Name: Isolatie van Cognate RNA-eiwitcomplexen van cellen met behulp van oligonucleotide-gerichte Elution (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-01-16T12:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 53 s
Description: Leer RNA-immunoprecipitatie voor post-transcriptionele controle van retrovirale transcripten met oligonucleotide-gerichte elutie. Deze methode identificeert DHX9/RNA-helicase A in eiwitcomplexen en biedt inzicht in virale infectiemechanismen.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

De auteurs dankbaar steun van NIH P50GM103297, P30CA100730 en Comprehensive Cancer P01CA16058 erkennen.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td> buffer Samenstellingen </td></tr><tr><td> Wash Buffer: </td></tr><tr><td> 50 mM Tris-HCl, pH 7,4 </td></tr><tr><td> 150 mM NaCl </td></tr><tr><td> 3 mM MgCl2 </td></tr><tr><td> Buffer met laag zoutgehalte: </td></tr><tr><td> 20 mM Tris-HCl, pH 7,5 </td></tr><tr><td> 10 mM NaCl </td></tr><tr><td> 3 mM MgCl2 </td></tr><tr><td> 2 mM DTT </td></tr><tr><td> 1x proteaseremmer cocktail EDTA-vrij </td></tr><tr><td> RNase out 5 pl / ml (RNase-remmer) </td></tr><tr><td> Cytoplasma Lysis Buffer: </td></tr><tr><td> 0,2 M sucrose </td></tr><tr><td> 1,2% Triton X-100 </td></tr><tr><td> NETN-150 Wash Buffer: </td></tr><tr><td> 20 mM Tris-HCl, pH 7,4 </td></tr><tr><td> 150 mMNaCl </td></tr><tr><td> 0,5% NP-40 </td></tr><tr><td> 3 mM MgCl2 </td></tr><tr><td> 10% Glycerol </td></tr><tr><td> Binding Buffer: </td></tr><tr><td> 10 mM HEPES pH 7,6 </td></tr><tr><td> 40 mM KCl </td></tr><tr><td> 3 mM MgCl2 </td></tr><tr><td> 2 mM DTT </td></tr><tr><td> 5% glycerol </td></tr></tbody></table> Tabel 2: Buffer samenstellingen. 1. Bereiding van de cellen en de affiniteitsmatrix <ol><li> Cultuur een cellijn van belang sub- confluentie (80%) in een 10 cm schaal. Gebruik 10 cm platen voor onafhankelijke immunoprecipitaties (IP) van een FLAG-tag NLS-MS2 manteleiwit. Voer de IP met behulp van antisera aan het FLAG-epitooplabel. Als uiting van de FLAG-tag MS2 manteleiwit plasmide, transfecteren cellen 24-48 uur voorafgaand aan de oogst 20. LET OP: Een bijzondere RNP kan worden verrijkt uit kernenergie of cytoplasmaic lysaten of een biochemisch-gefractioneerde voorbereiding, zoals een fractie van een sucrosegradiënt. Aanbevolen wordt het lysaat van niet-getransfecteerde cellen te oogsten parallel een extra negatieve controle instellen. </li><li> Transfer 60 pi per IP-proteïne G magnetische kraal slurry naar een 1,7 ml microcentrifugebuis. </li><li> Plaats de buis op een magneet rek voor reactievaatjes de korrels te scheiden van de opslagoplossing. </li><li> Verwijder de storage oplossing door voorzichtig de opstelling ervan met een micropipet. </li><li> Haal de buis uit de magneet rack. </li><li> Wassen en equilibreren de bolletjes met 600 pi (10 maal het gebruikte volume van korrels) van 1 x wasbuffer (20 mM Tris-HCl, pH 7,4, 3 mM MgCl2 en 150 mM NaCl) en eind-over-eind rotatie van 3 min bij kamertemperatuur. </li><li> Plaats de buis op de magneet rek en verwijder de wasbuffer. </li><li> Voeg 10 volumes (600 pl) van 1 x wasbuffer en immunoprecipitatie FLAG antilichaam aan het evenwicht gebracht protein G magnetische korrels (volgens de door de fabrikant voor een immunoprecipitatie hoeveelheid) en roteren end-over-end bij kamertemperatuur gedurende ten minste 30 min aan de immunoprecipitatie antilichaam te conjugeren. Gebruik de overeenkomstige isotype IgG als geschikte antilichaam negatieve controle. </li><li> Plaats de buis op de magneet rek aan de parels te verzamelen en de supernatant te verwijderen. </li><li> Haal de buis uit de magneet rek en was de antilichaam-geconjugeerde kralen met 10 volumina (600 ui) van 1 x wasbuffer en rotatie gedurende 3 minuten bij kamertemperatuur. Herhaal deze stap twee keer. </li><li> Plaats de buis op de magneet rek en verwijder de wasbuffer. </li></ol> 2. Oogsten de RNP NB: Bereid de RNP&#39;s tijdens de incubatietijd na stap 1.8. <ol><li> Verwijderen cultuurmedium uit de cellen door aspiratie en was de cellen tweemaal met 1-5 ml ijskoude 1 x met fosfaat gebufferde zoutoplossing (PBS). Gebruik een cel schraper om nat te verjagen,hechtende cellen vóór de winning door centrifugeren bij 226 g gedurende 4 min bij 4 ° C. </li><li> Voeg 375 ul ijskoude, low-salt buffer (20 mM Tris-HCl, pH 7,5, 3 mM MgCl2, 10 mM NaCl, 2 mM DTT, 1 x protease-inhibitor cocktail, EDTA-vrij, en 5 ul / ml RNase Inhibitor) aan de celpellet en laat zwellen door het op ijs gedurende 5 minuten. OPMERKING: Pas de hoeveelheid zoutarme buffer volgens de grootte van de celpellet. Voor 1,2 x 10 6 cellen van een 10 cm plaat, 375 ul buffer voldoende. </li><li> Om de cytoplasmatische cellysaat verzamelen, voeg 125 ul ijskoude lysisbuffer (0,2 M sucrose / 1,2% Triton X-100), en voer vervolgens 10 slagen met een Dounce homogenisator dat was pre-gekoeld in een ijsemmer. OPMERKING: Om de totale cel extract verzamelen, wordt standaard RIPA lysisbuffer aanbevolen voor oplossen van de nucleoplasm / chromatine. </li><li> Spin in een microfuge op topsnelheid (16.000 x g) gedurende 1 minuut; dit zal de supernatant van puin een duidelijknd kernen. </li><li> Breng de supernatant naar een nieuwe 1,7 ml microcentrifuge buis die op ijs is. Bepaal de totale eiwitconcentratie door een standaard laboratorium voorkeursmethode, zoals de Bradford assay 23. Reserveren een hoeveelheid van ten minste 10% bij een Western blot analyse, worden gebruikt als input control. Gebruik de geoogste cellysaat onmiddellijk voor immunoprecipitatie of bewaard worden bij -80 ° C voor latere analyse. LET OP: In onze ervaring, kunnen deze monsters worden opgeslagen en enkele maanden later gebruikt voor immunoprecipitatie analyse, zonder een compromis van integriteit. </li></ol> 3. Immunoprecipitatie <ol><li> Voeg het gewenste volume van de geoogste cellysaat, gebaseerd op de eiwitconcentratie bepaald in stap 2,5, de beoogde antilichaam-geconjugeerde kralen. Gebruik 1x wasbuffer, komt het totale volume op 600 pl en draai end-over-end voor 90 min bij kamertemperatuur. LET OP: Deze periode is voldoende om te generereneen robuuste isolatie van hoge affiniteit RNP-complexen met minimale niet-specifieke binding. Verdun RNP alternatieve bronnen, zoals fracties van een sucrosegradiënt, ten minste 1: 1 met 1 x wasbuffer en vervolgens incubeer ze met eerder bereide bead-antilichaam complexen, zoals hierboven vermeld. </li><li> Na 90 min incubatie, plaatst het IP buis op de magneet rek om de kralen te verzamelen. Behouden het supernatant doorstroming. LET OP: Deze eerste flow-through is een belangrijke controle monster naar IP-efficiëntie te meten. Een immunoblot bepaling een indicatie van IP efficiëntie en de specificiteit van de onderzochte interacties. Het wordt aanbevolen om deze supernatant voor downstream-analyse te houden. </li><li> Was het RNP gebonden antilichaam-geconjugeerde kralen met 10 volumina (600 ui) ijskoude NETN-150 wasbuffer (20 mM Tris-HCl, pH 7,4, 150 mM NaCl, 3 mM MgCl2, 0,5% NP40, en 10% glycerol) onder rotatie gedurende 3 minuten bij kamertemperatuur. Herhaal stap 3 keer. LET OP: Deze buffer verschilt van de lysis buffer en vermindert effectief zwakke of niet-specifieke verenigingen. </li><li> Na de laatste maal wassen, resuspendeer de geïmmobiliseerde RNP-complexen in 60 ul ijskoude 1x bindingsbuffer (10 mM HEPES, pH 7,6, 40 mM KCl, 3 mM MgCl2, 5% glycerol en 2 mM DTT) en reserve 10% van het geïmmobiliseerde complex kralen voor Western blot en 20% voor RNA-isolatie. </li></ol> 4. Elutie <ol><li> Pas het resterende volume op 100 pi met ijskoude bindingsbuffer 1x en verwarm de buis bij 70 ° C gedurende 3 min. </li><li> Om cognate RNA-eiwitcomplexen isoleren voeg een ~ 30-nt DNA-oligonucleotide dat complementair is aan het 3&#39;-sequentie grens van het RNA van belang en incubeer gedurende 30 minuten bij kamertemperatuur onder zacht schommelen (100 nM oligonucleotide is voldoende). OPMERKING: De oligonucleotide antisense is met de nucleotide residuen naast de translatie start plaats van de PCE construct gebruikt als example in dit protocol. Geschikte sequentie complementariteit wordt gevormd door de ~ 40% GC-gehalte. Ontwerp de antisense oligonucleotide efficiënte hybridisatie aan de minimum complementaire gebied van het doel-RNA. </li><li> Voeg 5-10 eenheden RNase H aan de buis en incubeer bij kamertemperatuur gedurende 1 uur om het RNA van de RNA splitsen: DNA hybride. Breng het supernatant in een steriele 1,7 ml microcentrifugebuis; dit monster bevat de gevangen RNP complexen van belang. Opmerking: Afhankelijk van de toegankelijkheid van de verwante RNA, kunnen twee of meer ronden van RNase H behandeling nuttig zijn om het monster overvloed van de stroomafwaartse analyses toe. </li><li> Gebruik 20% van het eluaat in een Western blot voor bekende geassocieerde eiwitten en 20% van het eluaat voor RNA-isolatie gevolgd door RT qPCR. De resterende 60% kan worden gebruikt voor massaspectrometrie of eiwitcomponenten identificeren. </li><li> Tegelijkertijd patiënt van een hoeveelheid van de gereserveerde cellysaat RNA isolatie en RT-PCR analyse. dit assessment geeft een indicatie van de verrijking van RNA in een RNP complex. OPMERKING: Gebruik het geïsoleerde eiwitpreparaat in een controlegroep western blot om vast te stellen dat de RNase H splitsing was effectief in het vrijgeven van de RNP uit het immunuoprecipitated complex. </li></ol> 5. Eiwit Elektroforese en Western Blot Analyse <ol><li> Betreft ongeveer 10-20% van het totale monster aan SDS-PAGE en immunoblot analyse volgens standaard laboratoriumprotocol. LET OP: Deze stap dient om IP-efficiëntie en specificiteit voorafgaand valideren aan downstream RNA-analyse. Het kan ook worden gebruikt om de eiwitsamenstelling van het geïsoleerde RNP complex beoordelen. </li></ol> 6. Collectie van de immunogeprecipiteerd RNA OPMERKING: RNA-isolatie kan door Trizol methode of volgens de methode beschreven protocol. <ol><li> Resuspendeer de helft van het totale monster in 750 pl zuur guanidinium thiocyanaat reagens en incubeer bij kamertemperatuur temperature gedurende 5 minuten voor het extraheren van het RNA van de gevangen PCE-RNP-complexen. </li><li> Voeg 200 pl chloroform aan de buis, schud krachtig gedurende 10 seconden, en incuberen bij kamertemperatuur gedurende 3 min. </li><li> Na centrifugatie bij 16.000 xg gedurende 15 min bij 4 ° C, verzamel de waterfase opnieuw in buis en een gelijk volume isopropanol. Goed mengen en incuberen bij kamertemperatuur gedurende ten minste 10 min. Voeg 1 pl glycol blauw aan het monster en het op -20 ° C in de vriezer efficiënte precipitatie of verwerking op een later tijdstip. </li><li> Centrifugeer de buis bij 16.000 xg gedurende 10 min bij 4 ° C. Verzamel zorgvuldig Verwijder de bovenstaande vloeistof teneinde de RNA pellet niet verstoren; het gebruik van een p-200 micropipet tip wordt aanbevolen om dit proces te vergemakkelijken. </li><li> Voeg 500 pl 75% ethanol aan elke buis, vortex en gecentrifugeerd buizen bij 16.000 xg gedurende 5 minuten bij 4 ° C. Zorgvuldig te verzamelen en gooi het supernatant zoals in stap 6.4. Lucht-droog de pellet gedurende 2-3 min en resuspendeer in 100 gl RNase-vrij water. LET OP: Wees niet te verlengen de tijd dat de pellet lucht droogt om een ​​probleem met de resuspensie te voorkomen. </li><li> Breng 100 pl RNA monster een RNA clean-up kolom. Verwerken behulp protocol van de fabrikant. Elueer het RNA in 30 gl RNase-vrij water en bewaar bij -80 ° C maximaal 3 maanden. LET OP: Deze geïsoleerde RNA is geschikt voor downstream-analyse door middel van RT-real-time PCR (qPCR), microarray en RNA sequencing. Afhankelijk van de overvloed van de RNP en de efficiëntie waarmee de RNP van belang wordt geïsoleerd, kan hetzelfde lysaat worden onderworpen aan twee of meer ronden van IP voldoende RNA toepasbaar voor de stroomafwaartse analyses genereren. </li></ol> 7. RNA reverse transcriptie en amplificatie van cDNA door PCR <ol><li> Het aldus geïsoleerde RNA transcriptie keren door een willekeurige primer met een hoogwaardige reverse transcriptase (RT) volgens de manufacturer&#39;s instructies. </li><li> Om het RNA van belang te versterken, het ontwerpen van een gen-specifieke antisense primer binnen de RNase H splitsing volgorde. Met vergelijkbare hoeveelheden van de antisense oligonucleotide, een willekeurige primer of een oligo-dT primer (zie tabel Materials). OPMERKING: De oligo-dT primer en poly-geadenyleerde mRNA leveren positieve controle reacties voor de RT-PCR reacties. </li><li> Reserve 5% van de RT-reactie (1 ui) van een preparatieve qPCR gedaan in combinatie met negatieve controle lysaat IP en positieve controle-DNA monsters de cutoff definiëren en produceren een standaardcurve. Als de CT waarde van de preparatieve qPCR ligt buiten het gebied van de standaardkromme Verdun de RT-reactie in stappen 1: 5 verdunningen en herhaal stap 7,2. LET OP: Voor een RNA-sequencing en massaspectrometrie techniek, zie de aanvullende methode bestand. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54391/Supplementary_method_File_Jove.docx" target="_blank">Klik hier t</a>o bekijk deze aanvullende methode bestand. (Klik met de rechtermuisknop om te downloaden.) </li></ol>

<ol><li>Bandziulis, R. J., Swanson, M. S., Dreyfuss, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA-binding+proteins+as+developmental+regulators%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+Dev%22%5BJournal%5D)">RNA-binding proteins as developmental regulators.</a> Genes Dev. 3 (4), 431-437 (1989).</li>
<li>Hogan, D. J., Riordan, D. P., Gerber, A. P., Herschlag, D., Brown, P. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diverse+RNA-binding+proteins+interact+with+functionally+related+sets+of+RNAs%2C+suggesting+an+extensive+regulatory+system%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Biol%22%5BJournal%5D)">Diverse RNA-binding proteins interact with functionally related sets of RNAs, suggesting an extensive regulatory system.</a> PLoS Biol. 6 (10), e255(2008).</li>
<li>Glisovic, T., Bachorik, J. L., Yong, J., Dreyfuss, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA-binding+proteins+and+post-transcriptional+gene+regulation%5BTitle%5D)+AND+%22FEBS+Lett%22%5BJournal%5D)">RNA-binding proteins and post-transcriptional gene regulation.</a> FEBS Lett. 582 (14), 1977-1986 (2008).</li>
<li>Lunde, B. M., Moore, C., Varani, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA-binding+proteins%3A+modular+design+for+efficient+function%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.Rev.Mol.Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">RNA-binding proteins: modular design for efficient function.</a> Nat.Rev.Mol.Cell Biol. 8 (6), 479-490 (2007).</li>
<li>Cochrane, A. W., McNally, M. T., Mouland, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+retrovirus+RNA+trafficking+granule%3A+from+birth+to+maturity%5BTitle%5D)+AND+%22Retrovirology%22%5BJournal%5D)">The retrovirus RNA trafficking granule: from birth to maturity.</a> Retrovirology. 3, 18(2006).</li>
<li>Hartman, T. R., Qian, S., Bolinger, C., Fernandez, S., Schoenberg, D. R., Boris-Lawrie, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA+helicase+A+is+necessary+for+translation+of+selected+messenger+RNAs%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.Struct.Mol.Biol%22%5BJournal%5D)">RNA helicase A is necessary for translation of selected messenger RNAs.</a> Nat.Struct.Mol.Biol. 13 (6), 509-516 (2006).</li>
<li>Pullmann, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+turnover+and+translation+regulatory+RNA-binding+protein+expression+through+binding+to+cognate+mRNAs%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.Cell.Biol%22%5BJournal%5D)">Analysis of turnover and translation regulatory RNA-binding protein expression through binding to cognate mRNAs.</a> Mol.Cell.Biol. 27 (18), 6265-6278 (2007).</li>
<li>Keene, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA+regulons%3A+coordination+of+post-transcriptional+events%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.Rev.Genet%22%5BJournal%5D)">RNA regulons: coordination of post-transcriptional events.</a> Nat.Rev.Genet. 8 (7), 533-543 (2007).</li>
<li>Moore, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((From+birth+to+death%3A+the+complex+lives+of+eukaryotic+mRNAs%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">From birth to death: the complex lives of eukaryotic mRNAs.</a> Science. 309 (5740), 1514-1518 (2005).</li>
<li>Hassan, M. Q., Gordon, J. A., Lian, J. B., van Wijnen, A. J., Stein, J. L., Stein, G. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ribonucleoprotein+immunoprecipitation+%28RNP-IP%29%3A+a+direct+in+vivo+analysis+of+microRNA-targets%5BTitle%5D)+AND+%22J.Cell.Biochem%22%5BJournal%5D)">Ribonucleoprotein immunoprecipitation (RNP-IP): a direct in vivo analysis of microRNA-targets.</a> J.Cell.Biochem. 110 (4), 817-822 (2010).</li>
<li>Selth, L. A., Close, P., Svejstrup, J. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Studying+RNA-protein+interactions+in+vivo+by+RNA+immunoprecipitation%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.Biol%22%5BJournal%5D)">Studying RNA-protein interactions in vivo by RNA immunoprecipitation.</a> Methods Mol.Biol. 791, 253-264 (2011).</li>
<li>Singh, D., Boeras, I., Singh, G., Boris-Lawrie, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+Cognate+Cellular+and+Viral+Ribonucleoprotein+Complexes+of+HIV-1+RNA+Applicable+to+Proteomic+Discovery+and+Molecular+Investigations%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.Biol%22%5BJournal%5D)">Isolation of Cognate Cellular and Viral Ribonucleoprotein Complexes of HIV-1 RNA Applicable to Proteomic Discovery and Molecular Investigations.</a> Methods Mol.Biol. 1354, 133-146 (2016).</li>
<li>Stake, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((HIV-1+and+two+avian+retroviral+5%27+untranslated+regions+bind+orthologous+human+and+chicken+RNA+binding+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Virology%22%5BJournal%5D)">HIV-1 and two avian retroviral 5' untranslated regions bind orthologous human and chicken RNA binding proteins.</a> Virology. 486, 307-320 (2015).</li>
<li>Sung, F. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome-wide+expression+analysis+using+microarray+identified+complex+signaling+pathways+modulated+by+hypoxia+in+nasopharyngeal+carcinoma%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Lett%22%5BJournal%5D)">Genome-wide expression analysis using microarray identified complex signaling pathways modulated by hypoxia in nasopharyngeal carcinoma.</a> Cancer Lett. 253 (1), 74-88 (2007).</li>
<li>Wang, Z., Gerstein, M., Snyder, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA-Seq%3A+a+revolutionary+tool+for+transcriptomics%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.Rev.Genet%22%5BJournal%5D)">RNA-Seq: a revolutionary tool for transcriptomics.</a> Nat.Rev.Genet. 10 (1), 57-63 (2009).</li>
<li>Michlewski, G., Caceres, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNase-assisted+RNA+chromatography%5BTitle%5D)+AND+%22RNA%22%5BJournal%5D)">RNase-assisted RNA chromatography.</a> RNA. 16 (8), 1673-1678 (2010).</li>
<li>Tacheny, A., Dieu, M., Arnould, T., Renard, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mass+spectrometry-based+identification+of+proteins+interacting+with+nucleic+acids%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Proteomics%22%5BJournal%5D)">Mass spectrometry-based identification of proteins interacting with nucleic acids.</a> J. Proteomics. 94, 89-109 (2013).</li>
<li>Duan, R., Sharma, S., Xia, Q., Garber, K., Jin, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Towards+understanding+RNA-mediated+neurological+disorders%5BTitle%5D)+AND+%22J.Genet.Genomics%22%5BJournal%5D)">Towards understanding RNA-mediated neurological disorders.</a> J.Genet.Genomics. 41 (9), 473-484 (2014).</li>
<li>Butsch, M., Hull, S., Wang, Y., Roberts, T. M., Boris-Lawrie, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+5%27+RNA+terminus+of+spleen+necrosis+virus+contains+a+novel+posttranscriptional+control+element+that+facilitates+human+immunodeficiency+virus+Rev%2FRRE-independent+Gag+production%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol%22%5BJournal%5D)">The 5' RNA terminus of spleen necrosis virus contains a novel posttranscriptional control element that facilitates human immunodeficiency virus Rev/RRE-independent Gag production.</a> J. Virol. 73 (6), 4847-4855 (1999).</li>
<li>Bolinger, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA+helicase+A+interacts+with+divergent+lymphotropic+retroviruses+and+promotes+translation+of+human+T-cell+leukemia+virus+type+1%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">RNA helicase A interacts with divergent lymphotropic retroviruses and promotes translation of human T-cell leukemia virus type 1.</a> Nucleic Acids Res. 35 (8), 2629-2642 (2007).</li>
<li>Bolinger, C., Sharma, A., Singh, D., Yu, L., Boris-Lawrie, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA+helicase+A+modulates+translation+of+HIV-1+and+infectivity+of+progeny+virions%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">RNA helicase A modulates translation of HIV-1 and infectivity of progeny virions.</a> Nucleic Acids Res. 38 (5), 1686-1696 (2010).</li>
<li>Lee, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Suppression+of+the+DHX9+helicase+induces+premature+senescence+in+human+diploid+fibroblasts+in+a+p53-dependent+manner%5BTitle%5D)+AND+%22J.Biol.Chem%22%5BJournal%5D)">Suppression of the DHX9 helicase induces premature senescence in human diploid fibroblasts in a p53-dependent manner.</a> J.Biol.Chem. 289 (33), 22798-22814 (2014).</li>
<li>Bradford, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+rapid+and+sensitive+method+for+the+quantitation+of+microgram+quantities+of+protein+utilizing+the+principle+of+protein-dye+binding%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.Biochem%22%5BJournal%5D)">A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding.</a> Anal.Biochem. 72, 248-254 (1976).</li>
<li>Glenn, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+protein+samples+for+mass+spectrometry+and+N-terminal+sequencing%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Enzymol%22%5BJournal%5D)">Preparation of protein samples for mass spectrometry and N-terminal sequencing.</a> Methods Enzymol. 536, 27-44 (2014).</li>
<li>Keene, J. D., Komisarow, J. M., Friedersdorf, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RIP-Chip%3A+the+isolation+and+identification+of+mRNAs%2C+microRNAs+and+protein+components+of+ribonucleoprotein+complexes+from+cell+extracts%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.Protoc%22%5BJournal%5D)">RIP-Chip: the isolation and identification of mRNAs, microRNAs and protein components of ribonucleoprotein complexes from cell extracts.</a> Nat.Protoc. 1 (1), 302-307 (2006).</li>
<li>Ranji, A., Shkriabai, N., Kvaratskhelia, M., Musier-Forsyth, K., Boris-Lawrie, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Features+of+double-stranded+RNA-binding+domains+of+RNA+helicase+A+are+necessary+for+selective+recognition+and+translation+of+complex+mRNAs%5BTitle%5D)+AND+%22J.Biol.Chem%22%5BJournal%5D)">Features of double-stranded RNA-binding domains of RNA helicase A are necessary for selective recognition and translation of complex mRNAs.</a> J.Biol.Chem. 286 (7), 5328-5337 (2011).</li>
</ol>

De auteurs hebben niets te onthullen.

De RNP isolatie en verwante RNA identificatiestrategie hier beschreven selectieve middel van onderzoek van een specifiek RNA-eiwit interactie en ontdekken kandidaateiwitten co-regulering een bepaald RNP in cellen. Het voordeel van het gebruik van oligonucleotide-gerichte RNase H klieving om RNP te isoleren is de mogelijkheid te vangen en specifiek wat de RNP-cis- werkende RNA-element over heterogene RNP stroomafwaarts gebonden aan het cis-werkende RNA-element plaats. Vanwege de overvloed van...

Post-transcriptionele genexpressie nauwkeurig geregeld, beginnend met DNA transcriptie in de kern. Gecontroleerd door RNA-bindende eiwitten (RBPs), mRNA biogenese en metabolisme optreden in hoogdynamische ribonucleoproteïnepartikels (RNP&#39;s), die associëren en dissociëren met een substraat precursor mRNA tijdens de progressie van RNA metabolisme 1-3. Dynamische veranderingen in RNP componenten beïnvloeden de post-transcriptionele lot van een mRNA en zorgt voor kwaliteitsborging tijdens de bewerking van primaire transcripten hun nucleaire handel en lokalisatie, hun activiteit als mRNA sjablonen voor translatie en de uiteindelijke omzet van rijpe mRNA. Talrijke proteïnen worden aangeduid als RBPs vanwege hun geconserveerde aminozuur domeinen, zoals de RNA herkenningsmotief (RRM), de dubbelstrengs RNA-bindende domein (RBD) en stukken van basische residuen (bijvoorbeeld arginine, lysine en glycine) 4. RBPs zijn routinematiggeïsoleerd door immunoprecipitatie en strategieën worden gescreend om hun verwante RNAs identificeren. Sommige RBPs co-regulering pre-mRNA die functioneel gerelateerd, aangeduid als RNA regulonen 5-8. Deze RBPs hun cognate mRNA en soms niet-coderende RNA vormen katalytische RNP dat in samenstelling variëren; hun uniciteit komt door verschillende combinaties van geassocieerde factoren, alsmede de chronologische volgorde, locatie, en de duur van hun interacties 9. RNA immunoprecipitatie (RIP) is een krachtige techniek om RNP&#39;s uit cellen te isoleren en geassocieerde transcripten middels sequentieanalyse 10-13 identificeren. Verhuizen van kandidaat om genoombrede screening haalbaar is door middel van RIP in combinatie met een microarray-analyse 14 of high-throughput sequencing (RNAseq) 15. Evenzo kan co precipiterende eiwitten worden geïdentificeerd door massaspectrometrie, of ze voldoende overvloedig en scheidbaar van de co-precipiterende antilichaam 16,17. Hierbij gaan we in de methode voor het isoleren van RNP componenten van een specifieke verwante RNA uit gekweekte menselijke cellen, maar de benadering veranderbaar voor oplosbare lysaten van plantencellen, schimmels, virussen en bacteriën. Stroomafwaarts analyses van het materiaal zijn onder andere kandidaat identificatie en validatie door immunoblot, massaspectrometrie, biochemische enzymatische test, RT-qPCR, microarray en RNAseq, zoals samengevat in figuur 1. Gezien de fundamentele rol van RNP&#39;s in het reguleren van genexpressie op post-transcriptioneel niveau, veranderingen in de expressie van component RBPs of de toegang voor verwante RNA&#39;s kunnen schadelijk voor de cellen en zijn geassocieerd met verschillende soorten aandoeningen, waaronder neurologische ziekten 18. DHX9 / RNA helicase A (RHA) nodig voor de vertaling van bepaalde mRNAs van cellulaire en retrovirale oorsprong 6. Deze verwante RNA&#39;s vertonen structureel verwante cis-werkende elementen binnen hun5 &#39;UTR, die wordt aangeduid als de post-transcriptionele controle element (PCE) 19. RHA-PCE activiteit voor de doeltreffende cap-afhankelijke translatie van vele retrovirussen, zoals HIV-1, en groeiregulerende genen, waaronder JUND 6,20,21. Gecodeerd door een essentieel gen (dhx9), RHA is essentieel voor celproliferatie en de neerwaartse regulatie elimineert cellevensvatbaarheid 22. De moleculaire analyse van RHA-PCE RNP is een essentiële stap voor het begrijpen waarom RHA-PCE activiteit noodzakelijk om celproliferatie te regelen. De precieze karakterisering van de RHA-PCE RNP componenten bij steady state of bij fysiologische verstoring van de cel vereist de selectieve verrijking en de vangst van de RHA-PCE RNP&#39;s in voldoende overvloed voor downstream-analyse. Hier PCEgag retroviraal RNA werd gelabeld met 6 kopieën van de cis-werkende RNA-bindingsplaats voor het MS2 manteleiwit (CP) in het open leesraam. De MS2 manteleiwit werd exogenously co-uitgedrukt PCEgag RNA door plasmide transfectie aan de RNP assemblage in groeiende cellen te vergemakkelijken. RNP die het MS2 manteleiwit met cognate MS2-tag PCEgag RNA werden immunogeprecipiteerd uit het celextract en vastgelegd op magnetische korrels (Fig 2a). Selectief vangen de RNP componenten gebonden aan de PCE, werd het geïmmobiliseerde RNP geïncubeerd met een oligonucleotide complementair aan sequenties distaal van de PCE, die een RNA-DNA-hybride dat het substraat voor RNase H activiteit. Aangezien PCE is gelegen in het 5 &#39;uiteinde van de 5&#39; onvertaalde gebied, het oligonucleotide complementair is aan het RNA-sequenties naast de retrovirale translatie startplaats (gag startcodon). RNase H klieving bij de gag startcodon bezit de 5 &#39;UTR van het geïmmobiliseerde complex RNP, die was verkregen als elutiemiddel. Daarna werd het monster geëvalueerd door RT-PCR voor de daarbij PCEgag en door SDS PAGE en immunoblot bevestigt het captu bevestigenre van de doelgroep MS2 manteleiwit. Een validatie van de PCE-geassocieerde RNA bindend eiwit, DHX9 / RNA helicase A, werd vervolgens uitgevoerd.

<table><tbody><tr><td>Dynabeads Protein A</td><td>Invitrogen</td><td>10002D</td><td></td></tr><tr><td>Dynabeads Protein G</td><td>Invitrogen</td><td>10004D</td><td></td></tr><tr><td>Anti-FLAG antilichaam</td><td>Sigma</td><td>F3165</td><td></td></tr><tr><td>Anti-FLAG antilichaam</td><td>Sigma</td><td>F7425</td><td></td></tr><tr><td>Anti-RHA antilichaam</td><td>Vaxron</td><td>PA-001</td><td></td></tr><tr><td>TRizol LS reagent</td><td>Life technology</td><td>10296-028</td><td></td></tr><tr><td>RNase H</td><td>Ambion</td><td>AM2292</td><td></td></tr><tr><td>Chloroform</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP1145-1</td><td></td></tr><tr><td>Isopropanol</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP26184</td><td></td></tr><tr><td>RNaeasy opruimkolom</td><td>Qiagen</td><td>74204</td><td></td></tr><tr><td>Omniscript reverse transcriptase</td><td>Qiagen</td><td>205113</td><td></td></tr><tr><td>RNase Out</td><td>Invitrogen</td><td>10777-019</td><td></td></tr><tr><td>Protease remmercocktail</td><td>Roche</td><td>5056489001</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma</td><td>X100</td><td></td></tr><tr><td>NP-40</td><td>Sigma</td><td>98379</td><td></td></tr><tr><td>Glycerol</td><td>Fisher Scientific</td><td>17904</td><td></td></tr><tr><td>Random hexamer primers</td><td>Invitrogen</td><td>N8080127</td><td></td></tr><tr><td>Oligo-dT primers</td><td>Invitrogen</td><td>AM5730G</td><td></td></tr><tr><td>PCR primers</td><td>IDT</td><td></td><td>Gen specifieke primers voor&nbsp; PCR versterking</td></tr><tr><td>Oligonucleotide voor RNase H gemedieerde splitsing</td><td>IDT</td><td></td><td>Anti-sense primer voor doelwit RNA</td></tr><tr><td>Trypsine</td><td>Gibco Life technology</td><td>25300-054</td><td></td></tr><tr><td>DMEM weefselkweekmedium</td><td>Gibco Life technology</td><td>11965-092</td><td></td></tr><tr><td>Foetaal bovien serum</td><td>Gibco Life technology</td><td>10082-147</td><td></td></tr><tr><td>Tris base</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP152-5</td><td></td></tr><tr><td>Natriumchloride</td><td>Fisher Scientific</td><td>S642-212</td><td></td></tr><tr><td>Magnesiumchloride</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP214</td><td></td></tr><tr><td>DTT</td><td>Fisher Scientific</td><td>R0862</td><td></td></tr><tr><td>Sucrose</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP220-212</td><td></td></tr><tr><td>Nitrocellulose membraan</td><td>Bio-Rad</td><td>1620112</td><td></td></tr><tr><td>Magnetische standaard</td><td></td><td></td><td>1,7 ml micro-centrifugebuisje vasthouden</td></tr><tr><td>Laminaire kap</td><td></td><td></td><td>Voor dierlijke weefselkweek</td></tr><tr><td>CO2 incubator</td><td></td><td></td><td>Voor dierlijke weefselkweek</td></tr><tr><td>Eiwitgelapparaat</td><td></td><td></td><td>Eiwitsteekproefscheiding</td></tr><tr><td>Eiwitoverdrachtsapparaat</td><td></td><td></td><td>Eiwitsteekproefoverdracht</td></tr><tr><td>Klaar voor gebruik eiwitgelen (4-15%)</td><td></td><td></td><td>Eiwitsteekproefscheiding</td></tr><tr><td>Centrifuge op tafel</td><td></td><td></td><td>Pellet de steekproef naar beneden</td></tr><tr><td>Rotator op tafel</td><td></td><td></td><td>Meng de steekproef van begin tot eind</td></tr><tr><td>Vortex</td><td></td><td></td><td>Meng de steekproeven</td></tr></tbody></table>

isolatie van cognate rna-eiwitcomplexen van cellen met behulp van oligonucleotide-gerichte elution

Isolation of Cognate RNA-protein Complexes from Cells Using Oligonucleotide-directed Elution

Ribonucleoproteïnedeeltjes dirigeren de biogenese en post-transcriptionele regulatie van alle mRNA's door verschillende combinaties van RNA-bindende eiwitten. Ze bestaan uit positie-afhankelijke, cis-werkende RNA-elementen en unieke combinaties van RNA-bindende eiwitten. Het definiëren van de samenstelling van een specifiek RNP is essentieel om een fundamenteel begrip van gen-regulatie te bereiken. Het isoleren van een specifiek RNP is vergelijkbaar met het vinden van een naald in een hooiberg. Hier demonstreren we een aanpak om RNP's te isoleren die geassocieerd zijn met het 5' onvertaalde gebied van een geselecteerd mRNA in asynchrone, getransfecteerde cellen. Dit cognate RNP is aangetoond als noodzakelijk voor de translatie van geselecteerde virussen en celstress-responsgenen.
Het gedemonstreerde RNA-eiwit co-precipitatieprotocol is geschikt voor de downstream analyse van eiwitcomponenten door middel van proteomische analyses, immunoblots of geschikte biochemische identificatie-assays. Dit experimentele protocol toont aan dat DHX9/RNA-helicase A verrijkt is aan het 5'-uiteinde van cognate retrovirale RNA en geeft voorlopige informatie voor de identificatie van zijn associatie met celstress-geassocieerde huR en junD cognate mRNA's.

Voorafgaand RIP resultaten geïdentificeerd retrovirale gag RNA&#39;s en geselecteerde cellulaire RNA&#39;s die samen met neerslag DHX9 / RHA, waaronder HIV-1 6, JUND 6 en Hur (Fritz en Boris-Lawrie, niet gepubliceerd). De retrovirale 5 &#39;UTR is aangetoond dat co-precipiteren met DHX9 / RHA in de kern en samen te isoleren in het cytoplasma op polyribosomen. Het is uniek gedefinieerd als de cis-werkende post-transcriptie controle element (PCE) 6.</sup...

Dit manuscript beschrijft een aanpak om selectieve cognate RNP's te isoleren die in eukaryote cellen worden gevormd via een specifieke oligonucleotide-gestuurde verrijking. We tonen de toepasbaarheid van deze aanpak door een cognate RNP te isoleren die gebonden is aan het retrovirale 5' niet-vertaalde gebied dat is samengesteld uit DHX9/RNA-helicase A.

Isolatie van Cognate RNA-eiwitcomplexen van cellen met behulp van oligonucleotide-gerichte Elution

Ribonucleoprotein particles direct the biogenesis and post-transcriptional regulation of all mRNAs through distinct combinations of RNA binding proteins. ...

Het algemene doel van deze RNA immunoprecipitatietechniek is om selectief endogene RNA-eiwitcomplexen te isoleren en te karakteriseren die in eukaryotische cellen worden gevormd via een specifiek oligonucleotide-gestuurde verrijking. Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van belangrijke vragen op het gebied van post-transcriptionele controle, zoals de samenstelling van RNA-bindende eiwitten die de vijf prime UTR van een retroviraal transcript definiëren om zijn genexpressie te reguleren. Het grote voordeel van deze techniek is dat het een onderzoeker in staat stelt om selectief een specifiek RNA-eiwitcomplex van interesse te isoleren en te karakteriseren, terwijl de mogelijkheid behouden blijft om een meer globale analyse van de RNP downstream uit te voeren.Nou, de implicaties van deze techniek strekken zich uit tot een fundamenteel begrip van virale infecties en talrijke cellulaire ziekten. En biedt belangrijke inzichten in de mechanismen van post-transcriptionele controle van genexpressie. Dat zou nieuwe haalbare doelwitten voor geneesmiddelen kunnen betekenen.Na het kweken van cellen en het uitvoeren van immunoprecipitatie van een FLAG-getagd eiwit volgens het tekstprotocol, brengt u 60 microliters per IP van pro-TG magnetische bead slurry over naar een 1,7 milliliter microcentrifugebuisje. Plaats de buis op een magnetisch rek en verwijder de opslagoplossing door voorzichtig te pipetteren. Verwijder vervolgens de buis van het rek.Voeg 600 microliters 1x wasbuffer toe. En plaats de buis op een eind over eind rotator bij kamertemperatuur gedurende drie minuten, om de beads te wassen en te gelijken. Plaats de buis op het magnetisch rek en verwijder de wasbuffer.Voeg vervolgens 10 volumes verse 1x wasbuffer toe. Voeg immunoprecipiterend FLAG-antilichaam toe aan de geëquilibreerde pro-TG magnetische beads. En draai vervolgens de buis bij kamertemperatuur gedurende ten minste 30 minuten, om het immunoprecipiterende antilichaam te binden.Plaats de buis op de magneet en verwijder het supernatant. Verwijder vervolgens de buis van de magneet en voeg 1x wasbuffer toe aan de beads en draai gedurende drie minuten bij kamertemperatuur. Herhaal de wasstap twee keer en verwijder de laatste buffer.Verwijder het kweekmedium van de cellen door aspiratie en gebruik 1,5 milliliter ijskoud PBS om de cellen twee keer te wassen. Met een celkrabber ontdoet u de natte, adherente cellen. Pipetteer de celsuspensie in verse buisjes en centrifugeert u de kweek bij 226 keer G in vier graden Celsius gedurende vier minuten.Voeg 375 microliters ijskoud lage zoutbuffer toe aan het celpellet en incubeer het monster op ijs gedurende vijf minuten om zwelling mogelijk te maken. Het is belangrijk om voorzichtig te zijn bij het toevoegen en opnieuw suspenderen van het celpellet in de lage zout lysebuffer, om volledige onderdompeling en zwelling te garanderen zonder voortijdige mechanische verstoring. Om het cytoplasmatische cellysaat te verzamelen, voegt u 125 microliters ijskoud lysebuffer toe en gebruik vervolgens een voorgekoelde Dounce homogenisator om tien slagen uit te voeren.Homogeniseer met voldoende kracht om lysis van het plasmamembraan en contaminanten van het vrijgekomen cytoplasmatische lysaat mogelijk te maken. Maar wees voorzichtig om de mechanische verstoring niet te overdrijven en risico op nucleaire besmetting, verstoring van RNA-eiwitcomplex of verlies van vrijgekomen Spin het homogenaat in een microfuge bij top snelheid gedurende één minuut. Breng vervolgens het supernatant over naar een nieuwe 1,7 milliliter buis die op ijs heeft gestaan.Bepaal de totale eiwitconcentratie. Reserveer 10%voor western blot-analyse, om te worden gebruikt als inputcontrole. Om immunoprecipitatie uit te voeren, voegt u het gewenste volume van geoogst cellysaat toe aan de doelantilichaam geconjugeerde beads.Gebruik 1x wasbuffer om het totale volume op 600 microliters te brengen en draai het monster bij kamertemperatuur. Na 90 minuten incubatie, plaats de IP-buis op de magneetrek om de beads te verzamelen. Verzamel vervolgens het supernatant en bewaar het als doorstroming.Voeg vervolgens 10 volumes ijskoud NETN 150 wasbuffer toe aan de RNP-gebonden, antilichaam geconjugeerde beads en draai het monster gedurende drie minuten bij kamertemperatuur. Na het opnieuw suspenderen van de geïmmobiliseerde RNP-complexen in 1x bindingsbuffer volgens het tekstprotocol, pas het resterende volume aan in 100 microliters ijskoud 1x bindingsbuffer. En verwarm de buis gedurende drie minuten op 70 graden Celsius.Om cognate RNA-eiwitcomplexen te isoleren, voegt u een ongeveer 30 nucleotide DNA-oligo toe, complementair aan de drie prime sequentiegrens van de RNA van belang. En incubeer gedurende 30 minuten bij kamertemperatuur met zacht schommelen. Voeg vijf tot tien eenheden of RNase H toe aan de buis en incubeer het monster gedurende één uur bij kamertemperatuur om de RNA van het RNA DNA hybride te kleden.Breng vervolgens het supernatant dat de gevangen RNP-complexen van belang bevat, over naar een steriele 1,7 milliliter microcentrifugebuis. Om het immunoprecipiteerde RNA te verzamelen, suspendeert u de helft van het totale monster van gevangen RNA-complexen opnieuw in 750 microliters zuur guanidiniumthiocyanaat reagens. Voeg 200 microliters chloroform toe aan de buis, schud krachtig gedurende 10 seconden en incubeer gedurende drie minuten bij kamertemperatuur.Na centrifugatie verzamelt u de waterige fase in een verse buis en voegt u een gelijk volume isopropanol toe. Meng goed en incubeer het monster gedurende ten minste tien minuten bij kamertemperatuur. Voeg één microliter glycolblauw toe aan het monster en bewaar het bij minuus 20 graden Celsius voor efficiënte precipitatie of verwerking op een later tijdstip.Centrifugeer de buis gedurende tien minuten bij 16.000 keer G in vier graden Celsius. Gebruik vervolgens een P200 micropipet om voorzichtig het supernatant te verzamelen en weg te gooien, zodat de RNA-pellet niet wordt verstoord. Voeg 500 microliters 75% ethanol toe aan elke buis.<p

isolation-cognate-rna-protein-complexes-from-cells-using

Research

JoVE Journal

Biochemistry

Biochemie

Vanwege het tijdelijke karakter van de pre-mRNA, kan het moeilijk zijn te isoleren en te...

Een snelle High-throughput Methode voor Mapping Ribonucleoproteins (RNP&#39;s) op de menselijke pre-mRNA

Een stap voor stap-protocol om het isoleren en identificeren van RNA bijbehorende complexen door middel van RIP-Chip.

Werkwijze voor het isoleren en identificeren van mRNAs, microRNA en eiwitcomponenten van ribonucleoproteïne complexen uit celextracten met RIP-Chip

This video demonstrates an in vitro RNA pull-down assay to identify RNA-binding proteins (RBPs), which interact with the adenylate-uridylate-rich element (ARE) sequences in mRNA. The target RBPs from a cell lysate are mixed with an RNA probe to form RNA-protein complexes. The complexes are isolated via affinity purification utilizing the affinity of the desthiobiotin label of the RNA probe to a streptavidin-labeled magnetic bead.

RNA-Protein Pull-Down Assay to Isolate RNA-Binding Proteins via Affinity Extraction

RNA-eiwitinteracties liggen aan de basis van veel cellulaire processen. Hier beschrijven we een in vivo methode om specifiek RNA te isoleren en nieuwe eiwitten te identificeren die ermee geassocieerd zijn. Dit kan nieuw licht werpen op hoe RNA's in de cel worden gereguleerd.

Novel-RNA-bindende eiwitten Isolatie door de snelle Methodologie

Deze RNA pull-down methode kunt identificeren van de RNA-doelstellingen van een lang niet-coderende RNA (lncRNA). Gebaseerd op de kruising van zelfgemaakte, ontworpen anti-zin DNA oligonucleotide sondes specifiek voor deze lncRNA in een passende vaste weefsel of cellijn, hierdoor efficiënt de opname van alle RNA doelen met de lncRNA.

RNA Pull-down te identificeren van RNA doelen van een lang niet-coderende RNA Procedure

Een tandem RNA isolatie procedure (reis) voor herstel van endogeen gevormde mRNA-eiwitcomplexen wordt beschreven. Specifiek, RNA-eiwitcomplexen kruisverwijzende in vivo, polyadenylated RNAs zijn geïsoleerd uit extracten met oligo(dT) kralen en bepaalde mRNAs met gemodificeerde RNA antisense oligonucleotides worden vastgelegd. Eiwitten gebonden aan mRNAs worden gedetecteerd door analyse van de immunoblot.

Een Oligonucleotide gebaseerde Tandem RNA isolatie Procedure om te herstellen van eukaryotische mRNA-eiwitcomplexen

RNA/eiwitcomplexen gezuiverd met behulp van botin-streptavidine strategie worden geëlueerd oplossing onder denatureren voorwaarden in een vorm die ongeschikt zijn voor verdere zuivering en de functionaalanalyse. Hier beschrijven we een wijziging van deze strategie dat gebruik maakt van een foto-cleavable linker in RNA en een zachte UV-elutie stap, inheemse en volledig functionele RNA/eiwitcomplexen oplevert.

-Voor-stapmodus zuivering van macromoleculaire complexen met behulp van RNA gekoppeld aan biotine en een foto-cleavable Linker

Hier beschrijven we de assemblage van RNA polymerase II (Pol II) rek complexen waarvoor alleen korte synthetische DNA en RNA oligonucleotiden en gezuiverde Pol II. Deze complexen zijn nuttig voor het bestuderen van mechanismen die onderliggende co-transcriptionele verwerking van transcripties in verband met het Pol II rek complex.

Kunstmatige RNA polymerase II-rek complexen voor het ontleden van co-transcriptionele RNA-verwerkings gebeurtenissen

Dit protocol is bedoeld om celtypespecifiek te isoleren, ribosomale mRNA's te vertalen met behulp van het NuTRAP-muismodel.

Isoleer celtypespecifieke RNA's uit snap-frozen heterogene weefselmonsters zonder celsortering

Hier presenteren we een geoptimaliseerde in vitro methode om eiwitinteractoren van specifieke RNA-sequenties te ontdekken, kwantificeren en valideren, met behulp van totaal eiwitextract uit menselijke cellen, streptavidineparels bedekt met gebiotinyleerd RNA en massaspectrometrie-analyse.

Een geoptimaliseerde kwantitatieve pull-down analyse van RNA-bindende eiwitten met behulp van kort gebiotinyleerd RNA

AviTag-specifieke locatie-beperkte verlichtingsversterkte biotinylatie (ALIBi) is een nieuwe optogenetisch geactiveerde methode ontwikkeld voor het labelen en affiniteitszuiveren van subcellulaire populaties van ribosomen voor downstream sequencing en proteomische analyse.

Isolatie van subcellulaire ribosoomsubpopulaties op basis van recombinante peptide-tag-specifieke locatie-beperkte verlichtingsversterkte biotinylering

Leer RNA-immunoprecipitatie voor post-transcriptionele controle van retrovirale transcripten met oligonucleotide-gerichte elutie. Deze methode identificeert DHX9/RNA-helicase A in eiwitcomplexen en biedt inzicht in virale infectiemechanismen.

Isolatie van Cognate RNA-eiwitcomplexen van cellen met behulp van oligonucleotide-gerichte Elution

Meer video's verkennen