31 augustus 2016
Een nieuwe techniek voor de detectie van lage abundantie endogeen receptoren aanwezig in zebravis embryo's wordt beschreven. We hebben het AFLIP genoemd omdat het bestaat uit affiniteitslabeling van de receptor door zijn ligand gekoppeld aan immunoprecipitatie.
Het algemene doel van deze procedure is om receptoren voor groeifactoren met een lage abundantie in zebravis-embryo's te detecteren door de selectiviteit en gevoeligheid van affiniteitslabeling van de gekozen receptor door zijn radioactieve ligand te combineren. Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van vragen op het gebied van ontwikkelingsbiologie, zoals de expressieniveaus van receptoren en hun biochemische eigenschappen. Deze methode, die we AFLIP hebben genoemd, breidt de krachtige beschrijvende eigenschappen van affiniteitslabeling, een goed gevestigde celbiologietechniek, uit naar ontwikkelingsstudies van zebravissen.
Om deze procedure te starten, verzamel 100 tot 200 embryo's voor elke conditie en plaats ze in petrischalen met viswater. Dechorioneer vervolgens de embryo's handmatig met behulp van pincetten met een fijne punt en vermijd het gebruik van pronase of enige andere protease gedurende het hele protocol, omdat dit de beoogde receptoren kan verteren. Plaats vervolgens de embryo's in een microcentrifugebuisje van 1,5 milliliter en was ze twee keer met 1X PBS.
Voeg vervolgens 500 microliter deyolkbuffer toe. Laat het grootste deel van het dooier los door de embryo's in de oplossing zachtjes omhoog en omlaag te pipetteren, ongeveer 30 tot 40 keer. Gebruik voor embryo's van 72 HPF en 48 HPF respectievelijk blauwe en gele pipettentips.
Gele tips moeten mogelijk lichtjes worden doorgesneden om te voorkomen dat de embryo's worden vernietigd. Een succesvolle dooiervrijlating kan worden gecontroleerd door de embryo's onder de microscoop te observeren. Verwijdering van het dooier moet zo compleet mogelijk zijn, omdat dooierlipiden en -eiwitten kunnen interfereren met volgende ligand- of antilichaambindingsstappen.
Verzamel vervolgens de embryo's door centrifugatie bij 600 x g gedurende 15 seconden. Gooi voorzichtig het supernatant weg met behulp van een pipet. Was vervolgens de embryo's twee keer met 500 microliter wasbuffer door ze voorzichtig te vortexen op de laagste snelheid.
Verzamel vervolgens de embryo's door centrifugatie bij 600 x g gedurende 15 seconden. Vanaf hier gaat het vervolg van de procedure bij vier graden Celsius. Gooi het supernatant voorzichtig weg met behulp van een pipet.
Daarna suspenderen we de embryo's in 350 microliter lysisbuffer en homogeniseren ze met behulp van een plastic stamper. Incubeer vervolgens de gelyseerde embryo's gedurende 30 minuten met agiteren op een testbuisrokker bij vier graden Celsius. Centrifugeer vervolgens de gelyseerde embryo's bij 11.000 x g gedurende 15 minuten om de onoplosbare deeltjes te verwijderen.
Breng vervolgens het verdunde supernatant over naar een verse buis. Bepaal het totale eiwit met behulp van de Bradford-eiwittest en stel een calibratiecurve op. Plaats in deze stap 400 tot 500 microgram totaal embryo-eiwit in een microcentrifugebuisje van 1,5 milliliter en verdun het tot één microgram per microliter met buffer 1.
Voeg vervolgens Iodine-125-label TGF-beta II-stock toe om een eindconcentratie van 150 picomolair te bereiken en incubeer met agiteren op een testbuisrokker gedurende twee uur bij vier graden Celsius. Voeg vervolgens onverdund antilichaam tegen de belangrijke receptor toe om een 1:100 verdunning te bereiken. Vervolgens de incubatie gedurende nog eens twee uur of een nacht voortzetten bij vier graden Celsius.
Na incubatie voegt u 50 microliter geschikte immunoglobuline-bindingsbead toe en incubeert u gedurende 50 minuten met agiteren op een testbuisrokker bij vier graden Celsius. Herwin vervolgens de beadjes door microcentrifugatie bij 11.000 x g gedurende 20 seconden en gooi het supernatant weg in een geschikte radioactieve afvalcontainer. Was vervolgens de IP-beadjes drie keer met één milliliter IP-washbuffer door voor elke keer 20 seconden te vortexen en microcentrifugeren bij 11.000 x g.
Suspendeer vervolgens de IP-beadjes opnieuw in 250 microliter IP-washbuffer. Bereid verse DSS-oplossing voor en voeg 1,5 microliter hiervan toe aan het monster. Incubeer vervolgens het monster gedurende 15 minuten bij vier graden Celsius met agiteren.
Om de cross-linkingreactie te onderdrukken, voegt u 500 microliter IP-washbuffer toe die is aangevuld met voldoende trystchloridestock bij pH 7,4 om 25 millimolair trystchloride te bereiken. Centrifugeer vervolgens bij 11.000 x g gedurende 20 seconden om IP-beadjes te verzamelen. Gooi vervolgens het supernatant weg en suspendeer de IP-beadjes opnieuw in 30 microliter reducerende laemmlibuffer.
Kook vervolgens het monster gedurende vijf minuten bij 94 graden Celsius voordat u het onderwerpt aan SDS-PAGE-gelelektroforese en analyseer vervolgens de gedroogde gels in een fosforimeter of door conventionele autoradiografie. Deze figuur toont de representatieve resultaten die zijn verkregen met AFLIP. Totaal eiwit geëxtraheerd uit de embryo's bij 72 hpf en 48 hpf werd onderworpen aan Iodine-125 TGF-beta II affiniteitslabeling, gevolgd door IP met konijnenanti-zebravis BG of konijnenanti-rat BG als controle.
In de autoradiografie kan BG worden gedetecteerd zonder GAG of als een glycosaminoglycaan-gemodificeerd BG. Deze figuur toont hoe AFLIP kan worden gebruikt om de expressieniveaus van een bepaalde receptor in embryo's te meten die zijn onderworpen aan een experimentele manipulatie, in dit geval de afname van betaglycan naar de morpholino-injectie. Baan een toont het niveau van TGF beta-receptor III in een wildtype-embryo van 72 hpf, terwijl baan twee het effect laat zien van het toedienen van zeven nanogram van een morpholino gericht op de exon 2-intron 2-grens van het ZFPG-primaire transcript. Merk op dat de BG-downregulatie die is verkregen met deze morpholino niet wordt gereproduceerd door de mismatchcontrole.
Deze resultaten bevestigden dat het fenotype dat is verkregen met deze morpholino specifiek was voor het knockdown van de TGF beta-receptor III zoals eerder beschreven. Het succes van AFLIP voor het detecteren van een groeifactor of cytokinereceptor hangt af van de beschikbaarheid van een radioactief gelabelde ligand die kan worden gebonden en gekruisverbonden met zijn receptor. Een goed antilichaam voor immuno
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel beschrijft een nieuwe techniek genaamd AFLIP voor het detecteren van groeifactorreceptoren met een lage abundantie in zebravissenembryo's. De methode combineert affiniteitslabeling met immunoprecipitatie om de gevoeligheid en selectiviteit te verhogen.
Het detecteren van receptoren met een lage abundantie in vroege ontwikkelingsmodellen ondersteunt de validatie van targets door de aanwezigheid van receptoren en de expressiedynamiek te bevestigen. AFLIP verhoogt de sensitiviteit voor receptoren die moeilijk te detecteren zijn via conventionele methoden, wat helpt bij het mechanistisch reduceren van risico's in groeifactor-signaleringsroutes. Dit maakt een meer zekere targetselectie mogelijk in preklinisch onderzoek, in het bijzonder voor targets van de TGF-β superfamilie zoals betaglycan.
AFLIP past binnen het continuüm van vroege ontdekking en ondersteunt de validatie van targets voorafgaand aan de identificatie van leads door biochemische bevestiging van receptorexpressie en ligandbinding te verschaffen.