Name: Studeren Wnt Signalering Tijdens patroonvorming van Conducting Airways (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-10-16T13:00:00.000+00:00
Duration: 13 min
Description: Leer Wnt-signalering analyseren tijdens tracheale ontwikkeling met reportermuizen en kleuringstechnieken. Deze methode onthult mechanismen van luchtwegpatroonvorming en kraakbeenontwikkeling in embryonaal weefsel.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Wij erkennen de hulp van Mike Muntifering en Matt Kofron met confocale beeldvorming en Gail Macke met histologische procedures. Dit werk werd gedeeltelijk ondersteund door de National Institutes of Health-NHLBI (K01HL115447 DS).

De dieren werden gehuisvest in pathogeenvrije omstandigheden. De muizen werden behandeld volgens de protocollen door CCHMC Institutional Animal Care en gebruik Comite (Cincinnati, OH USA) goedgekeurd. Muizen gebruikt tijdens deze studies werden een gemengde achtergrond gehandhaafd. 1. hele berg X-galactosidase kleuring <ol><li> Euthanaseren zwangere vrouw op E11.5 naar E14.5 door CO 2 inhalatie. Plaats dieren in CO 2 kamer, laad de kamer met CO 2. Handhaving van dieren in de kamer voor minimaal 5 min. Voer secundaire methode van euthanasie door cervicale dislocatie. </li><li> Schone buikstreek met ethanol (EtOH) en 70% laparotomie uitgevoerd met een abdominale incisie. Maak gebruik van chirurgische schaar en standaard patroon (rechte gezaagd) tang. </li><li> Isoleer baarmoederhoorns behulp van een tang en fijne schaar en onmiddellijk plaats weefsel in petrischaaltje met gekoelde PBS-oplossing. Handhaaf weefsel op ijs tot procedureisolatie van embryo. </li><li> Isoleer embryo&#39;s uit de baarmoeder horens. Ontleden embryonaal tracheale longweefsel met behulp van dissectie microscoop. Maak gebruik van fijne punt pincet en een schaar te houden en doorboren van de baarmoeder weefsel en concepti vrijgeven van de embryo&#39;s. <ol><li> Verwijder de resterende embryonale membranen. Met de hulp van de naald messen snijden hoofd van embryo&#39;s en onderlichaam deel onder het middenrif. Zoek lever als een mijlpaal. </li><li> Na isolatie van de thoracale embryo, overgaan tot zijkanten van de lichaamswand, wervelkolom en hart met behulp naald messen te verwijderen. Wees voorzichtig tijdens het verwijderen van het hart om te voorkomen dat verwonden tracheale weefsel. Tenslotte zorgvuldig scheiden de slokdarm van de luchtpijp door aan de slokdarm met behulp van naald bladen. Handhaaf weefsel in PBS-oplossing op het ijs. </li></ol></li><li> Plaats weefsel in 4 ml schroefdop flesjes met behulp van glas of overdracht pipetten. Fix tracheale longweefsel in 4% paraformaldehyde (PFA) in PBS gedurende 30 min. Na fixatieSpoel weefsel met PBS. Tijdens het spoelen, voor te bereiden X-gal kleuroplossing (voeg 5 mM K 3 Fe (CN) 6, (100 pi 0,5 M voorraad) 5 mM K 4 Fe (CN) 6 (100 pi 0,5 M voorraad) 2 mM MgCl2, ( 20 ui 1 M voorraad) 0,01% NaDOC (50 pi 2% voorraad), 0,02% NP 4 O (100 pi 2% voorraad), 1 mg / ml X-gal (500 pl van 20 mg / ml voorraad) en 9,13 ml gedestilleerd water tot een eindvolume van 10 ml) te bewerkstelligen. </li><li> Verwijder alle overgebleven PBS en voeg 2 ml X-gal kleuroplossing aan het glazen flesje. Plaats flacons in dienblad op shaker. Vlek weefsels 1-2 uur in X-gal kleuroplossing. Incubeer het weefsel in X-gal oplossing 4 uur voor verdere verwerking en inbedding. </li><li> Stop de reactie door het wassen van weefsels in 3% dimethylsulfoxide-PBS. Spoelen in PBS, 3 maal gedurende 5 minuten elk wassen en opslag in 70% ethanol. </li><li> Vul Petrischalen met een 1% agarose / PBS oplossing. Agarose laten stollen. Het gebruik van glas overdracht pipetten, plaatst het weefsel op agarose coated platen gevuld met PBS-oplossing. Fotograferen hele mounts met behulp van een dissectie microscoop. Selecteer de gewenste filter voor helderveld. </li><li> Om beter te onderscheiden plaatsen van X-gal kleuring proces monsters voor paraffine inbedding en snijden. Leg monsters in fijne zeef cassettes. <ol><li> Te verwerken monsters voor paraffine inbedding gebruik van een geautomatiseerde processor en het opzetten van een korte cyclus als volgt: zes veranderingen van alcohol: 5 min eerste verandering en 3 min per elke resterende verandering. Drie wijzigingen van Xyleen: 5 min eerste verandering en 3 min komende twee wijzigingen. De voorgaande stappen worden uitgevoerd bij 30 ° C. Voer uiteindelijk drie veranderingen van paraffine bij 62 ° C: 25 min, 8 min en 5 min. </li></ol></li><li> Orient monsters voor inbedding tissue plat op de bodem van inbedding boot. toevoegen paraffine goed naar de inbedding boot te vullen. Koel onmiddellijk op koude plaat van het inbedden van station tot paraffine stolt. Verwijder blok aan het inbedden boot. Met behulp van een microtoom genereren 6 urn sreflecties. Mount hoofdstukken over voorbehandeld-dia&#39;s en droge dia&#39;s op dia warmere set bij 42 ° C gedurende 1 uur. </li><li> Bak dia&#39;s &#39;s nachts in de oven op 56 ° C. Plaats de dia&#39;s in racks. Deparaffinize dia&#39;s met drie veranderingen van 100% Xyleen, 10 min elk. Gebruik kleuring schotels gevuld met 200 ml xyleen. </li><li> Rehydrateren slides via gegradeerde serie EtOH (100%, 70%, 50% en 30%, 1 min per stap) PBS voordat tegenkleuring met Nuclear Fast Red gedurende 10 tot 30 sec. Spoel de dia&#39;s met leidingwater driemaal gedurende 5 minuten elke keer om meer dan Nuclear Fast Red verwijderen. </li><li> Dehydrateer objectglaasjes in een gegradeerde reeks EtOH (50%, 70% en 100% EtOH) voor het wassen in drie verse xyleen (20 dips elke wijziging) en deksel glijden met xyleen gebaseerd fixeermiddelen. </li></ol> 2. lectine kleuring <ol><li> Ontleden E13.5 en E14.5 tracheale longweefsel, zoals beschreven in de stappen 1,1-1,4. Het gebruik van glas overdracht pipetten plaats weefsel in schroefdop flesjes. Fix tracheale longweefsel met 2 ml2% PFA oplossing overnacht bij 4 ° C. Na fixatie afspoelen monsters in PBS driemaal gedurende 10 minuten per wasbeurt. </li><li> Bereid blokkeerbuffer, gewoonlijk een eindvolume van 10 ml oplossing. Voeg 0,1 g BSA (1%) tot 8 ml PBS. Laat BSA op te lossen. Voeg 0,2 ml geit serum (2%) 0,03 ml Triton X-100 (0,3%). Breng uiteindelijke volume tot 10 ml met PBS. Blok monsters gedurende 1 uur in 0,5 ml blokkerende buffer bij kamertemperatuur. </li><li> Verwijderen blokkerende buffer met behulp van een pipet en vervangen door lectine oplossing bestaande uit 50 ug / ul lectine, 10% geit serum en PBS. Gebruik 250 ul lectine oplossing per monster. Incubeer overnacht bij 4 ° C. Zorg ervoor dat de glazen flacon met weefsel met aluminiumfolie bedekken. Na incubatie met lectine, spoel monsters in PBS driemaal gedurende 10 minuten. </li><li> Plaats explantaten in agarose gecoate platen met PBS genoeg om monsters te dekken. Fotograferen whole mounts behulp van een fluorescentie microscoop ontleden. Selecteer de appropriate filter om fluorescentie te detecteren. Lectine PNA wordt gewoonlijk gekoppeld aan GFP. </li></ol> 3. Hele Mount immunofluorescentiekleuring en confocale microscopie <ol><li> Isoleer tracheale longweefsel, transfer naar 4 ml glazen schroefdop flesjes en bevestig overnacht in 4% PFA. E11.5 weefsel kan in 2% PFA worden vastgesteld. Store in methanol 100%. Monsters kunnen tot enkele maanden worden bewaard bij -20 ° C. </li><li> Verwijder methanol met behulp van de overdracht pipet en permeabilize monsters met behulp van Dent&#39;s Bleach (4 delen methanol, 1 deel DMSO en 1 deel 30% H 2 O 2) gedurende 2 uur. Hydraat weefsel in een gegradeerde reeks methanol verdund in PBS als volgt: 100% methanol, 75% methanol, 50% methanol, 25% methanol, 100% PBS. Incubeer 10 min bij kamertemperatuur gedurende elke stap van hydratatie. </li><li> Blok weefsel in 0,5% blokkerend reagens verdund in PBS (zie Materialen voor details) gedurende twee uur bij kamertemperatuur onder roeren. </li><li> Verdun primair antilichaam in het blokkerenoplossing (SOX9 1: 100, Nkx2.1 1: 200, αSMA 1: 250) en incubeer de monsters gedurende de nacht bij 4 ° C. Spoelmonsters met PBS vijfmaal bij kamertemperatuur. Voer elke wasbeurt gedurende 1 uur. </li><li> Toepassen secundair antilichaam bij een 1: 500 verdunning in 0,5% blokkeeroplossing. selecteer secundaire antilichamen zorgvuldig binding tussen de secundaire antilichamen te voorkomen. Incubeer overnacht bij 4 ° C in een donkere kamer. Spoelmonsters driemaal gedurende 20 minuten bij kamertemperatuur. Uitdrogen monsters in een gegradeerde reeks methanol verdund in PBS als volgt: 25% methanol, 50% methanol 75% methanol, 100% methanol, 10 min elke stap. OPMERKING: Zorg ervoor dat de monsters blijven afgedekt met aluminiumfolie en de blootstelling te minimaliseren aan het licht. Weefsel kan nu worden opgeslagen bij 4 ° C gedurende enkele weken tot gefotografeerd. </li><li> Transfer monsters om op maat gemaakte stadium platen, verwijder methanol en duidelijk met ongeveer 200 ul van heldere oplossing Murray&#39;s 19,20 (2 delen Benzylbenzoaat, 1 deel Benzylalcohol) onmiddellijk beferts beeldvorming. Fotograferen met een confocale microscoop. Verwerken en analyseren van beeld met beeldbewerkingssoftware. </li></ol> 4. Cell Proliferation <ol><li> Injecteer E11.5 zwangere muizen intraperitoneaal met een oplossing van BrdU in een concentratie van 100 ug BrdU / g lichaamsgewicht. Offer vrouwelijke zoals beschreven in hoofdstuk 1 van het protocol en isoleren van embryo&#39;s in E12.5 en E13.5. Met behulp van messen, accijnzen hoofden en het onderste deel van het lichaam onder de borstholte. </li><li> Plaats thoracale weefsel in 4 ml schroefdop flesjes en lossen in 1 ml van 4% PFA &#39;s nachts. Spoelmonsters met PBS tweemaal gedurende 5 min en dehydrateren monsters via een ethanol reeks verdund in gedestilleerd water tot 70% ethanol als volgt: 30%, 50% en 70% ethanol, gedurende 5 minuten elke stap. <ol><li> Leg monsters in middelgrote scherm cassettes. Werkwijze weefsel voor paraffine inbedding en het gebruik van geautomatiseerde processor. Stel een cyclus als volgt: zes veranderingen van alcohol 8 minuten elk, drie veranderingen van xyleen gedurende 6 min elk, drie cijzigingen van paraffine, gedurende 25 minuten, 9 minuten en 8 min. </li></ol></li><li> Insluiten in paraffine oriënteren het weefsel in de gewenste positie om 6 pm dwarse of longitudinale secties te genereren zoals beschreven in hoofdstuk 1. Plaats secties op dia&#39;s en laat het weefsel te houden aan te schuiven op dia warmere set bij 42 ° C gedurende 1 uur. </li><li> Bak dia&#39;s, op hun kant, &#39;s nachts in de oven op 56 ° C. Plaats de dia&#39;s in plastic rekken. De-paraffinize dia&#39;s door onderdompeling in drie veranderingen van 100% Xyleen, 10 min per wissel. Gebruik 200 ml xyleen om dia&#39;s volledig onder te dompelen. Rehydrateren slides via gegradeerde serie EtOH (100%, 70%, 50% en 30%, 5 min per stap onder roeren) tot PBS (5 min). </li><li> Voeren antigeenterugtrekking middels 10 mM citraatbuffer, pH 6 Aan 100 ml van citraatbuffer mengsel 18 ml 0,1 M citroenzuur monohydraat en 82 ml 0,1 M Natriumcitraat bereiden. <ol><li> Leg monsters in plastic Coplin potten gevuld met antigen retrieval oplossing en een magnetron voor 6,5 minuten bij een hoog vermogen. dis toevoegenbebouwd water naar Coplin jar ter compensatie van verdampt-citraatbuffer en opwarmen bij 40% vermogen voor 6 min. </li><li> Vul Coplin pot naar boven met water, en opnieuw opwarmen bij 40% vermogen voor 6 min. Magnetron tijden kunnen variëren op basis van microgolf gebruikt. </li><li> Laten afkoelen objectglaasjes 20 minuten bij kamertemperatuur vóór het wassen glaasjes in gedestilleerd water gedurende 1 minuut, gevolgd door PBS gedurende 5 minuten. Na de PBS wassen, blok dia&#39;s voor 2 uur in het blokkeren van oplossing met TBS (2,425 g Tris base en 8,765 g NaCl verdund in 1 liter gedestilleerd water) 10% Donkey serum en 1% BSA. </li></ol></li><li> Voeg primaire antilichamen verdund in blokkeeroplossing (TBS dat 10% ezel serum en 1% BSA). BrdU (mitose marker), Nkx2.1 (luchtwegen epitheel), SOX9 en αSMA (gladde spiercellen) (cellen die zal leiden tot kraakbeen te geven). Incubeer dia overnacht bij 4 ° C. Gebruik overlay methode om antilichamen te besparen. Solliciteer 180 ul van antilichaam tegen een pakking en bevestig slide alsof dekglasping. </li><li> Maak pakking door dompelen dia&#39;s in gedestilleerd water. Na verwijdering van de afdichting, was gebonden primaire antilichaam door het uitvoeren van zes 5 min wassingen met TBS dat 0,1% Tween-20. <ol><li> Incubeer dia&#39;s met secundair antilichaam verdund in blokkeeroplossing bij een verdunning van 1: 200, gedurende 1 uur bij kamertemperatuur geroerd. Selecteer secundaire antilichamen zorgvuldig om ongewenste binding tussen hen te voorkomen. Verwijder ongebonden secundair antilichaam door het uitvoeren van drie vijf minuten wassen met TBS dat 0,1% Tween. </li><li> Wassen slides in 0,1 M Tris-base tweemaal gedurende 5 minuten en daarna 0,05 M Tris-base tweemaal gedurende 5 minuten. Slides kunnen worden achtergelaten in 0,05 M Tris-base tijdens coversliping middels fixeermiddelen met of zonder DAPI (1,5 ug / ml). Store dia&#39;s in slide folder bij 4 ° C en beschermen tegen licht door het bedekken map met aluminiumfolie. </li></ol></li><li> Visualiseer kleuring en een foto met behulp van een geautomatiseerde fluorescentiemicroscoop. Count-gelabelde cellen en de totale cellen per veld gefotografeerd bij20X en 40X verhoudingen van prolifererende cellen tot totale cellen te bepalen. </li></ol>

<ol><li>Maeda, Y., Dave, V., Whitsett, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcriptional+control+of+lung+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Rev%22%5BJournal%5D)">Transcriptional control of lung morphogenesis.</a> Physiol Rev. 87, 219-244 (2007).</li>
<li>Morrisey, E. E., Hogan, B. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparing+for+the+first+breath%3A+genetic+and+cellular+mechanisms+in+lung+development%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Cell%22%5BJournal%5D)">Preparing for the first breath: genetic and cellular mechanisms in lung development.</a> Dev Cell. 18, 8-23 (2010).</li>
<li>Fausett, S. R., Klingensmith, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Compartmentalization+of+the+foregut+tube%3A+developmental+origins+of+the+trachea+and+esophagus%5BTitle%5D)+AND+%22Wiley+Interdiscip+Rev+Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Compartmentalization of the foregut tube: developmental origins of the trachea and esophagus.</a> Wiley Interdiscip Rev Dev Biol. 1, 184-202 (2012).</li>
<li>Goss, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Wnt2%2F2b+and+beta-catenin+signaling+are+necessary+and+sufficient+to+specify+lung+progenitors+in+the+foregut%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Cell%22%5BJournal%5D)">Wnt2/2b and beta-catenin signaling are necessary and sufficient to specify lung progenitors in the foregut.</a> Dev Cell. 17, 290-298 (2009).</li>
<li>Harris-Johnson, K. S., Domyan, E. T., Vezina, C. M., Sun, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((beta-Catenin+promotes+respiratory+progenitor+identity+in+mouse+foregut%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">beta-Catenin promotes respiratory progenitor identity in mouse foregut.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 106, 16287-16292 (2009).</li>
<li>Cornett, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Wntless+is+required+for+peripheral+lung+differentiation+and+pulmonary+vascular+development%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Wntless is required for peripheral lung differentiation and pulmonary vascular development.</a> Dev Biol. 379, 38-52 (2013).</li>
<li>Snowball, J., Ambalavanan, M., Whitsett, J., Sinner, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((34%3BEndodermal+Wnt+signaling+is+required+for+tracheal+cartilage+formation%26%2334%3B%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">34;Endodermal Wnt signaling is required for tracheal cartilage formation&#34;.</a> Dev Biol. , (2015).</li>
<li>Shannon, J. M., Hyatt, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epithelial-mesenchymal+interactions+in+the+developing+lung%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Physiol%22%5BJournal%5D)">Epithelial-mesenchymal interactions in the developing lung.</a> Annu Rev Physiol. 66, 625-645 (2004).</li>
<li>Shannon, J. M., Nielsen, L. D., Gebb, S. A., Randell, S. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mesenchyme+specifies+epithelial+differentiation+in+reciprocal+recombinants+of+embryonic+lung+and+trachea%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Dyn%22%5BJournal%5D)">Mesenchyme specifies epithelial differentiation in reciprocal recombinants of embryonic lung and trachea.</a> Dev Dyn. 212, 482-494 (1998).</li>
<li>Li, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Wnt5a+regulates+Shh+and+Fgf10+signaling+during+lung+development%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Wnt5a regulates Shh and Fgf10 signaling during lung development.</a> Dev Biol. 287, 86-97 (2005).</li>
<li>Loscertales, M., Mikels, A. J., Hu, J. K., Donahoe, P. K., Roberts, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chick+pulmonary+Wnt5a+directs+airway+and+vascular+tubulogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Chick pulmonary Wnt5a directs airway and vascular tubulogenesis.</a> Development. 135, 1365-1376 (2008).</li>
<li>Yin, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+FGF-WNT+gene+regulatory+network+controls+lung+mesenchyme+development%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">An FGF-WNT gene regulatory network controls lung mesenchyme development.</a> Dev Biol. 319, 426-436 (2008).</li>
<li>Shu, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Wnt%2Fbeta-catenin+signaling+acts+upstream+of+N-myc%2C+BMP4%2C+and+FGF+signaling+to+regulate+proximal-distal+patterning+in+the+lung%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Wnt/beta-catenin signaling acts upstream of N-myc, BMP4, and FGF signaling to regulate proximal-distal patterning in the lung.</a> Dev Biol. 283, 226-239 (2005).</li>
<li>Bretholz, A., Morrisey, R., Hoffman, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+use+of+OpdA+in+rat+models+of+organic+phosphorus+%28OP%29+poisoning%5BTitle%5D)+AND+%22Toxicology%22%5BJournal%5D)">The use of OpdA in rat models of organic phosphorus (OP) poisoning.</a> Toxicology. 257, (2009).</li>
<li>Goss, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Wnt2+signaling+is+necessary+and+sufficient+to+activate+the+airway+smooth+muscle+program+in+the+lung+by+regulating+myocardin%2FMrtf-B+and+Fgf10+expression%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Wnt2 signaling is necessary and sufficient to activate the airway smooth muscle program in the lung by regulating myocardin/Mrtf-B and Fgf10 expression.</a> Dev Biol. 356, 541-552 (2011).</li>
<li>Mucenski, M. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((beta-Catenin+is+required+for+specification+of+proximal%2Fdistal+cell+fate+during+lung+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">beta-Catenin is required for specification of proximal/distal cell fate during lung morphogenesis.</a> J Biol Chem. 278, 40231-40238 (2003).</li>
<li>Hyatt, B. A., Shangguan, X., Shannon, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FGF-10+induces+SP-C+and+Bmp4+and+regulates+proximal-distal+patterning+in+embryonic+tracheal+epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Lung+Cell+Mol+Physiol%22%5BJournal%5D)">FGF-10 induces SP-C and Bmp4 and regulates proximal-distal patterning in embryonic tracheal epithelium.</a> Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 287, L1116-L1126 (2004).</li>
<li>Del Moral, P. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((VEGF-A+signaling+through+Flk-1+is+a+critical+facilitator+of+early+embryonic+lung+epithelial+to+endothelial+crosstalk+and+branching+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">VEGF-A signaling through Flk-1 is a critical facilitator of early embryonic lung epithelial to endothelial crosstalk and branching morphogenesis.</a> Dev Biol. 290, 177-188 (2006).</li>
<li>Ott, S. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Confocal+microscopy+in+large+insect+brains%3A+zinc-formaldehyde+fixation+improves+synapsin+immunostaining+and+preservation+of+morphology+in+whole-mounts%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">Confocal microscopy in large insect brains: zinc-formaldehyde fixation improves synapsin immunostaining and preservation of morphology in whole-mounts.</a> J Neurosci Methods. 172, 220-230 (2008).</li>
<li>Jahrling, N., Becker, K., Dodt, H. U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3D-reconstruction+of+blood+vessels+by+ultramicroscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Organogenesis%22%5BJournal%5D)">3D-reconstruction of blood vessels by ultramicroscopy.</a> Organogenesis. 5, 145-148 (2009).</li>
<li>Park, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+Sox9+by+Sonic+Hedgehog+%28Shh%29+is+essential+for+patterning+and+formation+of+tracheal+cartilage%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Dyn%22%5BJournal%5D)">Regulation of Sox9 by Sonic Hedgehog (Shh) is essential for patterning and formation of tracheal cartilage.</a> Dev Dyn. 239, 514-526 (2010).</li>
<li>Elluru, R. G., Thompson, F., Reece, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fibroblast+growth+factor+18+gives+growth+and+directional+cues+to+airway+cartilage%5BTitle%5D)+AND+%22Laryngoscope%22%5BJournal%5D)">Fibroblast growth factor 18 gives growth and directional cues to airway cartilage.</a> Laryngoscope. 119, 1153-1165 (2009).</li>
<li>Ahnfelt-Ronne, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+improved+method+for+three-dimensional+reconstruction+of+protein+expression+patterns+in+intact+mouse+and+chicken+embryos+and+organs%5BTitle%5D)+AND+%22J+Histochem+Cytochem%22%5BJournal%5D)">An improved method for three-dimensional reconstruction of protein expression patterns in intact mouse and chicken embryos and organs.</a> J Histochem Cytochem. 55, 925-930 (2007).</li>
<li>Yang, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-cell+phenotyping+within+transparent+intact+tissue+through+whole-body+clearing%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Single-cell phenotyping within transparent intact tissue through whole-body clearing.</a> Cell. 158, 945-958 (2014).</li>
<li>Gillotte, D. M., Fox, P. L., Mjaatvedt, C. H., Hoffman, S., Capehart, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+in+vitro+method+for+analysis+of+chondrogenesis+in+limb+mesenchyme+from+individual+transgenic+%28hdf%29+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">An in vitro method for analysis of chondrogenesis in limb mesenchyme from individual transgenic (hdf) embryos.</a> Methods Cell Sci. 25, 97-104 (2003).</li>
<li>Cohen, E. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Wnt+signaling+regulates+smooth+muscle+precursor+development+in+the+mouse+lung+via+a+tenascin+C%2FPDGFR+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Invest%22%5BJournal%5D)">Wnt signaling regulates smooth muscle precursor development in the mouse lung via a tenascin C/PDGFR pathway.</a> J Clin Invest. 119, 2538-2549 (2009).</li>
<li>Boucherat, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Partial+functional+redundancy+between+Hoxa5+and+Hoxb5+paralog+genes+during+lung+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Lung+Cell+Mol+Physiol%22%5BJournal%5D)">Partial functional redundancy between Hoxa5 and Hoxb5 paralog genes during lung morphogenesis.</a> Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 304, L817-L830 (2013).</li>
</ol>

&quot;De auteurs hebben niets te onthullen.&quot;

Gebeurtenissen achter de morfogenese van de luchtwegen worden niet volledig begrepen, met name de voor de patroonvorming van de geleidende luchtwegen processen. Eerdere studies hebben ex vivo technieken, waarbij de ontwikkeling van explantaten worden gekweekt in de lucht-vloeistof interfase of ingebed in Matrigel 21,22 benut. Deze studies hebben aangetoond hoe groeifactoren de patroonvorming van de ontwikkeling trachea en de vorming van tracheale kraakbeen beïnvloeden. Een beperking van deze studies ...

Luchtwegen ontwikkeling wordt geïnitieerd door embryonale dag 9 (E9) met het verschijnen van Nkx2.1 positieve cellen in het ventrale endodermale voordarm 1,2. Slokdarm-tracheatube scheiding zal oplossen door E11.5 wanneer de buizen kunnen worden onderscheiden als afzonderlijke entiteiten, elk omringd door mesenchymale weefsel 3. Wnt signalering speelt een belangrijke rol in de beschrijving van de luchtwegen als deletie van Wnt2 en Wnt2b door de splanchnische mesenchym en verwijdering van β-catenine uit de endodermale luchtwegepitheel expressie resulteert in de longen agenesis 4,5. Onze eerdere studies vastgesteld dat de schrapping van Wls, een lading receptor bemiddelen afscheiding van alle Wnt liganden, uit de endodermale luchtwegen resultaten in long hypoplasie, defecten in de longvaten ontwikkeling en mis-patroonvorming van de tracheale mesenchym 6,7. Deze gegevens ondersteunen het belang van de epitheliale-mesenchymale cross praten celdifferentiatie en specificatie, zoals ook in andere studies 8,9 getoond. De studie van de vroegste stadia van ontwikkeling van de longen vertrouwt op genetische, in vitro en ex vivo technieken die liet ons toe om beter te begrijpen mechanismen achter de luchtwegen identiteit 10-16. Hele long explantkweken bij Air Liquide interfase op grote schaal gebruikt om de effecten van groeifactoren in een vroege pulmonale vertakkende morfogenese 10,17,18 bestuderen. Hoewel deze methode wordt gebruikt als uitlezing van morfologische veranderingen, zoals vertakkingen morfogenese en genexpressie moduleren, is beperkt tot de studie van de vroege stadia van het ontwikkelingsproces, de cultuur zelf ondersteunt de ontwikkeling van bloedvaten 17. Ontwikkeling van tracheale kraakbeen vereist langere incubatietijden die niet compatibel zijn met deze cultuur techniek kan zijn. om Analyze de rol van Wnt signalering tijdens luchtwegen vormen, hebben we standaardtechnieken aangepast aan de behoeften van embryonale studies voldoen. We hebben gewijzigd volumes, kleuring tijden, verwerking fietsen voor paraffine inbedding en de timing voor de clearing van tracheale-longweefsel. Het belangrijkste doel van het optimaliseren van de in deze studie beschreven technieken was om de vroegste stadia van tracheale ontwikkeling te analyseren bij muizen die plaatsvinden van E11 naar E14.5. Met behulp van de reporter muizen lijn Axin2LacZ we nauwkeurig bepaalde plaatsen van Wnt / β-catenine activiteit in de ontwikkeling van tracheale mesenchym. We hebben ook aangepast lectine kleuring procedure voor het ganse berg tracheale weefsel. Zo waren we in staat om mesenchymale verdichtingen visualiseren en locaties waar chondrogenese zal plaatsvinden voorspellen. Kleuring van ganse berg en secties van embryonaal weefsel verkregen uit WlsShhCre muizen, gecombineerd met geavanceerde microscopische technieken, konden we de rol van Wnt liganden door de tra onthullenCheal epitheel in tracheale patronen.

<table><tbody><tr><td>Anti Sox9 ab.</td><td>Millipore</td><td>AB5535</td><td>1:400, konijn</td></tr><tr><td>Anti Sox9 ab.</td><td>Santa Cruz</td><td>Sc-20095</td><td>1:50, konijn</td></tr><tr><td>Anti Smooth Muscle Actin ab.</td><td>Sigma</td><td>A5228</td><td>1:2k, muis</td></tr><tr><td>Anti NKX2.1 ab.</td><td>Seven Hills</td><td>n/a</td><td>1:100, cavia</td></tr><tr><td>Anti NKX2.1 ab.</td><td>Seven Hills</td><td>n/a</td><td>1:400, muis</td></tr><tr><td>Anti Brdu ab.</td><td>Abcam</td><td>AB1893</td><td>1:200, schaap</td></tr><tr><td>Anti Brdu ab.</td><td>Santa Cruz</td><td>Sc-32323</td><td>1:4k, muis</td></tr><tr><td>PNA Lectin</td><td>Sigma</td><td>L 7381</td><td></td></tr><tr><td>Secundaire antilichamen</td><td>Life technologies</td><td></td><td>Alexa fluor Molecular probes</td></tr><tr><td>K3Fe(CN)6</td><td>Sigma</td><td>P8131</td><td></td></tr><tr><td>K4Fe(CN)6</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P3289</td><td></td></tr><tr><td>MgCl2</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M9272</td><td></td></tr><tr><td>NaDOC</td><td>Life Technologies</td><td>89905</td><td></td></tr><tr><td>NP4O</td><td>Life Technologies</td><td>85124</td><td></td></tr><tr><td>Alcian Blue 8GX</td><td>Sigma</td><td>A-3157</td><td></td></tr><tr><td>Fisher brand super-frost plus</td><td>Fisher</td><td>12-550-15</td><td></td></tr><tr><td>PFA (16%)</td><td>EMS</td><td>15710</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Gibco</td><td>70011-044</td><td></td></tr><tr><td>Fetal Calf Serum</td><td>Sigma</td><td>11K413</td><td></td></tr><tr><td>Blocking reagent</td><td>Invitrogen</td><td></td><td>Onderdeel van TSA kit #2&nbsp;&nbsp;&nbsp; ( T20932)</td></tr><tr><td>BrDu</td><td>Sigma</td><td>B5002-5g</td><td></td></tr><tr><td>Vectashield montagemedium</td><td>Vector labs</td><td>H-1000</td><td></td></tr><tr><td>Permount</td><td>Fisher</td><td>SP15-500</td><td></td></tr><tr><td>Tissue-loc cassettes Histoscreen</td><td>Fisher</td><td>C-0250-GR</td><td></td></tr><tr><td>Biopsy cassettes</td><td>Premiere</td><td>BC0109</td><td>Beschikbaar in verschillende kleuren</td></tr><tr><td>Nuclear fast red&nbsp; Kernechtrot 0.1%</td><td>Sigma</td><td>N3020</td><td></td></tr><tr><td>Citric acid</td><td>Sigma</td><td>C1909-500G</td><td></td></tr><tr><td>Sodium citrate tribasic dihydrate</td><td>Sigma</td><td>S4641-1Kg</td><td></td></tr><tr><td>Trizma hydrochloride</td><td>Sigma</td><td>T5941-500G</td><td></td></tr><tr><td>Xylene</td><td>Pharmco-AAPER</td><td>399000000</td><td></td></tr><tr><td>Ethanol</td><td>Pharmco-AAPER</td><td>111000200</td><td></td></tr><tr><td>Micro knives</td><td>FST</td><td>10318-14</td><td></td></tr><tr><td>Dumont #5 keramisch gecoat</td><td>FST</td><td>11252-50</td><td></td></tr><tr><td>Dumont #5CO</td><td>FST</td><td>11295-20</td><td></td></tr><tr><td>Dumont # 5</td><td>FST</td><td>91150-20</td><td></td></tr><tr><td>Thermo/Shandon Excelsior ES</td><td>Thermo Fisher</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microtome</td><td>Leica</td><td>RM2135</td><td></td></tr><tr><td>Nikon i90</td><td>Nikon</td><td></td><td>Wide field microscope</td></tr><tr><td>NikonA1Rsi</td><td>Nikon</td><td></td><td>Confocal microscopy. Instellingen:NikonA1 plus camera, scanner: Galvano, detector:DU4. Optica Plan Apo lambda 10X. Modaliteit: Widefield fluorescence laser confocal.&nbsp;</td></tr><tr><td>Leica MS 16 FA</td><td>Leica</td><td></td><td>Fluorescentie Dissecting microscope</td></tr><tr><td>Zeiss</td><td>Zeiss</td><td></td><td>Geautomatiseerde fluorescentiemicroscoop</td></tr><tr><td>Leica Application suite</td><td>Leica</td><td></td><td>Leica beeldvormingssoftware</td></tr><tr><td>NIS</td><td>Nikon</td><td></td><td>Nikon beeldvormingssoftware</td></tr><tr><td>IMARIS</td><td>Bitplane</td><td></td><td>Beeldverwerkingssoftware</td></tr></tbody></table>

studeren wnt signalering tijdens patroonvorming van conducting airways

Studying Wnt Signaling During Patterning of Conducting Airways

Wnt-signaleringsroutes spelen een cruciale rol tijdens de ontwikkeling van de luchtwegen. Het definiëren van precieze mechanismen van differentiatie en morfogenese, gecontroleerd door Wnt-signalering, is vereist om te begrijpen hoe weefsels worden gepatternd tijdens normale ontwikkeling. Deze kennis is ook cruciaal om de etiologie van geboorteafwijkingen zoals longhypoplasie en tracheobronchomalacia te bepalen. Analyse van de vroegste stadia van ontwikkeling van de luchtwegen stelt uitdagingen, omdat de beperkte hoeveelheid weefsel de uitvoering van standaardprotocollen verhindert die beter geschikt zijn voor postnataal onderzoek. In dit artikel bespreken we methodologieën om celdifferentiatie en proliferatie in de luchtwegen te bestuderen. We beschrijven technieken zoals whole mount staining, verwerking van het weefsel voor confocale microscopie en immunofluorescentie in paraffine secties toegepast op zich ontwikkelende trachea-long. We bespreken ook methodologieën voor de studie van trachea-mesenchymdifferentiatie, met name kraakbeenvorming. Benaderingen en technieken besproken in het huidige artikel omzeilen de beperking van materiaal terwijl gewerkt wordt met embryonaal weefsel, wat een beter begrip van het patterning-proces van zich ontwikkelende geleide luchtwegen mogelijk maakt.

Wnt / β-catenine activiteit Whole mount Lac-Z kleuring werd gedetecteerd in tracheale-longweefsel van embryo geïsoleerd uit reporter Axin2 Lac -Z muizen 11. Sites van kleuring geven Wnt / β-catenine-activiteit. Analyse van de secties van de hele berg kleuring vastgesteld dat Wnt / β-catenine-activiteit aanwezig is in het mesenchym van de luchtpijp en in mesenchym van de perifere regio&...

Het gebruik van reporter muizen gekoppeld aan ganse berg en rubriek vlekken, microscopie en in vivo assays vergemakkelijkt de analyse van de onderliggende mechanismen van het normale patroon van de luchtwegen. Hier beschrijven we hoe deze technieken hebben bijgedragen aan de analyse van Wnt signalering gedurende tracheale ontwikkeling.

Studeren Wnt Signalering Tijdens patroonvorming van Conducting Airways

Wnt signaling pathways play critical roles during development of the respiratory tract. Defining precise mechanisms of differentiation and morphogenesis ...

Het algemene doel van de kleuringsprocedures is om de rol van het Wnt-signaleringspad in de vroege stadia van de ontwikkeling van de bovenste luchtwegen aan te tonen met behulp van embryonaal weefsel van genetisch gemodificeerde muismodellen. Deze methoden kunnen helpen bij het beantwoorden van kernvragen in het veld van de pulmonale biologie, zoals bijvoorbeeld hoe de ondersteunende structuren van de geleidende luchtwegen worden gevormd.De technieken die we hier zullen presenteren, stellen ons in staat om celproliferatie of het proces van mesenchymale condensaties te bestuderen, wat cruciale gebeurtenissen zijn bij de vorming van het tracheaal kraakbeen. Het belangrijkste voordeel van deze techniek is dat deze kan worden toegepast op kleine hoeveelheden weefsel. Dit omvat longexplantaten en trachea's geïsoleerd uit E11-embryo's.Over het algemeen zullen personen die nieuw zijn met deze procedure moeite hebben vanwege de omvang van het monster en de beperkte hoeveelheid beschikbaar weefsel. Men moet zich comfortabel voelen bij het werken met embryonaal weefsel; dit wordt bereikt door tijdens de stappen nauwkeurig op te letten en ervoor te zorgen dat er van stap naar stap dezelfde hoeveelheid weefsel beschikbaar is. Na het eutanasiëren van een drachtige vrouwelijke muis op E11.5 tot E14.5, en het uitvoeren van een laparotomie volgens het tekstprotocol, worden met een pincet en fijne scharen de uterine hoorns geïsoleerd en onmiddellijk in een Petrischaal met gekoelde PBS-oplossing geplaatst.Plaats de schaal vervolgens op ijs. Om de embryo's uit de uterushoorns te isoleren, gebruikt u fijne pincetten om het uterusweefsel vast te houden. Puncteer vervolgens met een schaar het uterusweefsel en de conceptus om de embryo's vrij te maken.Verwijder vervolgens alle resterende embryonale membranen. Snijd daarna, onder een dissectiemicroscoop met behulp van naaldmesjes, de kop en het onderlichaam onder het diafragma af en gebruik de lever als oriëntatiepunt. Gebruik naaldmesjes om de laterale zijden van de lichaamswand, de wervelkolom en het hart te verwijderen.Zorg ervoor dat het tracheale weefsel niet wordt beschadigd. Om het embryonale tracheale longweefsel te dissekeren, wordt de slokdarm voorzichtig van de trachea gescheiden door met naaldbladen aan de slokdarm te trekken. Plaats het weefsel in PBS op ijs voordat glazen of transferpipetten worden gebruikt om het weefsel over te brengen naar glazen flacons van vier millimeter met schroefdop.Voeg 4% paraformaldehyde, of PFA, in PBS toe en incubeer gedurende 30 minuten. Spoel het weefsel vervolgens af met PBS. Nadat het PBS uit de monsters is verwijderd, voegt u twee millimeter X-gal-kleuringsoplossing toe en incubeert u dit gedurende één tot twee uur, of vier uur voor verdere verwerking en inbedding.Stop de reactie door het weefsel drie keer gedurende vijf minuten te wassen met 3% DMSO in PBS. Bewaar het weefsel vervolgens in 70% ethanol. Gebruik een automatische processor om de monsters voor paraffine-inbedding te verwerken volgens het tekstprotocol, en oriënteer de monsters zodanig dat het weefsel plat op de bodem van een inbeddingsbakje ligt.Voeg voorzichtig paraffine toe om het inbedingsbakje te vullen en plaats dit onmiddellijk op de koudeplaat van het inbedingsstation totdat de paraffine gestold is. Verwijder vervolgens het blok uit het inbedingsbakje en snijd met een microtoom secties van zes micrometer. Monteer daarna de secties op objectglazen.Plaats de coupes gedurende één uur op een slide-warmer bij 42 graden Celsius. Bak de coupes overnight in een oven bij 56 graden Celsius. Plaats vervolgens de gebakken coupes in rekjes en breng deze over in kleuringsbakjes gevuld met 200 milliliters 100% xyleen om de monsters te deparaffiniseren, drie keer gedurende 10 minuten per keer.Gebruik een oplopende ethanolserie, telkens gedurende één minuut, om de coupes te rehydrateren. Gebruik vervolgens Nuclear Fast Red om de monsters gedurende 10 tot 30 seconden tegen te kleuren. Spoel de coupes drie keer gedurende vijf minuten met kraanwater.Om de coupes te dehydrateren, gebruikt u een oplopende ethanolserie voordat u de monsters wast in drie opeenvolgende wissels xyleen. Gebruik vervolgens een xyleen-gebaseerd monteermiddel en dekglas om de monsters te monteren. Om lectinekleuring uit te voeren, brengt u de monsters, na het fixeren van het tracheale longweefsel en het bereiden van de blokkeringsbuffer volgens het tekstprotocol, over naar 0,5 milliliters blokkeringsbuffer en incubeert u deze gedurende één uur bij kamertemperatuur.Gebruik een transferpipet om de blokkeringsbuffer te verwijderen en vervang deze door 250 µL lectine-oplossing per monster. Dek vervolgens de glazen vials af met aluminiumfolie en incubeer deze gedurende de nacht bij vier graden Celsius. Spoel de monsters de volgende dag met PBS en plaats de explantaten in met agarose gecoate Petrischalen die voldoende PBS bevatten om de monsters te bedekken.Gebruik vervolgens een fluorescentiedissectiemicroscoop om de hele preparaten te fotograferen. Om immunofluorescentiekleuring op hele preparaten uit te voeren, verwijdert u na het fixeren van de monsters volgens het tekstprotocol de methanol met een transferpipet, voegt u geconcentreerd bleekmiddel toe en incubeert u het weefsel twee uur om de monsters te permeabiliseren. Hydrateer het weefsel door het bij elke stap 10 minuten bij kamertemperatuur te incuberen in een gradiëreserie van methanol, verdund in PBS.Nadat het weefsel volgens het tekstprotocol is geblokkeerd, voegt u de primaire antilichamen en de blokkeringsoplossing toe en incubeert u de monsters gedurende de nacht bij vier graden Celsius. Zodra de monsters in PBS zijn gewassen, voegt u een verdunning van 1:500 van de secundaire antilichamen in PBS toe en incubeert u deze gedurende de nacht in het donker bij vier graden Celsius. De volgende dag, nadat de monsters drie keer gedurende elk 20 minuten in PBS zijn gewassen, gebruikt u een graduele methanolserie in PBS om de monsters te dehydrateren gedurende 10 minuten per stap.Breng de monsters over naar op maat gemaakte objectplaten. Verwijder het methanol. Gebruik vervolgens 200 microliters van Murray's clear solution om de monsters te klaren.Beeld direct af met een confocale microscoop. Nadat de drachtige muizen in stadium E11.5 zijn geïnjecteerd met BrdU en de embryo's in stadium E12.5 of E13.5 zijn geïsoleerd volgens het tekstprotocol, worden de embryonale koppen en de onderste delen van het lichaam, onder de borstholtes, met mesjes weggesneden. Plaats het borstweefsel in schroefnaaldbuisjes van vier milliliter en voeg één milliliter 4% PFA toe.Na het inbedden, snijden en rehydrateren van de monsters volgens het tekstprotocol, worden de coupes in Coplin-potten geplaatst en gevuld met 10 millimolaire citraatbuffer, pH 6. De monsters worden in de magnetron bij hoog vermogen zes en een halve minuut verhit, waarna het verdampte citraatbuffer wordt vervangen door gedestilleerd water en de monsters opnieuw worden verhit. Na het afkoelen, wassen en blokkeren van de coupes volgens het tekstprotocol, worden 180 microliters primaire antilichamen, verdund in blokkeringsoplossing, op een gasket aangebracht en wordt de coupe bevestigd alsof er een dekglas wordt geplaatst.Dompel de volgende dag de objectglazen in gedestilleerd water om de pakking los te maken. Was de objectglazen vervolgens zes keer gedurende vijf minuten per keer met TBS, met 0,1% Tween 20. Nadat de objectglazen zijn geïncubeerd met secundaire antilichamen, worden ze twee keer vijf minuten gewassen met 0,1 molair Tris Base, gevolgd door twee keer wassen met 0,5 molair Tris Base.Bewaar de preparaten in 0,5 molar Tris-base tijdens het toevoegen van het montagemedium, met of zonder DAPI, en breng een dekglas aan. Gebruik vervolgens een geautomatiseerde fluorescentiemicroscoop om de monsters te beelden en analyseer deze volgens het tekstprotocol. In deze afbeelding van whole-mount tracheaal longweefsel, geïsoleerd van Reporter- en twee lacZ-muizen, werd lacZ-kleuring gedetecteerd in het mesenchym van de trachea en in de perifere regio's van de ontwikkelende longen, wat duidt op Wnt beta-catenine activiteit.In dit experiment werden tracheale longweefsels van E12.5 tot E14.5 gekleurd met PNA-lectine. Bij controledieren werd fluorescentie waargenomen als periodieke banden in het mesenchym waar kraakbeen wordt gevormd. Het uitblijven van kleuring in Wntless sonic hedgehog Cree-embryo's geeft echter aan dat Wnt-signalering noodzakelijk is voor mesenchymale condensaties.In het gehele tracheaweefsel van E11.5-embryo's is de expressie van SOX9 beperkt tot het mesenchym als een doorlopende streep, terwijl SOX9 in de ontwikkelende long aan de periferie van het respiratoire epitheel wordt waargenomen. Zoals hier getoond, is NKX2.1 beperkt tot het epitheel van de trachea. Het voorkomen van de secretie van Wnt-liganden vanuit het epitheel vermindert de expressie van SOX9 in het mesenchym, maar heeft geen effect op de SOX9-expressie in het perifere longepitheel.Kleuring voor alfa-gladspieractine wordt in lage concentraties gedetecteerd in tracheaal weefsel, maar is duidelijk waarneembaar in de larynx en de maag. Ten slotte, zoals aangegeven in deze figuur, laat in vivo labelen van tracheaal weefsel met BrdU, SOX9 en alfa-gladspieractine zien dat SOX9-gekleurde cellen prolifereren op een hoger niveau dan alfa-gladspieractine-gekleurde cellen. Het proliferatiepatroon is omgekeerd in Wntless sonic hedgehog Cree tracheaal weefsel.Zodra deze technieken onder de knie zijn, kunnen de meeste ervan in twee dagen worden uitgevoerd indien ze correct worden toegepast. Bij het uitvoeren van deze procedure is het belangrijk om rekening te houden met de herkomst van het primaire antilichaam bij de keuze van het secundaire antilichaam. Dit is essentieel voor alle immunostaining-procedures, maar is in het bijzonder van belang wanneer er meer dan één primair antilichaam wordt gebruikt.Na de X-galactosidase-kleuring kunnen aanvullende technieken, zoals in situ hybridisatie, worden uitgevoerd om extra informatie te verkrijgen en aanvullende vragen te beantwoorden, zoals of een specifiek gen van belang wordt tot expressie gebracht tijdens Wnt-signalering. De hier gepresenteerde technieken zijn nuttig voor onderzoekers die geïnteresseerd zijn in stille patroonvormingsmechanismen die worden gemedieerd door Wnt-signalering, of andere belangrijke signaleringspaden voor ontwikkeling. Na het bekijken van deze video zou u een goed inzicht hebben in hoe het differentieproces tijdens de ontwikkeling van de luchtwegen kan worden bestudeerd.En verkrijg daarnaast een beter inzicht in de rol van Wnt-signalering bij de patroonvorming van de geleidende luchtwegen. Vergeet niet om bij het werken met paraformaldehyde en benzylbenzoaat de juiste voorzorgsmaatregelen te nemen, zoals het dragen van handschoenen, het bereiden van oplossingen onder de zuigkast en het afvoeren van afvaloplossingen in overeenstemming met de lokale wet- en regelgeving.

studying-wnt-signaling-during-patterning-of-conducting-airways

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Ontwikkelingsbiologie

Hier schetsen we de workflow voor het gebruik van het TetON-systeem om weefselspecifieke genregulatie te bereiken in de regenererende staartvin van een volwassen zebravis.

Gebruik van de Teton systeem om te studeren moleculaire mechanismen van zebravis Regeneratie

Het manuscript hier een eenvoudige set van methoden voor het analyseren van de afscheiding en de verspreiding van fluorescent gelabelde liganden in Xenopus. Dit verschaft een context voor het testen van het vermogen van andere eiwitten ligand distributie passen en waardoor experimenten inzicht in mechanismen reguleren morfogeen gradiënten kunnen leiden.

Met behulp van confocale Analyse<em&gt; Xenopus laevis</em&gt; Om Modulators van Wnt en Shh Morfogen Verlopen Onderzoek

Primaire cilia beïnvloeden verschillende signaalroutes. De cochlea van zoogdieren is ideaal voor het onderzoeken van planaire celpolariteit (PCP) signalering. Cilia-disfunctie beïnvloedt cochleaire uitgroei, cellulaire patterning en oriëntatie van haarcellen, uitlezingen van PCP. Ons doel is om PCP-signalering in muis cochlea te analyseren via fenotypische analyse, immunohistologie en rasterelektronenmicroscopie.

Evaluatie van Planar-Cell-Polariteit Phenotypes in ciliopathie Mouse Mutant Cochlea

Deze video artikel beschrijft een eenvoudige in vivo methodiek die gebruikt kunnen worden om systematisch en efficiënt te karakteriseren componenten van complexe signaalwegen en regulatorische netwerken in vele ongewervelde embryo's.

De kracht van eenvoud: Sea Urchin Embryo&#39;s als<em&gt; In Vivo</em&gt; Developmental Modellen voor het bestuderen van complexe Cell-to-cell signaling Network Interactions

Hier presenteren we een protocol om te visualiseren ontwikkeling van harten in zebrafish in 4 dimensies (4-D). 4-D imaging, via licht-blad fluorescentie microscopie (LSFM), neemt de 3-dimensionale (3-D) beelden na verloop van tijd te reconstrueren ontwikkelende harten. Laten we kwalitatief en kwantitatief dat schuifspanning activeert endocardial Notch signalering tijdens de ontwikkeling van de zaal, die cardiale trabeculation bevordert.

Licht vel fluorescentie microscopie 4-dimensionale beelden van de gevolgen van het moduleren van Shear Stress op de ontwikkelingslanden Zebrafish hart

Een protocol voor het kweken en manipuleren van embryonaal weefsel van muizen op een microfluïdische chip wordt verstrekt. Door pulsen van pathway modulators toe te passen, kan dit systeem worden gebruikt om signaaloscillaties extern te regelen voor het functionele onderzoek van muis somitogenese.

Een microfluïdische benadering voor het functioneel onderzoek van signaaloscillaties die somitogenese beheersen

De huidige studie schetst een zeer reproduceerbare en handelbare methode om paracriene niet-canonische Wnt-signaleringsgebeurtenissen in vitro te bestuderen.  Dit protocol werd toegepast om de impact van paracriene Wnt5a-signalering in muizenneuraalcellen en myoblasten te evalueren.

Modellering Paracriene Niet-canonische Wnt Signalering In Vitro

Recente ontwikkelingen in door de mens geïnduceerde pluripotente stamceldifferentiatieprotocollen maken de stapsgewijze afleiding van orgaanspecifieke celtypen mogelijk. Hier geven we gedetailleerde stappen voor het onderhoud en de uitbreiding van iPSC-afgeleide luchtwegbasale cellen en hun differentiatie in een mucociliair epitheel in lucht-vloeistof interfaceculturen.

Generatie van luchtwegepitheelcel lucht-vloeistof interfaceculturen uit menselijke pluripotente stamcellen

Hier beschrijven we protocollen voor drie soorten vogelembryonale huidexplantatieculturen die kunnen worden gebruikt om weefselinteracties te onderzoeken, 4D-beeldvorming timelapse-film (3D plus tijd), globale of lokale verstoring van de moleculaire functie en karakterisering van systeembiologie.

Explantaten van de vogelhuid gebruiken om weefselpatronen en organogenese te bestuderen

Dit artikel beschrijft in vivo en in vitro methodologie om de thymische vestigingsprogenitors te karakteriseren door de analyse van de kinetiek van generatie, fenotype en aantallen van hun T-cel nakomelingen.

Karakterisering van Thymic Settling voorouders in de Mouse Embryo behulp<em&gt; In Vivo</em&gt; En<em&gt; In Vitro</em&gt; Testen

Leer Wnt-signalering analyseren tijdens tracheale ontwikkeling met reportermuizen en kleuringstechnieken. Deze methode onthult mechanismen van luchtwegpatroonvorming en kraakbeenontwikkeling in embryonaal weefsel.

Studeren Wnt Signalering Tijdens patroonvorming van Conducting Airways

Meer video's verkennen