22 juni 2016
Immature dendritische cellen kunnen selectief worden gedifferentieerd in tolerogeen of rijpe dendritische cellen om het evenwicht tussen immuniteit en tolerantie te reguleren. Dit werk presenteert een manier om vanuit onrijpe, uit monocyten afgeleide dendritische cellen (moDC's) in vitro tolerogeen en rijpe moDC's te genereren die verschillen in metabolische fenotypen.
Het algemene doel van dit protocol is om tolerogeen en volwassen dendritische cellen uit monocyten te genereren voor experimenten of vaccinontwikkeling. Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van belangrijke vragen op het gebied van immunologie door een model te bieden om de ontwikkeling, rijping en antigeenpresentatie van dendritische cellen te bestuderen. Het grote voordeel van deze techniek is dat het de generatie van grote aantallen dendritische cellen in vitro voor experimenten mogelijk maakt.
Begin met monocytenverrijking door 20 microliters van eerder bereide perifere mononucleaire bloedcellen, of PBMC-celsuspensie, te mengen met 20 microliters tripan blauw, om het aantal levende cellen te tellen met behulp van een cytometer. Centrifugeer vervolgens de celsuspensie. Zuig de supernatant volledig af en suspendeer het celpellet opnieuw in een concentratie van 80 microliters kleuringsbuffer voor 10 tot de zevende cellen.
Voeg 20 microliters CD-4 microkralen toe per 10 tot de zevende cellen. Meng goed en incubeer de cellen gedurende 15 minuten bij vier graden Celsius. Was de cellen met één milliliter kleuringsbuffer per 10 tot de zevende cellen en centrifugeer de cellen.
Zuig de supernatant volledig af en suspendeer het celpellet opnieuw. Verkrijg een mediumkolom voor maximaal twee keer 10 tot de achtste totaal aantal cellen en plaats de kolom in het magnetische veld van de separator. Spoel vervolgens de kolom met 500 microliters kleuringsbuffer.
Pipetteer de celsuspensie op de kolom en verzamel de ongelabelde cellen die door de kolom gaan in een 15-milliliter buis. Vervang een nieuwe 15-milliliter buis onder de kolom en was de kolom drie keer met 500 microliters kleuringsbuffer. Zorg ervoor dat de kolomreservoir leeg is voordat u nieuwe kleuringsbuffer tussen de wasbeurten toevoegt.
Verwijder de kolom uit de separator en plaats deze op een verse 15-milliliter buis. Pipetteer één milliliter kleuringsbuffer op de kolom en spoel onmiddellijk de magnetisch gelabelde cellen uit door de plunjer stevig in de kolom te duwen. Herhaal vervolgens de magnetische scheidingsstappen met de illudeerde fractie in een nieuwe kolom om de zuiverheid van de CD14 plus cellen te verhogen.
Zaai vier sets CD14 plus monocyten in een concentratie van nul punt drie tot nul punt vijf keer 10 tot de zesde per milliliter celcultuurmedium van IL-4 in zes welbplaten. Incubeer de cellen in een weefselkweekincubator bij 37 graden Celsius met vijf procent CO2. Op dag vier verwijdert u 850 microliters medium uit de cultuur en centrifugeert u.
Zuig de supernatant af en suspendeer het pellet in één milliliter celcultuurmedium. Voeg het cellenmengsel terug toe aan de cultuur. Op dag vijf voegt u één microliter vitamine D3-voorraad en één microliter dexamethazon-voorraad per één liter medium toe aan twee van de sets, om tolerogeen moDCs te genereren.
Op dag zes voegt u 200 nanogram per milliliter GMCSF en 200 nanogram per milliliter IL-4 toe aan alle sets. Voeg één microgram per milliliter LPS toe aan een van de sets behandeld met alleen GMCSF en IL-4 om volwassen moDCs te genereren. Voeg één microgram per milliliter LPS toe aan een set van de tolerogeen moDCs om LPS tolerogeen moDCs te genereren.
Ten slotte, op dag zeven, oogst u de verschillende soorten moDCs door de kweekschaal te spoelen met PVS EDTA. De onvolgroeide moDCs werden gegenereerd door GMCSF en IL-4 toe te voegen aan gezuiverde CD-14 plus monocyten op dagen nul, vier en zes. Toevoeging van vitamine D3 en dexamethazon na GMCSF en IL-4 resulteerde in de differentiatie van onvolgroeide moDCs in tolerogeen moDCs.
LPS werd toegevoegd om de rijping van onvolgroeide moDCs tot volwassen moDCs te induceren. En tolerogeen moDCs werden gestimuleerd met LPS om weerstand tegen rijping te verifiëren. Een analyse van DC-oppervlaktemarkers onthulde dat volwassen moDCs de hoogste niveaus van rijpingsmarkers HLA-DR, CD80, CD83 en CD86 tot expressie brengen.
Omgekeerd vertoonden tolerogeen moDCs een verhoogde expressie van CD14, BDCA3 en immunoglobuline-achtige transcripten in vergelijking met onvolgroeide en volwassen moDCs. Met behulp van rood CMXRos om de mitochondriale activiteit weer te geven, werd waargenomen dat tolerogeen moDCs een hogere mitochondriale activiteit hadden in vergelijking met de andere moDC-gedifferentieerde subtypes. Na de ontwikkeling van deze techniek werd de weg vrijgemaakt voor onderzoekers op het gebied van immunologie om metabolische kenmerken in dendritische cellen te verkennen voor de ontwikkeling van vaccins en immunotherapie.
Deze studie presenteert een protocol voor het genereren van tolerogene en mature dendritische cellen uit monocyten, die kunnen worden gebruikt voor immunologisch onderzoek en vaccinontwikkeling. De methode maakt de differentiatie van immature monocyt-afgeleide dendritische cellen (moDC's) mogelijk naar verschillende fenotypes met variërende metabole kenmerken.
Het genereren van dendritische cellen met gedefinieerde immunogene of tolerogene fenotypes maakt een nauwkeurige analyse mogelijk van immuunmechanismen die relevant zijn voor immunotherapie en de ontwikkeling van vaccins. Deze mogelijkheid ondersteunt het voorspellend vertrouwen bij targetvalidatie in een vroeg stadium en vermindert de risico's van translationele programma's door gestandaardiseerde, schaalbare cellulaire modellen te bieden. Deze aanpak is direct relevant voor portfolio-teams die discovery-biologie willen afstemmen op downstream klinische translatie in immuunmodulatie.
Deze methode is geïntegreerd in het continuüm van ontdekking tot preklinische fase door het mogelijk maken van de generatie en karakterisering van dendritische cel-subtypes voor immuunmodulatiestudies.