysomen zacht geïmmobiliseerd op een vlak oppervlak, geschikt voor AFM...

De synthese van eiwitten is de meeste energie verbruikende proces cellen 1,2. Daarom is het niet verwonderlijk dat eiwit abundanties voornamelijk gecontroleerd op de translatie in plaats van transcriptie niveau 3,4,5. De polysoom is de fundamentele macromoleculaire component die de mRNA informatie in functionele eiwitachtige uitlezingen omgezet. Polysomen zijn tot nu toe beschouwd als macromoleculaire complexen waar verschillende translationele controles samenkomen 6-13. Ondanks honderden studies over ribosoom structuur 14- 16, heeft de gedetailleerde moleculaire inzicht in de dynamiek van de vertaling en de topologie van polysomen een beperkt belang aangetroffen. Als gevolg daarvan, de organisatie van de inheemse polysomale ribonucleoproteïne complex en de mogelijke gevolgen daarvan voor vertalingen zijn nog vrij onduidelijk kwesties. Polysomen kan nog onbekend besteld en functionele organisaties verbergen, potentieel spiegelen wat nucleosomen en epigenetische controls zijn vertegenwoordigd voor het veld transcriptie. Uit het onderzoek van deze intrigerende hypothese vereist bijkomende studies en nieuwe technische benaderingen. In deze lijn, kunnen structurele technieken en atomic force microscopy vruchtbaar samenwerken om nieuwe mechanismen ontrafelen voor de controle van genexpressie, vergelijkbaar met wat werd bereikt voor de nucleosoom 17,18. Sinds de ontdekking van het ribosoom 14-16, is de structuur uitgebreid gekarakteriseerd in prokaryoten 19,20, gist 21 en meer recent in humane 22, die de moleculaire beschrijving van de mechanismen die aan de basis van eiwitsynthese. Polysomen werden initieel opgenomen op het membraan van het endoplasmatisch reticulum, de vorming van typische 2D geometrische organisaties 14. Zoals eerder vermeld, heeft polysoomdisplay montage niet vatbaar constante belang als ribosoomstructuur geweest. In het verleden zijn polysomen werden voornamelijk bestudeerd door transmission EM-gebaseerde technieken. Pas onlangs, cryo-EM technieken kon de 3D-reconstructie van gezuiverd polysomen van in vitro translatie-systemen 23-26, menselijke cellulaire lysaten 27 of in cellen 28. Deze technieken bood meer verfijnde informatie over de ribosoom-ribosoom organisatie polysomen 23, 26-28 en een eerste moleculaire beschrijving van de contactoppervlakken van aangrenzende ribosomen in tarwekiemen polysomen 24. Zo cryo-EM tomografie maakt de openbaarmaking van ribosoom-ribosoom interacties met moleculaire detail, maar het wordt belast door uitgebreide post-processing en wederopbouw analyses die zware computationele middelen nodig voor gegevensverwerking. Bovendien zou de moleculaire details van ribosoom-ribosoom interacties te verkrijgen, een hoogst vastbesloten kaart van het ribosoom vereist en dergelijke referentie ribosoom is alleen beschikbaar voor enkele soorten. Belangrijk is cryo-EM tomografie is niet in staat om gratis RNA te detecteren. Thereferts worden nieuwe technieken die nodig zijn om de organisatie van de vertaling machines volledig te begrijpen. Naast cryo-EM, is de AFM is ook gebruikt als een nuttig hulpmiddel voor directe beeldvorming van polysomen in lagere eukaryoten 29-33 en mensen 27. Vergeleken met EM, AFM vereist geen monster fixatie of de etikettering. Bovendien kunnen metingen worden uitgevoerd in de buurt van fysiologische omstandigheden en met de unieke mogelijkheid om duidelijk te identificeren zowel ribosomen en naakt RNA strengen 27 uitgevoerd. Beeldvorming van enkele polysomen kan relatief snel worden uitgevoerd, het verkrijgen van duizenden beelden op nano-resolutie met weinig post-processing inspanning in vergelijking met de uitgebreide en zware post-processing en wederopbouw analyses vereist door cryo-EM microscopie. Consequently, AFM data verwerking en analyse niet duur werkstations en hoge rekenkracht nodig hebben. Als zodanig is deze techniek verzamelt informatie over polysomale uniek morfologische kenmerken (zoalshoogte, lengte en breedte), ribosoom dichtheden is de aanwezigheid van vrije RNA en het aantal ribosomen per polysoomdisplays 27 met een hoger debiet dan cryo-EM. In een dergelijke manier, AFM staat voor een krachtige en complementaire aanpak van EM technieken om polysomen 27 portretteren. Hier presenteren we een volledige pijpleiding van zuivering tot data-analyse, waar AFM wordt toegepast op de afbeelding en analyseren muizenhersenen polysomen. De voorgestelde protocol gericht op zuivering kwesties en de nauwkeurige afzetting van polysomen op mica substraten die worden gebruikt voor AFM beeldvorming. In aanvulling op de conventionele analyse van deeltjes die gemakkelijk kunnen worden uitgevoerd met gangbare software wordt gebruikt door de AFM gemeenschap, een ImageJ 34 plugin, genaamd RiboPick, wordt gepresenteerd voor het tellen van het aantal ribosomen per polysoomdisplays 27, 35.

<table><tbody><tr><td>Cycloheximide</td><td>Sigma</td><td>01810</td><td>Prepararation van lysate</td></tr><tr><td>DNAseI</td><td>Thermo Scientific</td><td>89836</td><td>Prepararation van lysate</td></tr><tr><td>RiboLock RNAse Inhibitor</td><td>Life technologies</td><td>EO-0381</td><td>Prepararation van lysate</td></tr><tr><td>DEPC</td><td>Sigma</td><td>40718</td><td>Prepararation van lysate</td></tr><tr><td>Triton X100</td><td>Sigma</td><td>T8532</td><td>Prepararation van lysate</td></tr><tr><td>DTT</td><td>Sigma</td><td>43815</td><td>Prepararation van lysate</td></tr><tr><td>Sodium Deoxycholate</td><td>Sigma</td><td>D6750</td><td>Prepararation van lysate</td></tr><tr><td>Microcentrifuge&nbsp;</td><td>Eppendorf</td><td>5417R</td><td>Prepararation van lysate</td></tr><tr><td>Sucrose</td><td>Sigma</td><td>S5016</td><td>Prepararation van sucrosegradiënt</td></tr><tr><td>Ultracentrifuge</td><td>Beckman Coulter</td><td>Optima LE-80K</td><td>Sucrose gradiënt centrifugatie</td></tr><tr><td>Ultracentrifuge Rotor</td><td>Beckman Coulter</td><td>SW 41 Ti</td><td>Sucrose gradiënt centrifugatie</td></tr><tr><td>Polyallomer tube</td><td>Beckman Coulter</td><td>331372</td><td>Sucrose gradiënt centrifugatie</td></tr><tr><td>Density Gradient Fractionation System&nbsp;</td><td>Teledyne Isco</td><td>67-9000-176</td><td>Sucrose gradiënt fractievorming</td></tr><tr><td>AFM</td><td>Asylum Research</td><td>Cypher</td><td>Polysoom visualisatie</td></tr></tbody></table>

turen naar brain polysomen met atomic force microscopy

Peering at Brain Polysomes with Atomic Force Microscopy

De translatiemachinerie, dwz de polysoomdisplay of polyribosome, is één van de grootste en meest complexe cytoplasmatische machines in cellen. Polysomen, gevormd door ribosomen, mRNA&#39;s, een aantal eiwitten en niet-coderende RNA&#39;s, vertegenwoordigen geïntegreerde platforms waar de translationele controles plaatsvinden. Echter, terwijl het ribosoom is op grote schaal onderzocht, de organisatie van polysomen ontbreekt nog uitgebreide kennis. veel inspanning is dus noodzakelijk om polysoomdisplays organisatie en elk nieuw mechanisme van translationele controlesignalen die worden ingesloten helderen. Atomic force microscopie (AFM) is een soort van scanning probe microscopie dat de overname van 3D-beelden op nanoschaal resolutie maakt. Vergeleken met elektronenmicroscopie (EM) techniek, een van de belangrijkste voordelen van AFM dat duizenden beelden zowel in lucht en in oplossing te verwerven, zodat het monster onder dichtbij fysiologische omstandigheden worden gehandhaafd zonder enige noodzaak voor het kleuren en vaststelling proprocedures. Hier is een gedetailleerd protocol voor de zuivering van nauwkeurig polysomen van muizenhersenen en hun depositie op substraten mica beschreven. Dit protocol maakt polysoomdisplays beeldvorming in lucht en vloeistof met AFM en de wederopbouw driedimensionale objecten. Complementair aan cryo-elektronenmicroscopie (cryo-EM), kan de voorgestelde methode gemakkelijk worden gebruikt voor het systematisch analyseren polysomen en het bestuderen van hun organisatie.

Sucrosegradiënt polysomale profilering van de hele hersenen van muizen Het is mogelijk om polysomen zuiveren van een cellulair lysaat door polysomale profielen om macromoleculen scheidt volgens hun gewicht en grootte. Met polysomale profilering, cytoplasmatische lysaten verkregen uit gekweekte cellen of weefsels, zoals in dit voorbeeld, worden geladen op een lineaire sucrosegradiënt en verwerkt door ultracentr...

Hoewel de structuur van ribosomen uitgebreid is gekarakteriseerd, is de organisatie van polysomen nog onvoldoende bestudeerd. Om dit kennisgebrek te overwinnen, presenteren we hier een gedetailleerd voorbereidingsprotocol voor nauwkeurige beeldvorming van polysomen van zoogdieren door atomaire krachtmicroscopie (AFM) in lucht en vloeistof.

Turen naar Brain polysomen met Atomic Force Microscopy

The translational machinery, i.e., the polysome or polyribosome, is one of the biggest and most complex cytoplasmic machineries in cells. Polysomes, ...

Het algemene doel van dit protocol is om een gedetailleerde pijplijn te bieden voor de nauwkeurige zuivering en depositie van hersenpolyribosomen op mica, om duizenden beelden met nanometerschaalresolutie te verkrijgen zonder dat zware post-processing of 3D-reconstructieanalyses nodig zijn. Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van kernvragen op het gebied van translatie en translationele controle, zoals het begrijpen van de impact van ribosoomorganisatie binnen polysomen tijdens de herprogrammering van genexpressie. De belangrijkste voordelen van deze techniek zijn dat er geen fixatie of labeling van monsters vereist is en dat metingen kunnen worden uitgevoerd onder bijna fysiologische omstandigheden om ribosomen en naakte RNA-strengen gemakkelijk te identificeren.Hoewel deze methode inzicht kan bieden in de organisatie van het polyribosoom bij zoogdieren, kan deze ook worden toegepast op andere micro-organismen, zoals gist, bacteriën en insecten, evenals op toestanden waarbij translationele controles van genexpressie betrokken zijn. Een visuele demonstratie van deze methode is essentieel, aangezien het hanteren van polysomale monsters voor adsorptie aan mica en de wasstappen zeer complex zijn en vaardigheid en ervaring vereisen. De procedure zal worden gedemonstreerd door Paola Bernabo en Lorenzo Lunelli.Begin met het verzamelen en invriezen van hersenweefsel zoals beschreven in het bijbehorende tekstprotocol. Haal vervolgens het bevroren weefsel uit de vriezer en breng het naar de werkbank. Plaats het bevroren hersenweefsel en vloeibare stikstof in een vooraf gekoelde vijzel en vermalen het met een stamper tot er een poeder ontstaat.Breng ongeveer 25 milligram van het hersenpoeder over naar een koude microcentrifugebuis en voeg onmiddellijk 0,8 milliliter lysisbuffer toe. Pipetteer het mengsel 25 keer snel op en neer om de cellen te lyseren. Centrifugeer de buis vervolgens 1 minuut bij 12 000 x g bij vier graden Celsius om het celdebris te pelletteren.Breng de supernatant over naar een nieuwe microcentrifugebuis en bewaar de buis 15 minuten op ijs. Centrifugeer de buis vervolgens vijf minuten om de kernen en mitochondriën te pelletteren. Verwijder daarna voorzichtig één milliliter van de bovenkant van een eerder bereide sucrosegradiënt.Voeg het supernatant van het cytosolisch lysaat druppel voor druppel toe bovenop de sucrose. Nu het monster bovenop de gradiënt is geladen, plaatst u de buis en een tegenwichtbuis voorzichtig in de emmers van een swing-out rotor. Centrifugeer de gradiënt gedurende 100 minuten.Laat de buisjes na ultracentrifugatie 20 minuten in hun houders staan bij vier graden Celsius om de gradiënt te laten stabiliseren. Verwijder vervolgens voorzichtig de monsterbuis en plaats deze in het opvangapparaat van een dichtheidsgradiënt-fractioneringssysteem. Verzamel fracties van één milliliter terwijl de absorptie van nucleïnezuren bij 260 nanometer wordt gemonitord met een UV-vis-detector en plaats deze op ijs.Bereid vervolgens aliquots van 30-40 µL van de fracties van belang voor en bewaar deze op ijs. Als de monsters niet onmiddellijk worden gebruikt, bewaar ze dan bij -80 °C en neem maatregelen om het aantal vries-dooi-cycli te beperken. Om monsters voor AFM-imaging voor te bereiden, bedek eerst een gewassen mica-plaat met 200 µL van 1 mM nikkelsulfaat(II) en incubeer de plaat gedurende drie minuten bij kamertemperatuur.Verwijder vervolgens de oplossing, droog het oppervlak met perslucht en plaats de petrischaal op ijs. Voeg daarna voorzichtig de volledige aliquot van de fractie van belang druppel voor druppel toe op de mica. Verspreid het monster over het gehele oppervlak van de mica met een tip van 100 of 200 µL en incubeer het monster gedurende drie minuten op ijs.Bedek vervolgens het mica-plaatje druppel voor druppel met 200 µL koude AFM-buffer en incubeer het monster gedurende één uur op ijs. Het is belangrijk om het monster op 40 graden te houden en een koude buffer te gebruiken die is bereid in RNase-vrij water om de organisatie van de polyribosomen te behouden. Verwijder na incubatie voorzichtig de buffer en was het mica drie tot vier keer met 200 µL koude AFM-buffer om eventueel overtollig sucrose te verwijderen.Was daarna de mica drie keer met koude wasoplossing en dep het overtollige water van de mica met papier. De volledige verwijdering van sucrose uit de absorberende monsters is nu cruciaal, aangezien zowel de ribosomen als het vrije RNA in het polysoom zijn gescheiden. Laat het monster drogen onder de zuurkast met het deksel van de petrischaal gedeeltelijk geopend.Sluit na twee uur de petrischaal. Het monster kan nu bij kamertemperatuur worden bewaard. Bevestig het voorbereide monster met dubbelzijdige tape aan de monsterhouder van de AFM.Plaats vervolgens de monsterhouder in de AFM-houder volgens de instructies van de fabrikant. Benader na kalibratie het monster totdat de tip van de cantilever het oppervlak raakt. Selecteer een scangebied van twee bij twee micron, een resolutie van ten minste 512 x 512 pixels, kies de modus voor live achtergrondsubtractie en selecteer een Z-schaal van 20-25 nanometer.Begin vervolgens met de beeldacquisitie. Inspecteer het beeld op de aanwezigheid van ronde objecten met een hoogte tussen 10 en 15 nanometer bij het maken van beelden in lucht. Pas daarna het setpoint en de feedbackparameters aan totdat scherpe objecten zichtbaar zijn.Bij goede monsters moet de achtergrond er relatief vlak uitzien, met enkele objecten van twee tot vier nanometer hoog. Zodra het beeld goed is, worden meerdere scans van twee bij twee micron gemaakt op verschillende monstergebieden. Na de depositie van sucrose-aliquoten op mica biedt AFM nauwkeurige beschrijvingen van de grootte van individuele polysomen, die verschijnen als clusters van dicht opeengepakte ribosomen.Een nadere bestudering van een van de ribosomale pieken met behulp van dwarsdoorsnede-analyse onthult dat de hoogte van de ribosomale pieken ongeveer 14 nanometers is. Dit komt overeen met wat eerder is waargenomen voor menselijke ribosomen en polysomen na luchtdrogen. In de afbeelding rechts is een macro gebruikt om de locatie van ribosomen te identificeren en elk ribosoom te markeren met een rode cirkel.Met deze informatie kan de frequentieverdeling van het aantal ribosomen per polysoom worden geanalyseerd. Deze experimentele verdeling is gefit met een Gaussische curve die gecentreerd was op 5,8 ribosomen per polysoom, met een standaarddeviatie van 1,3. Zodra deze techniek is beheerst, kan het gehele proces van hersenpulverisatie tot de acquisitie van polyribosoombeelden in minder dan acht uur worden voltooid, mits dit correct wordt uitgevoerd.Tijdens het uitvoeren van deze procedure is het belangrijk om te onthouden dat het monster op ijs moet blijven en dat koude buffers moeten worden gebruikt voor de depositie van het monster op de mica. Door deze procedure te volgen en het ImageJ-plugin van een ontwikkelaar te gebruiken dat in uw artikel beschikbaar wordt gesteld, kunt u nauwkeurig het aantal ribosomen per polysoom tellen. Na elke ontwikkeling zal deze techniek de weg vrijmaken voor het begrijpen van de kinetiek van polysoomvorming en het identificeren van veranderingen in de organisatie van polysomen onder verschillende cellulaire omstandigheden of weefselcondities.Na het bekijken van deze video zou u een goed begrip moeten hebben van hoe u duizenden polysoombeelden verkrijgt voor het systematisch analyseren en bestuderen van hun organisatie.

peering-at-brain-polysomes-with-atomic-force-microscopy

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neurowetenschap

Source: Williams, S. M. et al. Novel Atomic Force Microscopy Based Biopanning for Isolation of Morphology Specific Reagents against TDP-43 Variants in Amyotrophic Lateral Sclerosis. J. Vis. Exp. (2015)This video demonstrates tapping-mode AFM to visualize phage–antigen interactions on a mica surface. It outlines the steps for antigen immobilization, phage binding, and high-resolution nanoscale imaging.

Atomic Force Microscopy to Visualize Phage–Antigen Interactions

In this video, we demonstrate static atomic force microscopy to visualize assembled nucleosomes. This high-resolution imaging technique allows the study of the nucleosome structure.

Static Atomic Force Microscopy to Visualize and Characterize Assembled Nucleosomes

Source: Lunelli, L., et. al. Peering at Brain Polysomes with Atomic Force Microscopy. J. Vis. Exp.(2016).This video demonstrates the imaging of polysomes using atomic force microscopy. A nickel-ions-coated mica sheet anchors RNA with attached ribosomes. The sample is washed, dried, and mounted onto the microscope stage. The cantilever tip scans the sample surface, recording laser deflections to map the topology. Software is used to correct distortions and visualize high-resolution polysome...

 Imaging Polysomes Isolated from a Mouse Brain Using Atomic Force Microscopy

Hier beschrijven we een werkwijze veranderingen in de initiatie van mRNA translatie van eukaryote cellen in reactie stresssituaties analyseren. Deze methode is gebaseerd op de snelheid scheiding op sucrosegradiënten vertalen ribosomen van niet-translating ribosomen.

Analyse van de translatie-initiatie tijdens stress Voorwaarden door polysome Profiling

Een methode voor het onderzoeken van de structuur van een eiwitfotoreceptor met behulp van atoomkrachtmicroscopie (AFM) wordt beschreven in dit artikel. PeakForce Quantitative Nanomechanical Property Mapping (PF-QNM) onthult intacte eiwitdimeren op een mica-oppervlak.

Atomic Force Microscopy van Red-Light Fotoreceptoren behulp PeakForce Kwantitatieve Nanomechanical Property Mapping

We beschrijven de gedetailleerde procedures en de strategieën voor het meten van de mechanische eigenschappen en mechanische ontvouwen trajecten van één eiwitmolecules met behulp van een atomic force microscope. We tonen ook representatieve resultaten als een referentie voor selectie en motivering van goed één eiwit molecuul opnames.

Kracht spectroscopie van één eiwitmolecules met behulp van een Atomic Force Microscope

Hier presenteren we een protocol karakteriseren nucleosoom deeltjes op het niveau van de single-molecuul met behulp van statische en time-lapse atomaire kracht microscopie (AFM) beeldvormende technieken. De beschreven methode van oppervlakte functionalization zorgt voor de opname van de structuur en de dynamiek van nucleosomes in hoge resolutie op nanoschaal.

De structuur en de dynamiek van Nucleosomes met behulp van Atomic Force microscopie Imaging sonderen

We presenteren een protocol voor het functionaliseren van atomaire kracht Microscoop (AFM) cantihefbomen met een enkele T-cel en kraal deeltje voor immunologische studies. Procedures voor het sonde-eenpaar T-cel-dendritische celbinding door de AFM en om de real-time cellulaire respons van macrofagen op één vast deeltje door de AFM te monitoren met fluorescentie beeldvorming worden getoond.

Functionalisatie van atomaire kracht Microscoop Cantihefbomen met single-T cellen of één deeltje voor immunologische eencellige kracht spectroscopie

De ontwikkeling van het zoogdierbrein vereist een goede controle van genexpressie op het niveau van vertaling. Hier beschrijven we een polysoomprofileringssysteem met een eenvoudig te assembleren sucrose gradiëntvormings- en fractioneringsplatform om de translationele status van mRNAs in de zich ontwikkelende hersenen te beoordelen.

Analyse van vertaling in de zich ontwikkelende muishersenen met behulp van polysoomprofilering

Dit protocol beschrijft hoe u een polysoomprofiel kunt genereren zonder gebruik te maken van geautomatiseerde gradiëntmakers of gradiëntfractioneringssystemen.

Polysoomprofilering zonder gradiëntmakers of fractioneringssystemen

In dit artikel presenteren we een protocol om microtubule-geladen oligodendrocyten te detecteren in een model van tubulinopathie door middel van een eenvoudige, innovatieve tweede harmonische generatie microscopiebenadering.

Labelvrije niet-lineaire optica voor de studie van tubuline-afhankelijke defecten in centrale myeline

Leer hersenpolyribosomen zuiveren en beelden met atoomkrachtmicroscopie zonder fixatie of labelen. Deze methode biedt nanoschaalresolutie voor het bestuderen van translatiecontrole en genexpressie.

Turen naar Brain polysomen met Atomic Force Microscopy

Meer video's verkennen