Name: Generatie Parabiotic zebravis embryos door Surgical Fusion of Developing Blastulae (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-06-11T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 38 s
Description: Leer parabiotische zebravisembryo's genereren door chirurgische fusie van blastulae voor onderzoek naar celautonomie en genfunctie. Deze methode verbetert het succespercentage van embryo-overleving.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

We danken Julie R. Perlin voor de nuttige opmerkingen over het manuscript. D.I.S. wordt ondersteund door subsidies van de American Society of Hematology, de Cooley's Anemia Foundation en de NIH (K01DK085217 en R03DK100672). E.J.H. is een Howard Hughes Medical Institute Fellow van de Helen Hay Whitney Foundation. B.L. is een Howard Hughes Medical Institute Medical Research Fellow. B.W.B. wordt ondersteund door een Irvington Fellowship van het Cancer Research Institute en een Young Investigator Award van de Conquer Cancer Foundation of ASCO. L.I.Z. wordt ondersteund door subsidies van de NIH (R01CA103846, P01HL032262 en R01HL04880), de Taub Foundation for MDS Research, het Harvard Stem Cell Institute en is een onderzoeker van het Howard Hughes Medical Institute.

Dit protocol werd goedgekeurd door het ziekenhuis Animal Care en gebruik Comite van Boston Children&#39;s. Dit protocol is een modificatie van een eerder gepubliceerde werkwijze 15. 1. Bereiding van reagentia (dagen of weken op voorhand) <ol><li> Bereid 1,5% agarose-beklede schalen. Voeg 1,5 g agarose tot 100 ml zebravis E3 medium in een erlenmeyer. Warmte, ontbinding van de agarose, en giet dan ongeveer 5 ml in diameter van 100 mm x 20 mm diep petrischaaltjes. Opmerking: Deze worden gebruikt voor dechorionation embryo&#39;s (stap 3.1) en de parabiotic chirurgie (stap 3,3). WINKEL agarose-beklede schalen bij 4 ° C gedurende enkele weken; neem ze uit de koelkast en warm op de ochtend van de dag van de operatie parabiotic Rt. </li><li> Bereid 4% methylcellulose. Ontbinden 4 g methylcellulose poeder in 100 ml van de E3 in een erlenmeyer met een roerstaafje. Plaats de kolf op een roer plaat staan ​​bij 4 ° C, op de laagste snelheid en laat het mixenmaximaal 2 dagen. <ol><li> Tussenpozen gebruik maken van een spatel te breken witte massa&#39;s van methyl cellulose. De methylcellulose kristallen niet volledig oplossen bij deze concentratie. Wanneer de oplossing helder en homogeen wordt zonder witte klonten resterende monster van de oplossing in 1,5 ml microfuge buizen en bevriezen bij -20 ° C voor langdurige opslag. Opmerking: Lagere concentraties methylcellulose kan worden gebruikt; echter deze hogere percentage viskeuzer methylcellulose heeft opgeleverd beste resultaten. </li></ol></li><li> Bereid High Calcium Ringer-oplossing (HCR). Aan 400 ml van HCR oplossing te maken, meng 8 ml 5M NaCl (116 mm definitief), 400 ul van 3M KCl (2,9 mm finale), 800 ul van 5M CaCl2 (10 mM definitief), en 2 ml 1M HEPES (5 mM definitief) met 390 ml van E3 media. Opmerking: WINKEL HCR oplossing bij 4 ° C gedurende enkele weken; warm op de ochtend van de dag van de operatie parabiotic Rt. </li><li> Bereid 5-6 aangepast Pasteurpipetten voor de overdrachtring blastula paren. Kort verwarmen eind van de pipet in een Bunsen brander. Dan, met grote tang, buig het uiteinde van de pipet tot ongeveer 45 ° C terwijl het nog heet. <ol><li> Om ervoor te zorgen dat er geen scherpe randen die embryo&#39;s kunnen beschadigen, houdt u de punt van de pipet kort in de vlam voor ongeveer 3 sec. Hierdoor worden de overgangen / polish het einde van de pipet. Deze gemodificeerde glazen Pasteur pipet wordt gebruikt in combinatie met een 10 ml pipet pomp (figuur 1) in stap 3.5. </li></ol></li><li> Bereid glazen naald hulpmiddelen voor chirurgische stikken van blastula paren. Trek 2-3 glazen naalden zoals voor micro-injectie van de zebravis embryo&#39;s. Gebruik lab-folie op elke glazen naald vast aan het einde van een hout- of kunststof steel plagen naald (Figuur 1A). Behulp van een tang, breek het uiteinde van de naald op een diameter van ongeveer 20-30 urn. Gebruik een micrometer deze stap (figuur 1B) te leiden. NB: De omvang van het needle tip is belangrijk. Als de tip te groot is wordt het moeilijk om precies te controleren en kan overmatige slijtage veroorzaken. Als de tip te klein is is het moeilijk om voldoende verwonden embryo. </li></ol> 2. Het opzetten van broedparen van de zebravis en verzamelen van embryo&#39;s (dag -1 tot dag 0) <ol><li> Opzetten broedparen van volwassen zebravissen. Het opzetten van vis de avond voor de parabiosis operatie zal worden uitgevoerd. Gebruik verdelers om mannen en vrouwen te scheiden. Om de kans dat de gewenste embryo&#39;s zullen worden verkregen, het opzetten van verschillende paren van elke lijn te verhogen. We vinden dat doorgaans 20-50% van de paren paaien. </li><li> De volgende ochtend, trek de verdelers en laat de paring. Verzamel elke embryo&#39;s met behulp van een fijnmazig theezeefje, breng ze over naar een petrischaal met E3 embryo medium 18. </li><li> Micro-injecteren embryo&#39;s naar wens (bijvoorbeeld 25 pg plasmide-DNA, 200 pg mRNA, of met 1-6 ng morfolino) binnen 1 uur van de collectie. Laat zegroeien tot 256-cel stadium. Als de DNA-expressieconstruct onder de controle van een heat shock promoter is geplaatst (bijvoorbeeld hsp70, figuur 4B), de controle van de timing van genexpressie door warmte schokkende de parabionts bij 37 ° C in een later stadium (bijv. Bij 36 HPF ). Opmerking: Als alternatief voor een fluorescerende transgen fluorescent dextran kan worden aan het DNA, RNA of morfolino injectie mengsel toegevoegd (bijvoorbeeld dextran, cascade blauw bij 2 mg / ml). De dextran kleurstof zal niet interfereren met de normale ontwikkeling en zal zorgen voor de geïnjecteerde embryo kan worden geïdentificeerd onder de desbetreffende tl-licht na parabiotic fusie. Als alternatief zou de parabiosis van een gepigmenteerde stam (bijvoorbeeld AB) met een niet-gepigmenteerde stam (bijv Casper) worden gebruikt om de geïnjecteerde embryo identificeren latere stadia. </li><li> Incubeer de embryo&#39;s bij 28,5 ° C.Use een stereoscoop om hun ontwikkeling regelmatig controleren als ze in de buurt van de 256-cel developmental fase (ongeveer 2,5 HPF). Opmerking: Indien nodig, verschuiven embryo&#39;s op verschillende temperaturen om stadium matching tussen parabiotic partners (bv-morfolino geïnjecteerde embryo&#39;s ontwikkelen zich vaak langzamer dan hun un geïnjecteerd tegenhangers Het verschuiven van de VN-geïnjecteerde embryo&#39;s tot KT te waarborgen en tegelijkertijd de-morfolino geïnjecteerde embryo&#39;s worden geplaatst. bij 28,5 ° C zal resulteren in fasen af ​​te stemmen na een paar uur van de ontwikkeling). </li></ol> 3. Productie van Parabiotic zebravis embryo&#39;s door Surgical Fusion of Developing Blastulae <ol><li> Aangezien het embryo naderen de 256-cellig stadium (ongeveer 2,5 HPF), breng de embryo&#39;s van elke genetische achtergrond (dat wil zeggen, genetische mutant, transgene lijnen en / of genetische manipulatie) in afzonderlijke agarose beklede schalen (bijvoorbeeld een schotel voor morfolino- geïnjecteerde embryo&#39;s en een tweede gerecht voor controle embryo&#39;s). Alternatief: breng de embryo&#39;s schoon te maken, krasvrij glas bekers of glazen petrischaaltjes. Opmerking: Vermijd het gebruik van ongecoate plastic schaaltjes als de embryo&#39;s zal vasthouden aan het plastic en eenmaal beschadigd worden uit hun chorions. </li><li> Decanteer de E3 media tot net voldoende vloeistof blijft de embryo dekking (ongeveer 7-10 ml). Voeg 200 ul van 50 mg / ml mengsel van proteasen geïsoleerd uit de extracellulaire vloeistof van Streptomyces griseus (proteasen). Zwenk de embryo&#39;s zachtjes om de paar minuten. <ol><li> Bij 50% van de embryo&#39;s uit hun chorions, wat gewoonlijk 5 gekomen - 10 minuten, spoel ze driemaal met een royale (ongeveer 15 - 20 ml) vers E3 embryo medium. <ol><li> Dechorionate geen embryo&#39;s die nog in hun chorions door ze voorzichtig opstellen in de gewijzigde glas Pasteur pipet en vervolgens voorzichtig het wegnemen van hen. Zodra de embryo&#39;s zijn dechorionated en gewassen, vervang de E3 media met HCR-oplossing. Als alternatief voor proteasen, verwijderen chorions handmatig met een fijne pincet. Doel om 60 hebben - 100 dechorionated embryo&#39;s beschikbaar voor elke experimentele conditie. Opmerking: Het is verscheidene malen meer dan uiteindelijk worden gebruikt, maar veel embryo&#39;s waarschijnlijk tijdens behandeling of de operatie voor parabiosis beschadigd. Zodra de embryo&#39;s worden dechorionated, houd ze onder water en laat ze niet naar de oppervlakte te raken van het water, omdat de oppervlaktespanning zal ervoor zorgen dat ze worden vernietigd. Houd er rekening mee dat het gebruik van een hogere dosis van proteasen kan de embryo&#39;s uit hun chorions eerder en op een meer synchroon te komen. Bij gebruik van een lagere dosis van proteasen, de embryo duurt langer uit hun chorions en wel in een lager synchrone wijze, wat kan resulteren in een deel van de embryo beschadiging door langdurige blootstelling aan proteases. </li></ol></li></ol></li><li> Ontdooi de methylcellulose (gemaakt in stap 1.2 hierboven) en centrifuge in een tafelblad centrifuge op maximale snelheid gedurende 10 min om onopgeloste kristallen die de embryo&#39;s zal beschadigen of scheuren hun dooier pellets. <ol><li> Na centrifugatie, gebruikt de heldere bovenste deel (ongeveer 75% van het volume). Transfer 1-1,5 cm diameter druppels methylcellulose in een 1,5% agarose beklede petrischaal. Let er op dat de opstelling van een van de gepelleteerde kristallen uit de bodem van de buis. </li><li> Gebruik marker om de positie van elk druppeltje vooraf bepalen aan de onderzijde van de schaal. Place 12-15 druppels (2-3 porties ter waarde) methylcellulose per 100 mm petrischaal. Bereid zoveel platen als nodig per experiment. Opmerking: Gebruik elke druppel voor de fusie van een enkele blastula paar. Het merk zal de locatie van elke druppel zodra de media wordt toegevoegd-op welk punt de druppels worden bijna onzichtbaar te wijzen. </li></ol></li><li> Bereid een 40 ml aliquot van antibiotica aangevuld HCR oplossing per-agarose gecoate schaal hierboven bereid in Stap 3,3. Aan elke 40 ml van HCR add penicilline-streptomycine bij 50 U / ml ampicilline bij 50 U / ml en kanamycine bij 0,5 ug/ Ml. <ol><li> Als u klaar bent om te blastula fusies uit te voeren, zorgvuldig te vullen elk van de gerechten die methylcellulose druppels met 40 ml van het antibioticum aangevuld HCR-oplossing. Als de HCR oplossing te snel wordt toegevoegd, kan het de druppels verstoren. </li></ol></li><li> Bevestig de gewijzigde glas Pasteur pipet (gemaakt in stap 1.4 hierboven) om een ​​10 ml pipet pomp. Onder een stereoscoop verzamelen één dechorionated embryo uit elke achtergrond (bijvoorbeeld één-morfolino geïnjecteerd embryo en één wild-type embryo). <ol><li> Vóór het afgeven van de twee embryo Gebruik de Pasteur pipet een kleine holte in het midden van de methylcellulose druppel maken vervolgens voorzichtig zowel embryo&#39;s in de holte te deponeren. Opmerking: Tijdens het overdrachtsproces, zet de Pasteur pipet iets omhoog zodat de embryo regelen in de bocht van het Pasteur pipet teneinde het contact maken met het oppervlak van de vloeistof aan de bovenkant of onderkant van de pipet (vermijden die kan leiden naar their breuk). </li></ol></li><li> Onmiddellijk na het afzetten van de embryo&#39;s in de methylcellulose, gebruik dan een hout- of kunststof-behandeld plagen naald met een gel-loading pipet tip over het einde (Figuur 1A) om zorgvuldig de positie van de embryo&#39;s in de methylcellulose dat hun dier polen zijn direct raken elkaar. <ol><li> Maak gebruik van zachte vegende bewegingen door de methylcellulose in de buurt van de embryo&#39;s om ze te verplaatsen zonder ze aan te raken. Laat de embryo&#39;s te zitten voor 5 minuten zodat de methylcellulose zal vestigen in om hen heen. Gedurende deze tijd, laadt u het volgende paar naar een andere druppel. Opmerking: Vermijd direct contact met de embryo&#39;s en er vooral voor dat een deel van de dooierzak, die gemakkelijk zal scheuren niet aan te raken. </li></ol></li><li> Met behulp van de glazen naald tool, voorzichtig gewonden elk embryo tot hun aanspreekpunt. Met een zachte naai beweging kunnen cellen van de eerste embryo worden getrokken in de tweede embryo en weer terug.Aan het einde van deze beweging, houd de naald in de plaats voor 2 - 3 sec en dan trek het weg heel langzaam. Opmerking: Er is een periode van ongeveer 2-3 seconden na de embryo gewond waar de twee weefsels lijken lijm en meer kans te hechten aan elkaar te zijn. Zo zijn wij van mening dat het houden van de naald op zijn plaats kort na verwonding helpt om de gewonden weefsels van elk embryo in contact voor de eerste periode onmiddellijk na verwonding te houden. </li><li> Laat deze embryo&#39;s te zitten voor 10-15 minuten bij kamertemperatuur. Intussen blijven nieuwe paren in andere druppels methylcellulose steek. Na 10-15 min, beoordelen of het eerste paar verbonden (figuur 2A) is gebleven. Opmerking: Als de embryo langer zijn bevestigd, herhaalt het stiksel werkwijze zolang de embryo jonger dan rond 30% epiboly fase. Meestal dit zorgt voor maximaal drie pogingen om de embryo samenvoegen. Als de embryo&#39;s lijken een bijlage, maar de c te hebben gehandhaafdDownloaded from www.vandenborre.be Basisaansluitingen niet substantieel, voert de aanvullende stiksel aan de rand van de verbinding te versterken. Vermijd schudden of verplaatsen gerechten tijdens de parabiotic operatie en incubatietijd. Opmerking: Ondanks hun vroeg ontwikkelingsstadium en waargenomen kwetsbaarheid kan de celmassa&#39;s van het embryo een aanzienlijke hoeveelheid manipulatie (bijv verwonding en stikken) tolereren en nog steeds normaal te ontwikkelen. De dooier, echter kan scheuren met alleen de geringste aanraking, waarbij het embryo. Wanneer stiksels twee blastulae de glazen naald, niet in contact met de interface tussen de celmassa en dooier van elk embryo maken. </li><li> Incubeer de embryo&#39;s O / N bij 28,5 ° C in dezelfde schotel en media (niet de media niet veranderen). Tegen de volgende ochtend, zal de embryo&#39;s uit zijn verhuisd van de veelal opgelost methylcellulose druppels. Verwijder alle embryo&#39;s die niet met succes werden gefuseerd. Giet de media en te vervangen door een nieuwe 25 ml E3. Opmerking: Als het werken met eengepigmenteerde stam, voeg 500 ul 0,15% (50x) fenylthioureum (PTU) tot een eindconcentratie van 0,003% tot pigmentatie te blokkeren. Embryo&#39;s zal moeten voortdurend blijven PTE tot onderdrukking van de pigmentatie te handhaven. </li></ol> 4. Microscoop Setup, Image Acquisition, verwerking en analyse <ol><li> Bereid 0,8% laag smeltpunt (LMP) agarose: Voeg 0,8 g LMP agarose tot 100 ml E3 en verhit tot het volledig is opgelost. De hete oplossing aliquot 1 ml LMP agarose in 1,5 ml microfuge buizen in een 37 ° C verwarmingsblok. De LMP agarose wordt gesmolten bij 37 ° C blijven. Voeg 40 gl 4 mg / ml (25x), pH 7,0 tricaïne aan elke 1 ml van LMP agarose bij 37 ° C. Opmerking: Als het werken met een gepigmenteerde stam, voeg 20 pl 0,15% (50x) PTU elk 1 ml aliquot. <ol><li> Bewaar de resterende LMP agarose enkele maanden in gesloten 50 ml buizen bij 4 ° C. </li></ol></li><li> Verdoven parabiotic embryo&#39;s worden afgebeeld door toevoeging van 1 ml van 4 mg / ml (25x), pH 7,0 tricaïnede 25 ml van E3 dat de embryo zich reeds bevindt. </li><li> Zwenk het gerecht, zodat de embryo&#39;s zal zwembad in het midden. Dan, met behulp van een breed-getipt plastic overdracht pipet het opstellen van de embryo&#39;s in zo weinig vloeistof mogelijk. Draai de pipet rechtop en zachtjes stuiteren van de embryo&#39;s, zodat ze af te wikkelen naar de bodem van de pipet. <ol><li> De embryo&#39;s in de bodem van de pipet, overbrengen naar een 1 ml portie van LMP agarose door licht aanraken van de pipet op het oppervlak van de agarose. Vermijd het overbrengen van overtollige vloeistof, omdat dit zal de agarose verdunnen. </li></ol></li><li> Na het verdrijven van de overtollige vloeistof uit de pipet, gebruikt u de pipet om de embryo&#39;s meng binnen de agarose, gebruik dan de pipet om alle agarose en embryo&#39;s over te brengen naar de bron van een glazen bodem (nr 1,5 dekglaasje), 6- well plaat. Opmerking: Zorg ervoor dat de pipet gooi deze na de overdracht van de embryo&#39;s naar de beeldvormende plaat. Resterende agarose wordt ingesteld binnen de pipet, rendering ineffectief voor verder gebruik. In plaats daarvan gebruik maken van een nieuwe pipet elke keer. </li><li> Onder een stereoscoop, gebruik dan een aan het uiteinde van een hout behandeld teasing naald vaste gel-loading pipet tip om de embryo&#39;s terug naar de dekking van glas te plaatsen (om ervoor te zorgen dat ze zich binnen de werkafstand van de microscoop objectief) en in de gewenste richting voor beeldvorming. Opmerking: Verplaats continu totdat de agarose volledig is ingesteld. Zorg ervoor dat de parabiotic embryo mount volgens welke embryo van het paar wordt afgebeeld. Gezien de willekeurige oriëntatie van de samengevoegde embryo voor sommige paren het moeilijk om zowel het embryo kan zijn. In dit scenario te herstellen van de embryo&#39;s uit de agarose met behulp van een pincet en een breed-getipt plastic overdracht pipet en vervolgens monteer voor de beeldvorming vanuit een ander perspectief. </li><li> Zodra de agarose is ingesteld, bedek met 2-3 ml E3 aangevuld met tricaïne (PTU en indien nodig). </li><li> Beeld de embryo&#39;s met een omgekeerde wide-field epi-fluorescentie, laser-scannen confocale of draaiende schijf confocale microscoop. Selecteer de doelstelling meest geschikt is voor de gewenste beeldvorming. Dat de hele embryo gezichtsveld, gebruik een 4x objectief. Selecteer een sterkere vergroting, zoals een 20x objectief om beeld een specifiek weefsel 16, 19. Opmerking: Bij gebruik van een rechtopstaande microscoop, monteren in LMP agarose (vergelijkbaar met boven) op een glazen afdekplaat slip. Keer de glazen dekglaasje op een glazen microscoopglaasje dat een ring van vacuüm vet gevuld met dezelfde E3-tricaïne-PTU 16, 19 heeft. </li><li> Proces verkregen beelden met behulp van gratis beeldanalyse softwarepakketten zoals NIH Image J / Fiji 16, 19. Let op: Tel het aantal cellen en kwantificeren van de dynamiek zoals mobiele migratie en celdeling met behulp van segmentatie en het bijhouden van algoritmes 16, 19. </li></ol>

<ol><li>Zon, L. I., Orkin, S. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hematopoiesis%3A+An+evolving+paradigm+for+stem+cell+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Hematopoiesis: An evolving paradigm for stem cell biology.</a> Cell. 132 (4), 631-644 (2008).</li>
<li>Dzierzak, E., Speck, N. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Of+lineage+and+legacy%3A+the+development+of+mammalian+hematopoietic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Immunol%22%5BJournal%5D)">Of lineage and legacy: the development of mammalian hematopoietic stem cells.</a> Nat Immunol. 9 (2), 129-136 (2008).</li>
<li>Li, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epoxyeicosatrienoic+acids+enhance+embryonic+haematopoiesis+and+adult+marrow+engraftment%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Epoxyeicosatrienoic acids enhance embryonic haematopoiesis and adult marrow engraftment.</a> Nature. 523 (7561), 468-471 (2015).</li>
<li>Tam, P. P., Rossant, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+embryonic+chimeras%3A+tools+for+studying+mammalian+development%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Mouse embryonic chimeras: tools for studying mammalian development.</a> Development. 130 (25), 6155-6163 (2003).</li>
<li>Tanaka, M., Gertsenstein, M., Rossant, J., Nagy, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mash2+acts+cell+autonomously+in+mouse+spongiotrophoblast+development%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Mash2 acts cell autonomously in mouse spongiotrophoblast development.</a> Dev. Biol. 190 (1), 55-65 (1997).</li>
<li>Morin-Kensicki, E. M., Faust, C., LaMantia, C., Magnuson, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+and+tissue+requirements+for+the+gene+eed+during+mouse+gastrulation+and+organogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Genesis%22%5BJournal%5D)">Cell and tissue requirements for the gene eed during mouse gastrulation and organogenesis.</a> Genesis. 31 (4), 142-146 (2001).</li>
<li>Ho, R. K., Kane, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-autonomous+action+of+zebrafish+spt-1+mutation+in+specific+mesodermal+precursors%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Cell-autonomous action of zebrafish spt-1 mutation in specific mesodermal precursors.</a> Nature. 348 (6303), 728-730 (1999).</li>
<li>Parker, L., Stainier, D. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-autonomous+and+non-autonomous+requirements+for+the+zebrafish+gene+cloche+in+hematopoiesis%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Cell-autonomous and non-autonomous requirements for the zebrafish gene cloche in hematopoiesis.</a> Development. 126 (12), 2643-2651 (1999).</li>
<li>Liao, E. C., Trede, N. S., Ransom, D., Zapata, A., Kieran, M., Zon, L. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Non-cell+autonomous+requirement+for+the+bloodless+gene+in+primitive+hematopoiesis+of+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Non-cell autonomous requirement for the bloodless gene in primitive hematopoiesis of zebrafish.</a> Development. 3 (3), 649-659 (2002).</li>
<li>Kamran, P., Sereti, K. I., Zhao, P., Ali, S. R., Weissman, I. L., Ardehali, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Parabiosis+in+mice%3A+a+detailed+protocol%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Parabiosis in mice: a detailed protocol.</a> J Vis Exp. (80), (2013).</li>
<li>Wagers, A. J., Sherwood, R. I., Christensen, J. L., Weissman, I. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Little+evidence+for+developmental+plasticity+of+adult+hematopoietic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Little evidence for developmental plasticity of adult hematopoietic stem cells.</a> Science. 297 (5590), 2256-2259 (2002).</li>
<li>Hervey, G. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effects+of+lesions+in+the+hypothalamus+in+parabiotic+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">The effects of lesions in the hypothalamus in parabiotic rats.</a> J. Physiol. 145 (2), 336-352 (1959).</li>
<li>Goldman, D. C., Bailey, A. S., Pfaffle, D. L., Al Masri, A., Christian, J. L., Fleming, W. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((BMP4+regulates+the+hematopoietic+stem+cell+niche%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">BMP4 regulates the hematopoietic stem cell niche.</a> Blood. 114 (20), 4393-4401 (2009).</li>
<li>Dieterlen-Lièvre, F., Martin, C., Beaupain, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quail-chick+chimaeras+and+parabionts%3A+several+new+models+to+investigate+early+developmental+events+in+the+haemopoietic+system%5BTitle%5D)+AND+%22Folia+Biol+%28Praha%29%22%5BJournal%5D)">Quail-chick chimaeras and parabionts: several new models to investigate early developmental events in the haemopoietic system.</a> Folia Biol (Praha). 25 (5), 293-295 (1979).</li>
<li>Demy, D. L., Ranta, Z., Giorgi, J. M., Gonzalez, M., Herbomel, P., Kissa, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generating+parabiotic+zebrafish+embryos+for+cell+migration+and+homing+studies%29%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Methods%22%5BJournal%5D)">Generating parabiotic zebrafish embryos for cell migration and homing studies).</a> Nat. Methods. 10 (3), 256-258 (2013).</li>
<li>Anderson, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hematopoietic+stem+cells+develop+the+absence+of+endothelial+cadherin+5+expression%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Hematopoietic stem cells develop the absence of endothelial cadherin 5 expression.</a> Blood. 126 (26), 2811-2820 (2015).</li>
<li>Murayama, E., Sarris, M., Redd, M., Le Guyader, D., Vivier, C., Horsley, W., Trede, N., Herbomel, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NACA+deficiency+reveals+the+crucial+role+of+somite-derived+stromal+cells+in+haematopoietic+niche+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">NACA deficiency reveals the crucial role of somite-derived stromal cells in haematopoietic niche formation.</a> Nat Commun. 28 (6), 8375(2015).</li>
<li>Shah, D. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitochondrial+Atpif1+regulates+haem+synthesis+in+developing+erythroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Mitochondrial Atpif1 regulates haem synthesis in developing erythroblasts.</a> Nature. 491 (7425), 608-612 (2012).</li>
<li>Tamplin, O. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hematopoietic+stem+cell+arrival+triggers+dynamic+remodeling+of+the+perivascular+niche%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Hematopoietic stem cell arrival triggers dynamic remodeling of the perivascular niche.</a> Cell. 160 (1-2), 241-252 (2015).</li>
<li>Adám, A., Bártfai, R., Lele, Z., Krone, P. H., Orbán, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heat-inducible+expression+of+a+reporter+gene+detected+by+transient+assay+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Cell+Res%22%5BJournal%5D)">Heat-inducible expression of a reporter gene detected by transient assay in zebrafish.</a> Exp. Cell Res. 256 (1), 282-290 (2000).</li>
</ol>

De auteurs verklaren dat ze geen belangenconflict hebben.

Parabiotic fusie is een krachtig hulpmiddel om cellulaire functies van kandidaatgenen onderzoeken bij volwassen muizen modellen en kippenembryo&#39;s 10-14 geweest. Meer recent heeft een blastula fusiemethode beschreven voor het genereren van samengevoegde zebravisembryo&#39;s 15. In het huidige protocol, zijn video-based tutorials gebruikt om aan te tonen en een betere beschrijving van de methode voor het maken van parabiotic zebravis embryo&#39;s van verschillende genetische achtergronden om tijd...

Oprichting van genetische mozaïeken (chimaera&#39;s) tussen wild-type en genetisch gemodificeerde dieren is een gevestigde en klassieke strategie voor het onderzoeken van cel-intrinsieke versus cell-extrinsieke functies van kandidaatgenen 1-6. Blastula transplantatie in zebravis is op grote schaal gebruikt om chimeer embryo voor studies van cel-autonome 7-9 genereren. Afhankelijk van het weefsel van belang, maar het kan lastig zijn om voorspelbaar richten donorcellen het gewenste weefsel (bijvoorbeeld bloed) 1-3, 7-9. Muis genetici hebben lang gebruikt parabiotic chirurgische methoden om samengevoegde organismen te genereren met een gezamenlijke oplage 10-14. Omdat de dieren parabiotic een gemeenschappelijke bloedbaan kunnen interacties tussen cellen die afkomstig zijn van een dier met cellen van de andere dieren van een andere genetische achtergrond te bestuderen 10-16. Onlangs, Karima Kissa de groep elegant aangetoond dat het vermogen om te createn Siamese zebravis embryo&#39;s en gebruik van dit systeem om hematopoietische stamcellen en voorlopercellen cel (HSPC) migratie 15 te bestuderen. Bovendien werd zebravis parabiosis onlangs gebruikt om de rol van endotheliale cadherine 5 in hematopoietische stamcellen (HSC) ontstaan ​​en migratie, 16 onderzoeken en om de rol van stromale cellen in de HSPC niche bestuderen bij zebravis ontwikkeling 17. In tegenstelling tot muizen, zebravis embryo&#39;s transparant zijn en de directe visualisatie van cellen tijdens parabiotic ontwikkeling, waardoor het systeem uniek krachtig. Het nut van parabiosis in de zebravis is echter beperkt door een steile leercurve, en parabiotic een operatie aan de delicate embryo&#39;s kunnen technisch uitdagende zonder gedetailleerde instructies en visuele demonstratie. Het doel van dit protocol is om een ​​set van duidelijke, stap-voor-stap instructies voor het video-based tutorials over hoe je parabiotic zebravis embryo&#39;s voor het bestuderen van het genereren moet begeleidentemporale, cel-intrinsieke of extrinsieke cel-functies van een kandidaat-gen (en) van chirurgische fusie ontwikkelen blastulae. Belangrijkste wijzigingen en aanvullende aanbevelingen voor het verhogen van parabiont overleven en nieuwe experimentele toepassingen zijn inbegrepen.

<table><tbody><tr><td>Methyl cellulose</td><td>Sigma</td><td>M0387</td><td></td></tr><tr><td>Individuele componenten voor E3/HCR:</td><td></td><td>Voor 1L: 14,61g NaCl, 0,63g KCl, 2,43g CaCl2-2H2O, 1,99g MgSO4</td><td></td></tr><tr><td>NaCl (Natriumchloride)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S9888</td><td></td></tr><tr><td>KCl (Kaliumchloride)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P9541</td><td></td></tr><tr><td>CaCl2 (Calciumchloride dihydraat)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>223506</td><td></td></tr><tr><td>MgSO4 (Magnesiumsulfaat heptahydraat)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>230391</td><td></td></tr><tr><td>Hepes (1M ) bufferoplossing</td><td>ThermoFisher</td><td>15630-080</td><td></td></tr><tr><td>Naam</td><td>Bedrijf</td><td>Catalogusnummer</td><td></td></tr><tr><td>Antibiotica:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pen/Strep</td><td>gibco by Life technologies</td><td>15140-120</td><td></td></tr><tr><td>Ampicilline natriumzout</td><td>Sigma Life Science</td><td>A0166</td><td></td></tr><tr><td>Kanamycine sulfaat uit Streptomyces kanamyceticus</td><td>Sigma Life Science</td><td>K1377</td><td></td></tr><tr><td>Naam</td><td>Bedrijf</td><td>Catalogusnummer</td><td></td></tr><tr><td>50 mg/ml Pronase uit Streptomyces griseus</td><td>Roche</td><td>11459643001</td><td></td></tr><tr><td>Capillaire glazen gebruikt voor naalden (Capillary Glass &amp; Filaments)</td><td>Sutter Instrument</td><td>ITEM#: BF 100-50-10</td><td></td></tr><tr><td>Priknaalden met houten handvatten</td><td>Fisher Scientific</td><td>S07894</td><td></td></tr><tr><td>Glazen Pasteur-pipetten</td><td>Fisherbrand</td><td>13-678-20A</td><td></td></tr><tr><td>10 ml pipetpompen (groen) (Pipette Pump Pipettor)</td><td>Novatech International</td><td>F37898-0000</td><td></td></tr><tr><td>Kunststof petrischalen met een diameter van 100 mm / 20 mm diep (PETRI DISH, 100/20 MM, PS, CLEAR, MET VENTILATIE, ZWAAR ONTWERP, 15 STUKS/ZAK )</td><td>Greiner Bio-one</td><td>664102</td><td></td></tr><tr><td>Dextran, Cascade Blue, 10.000 MW, anionisch, lysine fixeerbaar</td><td>ThermoFisher</td><td>D-1976</td><td></td></tr><tr><td>PTU. werkconcentratie is 0,003% (50x is 0,15%). voor 500 ml, 0,75 g N-fenylthioureum</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P7629</td><td></td></tr><tr><td>Tricaine (poeder) (Tricaine methaansulfonaat, Tricaine-S)</td><td>Western Chemical Inc</td><td>MS 222</td><td></td></tr><tr><td>LMP-agarose (Ultrapure LMP-agarose)</td><td>Invitrogen</td><td>16520100</td><td></td></tr><tr><td>Kunststof transferpipet (alleen de brede uiteinde vind ik)</td><td>Fisherbrand</td><td>137115AM</td><td></td></tr><tr><td>Glazen bodem 6-well platen gebruikt voor beeldvorming</td><td>MatTek</td><td>P06G1.5-20-F</td><td></td></tr><tr><td>Kunststof western gel laadtip vastgemaakt aan het uiteinde van een dissectienaald met houten handvat (GELoader tips)</td><td>Eppendorf</td><td>22351656</td><td></td></tr><tr><td>glasdeksels, dia's en vacuümvet als montage voor een rechtopstaande microscoop:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vacuümvet ( Dow Corning&reg; hoog vacuüm siliconenvet kleurloos, gewicht 5,3 oz (buis) )</td><td>Dow Corning</td><td>Z273554</td><td></td></tr><tr><td>Glaasdeksels</td><td>Corning Life Sciences</td><td>2960-244</td><td></td></tr></tbody></table>

generatie parabiotic zebravis embryo&#39;s door surgical fusion of developing blastulae

Generation of Parabiotic Zebrafish Embryos by Surgical Fusion of Developing Blastulae

Chirurgische parabiosis van twee dieren van verschillende genetische achtergronden creëert een unieke scenario naar cel-intrinsieke versus cell-extrinsieke rollen voor kandidaat-genen van belang, migrerende gedrag van cellen en uitgescheiden signalen in verschillende genetische instellingen te bestuderen. Omdat parabiotic dieren een gemeenschappelijke circulatie, zal geen bloed of bloed overdraagbare factor van het ene dier worden uitgewisseld met zijn partner en vice versa. Aldus kunnen cellen en moleculaire factoren afgeleid van één genetische achtergrond worden onderzocht in de context van een tweede genetische achtergrond. Parabiosis van volwassen muizen wordt veelvuldig gebruikt voor onderzoek veroudering, kanker, diabetes, obesitas, en hersenontwikkeling. Meer recent is parabiosis zebravis embryo gebruikt om de ontwikkelingsbiologie van hematopoiese bestuderen. In tegenstelling tot muizen, de transparantie van zebravisembryo&#39;s maakt de directe visualisatie van cellen in de context parabiotic, waardoor het een uniek krachtige methode voor het onderzoeken fundamental cellulaire en moleculaire mechanismen. De bruikbaarheid van deze techniek wordt echter beperkt door een steile leercurve voor het genereren van de parabiotic zebravisembryo&#39;s. Dit protocol wordt stap voor stap methode voor het operatief smelten de blastulae twee zebravis embryo&#39;s van verschillende genetische achtergronden van de rol van kandidaatgenen plaats onderzoeken. Bovendien, de parabiotic zebravis embryo tolerant hitteschok, waardoor temporele regulatie van genexpressie mogelijk. Deze methode vereist geen geavanceerde set-up en heeft brede toepassingen voor het bestuderen van celmigratie, het lot specificatie, en differentiatie in vivo tijdens de embryonale ontwikkeling.

Consistent met eerder gepubliceerde studies 15, parabiotic succesvolle fusie van zebravisembryo&#39;s afhankelijk van de staging en oriëntatie van de twee embryo en de concentratie van methylcellulose. Met slechts een paar eenvoudige, goedkope instrumenten, chirurgisch gefuseerd ontwikkelen blastulae werden gegenereerd die uitgroeide tot parabiotic embryo&#39;s met gedeelde omloop. Deze instrumenten omvatten een gemodificeerd Pasteur pipet, een 10 ml pipet pomp en hout behande...

Dit protocol geeft stap-voor-stap instructies over hoe je parabiotische zebravis-embryo's van verschillende genetische achtergronden kunt genereren. In combinatie met de ongeëvenaarde beeldvormingscapaciteiten van het zebravis-embryo biedt deze methode een uniek krachtig middel om cel-autonome versus niet-cel-autonome functies voor kandidaat-genen van belang te onderzoeken.

Generatie Parabiotic zebravis embryo&#39;s door Surgical Fusion of Developing Blastulae

Surgical parabiosis of two animals of different genetic backgrounds creates a unique scenario to study cell-intrinsic versus cell-extrinsic roles for ...

Het algemene doel van deze methode is het genereren van parabiotische zebravissenembryo's, die kunnen worden gebruikt om cel-intrinsieke versus cel-extrinsieke functies van kandidaatgenen van belang te bestuderen. Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van kernvragen over celautonomie. Zo kan in het hematopoëtische systeem worden bepaald of essentiële defecten in de migratie van HSC's intrinsiek zijn aan de HSC's of aan de niche-micro-omgeving.Het belangrijkste voordeel van dit protocol is een verbeterde mogelijkheid om succesvol parabiotische zebravissenembryo's te genereren. Over het algemeen zullen personen die nieuw zijn met deze methode moeite hebben, omdat de ontwikkelende embryo's uiterst fragiel zijn en gemakkelijk beschadigd raken. Een visuele demonstratie van deze methode is cruciaal, aangezien de chirurgische hechtstappen moeilijk aan te leren kunnen zijn omdat ze een hoge mate van nauwkeurigheid en precisie vereisen.Hier bieden we stapsgewijze instructies om parabiotische zebravisembryo's te genereren door chirurgische fusie van ontwikkelende blastulae. Deze methode demonstreert hoe de efficiëntie van parabiotische fusies kan worden verhoogd en het overlevingspercentage van samengevoegde embryo's kan worden verbeterd. Nadat de reagentia en instrumenten volgens het tekstprotocol zijn voorbereid, bereid je twee tot drie gemodificeerde Pasteur-pipetten voor door het uiteinde van de pipet kort te verhitten boven een Bunsenbrander.Buig vervolgens, terwijl de pipet nog heet is, het uiteinde met een grote pincet ongeveer 45 graden. Houd het uiteinde van de pipet één tot twee seconden boven een Bunsenbrander om er zeker van te zijn dat er geen scherpe randen zijn die de embryo's kunnen beschadigen. Micro-injecteer de embryo's binnen één uur na verzameling met plasma DNA, mRNA of morpholino, en laat ze uitgroeien tot het 256-cellige stadium.Zodra de embryo's het 256-celstadium naderen, brengt u elk genetische achtergrond over naar afzonderlijke met agarose gecoate schaaltjes, krasvrije glazen bekerglazen of petrischalen. Nadat de embryo's volgens het tekstprotocol zijn gedechorioneerd, ontdooit u vooraf bereide methylcellulose en gebruikt u een tafelcentrifuge op maximale snelheid om onopgeloste kristallen te pelletteren, aangezien deze de embryo's kunnen beschadigen of de dooiers kunnen doen scheuren. Markeer ondertussen met een stift 12 tot 15 vooraf bepaalde posities op de bodem van een met agarose gecoate petrischaal van 100 milliliter.Breng vervolgens, na centrifugatie, met behulp van de heldere bovenste fractie van de methylcellulose druppels van 1,5 centimeter over naar de gemarkeerde plekken in de petrischaal. Bereid daarna per zojuist geprepareerde agarose-gecoate schaal één aliquot van 40 milliliter hoog-calcium Ringer, oftewel HCR-oplossing. Voeg aan elke aliquot antibiotica toe zoals hier vermeld.Wanneer u klaar bent om blastulafusies uit te voeren, gebruikt u de aliquots van HCR met antibiotica om voorzichtig elke schaal met methylcellulose-druppels te vullen, waarbij u er op let de druppels niet te verstoren. Bevestig een eerder voorbereide gemodificeerde glazen Pasteurpipet aan een pipetpomp van 10 milliliter. Verzamel vervolgens, onder een stereoscoop, één gedechoreoneerd embryo van elke genetische achtergrond.Voordat de twee embryo's worden overgebracht, gebruikt u de Pasteur-pipet om een kleine inkeping in het midden van de methylcellulose-druppel te maken. Plaats vervolgens de twee embryo's in de inkeping. Gebruik nu een dissectienaald met een gel-laadpunt aan het uiteinde en maak voorzichtig vegende bewegingen, zonder de embryo's direct aan te raken, om de embryo's binnen de methylcellulose zorgvuldig te repositioneren, zodat hun animalpolen elkaar direct raken.Het correct oriënteren van de ontwikkelende embryo's bepaalt hoe de embryo's zullen fuseren en zich zullen ontwikkelen. Zorg er bij kop-aan-kopfusies voor dat elke fusie is uitgelijnd bij hun animale polen. Laat de embryo's vijf minuten rusten zodat de methylcellulose zich rondom hen kan stabiliseren.Laad tijdens deze tijd het volgende paar in een andere druppel. Om de operatie uit te voeren, dient u met het glazen naaldinstrument elke embryo voorzichtig te verwonden op het contactpunt. Trek vervolgens met een zachte naaiende beweging de cellen van het eerste embryo in het tweede embryo en weer terug.Houd aan het einde van de beweging de naald twee tot drie seconden op zijn plaats voordat u deze zeer langzaam terugtrekt. Precisie met de glazen naald is cruciaal om ervoor te zorgen dat de embryo's correct aan elkaar worden gehecht. Er moet voorzichtig worden gewerkt om beschadiging van de dooierzakken te voorkomen, terwijl voldoende verbinding behouden blijft voor een succesvolle fusie.Laat de embryo's 10 tot 15 minuten rusten bij kamertemperatuur. Hecht in de tussentijd extra paren embryo's. Beoordeel na de incubatie of de embryo's bevestigd zijn gebleven en herhaal indien nodig de stap met het toebrengen van de wond.Incubeer de embryo's in dezelfde schaal en hetzelfde medium bij 28,5 °C gedurende de nacht. De volgende ochtend zullen de embryo's zich buiten de grotendeels opgeloste methylcellulose hebben bewogen. Verwijder alle embryo's die niet succesvol zijn gefuseerd.Giet vervolgens het medium af en vervang dit door 25 milliliters E3. Om beelden van de gefuseerde embryo's te verkrijgen, wordt 0,8% agarose met een laag smeltpunt voorbereid. Verdeel, terwijl de agarose nog warm is, 1 milliliter van de agarose over 1,5 milliliter microcentrifugebuisjes die in een verwarmingsblok van 37 °C zijn geplaatst.Anestheseer de parabiotische embryo's door één milliliter tricaine (4 mg/mL, pH 7,0) toe te voegen aan de 25 milliliter E3-medium waarin de embryo's zich bevinden. Draai de schaal voorzichtig rond zodat de embryo's zich in het midden verzamelen. Zuig vervolgens, met behulp van een plastic transferpipet met een brede tip, de embryo's op met zo min mogelijk vloeistof.Zet de pipet vervolgens rechtop en tik voorzichtig tegen de pipet zodat de embryo's naar de bodem zakken. Breng de embryo's daarna over naar een aliquot van 1 milliliter laagsmeltende agarose door de tip van de pipet lichtjes op het oppervlak van de agarose te plaatsen. Verwijder eventueel overtollige vloeistof uit de pipet en gebruik de pipet om de embryo's voorzichtig in de agarose te mengen.Breng vervolgens met de pipet de agarose en de embryo's over naar de put van een glazen bodem zes-wells plaat. Gebruik onder een stereomicroscoop een gel-laadpunt dat aan het uiteinde van een dissectie-naald is bevestigd om de embryo's dicht bij het dekglas en in de gewenste oriëntatie voor beeldvorming te positioneren. Nadat de agarose is gestold en medium met tricaine aan de putten is toegevoegd, wordt een omgekeerde widefield epifluorescence laser scanning confocale of spinning disk confocale microscoop gebruikt om beelden te verkrijgen.Gebruik een 4X objectief voor een gezichtsveld van het gehele embryo. Gebruik een 20X objectief om een specifiek weefsel af te beelden. Verwerk de beelden volgens het tekstprotocol.Zoals hier wordt getoond, werden de embryo's na het oriënteren van twee blastulae met hun animale polen naar elkaar toe, voorzichtig gewond op het contactpunt. Een grotere mate van verwonding verhoogde de waarschijnlijkheid dat de embryo's een verbinding behielden die resulteerde in een succesvolle fusie zonder aanvullende morfologische defecten of vertraagde ontwikkeling. Zoals in deze figuur wordt gedemonstreerd, werden door het oriënteren van de twee blastulae met hun animale polen direct uitgelijnd, betrouwbare kop-aan-kop of dooierzak-aan-dooierzak fusies gegenereerd met een gedeelde circulatie.In de meeste gevallen hadden de embryo's twee harten die een gemeenschappelijke circulatie aanstuurden. Om te bevestigen dat de embryo's inderdaad hun circulatie deelden, werden gefuseerde transgene embryo's met GFP-positieve erytrocyten gefuseerd met embryo's met mCherry-positieve vasculaire endotheelcellen. Zoals in deze film te zien is, werd er 48 uur na bevruchting waargenomen dat GFP-positieve erytrocyten circuleerden door het Flik 1 HRAS mCherry partnerembryo.Ten slotte, om de temporele controle van genexpressie te onderzoeken, werd een van de twee embryo's geïnjecteerd met een hsp70 EGFP DNA-construct. Na een korte hitteshock van 30 minuten bij 37 °C werd er een duidelijk GFP-signaal vastgesteld in een van de embryo's, en in sommige gevallen werden GFP-positieve cellen waargenomen die circuleerden in het niet-geïnjecteerde partnerembryo. Zodra deze techniek onder de knie is, kan deze in vijf uur worden uitgevoerd indien deze correct wordt uitgevoerd.Tijdens het uitvoeren van deze procedure is het belangrijk om voorzichtig te zijn bij het hechten van de twee blastulae, en om fusers opnieuw te benaderen als de chirurgische ingreep bij de eerste poging niet succesvol was. Na deze procedure kunnen aanvullende methoden, zoals live-cell imaging, worden gebruikt om verdere vragen te beantwoorden, zoals of wild-type HSC's normaal kunnen functioneren in een mutante niche of omgekeerd, of mutante HSC's kunnen functioneren in een wild-type niche. Deze techniek biedt een krachtige methode voor onderzoekers in het veld van de hematologie om de regulatie van de bloedontwikkeling bij zebravissen te bestuderen.Vergeet niet dat tricaine gevaarlijk kan zijn en dat er altijd voorzorgsmaatregelen moeten worden genomen, zoals het dragen van passende veiligheidskleding, tijdens het uitvoeren van deze procedure. Na het bekijken van deze video en het volgen van onze aanbevolen technieken, hopen we dat u met meer succes betere biotische zebravissenembryo's zult kunnen genereren.

generation-parabiotic-zebrafish-embryos-surgical-fusion-developing

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Ontwikkelingsbiologie

Een stap-voor-stap handleiding voor gerichte chimerisch zebravis embryo's genereren door transplantatie op de blastula of gastrulastadium.

Het genereren van Chimère zebravis embryo&#39;s door transplantatie

Zebravis celtransplantatie maakt de combinatie van genetica en embryologie aan het weefsel specifieke hersenschimmen te genereren. Deze video toont gastrula geënsceneerde cel transplantaties die hebben onze lab naar de rol van astroglial bevolking en de specifieke begeleiding signalen tijdens commissuur vorming in de voorhersenen te onderzoeken.

Tissue Gerichte Embryonale Chimera: Zebravis gastrula Cell Transplantation

Demonstreren we een protocol om chimere zebravis embryo's te genereren voor live-imaging cellulaire gedrag tijdens de embryogenese.

Transplantatie van GFP-expressie blastomeren voor Live Beeldvorming van het netvlies en de ontwikkeling van de hersenen in chimère zebravis embryo&#39;s

Deze video beschrijft stap voor stap instructies voor het monteren van levende zebravisembryo's op 6 putplaat met behulp van laag smeltagarose. Het biedt ook het proces om beelden van levende embryo's te verkrijgen en deze te analyseren met behulp van software.

Agar-montage: een basismethode voor het monteren van levende zebravisembryo's voor langdurige beeldvorming

De zebravis is een krachtig modelsysteem voor ontwikkelingsbiologie en onderzoek naar menselijke ziekten vanwege hun genetische overeenkomsten met hogere gewervelde dieren. Dit protocol beschrijft een methodologie om haploïde zebravis-embryo's te creëren die kunnen worden gebruikt voor forward screen-strategieën om recessieve mutaties in genen die essentieel zijn voor vroege embryogenese te identificeren.

Productie van Haploid zebravis embryo&#39;s door<em&gt; In Vitro</em&gt; Bemesting

De zebravis is een uitstekend modelsysteem voor genetische en ontwikkelingsstudies. Het implanteren van kralen is een waardevolle techniek voor weefselmanipulatie die kan worden gebruikt om ontwikkelingsmechanismen te onderzoeken door veranderingen in lokale cellulaire omgevingen te introduceren. Dit protocol beschrijft hoe microkralenimplantatie in de zebravis-embryo moet worden uitgevoerd.

Microkraal Implantatie in de zebravis embryo

Embryologische manipulaties zoals uitroeiing en transplantatie van cellen zijn belangrijke hulpmiddelen om vroege ontwikkeling te bestuderen. Dit protocol beschrijft een eenvoudig en effectief transplantatieapparaat om deze manipulaties uit te voeren in zebravisembryo's.

Een eenvoudig en effectief transplantatieapparaat voor zebravisembryo's

Zebravis blastoderm explantaten worden gegenereerd door embryonale cellen te isoleren van endogene signaleringscentra in het vroege embryo, waardoor relatief naïeve celclusters worden geproduceerd die gemakkelijk ex vivokunnen worden gemanipuleerd en gekweekt. Dit artikel geeft instructies voor het maken van dergelijke explants en toont hun nut aan door rollen te onderzoeken voor nodale signalering tijdens gastrulatie.

Generatie van naïeve Blastoderm Explants uit Zebravis Embryo's

Dit werk beschrijft een protocol voor het modulaire Tol2-transgenesesysteem, een gateway-gebaseerde kloonmethode om transgene constructies in zebravisembryo's te creëren en te injecteren.

Het Zebrafish Tol2-systeem: een modulaire en flexibele gateway-gebaseerde transgenesebenadering

Hier presenteren we een protocol voor het transplanteren van cellen met een hoge ruimtelijke en temporele resolutie in zebravisembryo's en -larven in elk stadium tussen ten minste 1 en 7 dagen na de bevruchting.

Celtransplantatie met hoge resolutie bij embryonale en larvale zebravissen

Leer parabiotische zebravisembryo's genereren door chirurgische fusie van blastulae voor onderzoek naar celautonomie en genfunctie. Deze methode verbetert het succespercentage van embryo-overleving.

Generatie Parabiotic zebravis embryo's door Surgical Fusion of Developing Blastulae

Meer video's verkennen