9 mei 2016
Collageen is een essentieel onderdeel van de ECM en biedt essentiële signalen verscheidene cellulaire processen gaande van migratie differentiatie en proliferatie. Er wordt hier een protocol voor het inbedden van cellen in 3D collageen hydrogels, en een meer geavanceerde techniek voor het genereren van gerandomiseerde of uitgelijnd collageen matrices gebruikt PDMS microkanalen.
Het algemene doel van deze procedure is om uitgelijnde en willekeurige 3D collageen matrices te genereren, met als doel celmigratie of andere cellulaire processen te observeren in de context van een 3D-omgeving. Deze methode is ontworpen om collageenfuncties vast te leggen die we in echte weefsels vinden, wat kan helpen om de belangrijkste vragen te beantwoorden, zoals de mechanismen die cellen gebruiken om een uitgelijnde of willekeurige extracellulaire matrix te herkennen. Het grote voordeel van deze techniek is dat u de organisatie van de 3D-omgeving kunt manipuleren, cellen binnenin kunt afbeelden en dit kosteneffectief kunt doen met apparatuur die algemeen beschikbaar is.
Over het algemeen zullen personen die nieuw zijn in deze methode worstelen omdat ze de collageenoplossing en de neutralisatiebuffer niet goed genoeg mengen en ze trekken het collageen ongelijkmatig door de kanalen. Deze procedure zal worden gedemonstreerd door Brian Burkel, die een senior wetenschapper is in mijn laboratorium. Om te beginnen, meng de collageen en HEPES buffer grondig voordat u cellen en media toevoegt om een goede neutralisatie van het collageen te garanderen.
Voeg vervolgens de cellen en media toe aan het geneutraliseerde collageenmengsel en plaats het op ijs zoals beschreven in het bijbehorende tekstprotocol. Pipetteer het ijskoude mengsel in een steriele, niet behandelde oppervlakte om de hechting en groei van cellen buiten het collageenweefsel te minimaliseren. Gebruik een pipet om de oplossing gelijkmatig te verspreiden.
Laat de gel polimeriseren bij kamertemperatuur gedurende ongeveer 10 tot 15 minuten. Bedek vervolgens de gels en verplaats ze naar een incubator van 37 graden Celsius voor een extra 45 tot 60 minuten om de polymerisatie te voltooien. Na polymerisatie wordt de gel ondoorzichtig.
Eenmaal gepolymeriseerd, voegt u twee tot drie milliliter media toe. Trek vervolgens de gels los van de zijden van de put door een 200-pipet rond de omtrek van de put te laten lopen. Draai voorzichtig met de schaal om de gel van de onderkant los te maken.
Om PDMS Microkanalen te maken voor het uitlijnen van collageenmatrices. Bereid eerst een SuA siliconen master voor, met behulp van standaard zachte litografietechnieken die elders worden beschreven. Gebruik vervolgens een craftstick om 20 gram elastomerenbasis met 2 gram verhardingsmiddel grondig te mengen in een wegwerpbeker.
Eenmaal goed gemengd, ontgast u het PDMS-mengsel door de wegwerpbeker in een vacuümkamer te plaatsen onder een vacuümdruk van 550 millimeter kwik. Ontgast het mengsel gedurende ongeveer een tot anderhalf uur. Terwijl het PDMS wordt ontgast, bereidt u de siliconen master voor door een schone transparante folie op een hotplate te plaatsen, gevolgd door de siliconen master.
Zorg ervoor dat de microkanaal mal omhoog staat. Na een tot anderhalf uur verwijdert u het ontgaste PDMS uit de vacuümkamer. Giet het PDMS langzaam in het midden van de master en laat de zwaartekracht het gelijkmatig verspreiden.
Leg vervolgens voorzichtig een tweede blad transparante folie bovenop de siliconen master en PDMS om luchtbellen te voorkomen. Leg voorzichtig een rubberen blad bovenop de transparantie, gevolgd door een 1/8 inch acrylblad, voeg vervolgens de eerste van de drie tienpondsgewichten toe bovenop het acrylblad. Aanvankelijk zal het eerste gewicht zweven, laat het bezinken en stabiliseren voordat u doorgaat met de twee resterende gewichtplaten.
Wanneer u klaar bent om door te gaan, stelt u een hotplate in op 70 graden Celsius en laat het PDMS gedurende vier uur uitharden. Laat het PDMS eens uitgehard minimaal nog een uur afkoelen en verwijder vervolgens voorzichtig de bovenste transparante folie voor de wafer. Verwijder tenslotte de kanalen met de pincet.
Plaats de kanalen ondersteboven op een nieuwe schone transparante folie en reinig alle poorten met een cirkelvorkige beweging met scherpe pincetten. Verwijder alle fragmenten van PDMS die loskomen. Plaats vervolgens een stuk plakband op de werktafel, plakzijde omhoog en plaats het PDMS-kanaal met de zijde naar beneden op het plakband.
Druk met het ronde uiteinde van een tang op de kanalen om goed contact te garanderen. Verwijder de kanalen en herhaal dit proces aan beide kanten totdat al het zichtbare puin is verwijderd. Breng vervolgens de schone, voorbereide PDMS-kanalen over in een 50 milliliter conische buis gevuld met 70%ethanol.
Vortex de kanalen met maximale snelheid gedurende 30 seconden en vervang vervolgens de oplossing door vers 70%ethanol. Gebruik aseptische technieken om de PDMS-kanaalzijde omhoog over te brengen naar een schone en steriele schaal. Behandel vervolgens de kanalen met UV totdat het ethanol is verdampt.
Eenmaal droog, draait u de kanalen om op een dekglas of glasbodemschaal en drukt u ze neer op het glas om een goede afdichting te maken. Voeg een stuk steriele PDMS toe om het middelste deel van de kanalen te bedekken en sluit het op te drogen. Plaats vervolgens een druppel van 100 microliters van een collageenoplossing van 10 microgram per milliliter op de bovenkant van een kanaal en trek het door het kanaal met behulp van een vacuüm.
Incubeer de kanalen gedurende een uur bij 37 graden Celsius en breng vervolgens de kanalen, nog steeds gevuld met collageencoatingsoplossing, over naar een koelkast. Koel de setup gedurende ongeveer 15 tot 30 minuten en gebruik vervolgens een aspirator of pipet om de collageencoatingsoplossing uit de kanalen te verwijderen. Begin door de collageenoplossing te neutraliseren, verdun het met celmedia en incubeer het gedurende 15 minuten op ijs.
Plaats vervolgens 120 tot 150 microliters van de collageenoplossing in poort A van een voorgekoelde kanaal. Bevestig vervolgens een 25 milliliter pipet aan een vacuümlijn en plaats het boven poort C. Gebruik het om de mengsel door middel van een enkele uniforme beweging in te trekken, stop wanneer het collageen het einde bereikt. De belangrijkste stap
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel presenteert een protocol voor het genereren van uitgelijnde en willekeurige 3D-collageenmatrices, die essentieel zijn voor het bestuderen van celmigratie en andere cellulaire processen in een driedimensionale omgeving. De methode is erop gericht de collageenkenmerken te repliceren die in echte weefsels worden aangetroffen, om zo inzicht te bieden in hoe cellen interageren met verschillende organisaties van de extracellulaire matrix.
Het bestuderen van celgedrag in fysiologisch relevante 3D-extracellulaire matrixomgevingen is cruciaal voor het verminderen van risico's bij targetvalidatie en het mechanistische begrip in oncologie- en fibroseonderzoek. Dit protocol maakt de reproduceerbare generatie van uitgelijnde en willekeurige collageenmatrices mogelijk, wat direct bijdraagt aan het voorspellend vertrouwen in hoe tumorcellen reageren op ECM-remodellering — een belangrijke drijfveer van metastase en therapeutische resistentie. Door een instelbaar en kosteneffectief platform te bieden met gebruik van algemeen beschikbare apparatuur, faciliteert het vroege discovery-workflows waarin mechanistische inzichten de prioritering van targets en het assay-ontwerp informeren.
Deze methode past binnen het ontdekkingscontinuüm, van het testen van doelwit hypothesen tot de identificatie van lead-verbindingen, waarbij inzicht in cel-ECM-interacties informatie verschaft over het werkingsmechanisme en selectiviteitsprofielen voordat er wordt geïnvesteerd in preklinisch onderzoek.