Name: Het testen van Predatory Feeding gedrag in Pristionchus En andere Nematoden (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-09-04T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 27 s
Description: Leer hoe je roofvoedingsgedrag analyseert in Pristionchus pacificus en andere nematoden met behulp van hoogvergrotingsmicroscopie en high-speed camera's. Deze methoden kwantificeren mondstructuren en gedragspatronen voor gedragsneurobiologisch onderzoek.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

We danken Dr. Daniel Bumbarger voor de afbeelding van het predatiegedrag. Dit werk werd gefinancierd door de Max-Planck Society.

1. Mouth vorm Phenotyping <ol><li> Mond Vorm Identification op Agarose Pads Let op: Met het oog op de nematode mond morphs visualiseren, immobiliseren de wormen met een milde verdoving behandeling op agarose pads en observeren als volgt. <ol><li> Groeien en te onderhouden nematode culturen zoals P. pacificus op 6 cm standaard nematode groei media (NGM) platen en voeden zich met een bacteriële grasveld van E. coli OP50 19. </li><li> Maak agarose pads door eerst 0,06 g agarose tot 3 ml H 2 O in een buis van 15 ml tot 3 ml 2% agarose oplossing te maken. Dit kan worden bewaard tot een jaar bij 4 ° C </li><li> Mix en smelt de agarose grondig in een magnetron of als alternatief gebruik maken van een warmte-blok ingesteld op&gt; 88 ° C. </li><li> Eenmaal volledig gesmolten is, voeg 10 ul van een 10% natrium- azide oplossing voor de agarose en meng. LET OP: Dry natriumazide reactief en alle vormen zijn giftig. </li><li> Met behulp van een 1 mlmicropipet, een druppel van niet minder dan 300 pl van de vloeibare agarose mix azide op het midden van een standaard microscoopglaasje. </li><li> Voor de agar afkoelt, wordt snel een tweede microscoopglaasje bovenop de drop om de agarose die een pad vormt bij afkoeling plat. Herhaal dit voor zoveel pads als nodig is. </li><li> Vlak voor gebruik, schil elkaar het glas microscoopglaasjes door te schuiven ze uit elkaar. Let op: Als agarose pads te ver worden voorbereid op voorhand kunnen ze erg droog zijn en kan de aaltjes beschadigen. </li><li> Wormen overdragen aan de narcose agarose pads, een druppel van M9 buffer (2-3 ui) op ​​het midden van het pad. Pick 2-3 jonge P. pacificus volwassenen in de daling van de M9 voor het plaatsen van een cover slip voorzichtig over het pad. De P. pacificus aaltjes worden geïmmobiliseerd in de agarose en klaar om te visualiseren. </li><li> Breng de microscoop dia met de verdoofde worm aan een geschikte microscoop eennd observeren onder 63x Nomarski optiek. Categoriseren morph identiteiten op basis van de volgende kenmerken: de aanwezigheid van een extra sub-ventrale tand, vergroot dorsale tand en brede mond opening is indicatief voor een eurystomatous mond morph dier, terwijl de aanwezigheid van een enkele dorsale tand en smaller mondopening duidt op een stenostomatous dier (Figuur 1). Opmerking: Om de gezondheid van het dier te handhaven, moet wormen worden gehandhaafd overeenkomstig agarkussen niet langer dan 5 minuten. </li><li> Na mond morph identificatie, herstellen ofwel eurystomatous of stenostomatous nematoden, zoals vereist door het verwijderen van het deksel slip door zachtjes te schuiven van de agarose pad. Pick zorgvuldig geselecteerde dieren uit de agarose pad (E. coli OP50 kan worden gebruikt op de pick te helpen maken stickier) op verse NGM platen. Laat het herstel van de narcose tot normaal beweeglijk gedrag heeft hervat, waarop de dieren zijn klaar voor verdere roofzuchtige assays. </li></ol></li> &lt;li&gt; Rapid Mouth Phenotyping Opmerking: Als alternatief meer ervaring mond vormtype kunnen worden getest zonder de noodzaak van verdoving behandeling via een stereomicroscoop met sterke vergroting (150X). <ol><li> Plaats nematoden op standaard NGM platen met een bacteriële grasveld van E. coli OP50 op de microscoop weergavegebied. </li><li> Detecteren verschillen in de mond grootte en breedte. Let op: Op dit vergroting geen tand achtige structuren waarneembaar zijn daarom mond morph identificatie is uitsluitend gebaseerd op brede monden versus smalle mond. </li></ol></li></ol> 2. Bite Assay Opmerking: Het bijten assays toestaan ​​dat een gedetailleerde roofzuchtige gedragsanalyse. <ol><li> Groeien en onderhouden nematode culturen op standaard NGM platen (6 cm) en voeden zich met een bacteriële grasveld van E. coli OP50 19. </li><li> Voeg testplaten door kweken van een grote hoeveelheid geselecteerde prooien larven van nematoden zoals C. elegans of aldere kant een passende ecologisch relevante prooi. Opmerking: Adult C. elegans zijn te groot om geschikt prooi dus is het belangrijk om het larvale stadium gebruikt. <ol><li> Handhaaf C. elegans of andere potentiële prooi soorten op standaard NGM platen en voeden zich met een bacteriële grasveld van E. coli OP50 totdat de bevolking vers uitgehongerd, resulterend in een overvloed van jonge L1 larven. Opmerking: Tijd voor verhongering is afhankelijk van talrijke milieu en experimentele factoren, waaronder het aantal nematoden gebruikt om de kweek te starten, de hoeveelheid E. coli OP50 toegevoegd en de omgevingstemperatuur. </li></ol></li><li> Was vier of meer vers uitgehongerd prooi platen met M9 en laat de worm oplossing door middel van twee 20 urn filters om alle grote dieren en de resterende eieren voordat collectie te verwijderen in een 15 ml buis. Slechts kleine larven moeten in de oplossing blijven. </li><li> Het vormen van een larvale pellet gecentrifugeerd gefiltreerd prooi bij 377 xg gedurende 1 min. </li><li&gt; Pipetteer 3 pi van pure worm pellet op een 6 cm NGM plaat zonder E. coli OP50 aanwezig en wacht minstens 30 min voor larven uit voldoende verspreiden naar een testplaat te genereren. Opmerking: 3 pl pure worm pellet op de standaard assay platen bevatten&gt; 3.000 prooi larven. Dit is voldoende om veelvuldig contact tussen roofdieren en prooien te genereren. </li><li> Screen roofnematoden voor de gewenste mond morph (protocol 1). </li><li> Met behulp van standaard worm plukken technieken en een lichte stereomicroscoop 19, transfer correct geclassificeerde roofdieren op de assay plaat. Zorg ervoor dat slechts OP50 bacteriën mogelijk toe aan de testplaat bij het overbrengen roofdieren om bacteriële besmetting te minimaliseren. Wacht 15 minuten om de worm te herstellen van de stress van wordt overgebracht en controleer op wild-type beweeglijke gedrag om ervoor te zorgen wormen niet zijn beschadigd door de overdracht. Opmerking: Er hoeft P. verhongeren pacificus, zoals ze zijn zeer efficiënte roofdieren van andere larven van nematoden zelfs terwijl goed gevoed op bacteriën. </li><li> Na herstel, observeert de roofdier met behulp van een lichte stereomicroscoop gedurende 10 min. Met deze apparatuur, observeren en karakteriseren verschillende voeden evenementen, zoals bijten, gekenmerkt door het roofdier het beperken van de beweging van de prooi, doden, waarbij door een opening van de prooi cuticula wordt gedetecteerd; en voeding, gecategoriseerd door een waarneembare consumptie van de prooi ingewanden (Figuur 2A, B en Movie 1). </li><li> Herhaal de test van screening en observeren van minimaal 10 individuele roofnematoden nauwkeurigheid te verzekeren. </li></ol> 3. Corpse Assay Opmerking: Corpse assays een snellere kwantificering van roofzuchtig marktgedrag te vergemakkelijken. <ol><li> Groeien en onderhouden nematode culturen op standaard NGM platen en voeden zich met een bacteriële lAWN van E. coli OP50 19. Genereer drie exemplaren van de genoemde assay platen (protocol 2,1-2,5). </li><li> Screen roofnematoden voor de benodigde mond morph zoals beschreven in protocol 1. Met behulp van standaard worm plukken technieken en een lichte stereomicroscoop overdracht 5 roofnematoden met de vereiste mond morph aan elke assay plaat. Laat de roofdieren samen met de prooi voor 2 uur. </li><li> Na 2 uur scherm de testplaat op de aanwezigheid van geleegd lijken (Figuur 2B en C). Identificeren van lichamen door de afwezigheid van beweeglijkheid, samen met duidelijke morfologische gebreken, waaronder lekken ingewanden of ontbrekende worm fragmenten. </li></ol> 4. Analyse van Pharyngeal en tandverplaatsing <ol><li> Groeien en onderhouden nematode culturen op standaard NGM platen en voeden zich met een bacteriële grasveld van E. coli OP50 19. Genereren testplaten zoals eerder (protocol 2,1-2,5) genoemd. Als standaard 6 cmNGM platen niet passen tussen het doel en de microscoop podium, gebruik maken van de deksel van de kleine 35 mm petrischaaltjes met 2 ml NGM als een geschikt alternatief. </li><li> Screen roofnematoden voor de benodigde mond morph zoals beschreven in protocol 1. Met behulp van standaard worm plukken technieken en een lichte stereomicroscoop, overdragen één correct ingedeeld roofdier op de assay plaat. Wacht 15 minuten zodat de worm te herstellen van de stress worden overgedragen. </li><li> Observeer roofzuchtige dieren op een microscoop bij 40 - 63x Normaski, met een high-speed camera (films 2 en 3). Record keelholte pompen en tand beweging over 15 sec, bij 50 Hz bij ten minste 20 dieren om nauwkeurige kwantificering te verzekeren. Replay opgenomen films op de gewenste snelheid om de individuele pompen en tand evenementen tellen. Noot: Pompen waargenomen in het corpus, gelegen in het midden van de keelholte, terwijl tandverplaatsing detecteerbaar in de mondopening en slechts obgeserveerd vanaf de dorsale tand. </li></ol>

<ol><li>Wilecki, M., Lightfoot, J. W., Susoy, V., Sommer, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Predatory+feeding+behaviour+in+Pristionchus+nematodes+is+dependent+on+phenotypic+plasticity+and+induced+by+serotonin%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Biol%22%5BJournal%5D)">Predatory feeding behaviour in Pristionchus nematodes is dependent on phenotypic plasticity and induced by serotonin.</a> J Exp Biol. 218 (Pt 9), 1306-1313 (2015).</li>
<li>Ragsdale, E. J., Muller, M. R., Rodelsperger, C., Sommer, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Developmental+Switch+Coupled+to+the+Evolution+of+Plasticity+Acts+through+a+Sulfatase%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">A Developmental Switch Coupled to the Evolution of Plasticity Acts through a Sulfatase.</a> Cell. 155 (4), 922-933 (2013).</li>
<li>Goodman, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanosensation%5BTitle%5D)+AND+%22WormBook%22%5BJournal%5D)">Mechanosensation.</a> WormBook. , 1-14 (2006).</li>
<li>Rankin, C. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nematode+behavior%3A+the+taste+of+success%2C+the+smell+of+danger%21%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Biol%22%5BJournal%5D)">Nematode behavior: the taste of success, the smell of danger!</a> Curr Biol. 16 (3), R89-R91 (2006).</li>
<li>Beverly, M., Anbil, S., Sengupta, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Degeneracy+and+neuromodulation+among+thermosensory+neurons+contribute+to+robust+thermosensory+behaviors+in+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Degeneracy and neuromodulation among thermosensory neurons contribute to robust thermosensory behaviors in Caenorhabditis elegans.</a> J Neurosci. 31 (32), 11718-11727 (2011).</li>
<li>Kimata, T., Sasakura, H., Ohnishi, N., Nishio, N., Mori, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thermotaxis+of+C.+elegans+as+a+model+for+temperature+perception%2C+neural+information+processing+and+neural+plasticity%5BTitle%5D)+AND+%22Worm%22%5BJournal%5D)">Thermotaxis of C. elegans as a model for temperature perception, neural information processing and neural plasticity.</a> Worm. 1 (1), 31-41 (2012).</li>
<li>Vidal-Gadea, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Magnetosensitive+neurons+mediate+geomagnetic+orientation+in+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Elife%22%5BJournal%5D)">Magnetosensitive neurons mediate geomagnetic orientation in Caenorhabditis elegans.</a> Elife. 4, (2015).</li>
<li>Chute, C. D., Srinivasan, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemical+mating+cues+in+C.+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Semin+Cell+Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Chemical mating cues in C. elegans.</a> Semin Cell Dev Biol. 33, 18-24 (2014).</li>
<li>Sherlekar, A. L., Lints, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nematode+Tango+Milonguero+-+the+C.+elegans+male%27s+search+for+the+hermaphrodite+vulva%5BTitle%5D)+AND+%22Semin+Cell+Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Nematode Tango Milonguero - the C. elegans male's search for the hermaphrodite vulva.</a> Semin Cell Dev Biol. 33, 34-41 (2014).</li>
<li>Sasakura, H., Mori, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Behavioral+plasticity%2C+learning%2C+and+memory+in+C.+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Behavioral plasticity, learning, and memory in C. elegans.</a> Curr Opin Neurobiol. 23 (1), 92-99 (2013).</li>
<li>Avery, L., You, Y. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((C.+elegans+feeding%5BTitle%5D)+AND+%22WormBook%22%5BJournal%5D)">C. elegans feeding.</a> WormBook. , 1-23 (2012).</li>
<li>Bumbarger, D. J., Riebesell, M., Rodelsperger, C., Sommer, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((System-wide+Rewiring+Underlies+Behavioral+Differences+in+Predatory+and+Bacterial-Feeding+Nematodes%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">System-wide Rewiring Underlies Behavioral Differences in Predatory and Bacterial-Feeding Nematodes.</a> Cell. 152 (1-2), 109-119 (2013).</li>
<li>Dieterich, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Pristionchus+pacificus+genome+provides+a+unique+perspective+on+nematode+lifestyle+and+parasitism%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Genetics%22%5BJournal%5D)">The Pristionchus pacificus genome provides a unique perspective on nematode lifestyle and parasitism.</a> Nature Genetics. 40 (10), 1193-1198 (2008).</li>
<li>Schlager, B., Wang, X. Y., Braach, G., Sommer, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+Cloning+of+a+Dominant+Roller+Mutant+and+Establishment+of+DNA-Mediated+Transformation+in+the+Nematode+Pristionchus+pacificus%5BTitle%5D)+AND+%22Genesis%22%5BJournal%5D)">Molecular Cloning of a Dominant Roller Mutant and Establishment of DNA-Mediated Transformation in the Nematode Pristionchus pacificus.</a> Genesis. 47 (5), 300-304 (2009).</li>
<li>Witte, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+inactivation+using+the+CRISPR%2FCas9+system+in+the+nematode+Pristionchus+pacificus%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Genes+Evol%22%5BJournal%5D)">Gene inactivation using the CRISPR/Cas9 system in the nematode Pristionchus pacificus.</a> Dev Genes Evol. 225 (1), 55-62 (2015).</li>
<li>Lo, T. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Precise+and+Heritable+Genome+Editing+in+Evolutionarily+Diverse+Nematodes+Using+TALENs+and+CRISPR%2FCas9+to+Engineer+Insertions+and+Deletions%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Precise and Heritable Genome Editing in Evolutionarily Diverse Nematodes Using TALENs and CRISPR/Cas9 to Engineer Insertions and Deletions.</a> Genetics. 195 (2), 331-348 (2013).</li>
<li>Sommer, R. J., McGaughran, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+nematode+Pristionchus+pacificus+as+a+model+system+for+integrative+studies+in+evolutionary+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Ecology%22%5BJournal%5D)">The nematode Pristionchus pacificus as a model system for integrative studies in evolutionary biology.</a> Molecular Ecology. 22 (9), 2380-2393 (2013).</li>
<li>Herrmann, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+nematode+Pristionchus+pacificus+%28Nematoda+%3A+Diplogastridae%29+is+associated+with+the+oriental+beetle+Exomala+orientalis+%28Coleoptera%3AScarabaeidae%29+in+Japan%5BTitle%5D)+AND+%22Zoological+Science%22%5BJournal%5D)">The nematode Pristionchus pacificus (Nematoda : Diplogastridae) is associated with the oriental beetle Exomala orientalis (Coleoptera:Scarabaeidae) in Japan.</a> Zoological Science. 24 (9), 883-889 (2007).</li>
<li>Chaudhuri, J., Parihar, M., Pires-daSilva, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+Introduction+to+Worm+Lab%3A+from+Culturing+Worms+to+Mutagenesis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">An Introduction to Worm Lab: from Culturing Worms to Mutagenesis.</a> J Vis Exp. (47), e2293(2011).</li>
<li>Serobyan, V., Ragsdale, E. J., Sommer, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adaptive+value+of+a+predatory+mouth-form+in+a+dimorphic+nematode%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+R.+Soc.+B+Biol.+Sci%22%5BJournal%5D)">Adaptive value of a predatory mouth-form in a dimorphic nematode.</a> Proc. R. Soc. B Biol. Sci. 281, 20141334(2014).</li>
<li>Albrecht, D. R., Bargmann, C. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-content+behavioral+analysis+of+Caenorhabditis+elegans+in+precise+spatiotemporal+chemical+environments%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">High-content behavioral analysis of Caenorhabditis elegans in precise spatiotemporal chemical environments.</a> Nat Methods. 8 (7), 599-605 (2011).</li>
<li>Yeminin, E., Jucikas, T., Grundy, L. J., Brown, A. E., Schafer, W. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+database+of+Caenorhabditis+elegans+behavioral+phenotypes%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">A database of Caenorhabditis elegans behavioral phenotypes.</a> Nat Methods. 9 (10), 877-879 (2013).</li>
<li>Raizen, D. M., Lee, R. Y. N., Avery, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interacting+Genes+Required+for+Pharyngeal+Excitation+by+Motor+Neuron+MC+in+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Interacting Genes Required for Pharyngeal Excitation by Motor Neuron MC in Caenorhabditis elegans.</a> Genetics. 141 (4), 1365-1382 (1995).</li>
</ol>

De auteurs verklaren geen financiële of concurrerende belangen.

Nematoden vormen een krachtig systeem voor het begrijpen van de neurobiologie en gedrag met C. elegans tot nu toe zijn de belangrijkste instrument. Echter, een groot aantal aaltjes soorten, waaronder P. pacificus scherm gedragingen, die afwezig zijn of variëren in complexiteit van het modelorganisme C. elegans en daarom verhogen fascinerende vragen over de evolutie en de regulering van deze gedragingen. Een dergelijke extra gedrag te vinden in vele andere nematode soorten, waaronder P. pacificus is het vermogen om de bacteriële dieet aan te vullen door zich tegen afbraak voeding 1, 20. We hebben daarom beschreven en een gedetailleerd protocol voor eenvoudige en snelle karakterisering van de eerder geanalyseerde predatory gedrag bij nematoden. Ten eerste hebben we werkwijzen verschaft voor het screenen op variaties in de toevoerinrichting in de nematode mond. De identificatie van de juiste mondtype is een essentiële eerste sTep voor een succesvolle predatie testen zoals, in ieder geval binnen de Pristionchus genus enige eurystomatous dieren staat roofzuchtige geeft. Het beste is om te identificeren mond morphs met de &quot;snelle mond fenotypering&quot; protocol in protocol 1.2 beschreven als deze methode is veel minder invasief en daarom is het minder waarschijnlijk dat roofzuchtige gedrag kan worden verstoord. Echter, is het raadzaam om eerst vertrouwd met de verschillende mond structuren door identificatie met verdoofde dieren op agar pads (protocol 1.1) geworden. Na identificatie van de gewenste mond morph, hebben we beschreven twee assays voor het kwantificeren van roofzuchtige voeding. Dit zijn een snelle, hoge verwerkingscapaciteit &quot;lijk assay&quot; (protocol 3) en een tijdrovend maar meer diepgaande gedragsanalyse via de &quot;beet assay&quot; (protocol 2). Beide protocollen zijn zeer flexibel waardoor verscheidene wijzigingen om de testen, afhankelijk van de Experimen optimaliserenTal eisen. Voor beet assays met behulp van P. pacificus roofdieren op C. elegans prooi, opmerkingen afbraakprijzen gedragsmatige interacties voor een tijdsinterval van 10 minuten was voldoende om een aanzienlijke hoeveelheid beten kwantificeren en andere gebeurtenissen voeding. Voor &#39;lijk assays &quot;opnieuw gebruik te maken van P. pacificus roofdieren op C. elegans prooi, 5 roofdieren gedurende 2 uur geproduceerd eenvoudig te kwantificeren en consistente lijk nummers waardoor een snelle gedragsanalyse. Er moet echter worden opgemerkt verschillende jagende nematode bewegen met verschillende snelheden, eten bij verschillende snelheden en in het algemeen vertonen een grote diversiteit in andere gedragingen 1. Daarnaast kunnen verschillende prooidieren ook worden gegeten bij verschillende tarieven voor soortgelijke redenen. Het wordt daarom aanbevolen om de testen op basis van de nematode geteste soorten zowel als roofdieren en prooi te optimaliseren, en ook voor eventuele verschillen in omstandigheden. Tijdens beide &quot;bite&quot; en &quot;corpse &quot;assays is het essentieel dat zowel prooien en predatoren gezond, zoals benadrukt of gewond roofdieren niet efficiënt doden. Bovendien verse testplaten zijn essentieel als oudere platen kunnen gedroogd wat een negatieve invloed op de gezondheid van de nematoden die tot onjuiste geworden assays. Men hoopt dat toekomstige herhalingen van deze roofzuchtige assays kunnen maken van recente ontwikkelingen in de technologie om veel van de analyse te automatiseren zijn zoals tot stand gebracht voor het onderzoeken vele gedrag waargenomen in C. elegans 21, 22. Momenteel problemen kunnen ontstaan ​​in nematoden zoals P. pacificus als ze veel gevoeliger voor contact verschijnen, waardoor isolatie en immobilisatie in microfluïdische kamers waarschijnlijk roofzuchtige voeding af te schaffen. het overwinnen van deze evenwel geen sinecure, maar zou individuele nematoden te vergemakkelijken worden gescreend op subtielere roofzuchtige gedrag. Tot slot hebben we ook voorzien methoden for onderzoek van de nematode voeden apparaat zelf faciliteren van vergelijkingen tussen roofzuchtige en bacteriële voeding modes door het kwantificeren van de tand en keelholte pompen kinetiek met behulp van een high-speed camera (protocol 4). De kwantificering van de keelholte pompen tarieven in C. elegans is gebruikt om te controleren toevoeren jaren 23, echter, C. elegans mist elke vorm van mond denticle en mist ook roofzuchtige gedrag. Door het combineren van de kwantificatie van faryngeale pompen met die van de tand activiteit kan elke innervatie van de specifieke predatie tanden ook worden waargenomen. Door de vergroting nodig is om de tandverplaatsing dieren vaak gaan van het brandvlak waarnemen, dus is meestal alleen mogelijk de tand voor korte tijdvensters observeren. Bovendien, in tegenstelling tot C. elegans, de keelholte P. pacificus niet continu pompen, in plaats bezighoudt met spreuken van pompen en voeding. Daarom is voor accurate pharyngeal pumping tarieven tijdens het voeden te bepalen, is het belangrijk om 15 sec continue toevoer opnemen. Deze werkwijzen gepresenteerde verschaffen derhalve het eerste raamwerk voor het onderzoeken predatory gedrag bij nematode systemen. Bovendien kunnen zij ook worden aangepast voor gebruik in het onderzoek naar andere interacties binnen de nematode ecosysteem met inbegrip van de invloed van aanvullend ecologisch relevante organismen predatie waaronder micro-organismen, schimmels en mijten . Zo bieden ze een middel te ontleden hoe deze roofzuchtige gedrag worden geregeld, hoe zij mogen zijn geëvolueerd en ook hun ecologische betekenis.

Nematoden met hun kleine maar complexe zenuwstelsels zijn krachtige instrumenten gebleken voor het begrijpen van vele aspecten van neurobiologie, waaronder gedrag. Veel van dit onderzoek is gericht op het modelorganisme Caenorhabditis elegans waar een groot verschillende gedragingen met succes zijn ontleed en geanalyseerd. Deze omvatten mechanosensorische 3, chemotactische 4, thermotactic 5,6 en magnetotactic 7 beïnvloeden paring 8,9, het leren van 10 en voeden gedragingen 11. Echter, andere, meer ver verwant aaltjessoorten tonen gedragingen die niet zijn waargenomen in de rhabditid C. elegans of als alternatief tonen een hogere mate van complexiteit, waarvan pertinente vragen met betrekking tot hun evolutie en regelgeving verhoogt. Een zo&#39;n voorbeeld hiervan kan worden waargenomen in de verte verwant diplogastrid nematode Pristionchus pacificus, die veel complexer voeding zijn weergegevenhaviors en ritmes dan worden waargenomen in C. elegans 1. Dit ondanks de twee soorten homologe pharyngeal neuronen 12 delen. Gelijktijdig met deze extra voeding gedrag, P. pacificus toont ook een uitgezette voeding bereik mocht zijn enthousiaste roofdieren, kunnen vullen hun dieet door bacteriële ook voeden met de larven van andere nematoden. Gelukkig, P. pacificus is ontwikkeld als een model voor vergelijkende en integratieve evolutionaire biologie en dus vele moleculaire en genetische tools zijn nu beschikbaar. Deze omvatten een volledig gesequenced en geannoteerde genoom 13, moleculaire en genetische gereedschappen zoals transgenen 14 en CRISPR / Cas9 15,16 en gedetailleerde en geannoteerde fylogenie 17 met meer dan 25 nauw verwante soorten, waaronder de nieuw ontdekte zuster species. Bovendien, de ecologie van vele soorten, waaronder P. Pristionchus pacificus is dat well gedefinieerd met vele soorten die nu beschreven delen van een necromenic associatie met mestkevers, een gastheer ze vaak delen met andere nematoden 18. P. pacificus voorziet daarom een uitstekend model systeem waarmee de evolutie van nieuwe gedragingen en hun ecologische betekenis te ontleden. Om roofzuchtige voederen gedrag bij nematode soorten zoals P. analyseren pacificus ontwikkelden we een aantal nieuwe gedrags-assays voor gemakkelijke observatie en kwantificering van roofzuchtige acties. Zoals P. pacificus toont een dimorphic mond structuur, die roofzuchtig gedrag sterk beïnvloedt, de identificatie van de juiste morfotype essentieel is 1,2. De smalle mond stenostomatous morph bevat één botte dorsale tand en is niet betrokken bij eventueel roofzuchtig voeden. Als alternatief kan de wijdmonds eurystomatous morph is voorzien van een veel grotere klauw vormige dorsale tand en een extra tegengesteldesub-ventrale tand, die samen de cuticula van hun prooi efficiënt openen. De verhouding van de roofzuchtige eurystomatous aan de niet-roofzuchtige stenostomatous vorm varieert tussen Pristionchus soorten en ook binnen P. pacificus echter het percentage eurystomatous mond morph in P. pacificus wild type stam (PS312) is meestal 70-90% 2. Bovendien kan de mond vorm verhoudingen fluctueren met verschillende omgevingsinvloeden (beide bekend, waaronder honger en enkele kleine moleculen signalering als onbekenden), waardoor correcte identificatie en isolatie van de roofmijt eurystomatous mond vorm is essentieel voor een succesvolle predatory assays. Naast de beschrijving van de roofzuchtige mond vorm hebben we een &quot;bite test&quot; voor directe observatie en kwantificering van roofzuchtige gedrag zoals bijten, doden en eten evenementen ontwikkeld. Hier prooi nematoden zijn geïsoleerd door het filtering van nieuw uitgehongerd culturen en blootgesteld aan roofzuchtige volwassen P. pacificus, die samen over een korte tijdspanne in acht worden genomen. Daarnaast hebben we ook ontwikkelde een high throughput &quot;lijk test&quot; voor een snelle screening van roofzuchtig marktgedrag te vergemakkelijken door middel van indirecte observatie van roofzuchtige evenementen. Dit maakt gebruik van de aanwezigheid van larven lijken als hulpmiddel om te screenen op predatie. Beide tests zorgen voor een gemakkelijke en zeer herhaalbare methoden voor het waarnemen en meten van roofzuchtig gedrag in nematode soorten zoals P. pacificus.

<table><tbody><tr><td>Nylon net filters (20 &#181;m)</td><td>Merck Millipore Ltd</td><td>NY2004700</td><td>Wordt gebruikt om wormen te filteren die net larven achterlaten voor gebruik als prooi.</td></tr><tr><td>PP Trechter voor filter (54 mm)</td><td>Duran</td><td>292215003</td><td>Wordt gebruikt om wormen te filteren die net larven achterlaten voor gebruik als prooi.</td></tr><tr><td>Kleine petrischaal (35/10 mm)</td><td>Greiner Bio-One&nbsp;</td><td>627102</td><td>Voor beeldvorming op hogesnelheidscamera</td></tr><tr><td>Zeiss SteREO Discovery V12</td><td></td><td></td><td>Voor identificatie van mondvorm</td></tr><tr><td>Axio-Imager A1</td><td></td><td></td><td>Voor identificatie van mondvorm</td></tr><tr><td>Glijplaatjes</td><td>Roth</td><td>H869</td><td></td></tr><tr><td>Dekplaatjes</td><td>Roth</td><td>657</td><td></td></tr><tr><td>Motion Scope M3 Hogesnelheidscamera</td><td>IDT</td><td></td><td>Hogesnelheidscamera</td></tr><tr><td>Video zoom 44 ENG 1/2" 0.5X tot 2.4X</td><td>Zeis</td><td>452984-0000-000</td><td>Zoomlens voor hogesnelheidscamera</td></tr><tr><td>Nematoden Groei Medium (NGM) ingrediënten:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Agar</td><td>Roth</td><td>5210.2</td><td>CAS-Nr. 9002-18-0</td></tr><tr><td>Natriumchloride (NaCl)</td><td>Roth</td><td>3957</td><td>CAS-Nr. 7647-14-5</td></tr><tr><td>Bacto Tryptone</td><td>BD</td><td>211699</td><td>Lot 4316614</td></tr><tr><td>Calciumchloride dihydraat (CaCl2)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C3306</td><td>CAS-Nr. 10035-04-8</td></tr><tr><td>Cholesterol uit lanoline</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F 26732 00050</td><td>CAS-Nr. 57-88-5</td></tr><tr><td>Magnesiumsulfaat heptahydraat (MgSO4)</td><td>Merck</td><td>1.058.861.000</td><td>CAS-Nr. 10034-99-8</td></tr><tr><td>Kaliumdiwaterstoffosfaat (KH2PO4)</td><td>ACROS organics</td><td>271080025</td><td>CAS-Nr. 7778-77-0</td></tr><tr><td>6 cm petrischaal</td><td>Greiner Bio-One</td><td>628102</td><td></td></tr><tr><td>3.5 cm petrischaal</td><td>Greiner Bio-One</td><td>627102</td><td></td></tr><tr><td>M9 ingrediënten:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kaliumdiwaterstoffosfaat (KH2PO4)</td><td>ACROS organics</td><td>271080025</td><td>CAS-Nr. 7778-77-0</td></tr><tr><td>Natriumwaterstoffosfaat heptahydraat (NaHPO4)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S9390-500G-D</td><td>CAS-Nr. 7782-85-6</td></tr><tr><td>Natriumchloride (NaCl)</td><td>Roth</td><td>3957</td><td>CAS-Nr. 7647-14-5</td></tr></tbody></table>

het testen van predatory feeding gedrag in<em&gt; pristionchus</em&gt; en andere nematoden

Assaying Predatory Feeding Behaviors in Pristionchus and Other Nematodes

Dit protocol biedt meerdere methoden voor de analyse en kwantificering van roofzuchtige voedingsgedragingen bij nematoden. Veel nematodensoorten, waaronder Pristionchus pacificus, vertonen complex gedrag, waarvan de meest opvallende het bejagen van andere nematodenlarven is. Echter, aangezien deze gedragingen afwezig zijn in het modelorganisme Caenorhabditis elegans, zijn ze tot nu toe pas onlangs in detail beschreven, samen met de ontwikkeling van betrouwbare gedragstesten 1. Dit roofzuchtige gedrag is afhankelijk van fenotypisch plastische maar vaste mondmorfen, waardoor de juiste identificatie en categorisatie van deze dieren essentieel is. In P. pacificus zijn er twee mondtypen, de stenostomatous en eurystomatous morfen 2, waarbij alleen de breed mondigen eurystomatous een extra tand bevatten en in staat zijn om andere nematodenlarven te doden. Door de isolatie van een overvloed aan op grootte afgestemde prooi-larven en daaropvolgende blootstelling aan roofzuchtige nematoden, zijn tests, inclusief zowel "lijktesten" als "beettesten" op correct geïdentificeerde mondmorf-nematoden mogelijk. Deze tests bieden een manier om roofsuccespercentages snel te kwantificeren en bieden een gedetailleerde gedragsanalyse van individuele nematoden die betrokken zijn bij roofvoedingsactiviteiten. Bovendien is, met behulp van een hogesnelheidscamera, visualisatie van veranderingen in faryngeale activiteit, inclusief tand- en pompdynamiek, ook mogelijk.

<html> Na succesvolle identificatie van de geschikte mond morph in P. pacificus duidelijke verschillen tussen eurystomatous en stenostomatous dieren kunnen worden gedetecteerd (figuur 3) met slechts de eurystomatous dieren betrokken zijn bij het ​​doden gedrag. In stenostomatous dieren lijkt dit gedrag volledig worden onderdrukt. Bovendien verschillen in de tand activiteit en keelholte pompen van eurystomatous dieren op bacteriën en prooi (figuur 4 en films 2 en 3) zijn ook duidelijk. Terwijl roof voeden, wordt de pompsnelheid daaronder waargenomen tijdens bacteriële voeding en tandverplaatsing wordt gedetecteerd in een 12:59 verhouding van de keelholte pompen verminderd. Dit is potentieel een indicatie van belangrijke regulerende mechanismen moduleren van de behavioral respons op verschillende dieet. s / ftp_upload / 54404 / 54404fig1.jpg &quot;/&gt; Figuur 1. P. pacificus heeft een Mouth dimorfisme die invloeden eetgedrag. (A) De eurystomatous mond vorm is in staat om predatie en heeft een brede mond opening met een grote klauw vormige dorsale tand (vals-rood gekleurd) en (B) een grote tegenstander haakvormige sub-ventrale tand (vals-blauw gekleurde). (C) De stenostomatous mond vorm alleen kan voeden met bacteriën en heeft een beperktere mondopening met een vuursteen gevormde dorsale tand (kunstmatig rood gekleurd) en (D) geen sub-ventrale tand (*). Normaski beelden zijn 63x en schaal balk vertegenwoordigt 10 micrometer. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54404/54404fig1large.jpg" target="_blank">Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.</a> <img alt="Figuur 2" src="/files/ftp_upload/54404/54404fig2.jpg" /> <strong&gt; Figuur 2. Predation Testen. (A) P. pacificus bijt en doodt de larven van andere nematoden zoals C. elegans. (B) voor het bijten assays, kan het aantal bitesby roofdieren (*) in acht worden genomen met behulp van een lichte stereomicroscoop en succesvolle doden en voeden van evenementen ook geregistreerd. Corpses zijn ook duidelijk zichtbaar (cirkels). (C) Voor lijk assays, larvale karkassen (pijlen) kan worden makkelijk te herkennen in vergelijking met levende larven. Schaal bar vertegenwoordigt 1 mm in B en 150 micrometer in C. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54404/54404fig2large.jpg" target="_blank">Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.</a> <img alt="figuur 3" src="/files/ftp_upload/54404/54404fig3.jpg" /> Figuur 3. Resultaten van Bite en Corpse Testen op C. elegans Prey. (A) bijtgedrag is pas duidelijk<html> in de eurystomatous mond vorm met dit gedrag niet weergegeven in stenostomatous dieren. Error bar vertegenwoordigt standaarddeviatie van 10 herhalingen. (B) Gelijktijdig met geen bijtgedrag blijkt uit stenostomatous dieren, lijk assays onthullen ook kadavers alleen assay platen van eurystomatous dieren. Error bar vertegenwoordigt standaarddeviatie van 5 herhalingen. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54404/54404fig3large.jpg" target="_blank">Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.</a> <img alt="figuur 4" src="/files/ftp_upload/54404/54404fig4.jpg" /> Figuur 4. Eurystomatous pompsnelheid en Tooth Beweging tijdens Predatory Feeding. Tooth beweging wordt alleen waargenomen terwijl eurystomatous dieren zijn betrokken bij roofzuchtige voeding. Dit valt samen met een reductie van pharynx pompen. Error bar vertegenwoordigt standaarddeviatie van 10 herhalingen.<html> href = &quot;https://www.jove.com/files/ftp_upload/54404/54404fig4large.jpg&quot; target = &quot;_ blank&quot;&gt; Klik hier om een ​​grotere versie van deze figuur te bekijken. <img alt="film 1" src="/files/ftp_upload/54404/54404movie1.jpg" /> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54404/Movie_1_Killing_behaviour.mp4">Film 1. Waarneming van Killing Behavior voor Bite Assay met behulp van een Light Stereomicroscope. (Klik met de rechtermuisknop om te downloaden).</a> <img alt="Movie 2" src="/files/ftp_upload/54404/54404movie2.jpg" /> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54404/Movie_2_HS_Camera_Killing.mp4">Movie 2. High-speed camera Filmpje van P. pacificus doden C. elegans Larven. (Klik met de rechtermuisknop om te downloaden).</a> ad / 54404 / 54404movie3.jpg &quot;/&gt; <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54404/Movie_3_HS_pumping_and_tooth.mp4">Movie 3. Ingezoomd High-speed camera van tandverplaatsing Tijdens Predation. (Klik met de rechtermuisknop om te downloaden).</a>

Gedragstests bieden krachtige hulpmiddelen voor het begrijpen van neuronale functie. Hier presenteren we verschillende protocollen voor het kwantificeren van roofzuchtig voedingsgedrag dat wordt aangetroffen in het modelrondworm Pristionchus pacificus en zijn verwanten. Bovendien bieden we methoden voor het analyseren van roofzuchtige voedingsaanpassingen, inclusief mondstructuren en tanden.

Het testen van Predatory Feeding gedrag in<em&gt; Pristionchus</em&gt; En andere Nematoden

This protocol provides multiple methods for the analysis and quantification of predatory feeding behaviors in nematodes. Many nematode species including ...

Het algemene doel van deze procedures is om complex voedingsgedrag bij roofnematoden betrouwbaar te analyseren met behulp van verschillende nieuwe assays. Deze methoden kunnen helpen bij het beantwoorden van kernvragen binnen de gedragsneurobiologie, zoals de regulatie van nieuwe complexe gedragingen en inderdaad ook de evolutie daarvan. De belangrijkste voordelen van deze technieken zijn dat ze snelle, eenvoudig te herhalen methoden bieden om roofvoedingsgedrag bij nematoden te observeren en te kwantificeren, waaronder het satellietmodelorganisme Pristionchus pacificus.Om de mondvormen van de nematode te visualiseren, moeten de wormen eerst worden geïmmobiliseerd met een milde anesthetische behandeling op een vers gemaakte 2% agarosepad. Om een pad te maken, voegt u voorzichtig 10 µL van een 10% natriumaazidoplossing toe aan drie milliliter gesmolten agarose en mengt u dit grondig. Natriumaazide is reactief en toxisch, neem daarom de juiste voorzorgsmaatregelen.Druppel vervolgens ten minste 300 µL van het mengsel op het midden van een standaard glazen objectglas en gebruik een ander objectglas om de agarose plat te drukken. Laat het bovenste objectglas op zijn plaats tot het kussentje bijna wordt gebruikt. Om het kussentje klaar te maken voor gebruik, verwijdert u het bovenste objectglas en voegt u een druppel M9 toe. Selecteer vervolgens twee of drie wormen, plaats deze in de druppel en breng voorzichtig een dekglas aan.Observeer de wormen met 63x Nomarski-optiek om hun morfologische identiteiten te categoriseren. Een vergrote dorsale tand, een extra subventrale tand of een vergrote brede mondopening zijn allemaal kenmerken van een eurystomateus dier. Terwijl een enkele dorsale tand en een smallere mondopening wijzen op een stenostomateus dier.Verwijder de nematoden binnen vijf minuten van het anesthetische kussentje. Schuif het dekglas voorzichtig weg en breng ze over naar een nieuwe MGM-plaat. Wacht tot ze beweeglijk gedrag vertonen voordat u overgaat tot verdere analyse.Met meer ervaring kan de morfologie worden bepaald zonder anesthetische behandeling. Draag 10 tot 20 nematoden van een standaardcultuurplaat over naar een verse plaat gezaaid met een bacterieel gazon van OP50 voor snelle fenotypering van de mondvorm met behulp van een stereomicroscoop met hoge vergroting. Detecteer vervolgens verschillen in mondgrootte en breedte.Bij deze vergroting zijn geen tandspecificaties waarneembaar, dus identificeer mondmorfologieën op basis van hun breedte. Maak hiermee onderscheid tussen brede monden en smalle monden. Stel de assayplaten samen door een grote hoeveelheid geselecteerde prooisolateden van nematoden te kweken, zoals larvale stadia van C.elegans of een passende ecologisch relevante prooi.Laat vier of meer platen van de prooisoort uithongeren om de L1-larven te verzamelen. Was de platen vervolgens met M9 en leid het verzamelde materiaal door twee filters van 20 micron. Alleen de kleine larven mogen in de oplossing achterblijven.Centrifugeer de larven gedurende één minuut bij 377 g om een pellet te vormen. Verwijder het M9-supernatant naar een afvalbeker en neem een aliquot van 3 µL van de zuivere wormpellet. Plaats de wormen in het centrum van een MGM-plaat van zes centimeter zonder E.coli en laat ze ongeveer een half uur verspreiden.Gebruik de larven later voor de beet-assay. Breng de predatoren over naar de assayplaat met zo min mogelijk OP50-bacteriën. Voeg voor P.pacificus vijf predatoren aan de plaat toe.Wacht 15 minuten om de overgeplaatste dieren de tijd te geven om te herstellen van de stress. Na 15 minuten zouden de wormen zich normaal moeten bewegen; indien dit niet het geval is, kunnen ze beschadigd zijn. Observeer en noteer nu gedurende 10 minuten duidelijke gebeurtenissen door een van de predatoren.Bijten wordt gekenmerkt door het beperken van de beweging van de prooi door de predator. Het doden vindt plaats wanneer de cuticula van de prooi wordt geopend. Voeden wordt gekenmerkt door een waarneembare consumptie van de inwendige organen van de prooi.Observeer ten minste 10 individuele roofnematoden om de nauwkeurigheid te waarborgen. Faryngeaal pompen en tandbeweging kunnen worden waargenomen onder Nomarski-optiek bij een vergroting van 40 tot 63x en worden vastgelegd met een hogesnelheidscamera bij 50 hertz. Na het opnemen van clips van 15 seconden van ten minste 20 dieren kunnen de video's betrouwbaar worden geanalyseerd.Pompen wordt waargenomen in het corpus, gelegen in het midden van de farynx. Tandbeweging is detecteerbaar in de mondopening en wordt alleen waargenomen bij de dorsale tand. Screen na twee uur predatie de plaat op lege karkassen.Identificeer de karkassen aan de hand van hun gebrek aan mobiliteit en duidelijke morfologische defecten, waaronder lekkende ingewanden of ontbrekende wormfragmenten. Na succesvolle identificatie van de juiste mondmorfologie bij P.pacificus werden duidelijke verschillen tussen eurystomate en stenostomate dieren waargenomen. Alleen eurystomate dieren vertoonden dodoordend gedrag.Bovendien zijn de verschillen in tandactiviteit en faryngeale pomping van eurystamatous dieren bij voeding met bacteriën versus prooien duidelijk zichtbaar. Tijdens predatorisch voeden is de pompsnelheid lager dan wat wordt waargenomen bij bacteriële voeding, en de tandbeweging loopt synchroon met de faryngeale pomping. Na het bekijken van deze video zou u een goed begrip moeten hebben van hoe deze verschillende assays gecombineerd kunnen worden om complex predatorisch voedingsgedrag bij nematoden te karakteriseren, inclusief in het satellietmodelorganisme Pristionchus pacificus.

assaying-predatory-feeding-behaviors-pristionchus-other

Research

JoVE Journal

Environment

Milieu

Deze video introduceert chemotaxis in het nematode C. elegans en toont een monsterprotocol dat chemotactische afkeer van kopersulfaat test.

C. elegans Chemotaxis Assay: een methode om chemosensatie in wormen te testen

This video describes an osmotic avoidance assay to examine chemoavoidance behavior in a transgenic worm model. Avoidance behavior is tested in a plate in the presence of a high-osmotic barrier and chemoattractant. The worms with a functional loss of neurons get attracted by the chemoattractant, cross the high-osmotic barrier, and become paralyzed in the trap zone because of the anesthetic solution.

Examine Chemoavoidance Behavior in Transgenic Worms Using Osmotic Avoidance Assay

Entomopathogene aaltjes-grondbewonende rondwormen die een brede waaier van insecten parasiteren. We tonen bemonsteringsmethoden voor de isolatie van deze nematoden uit de bodem met behulp van twee technieken: de insecten lokken en de gewijzigde White val, voor het herstel van nematoden uit bodemmonsters en geïnfecteerde insecten kadavers, respectievelijk.

Grondmonstername en isolatie van Entomopathogene Nematoden (Steinernematidae, Heterorhabditidea)

Een protocol voor het onderzoeken van het paringsgedrag van de dennennematode, Bursaphelenchus xylophilus, wordt gepresenteerd. Gedragskenmerken van B. xylophilus worden beschreven in het paringsproces.

Observatie en kwantificering van paargedrag in het dennenaaltje, Bursaphelenchus xylophilus

Hier presenteren we een Caenorhabditis elegans -specifieke test die is ontworpen om veranderingen in het koperen aversiegedrag te evalueren en het vermogen om een ​​gemeenschappelijke voedingsbron te lokaliseren, als het organisme zich voortbrengt van een goed gevoed aan hongerige voedingswaarde.

EEN<em&gt; Caenorhabditis elegans</em&gt; Voedingsstatus gebaseerde Koper Aversion Assay

We presenteren een gedragsopname-opstelling en protocol waarmee geautomatiseerde analyse van de nematode, Caenorhabditis elegans , de voorkeur geeft aan oplosbare verbindingen in een populatie gebaseerde assay. Dit artikel beschrijft de constructie van een gedragskamer, het gedragsprotocol en het gebruik van videoanalyse software.

Geautomatiseerde Analyse van een Chemische Sensorische Preference Assay van een Nematodebevolking

Dit protocol schetst een methode voor het efficiënt extraheren van levende nematoden uit natuurlijke substraten in het veld.

Snelle isolatie van wilde nematoden door Baermann Funnel

Dit protocol kan worden gebruikt om grootschalige ecologische onderzoeken uit te voeren van zelfrijdende Caenorhabditis-nematoden . Het belangrijkste voordeel van deze methode is de efficiënte organisatie en analyse van ecologische en moleculaire gegevens die verband houden met de nematoden die uit de natuur zijn verzameld.

Een zeer schaalbare aanpak om ecologische onderzoeken van zelfrijdende Caenorhabditis-nematoden uit te voeren

Caenorhabditis elegans is een van de belangrijkste modelsoorten in de biologie, maar bijna al het onderzoek wordt uitgevoerd in afwezigheid van de natuurlijk geassocieerde microben. De hier beschreven methoden zullen helpen om ons begrip van de diversiteit van geassocieerde microben te verbeteren als basis voor toekomstig functioneel C. elegans-onderzoek .

Isolatie en karakterisering van de natuurlijke microbiota van het modelnematode Caenorhabditis elegans

Hier wordt een systeem gerapporteerd voor het bestuderen van het collectieve gedrag van nematoden door ze in bulk te kweken met behulp van hondenvoer-agarmedium. Dit systeem stelt onderzoekers in staat om grote aantallen dauerwormen te vermeerderen en kan worden toegepast op Caenorhabditis elegans en andere verwante soorten.

Het op grote schaal kweken van nematoden om hun collectieve gedrag te bestuderen

Deze studie evalueerde de biologische activiteiten van Tithonia diversifolia-extracten met behulp van op radicalen gebaseerde methoden en een in vitro egg hatching assay (EHA) om hun effecten op gastro-intestinale nematoden bij kleine herkauwers te beoordelen. De methodologie en de belangrijkste bevindingen worden beschreven, waarbij het potentieel van deze extracten voor de bestrijding van parasieten wordt benadrukt.

Evaluatie van antioxiderende en anthelmintische eigenschappen van Tithonia diversifolia-extracten tegen gastro-intestinale nematodeneieren met behulp van in vitro assays

Leer hoe je roofvoedingsgedrag analyseert in Pristionchus pacificus en andere nematoden met behulp van hoogvergrotingsmicroscopie en high-speed camera's. Deze methoden kwantificeren mondstructuren en gedragspatronen voor gedragsneurobiologisch onderzoek.

Het testen van Predatory Feeding gedrag in

Meer video's verkennen