28 augustus 2016
Dit protocol beschrijft een eenvoudige methode om transcripten uit plantweefsels te extraheren en te fractoneren op basis van het aantal gebonden ribosomen. Het maakt een globale schatting van de translatieactiviteit mogelijk en de bepaling van de translationele status van specifieke mRNA's.
Hoi, ik ben Cecile. Ik werk bij het LGBP in Marseille. Het protocol dat we in deze video gaan beschrijven, is een eenvoudige methode om polysomen en monosomen te isoleren uit diverse plantenweefsels, om zo mRNA's te identificeren die actief worden vertaald en om de regulatie van de translatie te bestuderen.
Als voorbeeld laten we u de isolatie van polysomen uit zes dagen oude Arabidopsis thaliana-zaailingen zien, de daaropvolgende isolatie van RNA en de analyse van de resultaten. Zaai de zaden op een plaat en laat deze twee dagen bij vier graden staan. Laat de planten vervolgens zes dagen groeien.
Oogst de zaailingen en maal deze in vloeibare stikstof. Weeg 300 milligram plantenpoeder af en voeg 2,4 milliliter polysoombuffer toe. Centrifugeer om plantfragmenten te verzamelen en breng het supernatant aan bovenop een sucrosegradiënt.
Ultracentrifugeer de gradiënt en verzamel deze vervolgens van onder naar boven met een continue meting van de OD. Verdeel de fracties in een polysoomfractie, een monosoomfractie en een supernatante fractie en precipiteer het RNA gedurende de nacht. Ultracentrifugeer, resuspendeer het pellet en extraheer het RNA voor verdere analyse. Bereid de sucrosegradiënt enkele dagen voordat de polysoomprofilering wordt uitgevoerd.
Bereid sucrose-oplossingen van 50%, 35% en 20% en bewaar deze bij vier graden. Giet de 50% sucrose-laag in. Vries deze vervolgens in in een vriezer van min 40.
Voeg na zes uur de 35%-laag toe en vries deze gedurende de nacht in een vriezer van -40 °C in. Giet de eerste 20%-laag en vries deze in. Haal op de dag van het experiment het benodigde aantal gradiënten uit de vriezer.
Voeg de laatste laag van 20% sucrose toe en laat de gradiënten ontdooien in een koelruimte. Bereid het monster voor van de vers geoogste plant. Hier maken we gebruik van zes dagen oude zaailingen van Arabidopsis thaliana.
Oogst de in vloeibare stikstof bevroren planten en maal deze grondig. Weeg 300 mg plantenpoeder af. Voeg snel 2,4 ml verse polysoombuffer toe en homogeniseer.
Pipetteer de oplossing in twee buisjes van 1,5 milliliter. Centrifugeer het cytosolisch extract. Pipetteer het supernatant.
Zorg ervoor dat er geen plantfragmenten achterblijven. Deze zouden het profiel in de volgende stap kunnen verstoren. Breng het supernatant op de sucrosegradiënt aan zonder de gradiënt te verstoren.
Plaats de gradiënt in een SW 41 rotorbucket. Centrifugeer. Om het polysoomprofiel te visualiseren en de fractie te verzamelen, gebruiken we een eenvoudig systeem bestaande uit een capillaire buis die in de gradiënt wordt gestoken. Deze is verbonden met een UV-cuvet.
Het is zelfverbonden met een peristaltische pomp. Een UV-spectrofotometer registreert continu de OD terwijl de gradiënt door de cuvette stroomt. De fractiecollector maakt het mogelijk om fracties van twee milliliter op te vangen.
Reinig de cuvette en plaats deze in de spectrofotometer. Verwijder de gradiënt uit het bakje zonder deze te verstoren. Chlorofyllen moeten geconcentreerd zijn aan de bovenkant van de gradiënt.
Steek de capillaire buisjes tot op de bodem van de gradiënt. Start de peristaltische pomp. De gradiënt wordt van onder naar boven opgevangen en de OD wordt continu uitgelezen.
Fracties van twee milliliter worden opgevangen. Hier is de vorm van een klassiek profiel. De RNA-precipitatie wordt uitgevoerd met behulp van guanidiniumhydrochloride en isopropanol.
Giet eerst één volume guanidiniumhydrochloride in een buis van 50 milliliter en voeg vervolgens de fractie toe. Voeg daarna 1,5 volume isopropanol en 50 microgram courier toe. Precipiteer het RNA gedurende de nacht bij -20 °C.
Breng de fracties over in ultracentrifugebuizen van 40 milliliter en balanceer de buis met isopropanol. Centrifugeer. Verwijder het supernatant en laat het pellet aan de lucht drogen. Resuspendeer het pellet in 200 microliters warme TE-buffer.
Extraheer het RNA verder door een klassieke fenol-chloroformextractie uit te voeren. Hier wordt een representatief profiel getoond van polysomextracten van zes dagen oude Arabidopsis-zaailingen. De hoofdpiek komt overeen met het monosoom, het mRNA dat geassocieerd is met een enkel ribosoom.
Het eerste deel van het profiel komt overeen met de polysomale fracties, namelijk het mRNA dat geassocieerd is met veel ribosomen. Elke piek komt overeen met de associatie van een nieuw ribosoom met het mRNA. Het laatste deel van het profiel komt overeen met de zogenaamde supernatantfractie, die de vrije ribosomale subunits en RNA bevat.
Een grote hoeveelheid 60S-subunits vormt een schouder naast de monosoompiek. Om hun integriteit te beoordelen, kunnen de uit de fracties geëxtraheerde RNA's op een klassieke agarosegel worden geladen voordat ze worden gebruikt voor verdere experimenten. Wij hebben dit protocol gebruikt om polysomen te isoleren uit Arabidopsis thaliana-zaailingen, maar ook uit jonge en oude rozetten, alsook uit bladeren van Nicotiana benthamiana, tomaat en rijst, waardoor het effectief zou moeten zijn voor een breed scala aan planten en weefsels.
De gezuiverde RNA's zijn geschikt voor microarray-analyse alsmede voor de identificatie van kleine RNA's geassocieerd met polysomale fracties.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit protocol beschrijft een eenvoudige methode om polysomen en monosomen te isoleren uit plantenweefsels, wat de identificatie van actief vertaalde mRNA's en de studie van translatie-regulatie mogelijk maakt. Het gegeven voorbeeld richt zich op de isolatie van polysomen uit zes dagen oude Arabidopsis thaliana-kiemplanten.
Polysoomprofilering biedt een direct overzicht van de translationele activiteit, wat mechanische risicoreductie van doelwit-hypothesen mogelijk maakt bij biofarmaceutische ontdekkingen op basis van planten. Door actief vertaalde mRNA-pools te onderscheiden, ondersteunt deze methode doelwitvalidatie en fenotypische screening in landbouwkundig relevante systemen. Deze benadering verhoogt het voorspellend vertrouwen bij het prioriteren van leads voor gewasverbetering of toepassingen in molecular farming.
De methode past binnen vroege discovery-workflows, waarbij zij hypothesetoetsing ondersteunt voorafgaand aan lead-identificatie en translationele continuïteit mogelijk maakt naar preklinische evaluatie in systemen op plantbasis.