Name: Neonatale Cardiac Steigers: Novel Matrices voor Regenerative Studies (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-11-05T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 16 s
Description: Leer hoe je nieuwe cardiale steigers maakt van neonataal muizenweefsel voor regeneratief onderzoek. Deze methode onthult unieke eigenschappen van de neonatale extracellulaire matrix en cel-matrix interacties.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

De auteurs danken mevrouw Cynthia DeKay hartelijk voor de voorbereiding van de figuren.

Alle muizen experimenten werden uitgevoerd in overeenstemming met de Amerikaanse Animal Welfare Act en werden aan de Universiteit van Minnesota door de Institutional Animal Care en gebruik Comite goedgekeurd. 1. Werkwijze voor muizenhart Isolation <ol><li> Euthanaseren een neonatale muis door onthoofding met een eenmalig gebruik mes. </li><li> Zwabberen de thorax met 70% ethanol. </li><li> Ontleden de huid van de borst door snijden vanaf de borstwand met standaard schaar en trek de huid lateraal met een paar van # 5 tang. </li><li> Perforeren buik net inferieur aan het borstbeen met de schaar door doorsnijden van de buikwand. Grijpen de processus xiphoideus met # 5 tang, trekken het borstbeen rostraal van het lichaam, terwijl het doorknippen van de ribben aan weerszijden van de borst met de schaar. De ribbenkast wordt weerspiegeld superiorly met de tang om het hart te openbaren. </li><li> Botweg ontleden de twee lobben van de thymus door zijdelings trekken met # 5 tang, blootde boog van de aorta, en de cavale en longaderen. </li><li> Doorsnijden de grote slagaders van de aortaboog en de aorta zelf, met de 10 cm voorjaar schaar. Bewaar de aorta tussen de basis van het hart en de brachycefale slagader. Pak de uiteinden van de doorgesneden binnenschepen met # 5 tang om het hart uit te geven, scheidt van de luchtpijp en de slokdarm. </li><li> Doorsnijden de pulmonaire vasculatuur en andere grote aderen, door te snijden tussen de longen en het hart op beide zijden van het hart met de veer 10 cm schaar. De aderen open blijven om de drainage te bieden. </li><li> Verwijder het hart van het mediastinum met de # 5 tang, grijpen de afgehakte uiteinden van de grote schepen. Plaats het hart in een 60 mm kweekschaal met steriele fosfaat gebufferde zoutoplossing (PBS) voor katheterisatie. </li></ol> 2. Methode voor Decellularisatie door Langendorff perfusie <ol><li> Bereid het kathetersamenstel vooraf. Teken een sectie 4 cmPE 50 buis in een kleine alcohol vlam een ​​kleinere, dunnere katheter creëren. Snijd de uiteinden met een mes de afmetingen voldoen (Ong. 300 urn buitendiameter OD met een flens van ong. 500 pm OD) in figuur 1. Dit zal twee symmetrische katheters aan beide kanten van de trekkracht. </li><li> Richt het afgesneden uiteinde van de slang in de vlam kort een flens smelten op de opening aan het dunne uiteinde. </li><li> Vul de spuit met 12 ml PBS en monteer de katheter door een 3-weg kraan op de spuit. Voeg een 22 G x 1 naald om de kraan en rijden de naald door het septum. Schuif de getekende PE buis catheter op de naald (afb. 1). </li><li> Irrigeren de geassembleerde onderdelen met PBS, die waarborgen dat alle luchtbellen zijn verwijderd. </li><li> Een katheter, bereid zoals hierboven beschreven, in de aorta van het geïsoleerde hart, niet tot voorbij de aortaklep en ligeren met een band van 7-0 hechtdraad. Rest de flens van tHij katheter proximaal ten opzichte van de band, waardoor een goede afdichting en het voorkomen van het hart van komende uit de katheter. </li><li> Houd u aan de catheterisatie onder een vergrootglas, terwijl zachtjes perfuseren het hart met behulp van de spuit met PBS. Zorg ervoor dat er geen lekken in het systeem en het weefsel homogeen blanches als latente bloed wordt verwijderd. </li><li> Plaats het septum in de hals van de inlaat adapter en sluit deze door het vouwen van de zijkanten over het glas. </li><li> Bevestig het reservoir gevuld met 60 ml 1% natriumdodecylsulfaat (SDS) in gedestilleerd water (dH 2 O) via een leiding lang genoeg is om een kolom die 20 mm Hg druk genereerd zoals getoond in Fig produceren. 1. Bereken de druk van de vloeistofkolom hoogte gebaseerd op de verhouding van 1 mm Hg gelijk aan 1,3595 cm H2O Let op: SDS is een zeer vlokkig poeder met irriterende eigenschappen. Contact moet vermeden. Behandel het poeder met behulp van geschikte beschermende kleding. </li><li> Perfuseren het hart met 1% SDS gedurende 14 uur. Het hart wordt doorzichtig in uiterlijk zonder waarneembare resterende weefsel. </li><li> Spoel het systeem tot de plugkraan van de resterende SDS-oplossing en vervangen door 10 ml dH 2 O. Perfuseren het hart met 10 ml 1% Triton X-100 (verdund in gedestilleerd water), gevolgd door 10 ml dH 2 O, gevolgd door 60 ml PBS met 1x penicilline streptomycine (Pen-Strep). </li><li> Bewaar het hart in PBS met 1x Pen-Strep bij 4 ° C. Als de beoogde functie decellularisatie toepassing perfusie dan de katheter in de aorta moet worden gehandhaafd vereist, anders snijd de hechtdraad band en verwijder de katheter. </li></ol> 3. DNA Vaststelling <ol><li> Bereid een samenvatting van de ontcelde ECM of control hart met behulp van 200 ug / ml proteïnase K in 50 mM KCI, 2,5 mM MgCl2, 0,45% Tween 20 in 10 mM Tris (pH 8,3). </li><li> Incubeer het weefsel bij 55 ° C onder roeren totdat het weefsel is opgelost,typisch 4-5 uur. </li><li> Kwantificeren het DNA gehalte van het homogenaat met een DNA-bindingstest 4,11. </li></ol> 4. Fixatie en Opdeling van Tissue <ol><li> Fix ontceld, recellularized of control P3 harten in 4% paraformaldehyde in PBS gedurende 30 minuten bij kamertemperatuur. </li><li> Was het weefsel in PBS 3x. </li><li> Plaats het weefsel in een oplossing van 7,5% sucrose in 0,1 M fosfaatbuffer bij 4 ° C totdat het zinkt. </li><li> Verander de oplossing van 15% sucrose in 0,1 M fosfaatbuffer bij 4 ° C, opnieuw, totdat het zinkt. </li><li> Warm het weefsel 37 ° C, plaats de helft van het volume gelatineoplossing in 15% sucrose en 0,1 M fosfaatbuffer en gedurende de nacht equilibreren. Concentraties van gelatine stapsgewijs verhoogd tot 1%, 2,5%, 5% en tenslotte 7,5% tweemaal. </li><li> Plaats de monsters in cryomolds met verse 7,5% gelatine. Om de vorm van de ontcelde monsters te herstellen, kan vloeibare gelatine worden doorbloed in de kamers als tHij harten worden gevormd. Freeze door drijvende de cryomolds op vloeibare stikstof. Bewaar bij -80 ° C. </li><li> Snijd (10 micrometer dik) secties met een cryostaat. Breng de schuif nabij het gedeelte oppervlak en ook het hoofdstuk af bewegen van het mes op het oppervlak als gevolg van de lading op het elektrostatisch behandelde objectglaasjes. Droog de objectglaasjes gedurende de nacht en bewaren bij -80 ° C voor latere analyse. </li><li> Verwijder de dia&#39;s uit de vriezer, op kamertemperatuur en plaats in een Coplin pot met PBS gedurende 20 minuten bij 37 ° C om de gelatine op te lossen. </li><li> Vlekken op de gesneden delen van Stap 4.7 met hematoxyline en eosine. Plaats de glaasjes in een Coplin pot. Expose de dia gehydrateerd in stap 4,8 tot hematoxyline gedurende 45 seconden, leidingwater gedurende 1,5 min, buffer gedurende 3 min, leidingwater gedurende 1 min, blauwmiddel gedurende 1,5 min, 80% ethanol gedurende 1 minuut, alcoholische Eosine Y 8 sec, 80% ethanol gedurende 1 minuut, 100% ethanol gedurende 1 min 2x, klaringsmiddel (xyleen vervangende) gedurende 1 min 3x, dekglaasje met harsop basis van montage medium. Onderzoek de slides microscopisch. </li><li> Het behoud van ECM eiwitten reactiviteit van het hart ECM, kleuring voor ECM structurele eiwitten zoals collageen IV bevestigen door het plaatsen van de gehydrateerde objectglaasjes in een vochtige kamer en behandel met 10% normaal donkey serum (NDS) in fosfaatgebufferde zoutoplossing met 0,1% Triton -X100 (PBST) gedurende 1 uur bij kamertemperatuur (RT). Gebruik een voldoende volume om de weefselsecties te dekken. </li><li> Vervang de oplossing met het primaire antilichaam van keuze bij een empirisch bepaalde verdunning in 5% NDS / PBST. Zo werd de collageen IV antilichaam verdund 1: 150. Incubeer overnacht bij 4 ° C. </li><li> Was de dia&#39;s met PBST 3x en breng een secundair antilichaam naar keuze geconjugeerd met een fluorescente kleurstof. Verdun het antilichaam volgens een empirisch bepaalde hoeveelheid. Incubeer gedurende 1 uur bij KT. Wassen met PBS 3x. </li><li> Vlekken op de schuiven met een DNA-bindende kleurstof zoals DAPI afwezigheid van celkernen controleren met een DAPI bevattende mounting medium wanneer het deksel glijden de dia&#39;s. </li><li> Onderzoek de glaasjes met een fluorescentiemicroscoop bij 50 tot 400X. </li></ol> 5. P1 Neonatale muizen ventriculaire Cardiomyocytes voor hercellularisatie <ol><li> Spray elke pup met 70% ethanol en onthoofden met een eenmalig gebruik mes. </li><li> Houd elke pup tussen de duim en wijsvinger, terwijl de thorax wordt gesplitst op de middellijn met steriel schaar om de borstholte bloot te leggen. Druk uitoefenen om het hart vrij uitsteken van de borst, terwijl deze vrij van de grote bloedvaten en de boezems waardoor alleen het ventriculaire weefsel wordt gesneden. </li><li> Plaats elke hart rechtstreeks in een 50 ml buis met 20 ml ijskoude calcium, bicarbonaat vrij Hank&#39;s gebufferde zoutoplossing met 20 mM 4- (2-hydroxyethyl) -1-piperazineethaansulfonzuur (CBFHH) totdat alle harten verzameld. </li><li> Zuig het CBFHH en voeg 10-15 ml vers CBFHH (ijskoud) op de buis. Was het weefsel door zwenken in het weefsel tHij buis meerdere malen. </li><li> Wordt de oplossing die het hart in een 60 mm plastic petrischaal. </li><li> Ontleden eventuele latente atriaal weefsel van de harten onder vergroting op ijs door bijsnijden van het hart met de veer schaar. Hak de ventrikels in homogeen en kleinbedrijf kleine stukjes. Verwijder afgescheiden niet-ventriculair weefsel van de schaal met # 5 tang. </li><li> Pipet zoveel van de CBFHH oplossing die nodig is om het weefsel fragmenten over in een steriel flesje dat een steriele micro roerstaaf bevat. </li><li> Laat het weefsel bezinken naar de bodem van het flesje en verwijder de CBFHH oplossing. </li><li> Vul aan 50 ml van een enzymoplossing 1,75 mg / ml trypsine, 20 ug / ml DNase II in CBFHH. Pipetteer 5 ml van dit enzym-oplossing en voeg deze toe aan een buis met gehakt ventriculaire weefsel en leg ze op een magneetroerder. Roer met een constante snelheid (340 opm) bij kamertemperatuur gedurende 8 min. LET OP: Het roeren actie moet zacht en toch toestaanvoor de opschorting van de slurry. </li><li> Verwijder de flacon uit het roer plaat en laat de slurry te bezinken gedurende 3 minuten. Pipet en gooi de eerste verteren supernatant, omdat het in de eerste plaats bevat het bloed cellen en weefsels puin. </li><li> Pipet een tweede 5 ml van het enzym-oplossing en voeg deze toe aan het verteren ventrikel. Roer gedurende 8 min en laat het bezinken nog eens 3 minuten. Voorafgaand aan het begin van de digesten, bereiden twee 50 ml buisjes (label 1 en 2) elk 12 ml ijskoud foetaal runderserum (FBS). Plaats een 40 um cel zeef boven op elke buis. Pipet dit supernatant door het filter op de buis 1. </li><li> Herhaal het verteringsproces een extra 8 maal, afwisselend de plaatsing van digest supernatant tussen de twee buizen met FBS. Splits de laatste supernatant even tussen de buizen 1 en 2 gelijke volumes in elke buis te garanderen. LET OP: Elke collectie buis bevatten nu 32,5 ml totaal volume van celsuspensie. </li><li> Centrifugeer de buisjes bevattening de supernatant 150 g gedurende 6 minuten bij 4 ° C. </li><li> Terwijl het verzamelen van de vertering monsters, bereid vijf 100 mm weefselkweekplaten met 6 ml medium (Dulbecco&#39;s gemodificeerd Eagle&#39;s media (DMEM) met 10% FBS, 1x Pen-Strep, 1x L-glutamine) per plaat. Incubeer deze porties bij 37 ° C, 5% CO2 gedurende 30 minuten aan de media equilibreren. </li><li> Zuig het CBFHH enzymmengsel en resuspendeer de cellen in de 30 ml van de cultuur media hierboven bereide, het combineren van de cellen van beide collectie buizen. </li><li> Terugkeren 6 ml celsuspensie aan elk van de 100 mm platen en incubeer gedurende 45 minuten bij 37 ° C. </li><li> Aan het einde van de incubatie overdracht van de niet-hechtende cellen 5 nieuwe gerechten en opnieuw incubeer gedurende 45 minuten (de fibroblast fractie zal beginnen te houden aan de gerechten kunnen worden gekweekt afzonderlijk indien gewenst). </li><li> Aan het einde van de tweede ronde van pre-plating, laat de media en niet-hechtende cellen uit de schalen en draaien de media bij 150xg gedurende 6 min. </li><li> Trek overtollige media aan de cellen om de geschatte gewenste concentratie (4,0 x 10 5 cellen per construct in 100 ul van perfusaat) brengen. Verwijder een monster voor tellen en levensvatbaarheid of 14 testen. </li></ol> 6. Bioreactor hercellularisatie van P3 Hart Matrix <ol><li> Voorbehandelen het geïsoleerde hart matrix met cultuur media (zie stap 5.15) &#39;s nachts voor het toevoegen van de cellen. </li><li> Monteren van de onderdelen van een Langendorff-systeem zoals getoond in Fig. 2. Autoclaaf de glasdelen en ethyleenoxide steriliseren kunststofdelen steriliteit te verzekeren. Verschillende subeenheden van het systeem kan worden gemonteerd in een laminaire stroming kap alvorens op de ondersteuning is aangebracht. Circulerend waterbad en verwarmd water stroomweg is weggelaten voor de duidelijkheid. </li><li> Vul het geassembleerde systeem met 120 ml van weefselkweek media (zie stap 5.15). </li><li> Plaats de katheter hart matrix uit stap 2,14 in een 60 mm cultuur schotel onder een vergrootglas en sluit een 1 ml spuit met 22 G x 1 naald geladen met celsuspensie van stap 5.20 aan de katheter. Zorg ervoor dat deze bijeenkomst is vrij van luchtbellen te voorkomen emboliseren van het hart. </li><li> Voorzichtig perfuseren de 100 pi celsuspensie in het hart matrix via de kransslagaders. Eenmaal voltooid, maak de spuit / naald-combinatie. LET OP: Een langzame perfusie van ca. 20 ui per minuut nodig is om te voorkomen dat de cellen uit stroomt uit de aderen, doorreizen het hart. </li><li> Met een 22g stomp stomp bevestigd aan de Luer fitting aan de onderzijde van de bioreactor hart pot deksel, duw de katheter op de stomp. </li><li> Start de peristaltische pomp en controleer of de stroom door zoals in figuur 2. Flow opbrengst van het reservoir via de pomp door de opvanginrichting de katheter in de aorta in stap 2,5 (rode pad in figuur 2.). Let op de stroom van de cardiale circulatie uit de aders en druppelen van de top, recirculerende de media reservoir. OPMERKING: De perfusie debiet afhankelijk van individuele factoren zoals de vasculaire weerstand van het construct en de grootte van het hart, maar met een snelheid van 50 tot 100 pl / min is een goed uitgangspunt. Op tussenliggende tijdstippen, kunnen functionele evaluaties worden uitgevoerd. De schaal wordt van de neonatale recellularized hart beperkt de evaluaties, die kunnen worden uitgevoerd, maar we hebben vastgesteld dat optisch gebaseerde systemen kan worden gebruikt om te kwantificeren slaan gedrag zoals ze zijn gebruikt bij volwassen rat hearts. 4 Het construct kan worden geperfundeerd voor uitgebreide tijd (tot 23 uur). </li></ol>

<ol><li>Yusen, R. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Registry+of+the+International+Society+for+Heart+and+Lung+Transplantation%3A+Thirty-second+official+adult+lung+and+heart-lung+transplantation+report--2015%5BTitle%5D)+AND+%22J+Heart+Lung+Transplant%22%5BJournal%5D)">Registry of the International Society for Heart and Lung Transplantation: Thirty-second official adult lung and heart-lung transplantation report--2015.</a> J Heart Lung Transplant. 34 (10), 1264-1277 (2015).</li>
<li>Go, A. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heart+disease+and+stroke+statistics--2014+update%3A+A+report+from+the+american+heart+association%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Heart disease and stroke statistics--2014 update: A report from the american heart association.</a> Circulation. 129 (3), e28-e292 (2014).</li>
<li>Kapelios, C. J., Nanas, J. N., Malliaras, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Allogeneic+cardiosphere-derived+cells+for+myocardial+regeneration%3A+current+progress+and+recent+results%5BTitle%5D)+AND+%22Future+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Allogeneic cardiosphere-derived cells for myocardial regeneration: current progress and recent results.</a> Future Cardiol. 12 (1), 87-100 (2016).</li>
<li>Ott, H. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Perfusion+decellularized+matrix%3A+Using+nature%27s+platform+to+engineer+a+bioartificial+heart%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Med%22%5BJournal%5D)">Perfusion decellularized matrix: Using nature's platform to engineer a bioartificial heart.</a> Nat Med. 14 (2), 213-221 (2008).</li>
<li>Porrello, E. R., Olson, E. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+neonatal+blueprint+for+cardiac+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Research%22%5BJournal%5D)">A neonatal blueprint for cardiac regeneration.</a> Stem Cell Research. 13 (3 Pt B), 556-570 (2014).</li>
<li>Porrello, E. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transient+regenerative+potential+of+the+neonatal+mouse+heart%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Transient regenerative potential of the neonatal mouse heart.</a> Science. 331 (6020), 1078-1080 (2011).</li>
<li>Polizzotti, B. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuregulin+stimulation+of+cardiomyocyte+regeneration+in+mice+and+human+myocardium+reveals+a+therapeutic+window%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Transl+Med%22%5BJournal%5D)">Neuregulin stimulation of cardiomyocyte regeneration in mice and human myocardium reveals a therapeutic window.</a> Sci Transl Med. 7 (281), 281ra45(2015).</li>
<li>Jesty, S. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((c-kit%2B+precursors+support+postinfarction+myogenesis+in+the+neonatal%2C+but+not+adult%2C+heart%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">c-kit+ precursors support postinfarction myogenesis in the neonatal, but not adult, heart.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 109 (33), 13380-13385 (2012).</li>
<li>Ambrosy, A. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Global+Health+and+Economic+Burden+of+Hospitalizations+for+Heart+Failure%3A+Lessons+Learned+From+Hospitalized+Heart+Failure+Registries%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Coll+Cardiol%22%5BJournal%5D)">The Global Health and Economic Burden of Hospitalizations for Heart Failure: Lessons Learned From Hospitalized Heart Failure Registries.</a> J Am Coll Cardiol. 63 (12), 1123-1133 (2014).</li>
<li>Roger, V. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Executive+Summary%3A+Heart+Disease+and+Stroke+Statistics-2012+Update+A+Report+From+the+American+Heart+Association%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Executive Summary: Heart Disease and Stroke Statistics-2012 Update A Report From the American Heart Association.</a> Circulation. 125 (22), 188-197 (2012).</li>
<li>Kennedy-Lydon, T., Rosenthal, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+regeneration%3A+epicardial+mediated+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+R+Soc+B%22%5BJournal%5D)">Cardiac regeneration: epicardial mediated repair.</a> Proc R Soc B. 282 (1821), 2147-2172 (2015).</li>
<li>Williams, C., Sullivan, K., Black, L. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Partially+Digested+Adult+Cardiac+Extracellular+Matrix+Promotes+Cardiomyocyte+Proliferation+In+Vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Healthcare+Mat%22%5BJournal%5D)">Partially Digested Adult Cardiac Extracellular Matrix Promotes Cardiomyocyte Proliferation In Vitro.</a> Adv Healthcare Mat. 4 (10), 1545-1554 (2015).</li>
<li>Borg, T. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recognition+of+extracellular+matrix+components+by+neonatal+and+adult+cardiac+myocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Recognition of extracellular matrix components by neonatal and adult cardiac myocytes.</a> Dev Biol. 104 (1), 86-96 (1984).</li>
<li>Strober, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Trypan+blue+exclusion+test+of+cell+viability%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Protoc+Immnol%22%5BJournal%5D)">Trypan blue exclusion test of cell viability.</a> Curr Protoc Immnol. 111, A3-B1-3 (2015).</li>
<li>Gilbert, T. W., Freund, J. M., Badylak, S. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantification+of+DNA+in+biologic+scaffold+materials%5BTitle%5D)+AND+%22J+Surg+Res%22%5BJournal%5D)">Quantification of DNA in biologic scaffold materials.</a> J Surg Res. 152 (1), 135-139 (2009).</li>
<li>Akhyari, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+quest+for+an+optimized+protocol+for+whole-heart+decellularization%3A+a+comparison+of+three+popular+and+a+novel+decellularization+technique+and+their+diverse+effects+on+crucial+extracellular+matrix+qualities%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng+Part+C+Methods%22%5BJournal%5D)">The quest for an optimized protocol for whole-heart decellularization: a comparison of three popular and a novel decellularization technique and their diverse effects on crucial extracellular matrix qualities.</a> Tissue Eng Part C Methods. 17 (9), 915-926 (2011).</li>
<li>Lu, T. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Repopulation+of+decellularized+mouse+heart+with+human+induced+pluripotent+stem+cell-derived+cardiovascular+progenitor+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Commun%22%5BJournal%5D)">Repopulation of decellularized mouse heart with human induced pluripotent stem cell-derived cardiovascular progenitor cells.</a> Nat Commun. 4 (2307), 1-11 (2013).</li>
</ol>

De auteurs hebben niets te onthullen.

De afhankelijkheid van deze techniek bij herhaalde perfusie van het hart maakt het vermijden van een embolie een essentieel onderdeel van een succesvol resultaat. Vanaf de eerste catheterisatie van het hart in de stappen 2,2-2,6, om de veranderingen van de oplossing tussen Steps 2,8-2,14, zijn er manipulaties dat de invoering van luchtbellen die afbreuk doen aan de stroom van perfusaat in de hartspier kan toestaan. Vanwege de kleine omvang van de neonatale hart, kunnen zelfs minuut bellen in het vaatstelsel een technisc...

Hartfalen komt vaak voor en dodelijk. Het is een progressieve ziekte die resulteert in verlaagde contractiliteit van het hart, die bloedtoevoer aan organen schaadt en laat de metabolische behoeften van het lichaam onvervulde. Men schat dat 5,7 miljoen Amerikanen hebben hartfalen en het is de voornaamste oorzaak van ziekenhuisopname in de Verenigde Staten 9. De gezamenlijke kosten van de behandeling van patiënten bij hartfalen in de Verenigde Staten meer dan $ 300.000.000.000 dollar per jaar 9-10. De enige definitieve therapie voor eindstadium hartfalen is orthotope harttransplantatie. Elk jaar, wordt geschat dat meer dan 100.000 donorharten zijn nodig voor harttransplantatie procedures in de Verenigde Staten 1-2. Vanwege het beperkte aantal donoren, worden slechts bij benadering 2400 transplantaties jaarlijks uitgevoerd in de VS 2. Het is duidelijk dat dit tekort aan organen moet worden aangepakt als andere strategieën nodig zijn om extra organen voor transplanta producerentie en idealiter zou deze organen autoloog zijn om de complicaties van afstoting en levensduur immuunsuppressie voorkomen. Zoogdieren volwassen hartspiercellen aantonen dat er een beperkte regeneratieve capaciteit op schade, maar recent bewijs suggereert dat zoogdieren neonatale harten handhaven van een opmerkelijke regeneratieve capaciteit na letsel 5-8. Specifiek, na gedeeltelijke chirurgische resectie, een regeneratieve venster is ontdekt tussen de geboorte en postnatale dag 7. Deze regeneratieve periode wordt gekenmerkt door een gebrek aan fibrotische littekenvorming, vorming van neovascularisatie, afgifte van angiogene factoren uit het epicard en cardiomyocyt proliferatie 5-8 , 11. Deze regeneratieve tijdvenster biedt het potentieel voor het gebruik van het neonatale hart als een nieuwe bron van materiaal voor de ontwikkeling van een biokunstmatige hart. De extracellulaire matrix is ​​bekend dat belangrijke signalen te verschaffen cardiomyocyt bevorderene proliferatie en groei. Duidelijke verschillen in de beschikbaarheid van moleculen in de neonatale en volwassen matrices 12 en hun vermogen om regeneratie te bevorderen werden onderzocht 13. Volwassen cellen ontdane matrices zijn gebruikt in verscheidene studies een ECM matrix voor cellulaire herbevolking en het genereren van een bioartificiële hart verschaffen. Hoewel deze studies, en nieuwe ontdekkingen in stamcellen technologieën, zijn snel voortschrijdende, verschillende hindernissen moeten nog worden voldaan. Bijvoorbeeld beperkingen bij het behoud natieve structuur van de matrix, cellulaire integratie in de matrix wand, en het vermogen om proliferatie en groei ondersteunen alle grens het succes van deze benadering. Terwijl superieure regeneratieve eigenschappen zijn toegeschreven aan de neonatale hart, zijn de praktische aspecten van het gebruik van een dergelijk weefsel zijn verkenning beperkt. Gebaseerd op de aangetoonde regeneratieve capaciteit van het neonatale hart, hebben we nieuwe matrices ontwikkeld door de ontwikkeling van eentechniek van decellularisatie voor de P3 muis hart. Het P3 hart werd gekozen voor deze studies aangezien het binnen het raam van cardiale regeneratie voorafbepaalde 6 maar het hart is groot genoeg te oogsten, decellularize en recellularize. Het doel van deze studie is om de haalbaarheid van het creëren van een matrix van een neonatale muis hart te tonen. Onze studies leveren het bewijs voor de haalbaarheid van decellularizing een minuut, neonatale hart met behoud van de structurele en eiwithoudende integriteit van de ECM. We demonstreren ook de mogelijkheid om deze cardiale ECM mCherry expressie cardiomyocyten recellularize en wij hebben deze cardiomyocyten onderzocht op expressie van verschillende merkers cardiale volgende hercellularisatie. Deze technologie zal voor het testen van de superioriteit van een neonatale matrix voor de ontwikkeling van een biokunstmatige hart.

<table><tbody><tr><td colspan="4">1. Materialen voor muishart isolatie</td></tr><tr><td>P1 muis puppen (zoals getoond; B6;D2-Tg(Myh6*-mCherry)2Mik/J)</td><td>Jackson Laboratories</td><td>21577</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>60 mm Cultuurschaal</td><td>BD Falcon</td><td>353004</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>Fosfaat gebufferde zoutoplossing pH 7.4 (steriele)</td><td>Hyclone</td><td>SH30256.01</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>Mes voor eenmalig gebruik</td><td>Stanley</td><td>28-510</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>Standaard schaar</td><td>Moria Bonn (Fine Science Tools)</td><td>14381-43</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>Veer schaar 10 cm</td><td>Fine Science Tools</td><td>15024-10</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>Vannas veer schaar - 3 mm snijkant</td><td>Fine Science Tools</td><td>15000-00</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>#5 Pincet</td><td>Dumnot (Fine Science Tools)</td><td>11295-00</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td colspan="4">2. Materialen voor decellurisatie</td></tr><tr><td>Inlaatadapter</td><td>Chemglass</td><td>CG-1013</td><td>autoclaveerbaar</td></tr><tr><td>Septum</td><td>Chemglass</td><td>CG-3022-99</td><td>autoclaveerbaar</td></tr><tr><td>1/8 inch ID x 3/8 OD C-Flex slang</td><td>Cole-Parmer</td><td>EW-06422-10</td><td>autoclaveerbaar</td></tr><tr><td>Mannelijke luer naar 1/8" slangenslang adapter</td><td>McMaster-Carr</td><td>51525K33</td><td>autoclaveerbaar</td></tr><tr><td>Vrouwelijke luer naar 1/8" slangenslang adapter</td><td>McMaster-Carr</td><td>51525K26</td><td>autoclaveerbaar</td></tr><tr><td>Prolene 7-0 chirurgische hechting</td><td>Ethicon</td><td>8648G</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>Ring standaard</td><td>Fisher Scientific</td><td>S47807</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>Klem</td><td>Fisher Scientific</td><td>05-769-6Q</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>Klem reguliere houder</td><td>Fisher Scientific</td><td>05-754Q</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>60 cc spuit vat</td><td>Coviden</td><td>1186000777T</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>Beker</td><td>Kimble</td><td>14000250</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>22 G x 1 Spuitnaald</td><td>BD</td><td>305155</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>12 cc spuit</td><td>Coviden</td><td>8881512878</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>3-weg stopkraan</td><td>Smith Medical</td><td>MX5311L</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>PE50 slang</td><td>BD Clay Adams Intramedic</td><td>427411</td><td>Moet warmtevormbaar zijn. Polyethyleen aanbevolen.</td></tr><tr><td>1% SDS</td><td>Invitrogen</td><td>15525-017</td><td>Ultrapure kwaliteit aanbevolen. Maak verse oplossing en filter steriliseer voor gebruik.</td></tr><tr><td>1% Triton X-100</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T8787</td><td>Maak verse oplossing van een 10% stock en filter steriliseer voor gebruik.</td></tr><tr><td>Steriele dH2O</td><td>Hyclone</td><td>SH30538.02</td><td>Of MilliQ systeem gezuiverd water.</td></tr><tr><td>1x Pen/Strep</td><td>Corning CellGro</td><td>30-001-Cl</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td colspan="4">3. Materialen voor DNA kwantificering</td></tr><tr><td>Proteinase K</td><td>Fisher</td><td>BP1700</td><td>>30 U/mg activiteit</td></tr><tr><td>KCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P9333</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>MgCl2.6H2O</td><td>Mallinckrodt</td><td>5958-04</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>Tween 20</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P1379</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>Tris base/hydrochloride</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T1503/T5941</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>Pico-Green dsDNA assay kit</td><td>Life Technologies</td><td>P7589</td><td>vereist fluorimeter om te lezen</td></tr><tr><td colspan="4">4. Methode voor fixatie en sectie van weefsel</td></tr><tr><td>Paraformaldehyde</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P6148</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>Gelatine Type A van varkenshuid</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G2500</td><td>moet 300 bloom of hoger zijn</td></tr><tr><td colspan="4">5. Methode voor weefsel histologie</td></tr><tr><td>Cryomolds 10 x 10 x 5 mm</td><td>Tissue-Tek</td><td>4565</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>Cryostat</td><td>Hacker/Bright</td><td>Model OTF</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>Microscoopglazen 25 x 75 x 1 mm</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-550-19</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>Hematoxyline 560</td><td>Surgipath/Leica Selectech</td><td>3801570</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>Ethanol</td><td>Decon Laboratories</td><td>2701</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>Define</td><td>Surgipath/Leica Selectech</td><td>3803590</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>Blauwe buffer</td><td>Surgipath/Leica Selectech</td><td>3802915</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>Alcoholische Eosin Y 515</td><td>Surgipath/Leica Selectech</td><td>3801615</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>Formule 83 Xyleen vervanger</td><td>CBG Biotech</td><td>CH0104B</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>Permount Montage Medium</td><td>Fisher Chemical</td><td>SP15-500</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>Collageen IV Antilichaam</td><td>Rockland</td><td>600-401-106.1</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>&alpha;-Actinin Antilichaam</td><td>Abcam</td><td>AB9465</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>mCherry Antilichaam</td><td>Abcam</td><td>AB205402</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>NKX2.5 Antilichaam</td><td>Santa Cruz Biotechnology</td><td>SC-8697</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>Donkey anti-muis AF488 Antilichaam</td><td>Life Technology</td><td>A21202</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>Donkey anti-kip AF594 Antilichaam</td><td>Jackson Immunoresearch</td><td>703-585-155</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>Donkey anti-geit CY5 Antilichaam</td><td>Jackson Immunoresearch</td><td>705-175-147</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>Fab Fragment Goat Anti-Konijn IgG (H+L) AF594</td><td>Jackson Immunoresearch</td><td>111-587-003</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>Prolong Gold Antifade Mountant met DAPI</td><td>ThermoFisher</td><td>P36930</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td colspan="4">6. Isolatie van neonatale ventrikel cardiomyocyten met behulp van voorbeplanting</td></tr><tr><td>HBSS (Ca, Mg Vrij)</td><td>Hyclone</td><td>SH30031.02</td><td>of equivalent</td></tr><tr><td>HEPES (

neonatale cardiac steigers: novel matrices voor regenerative studies

Neonatal Cardiac Scaffolds: Novel Matrices for Regenerative Studies

De enige definitieve therapie voor hartfalen in het eindstadium is ortotopische harttransplantatie. Elk jaar wordt geschat dat er meer dan 100.000 donorharten nodig zijn voor harttransplantatieprocedures in de Verenigde Staten1-2. Vanwege het beperkte aantal donoren, worden er elk jaar ongeveer 2.400 transplantaties uitgevoerd in de VS2. Er zijn talrijke benaderingen ondernomen, van celtherapiestudies tot implantatie van mechanische hulpapparaten, hetzij alleen of in combinatie, in een poging om het hart te bewegen om zichzelf te repareren of om het falende hart te laten rusten3. Ondanks deze inspanningen worden ventrikel-assist-apparaten nog steeds grotendeels gebruikt om de overbrugging naar transplantatie mogelijk te maken en is de bruikbaarheid van celtherapieën, hoewel ze enige curatieve belofte bieden, nog steeds beperkt tot klinische onderzoeken. Bovendien is directe xenotransplantatie geprobeerd, maar het succes is beperkt gebleven vanwege immuunafwijzing. Het is duidelijk dat een andere strategie nodig is om extra organen voor transplantatie te produceren en, idealiter, zouden deze organen autoloog moeten zijn om de complicaties geassocieerd met afstoting en levenslange immunosuppressie te voorkomen. Decellulatie is een proces van het verwijderen van residente cellen uit weefsels om de inheemse extracellulaire matrix (ECM) of scaffold bloot te leggen. Perfusie decellulatie biedt volledige behoud van de driedimensionale structuur van het weefsel, terwijl het grootste deel van de mechanische eigenschappen van het weefsel intact blijft4. Deze scaffolds kunnen worden gebruikt voor bevolking met gezonde cellen om onderzoeksmodellen en, mogelijk, broodnodige organen voor transplantatie te genereren. We hebben de scaffolds van neonatale muizen (P3), bekend om hun opmerkelijke vermogen tot hartregeneratie,5-8 blootgesteld aan detergent-gemedieerde decellulatie en we hebben deze scaffolds opnieuw bevolkt met muis-cardiale cellen. Deze studies ondersteunen de haalbaarheid van het engineeren van een neonataal hartconstruct. Ze laten ook toe om te onderzoeken of de ECM van vroeg postnatale harten aanwijzingen kan bevatten die resulteren in verbeterde hercellulatisatiestrategieën.

decellularisatie Gemiddeld is de tijd decellularisatie P3 van een hart met dit protocol is ongeveer 14 uur. een gemiddelde hart gewicht van 23 mg voor de P3 pasgeborene. Acellularity Figuur 3a toont een volledig intacte P3 neonatale hart (hele mount). Figuur 3b toont dezelfde hart volgende cellen ontdoen. De figuren 4a en 4b de hematoxyline en eo...

In deze studies geven we nieuwe methodologie voor neonatale muizen cardiale scaffolds voor gebruik in regeneratieve studies.

Neonatale Cardiac Steigers: Novel Matrices voor Regenerative Studies

The only definitive therapy for end stage heart failure is orthotopic heart transplantation.  Each year, it is estimated that more than 100,000 donor ...

Het algemene doel van deze methodologie is het genereren van nieuwe scaffolds uit neonataal mirian hartweefsel voor gebruik in regeneratieve studies. Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van kernvragen in de regeneratieve cardiologie en biedt een nieuw model voor de studie van cel-matrixinteracties, aangezien de extracellulaire matrix is afgeleid van cardiac weefsel dat in staat is tot proliferatie.Het belangrijkste voordeel van deze techniek is dat het de ontdekking van nieuwe aspecten van de neonatale extracellulaire matrix mogelijk maakt. De procedure zal worden gedemonstreerd door Stefan Kren, een technicus in mijn laboratorium. Trek vóór aanvang van de procedure een sectie van vier centimeter PE 50-buis over een kleine alcoholvlam om een kleinere, dunnere katheter te creëren.Trim de uiteinden tot de juiste afmetingen om twee symmetrische katheters aan weerszijden van de PO te verkrijgen en plaats een gesneden uiteinde van de slang kortstondig in de vlam om één flens op de opening aan het dunne uiteinde te smelten. Vul vervolgens een spuit van 12 milliliter met PBS en plaats een driewegkraan op de spuit. Bevestig een naald van 22 gauge aan de kraan en drijf de naald door het septum.Schuif vervolgens de PE-tubingkatheter over de naald en spoel de assemblage met PBS. Wanneer de katheterassemblage gereed is, veeg dan de thorax van de neonatus af met 70% ethanol. Gebruik daarna een standaard schaar om de huid van de borst weg te knippen, terwijl het weefsel zijwaarts wordt weggetrokken met een nummer vijf pincet.Perforeer vervolgens de buikwand vlak onder het sternum en pak het xiphoïdproces vast met de pincet. Trek het sternum rostral weg van het lichaam terwijl u de ribben aan weerszijden van de borstkas doorsnijdt, en klap de ribbenkast naar boven om. Wanneer het hart zichtbaar is, trek dan aan de thymus om de twee hoofdlappen te dissekeren, waardoor de aortaboog en de vena cava en longaders bloot komen te liggen.Doorsnij met een veerschaar van 10 centimeter de belangrijkste slagaders vanaf de aortaboog, evenals de aorta zelf. Pak de uiteinden van de doorgesneden vaten vast om het hart naar voren te klappen, waardoor het wordt gescheiden van de trachea en de slokdarm, en snijd tussen de longen en het hart en aan beide zijden van het hart om de pulmonale vasculatuur en andere grote aders door te snijden. Pak vervolgens de doorgesneden uiteinden van de grote vaten vast en verwijder het hart uit het mediastinum, waarbij het hart in een kweekschaal van 60 millimeter met steriele PBS wordt geplaatst.Om het hart te decellulariseren, plaatst u de kweekschaal onder een dissectiemicroscoop en voert u de naald van de katheterassemblage in de aorta in tot aan, maar niet voorbij, de aortaklep. Zet de naald vast met één knoop van een 7-0 hechtdraad, waarbij de falanx van de katheter proximaal tegen de knoop rust om een nauwe afsluiting te vormen, en perfuseer het hart voorzichtig met PBS. Als er geen lekken zijn, zal het weefsel homogeen bleken naarmate het aanwezige bloed wordt verwijderd.Plaats het septum in de hals van de inlaatadapter en vouw de zijkanten van het septum over het glas. Bevestig vervolgens een reservoir gevuld met 60 milliliters 1% Sodium dodecyl sulfate in gedestilleerd water via een slang van voldoende lengte om een kolom te vormen die een druk van 20 millimeters kwik genereert, en perfundeer het hart gedurende 14 uur met SDS. Aan het einde van de perfusie zal het hart translucent zijn zonder waarneembaar overgebleven weefsel.Spoel het systeem tot aan de stopkraan door met de resterende SDS-oplossing en vul het reservoir met 10 milliliters gedeïoniseerd water. Spoel vervolgens het hart door met opeenvolgende perfusies van 10 milliliters 1% Triton X-100, 10 milliliters gedeïoniseerd water en 60 milliliters PBS met penicilline en streptomycine. Bewaar het hart na de laatste perfusie in PBS en antibiotica bij vier graden Celsius.Om het weefsel te recellulariseren, wordt de gecatheteriseerde hartmatrix onder een dissectiemicroscoop overgebracht naar een kweekschaal van 60 millimeter en wordt een spuit van één milliliter, uitgerust met een naald van 22 gauge en gevuld met de relevante cellen, op de catheter aangesloten. Controleer of de opstelling vrij is van luchtbellen en perfundeer voorzichtig 20 microliters van de celsuspensie per minuut in de hartmatrix via de coronaire arteriën. Wanneer 100 microliters van de cellen zijn toegediend, wordt de spuit losgekoppeld en wordt de catheter op een stompe stub van 22 gauge geschoven, die is bevestigd aan de luer-koppeling aan de onderzijde van een bioreactordeksels voor de hartpot.Start nu de peristaltische pomp en bevestig dat de vloeistof vanuit het reservoir via de pomp door de luchtbelvanger naar de katheter stroomt en dat de cardiale circulatie uit de aderen stroomt en vanuit de apex druppelt, om vervolgens terug te vloeien naar het mediumreservoir. In deze afbeeldingen wordt de hematoxyline- en eosinekleuring van intacte en gedecellulariseerde harten getoond. Let op de afwezigheid van hematoxyline-positieve kernen en de afname van eosinofiele structuren in het gedecellulariseerde hart.Om de inhoud van de neonatale extracellulaire matrix in intacte en gedecellulariseerde neonatale harten te evalueren, laat immuunkleuring zien dat collageen IV robuust tot expressie komt in zowel het intacte als het gedecellulariseerde hart en dat de lokalisatie van dit eiwit behouden blijft na celverwijdering, terwijl de DAPI-positieve kernen effectief zijn verwijderd. De DNA-inhoud is eveneens afgenomen in neonatale harten na detergent-gebaseerde decellularisatie, wat consistent is met rapporten over detergent-gebaseerde decellularisatie in andere weefsels. Op deze afbeeldingen kunnen recellulariseerde cardiomyocyten worden waargenomen die in de wand van het linker ventrikel zijn gemigreerd.Tot 23 dagen na perfusie kunnen deze gemigreerde cellen positief zijn voor markers voor cardiale progenitorcellen, mCherry, gedifferentieerde cardiomyocytmarkers of DAPI, waarbij de meerderheid van de cellen alle vier de markers tot expressie brengt. Zodra de techniek onder de knie is, kan deze in 34 uur worden voltooid indien deze correct wordt uitgevoerd. Bij het uitvoeren van deze procedure is het belangrijk om ervoor te zorgen dat het hart niet emboliseert door het introduceren van lucht via het perfusieapparaat.Na het volgen van deze procedure kunnen gelproductie en 3D-printen worden gebruikt om proliferatieve grafts of zelfs 3D-harten in vitro te creëren. Deze techniek zou de weg kunnen vrijmaken voor onderzoekers om cardiale regeneratie te bevorderen. Na het bekijken van deze video zou u een goed begrip moeten hebben van hoe u een neonataal muizenhart kunt decellulariseren en recellulariseren.Vergeet niet dat het werken met natriumlaurylsulfaat gevaarlijk kan zijn en dat voorzorgsmaatregelen, zoals een N-95 masker of een zuurkast, altijd moeten worden getroffen bij het hanteren van het droge poederreagens.

neonatal-cardiac-scaffolds-novel-matrices-for-regenerative-studies

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bio-engineering

Werkwijzen voor het bereiden een injecteerbare gel matrix van gedecellulariseerde weefsel en het injecteren van het in rat...

Productie van biologisch verkregen Injecteerbare Materialen voor myocard Tissue Engineering

In dit protocol demonstreren we de fabricage van biomimetische hartcelcultuursubstraten gemaakt van twee verschillende polymere materialen met behulp van capillaire krachtlitografie.  De beschreven methoden bieden een schaalbare, kosteneffectieve techniek om de structuur en functie van macroscopische hartweefsels voor in vitro en in vivo toepassingen te ontwerpen.

Capillaire Force Lithografie voor Cardiac Tissue Engineering

Voor het creëren van hoog georganiseerde structuren van complex weefsel, moet men meerdere materiaal- en celtypen samenvoegen tot een geïntegreerd composiet. Dit combinatoire ontwerp bevat orgaanspecifieke gelaagde cellagen met twee verschillende biologisch afgeleide materialen die een sterke vezelachtige matrixbasis bevatten, en endotheelcellen voor het bevorderen van de vorming van nieuwe bloedvaten.

Tissue engineering: Bouw van een Meercellige 3D Steiger voor de levering van Layered Cell Sheets

Dit protocol beschrijft een zeer reproduceerbaar model van hartregeneratie door chirurgische inductie van een myocardinfarct in de linker ventrikel van muizen op postnatale dag 1. De methode omvat inductie van hypothermische anesthesie en ligatie van de linker voorste descendentie van de kransslagader.

Myocardinfarct bij pasgeboren muizen, een model van Cardiac Regeneration

Dit protocol beschrijft de complete decellularization van menselijke myocard met behoud van de componenten van de extracellulaire matrix. Verdere verwerking van de resultaten van de extracellulaire matrix in de productie van deeltjes en een cytoprotective zelfassemblerende hydrogel.

Verwerking van menselijke cardiale weefsels richting de extracellulaire Matrix zelf monteren Hydrogel voor In Vitro en In Vivo toepassingen

De cardiale extracellulaire matrix (ECM) is een complex netwerk van moleculen die orkestreren van belangrijke processen in weefsels en organen terwijl blijvende fysiologische remodelleren gedurende het hele leven. Gestandaardiseerde decellularization van foetale en volwassen hart toelaat vergelijkende experimentele studies van beide weefsels in een 3D-kader door het vastleggen van inheemse architectuur en biomechanische eigenschappen.

Vergelijkbare Decellularization van foetale en volwassen cardiale weefsel explantaten als 3D-achtige platformen voor In Vitro Studies

Dit protocol beschrijft een netto schimmel gebaseerde methode om te maken van driedimensionale steiger-vrije cardiale weefsels met bevredigende structurele integriteit en synchrone kloppend gedrag.

Een netto schimmel gebaseerde methode van de steiger-free driedimensionale cardiale weefsel schepping

Decellularized kraakbeen afkomstige steigers kunnen worden gebruikt als een steiger aan gids kraakbeen reparatie en als een middel om te regenereren osteochondraal weefsel. Deze paper beschrijft het proces van de decellularization in detail en biedt suggesties voor deze steigers in in vitro-instellingen.

Fabricage van Decellularized kraakbeen afkomstige Matrix steigers

Hier wordt een reeks protocollen gepresenteerd voor het genereren en cryopreservatie van cardiale sferoïden (CSs) uit door de mens geïnduceerde pluripotente stamcel-afgeleide cardiomyocyten gekweekt in een multidimensionaal formaat met hoge doorvoer. Dit driedimensionale model functioneert als een robuust platform voor ziektemodellering, high-throughput screenings en behoudt zijn functionaliteit na cryopreservatie.

Generatie, high-throughput screening en biobanking van door de mens geïnduceerde pluripotente stamcel-afgeleide cardiale sferoïden

Dit werk presenteert een diermodel van endotheliale-naar-mesenchymale overgangsgeïnduceerde fibrose, zoals te zien is bij aangeboren hartafwijkingen zoals kritieke aortastenose of hypoplastisch linkerhartsyndroom, wat gedetailleerde histologische weefselevaluatie, de identificatie van regulerende signaalroutes en het testen van behandelingsopties mogelijk maakt.

Een neonataal heterotopisch rattenharttransplantatiemodel voor de studie van endotheel-naar-mesenchymale overgang

Fibroblasten geïsoleerd uit het volwassen menselijk hart werden gekweekt om samen te vloeien op met gelatine beklede schalen om de myocardium-specifieke extracellulaire matrix te produceren. Na decellularisatie kan dit substraat worden gebruikt voor de kweek en studie van andere hartcellen en cel-matrixinteracties.

Productie van cardiale extracellulaire matrix van volwassen menselijke fibroblasten voor de coating van de cultuurschotel

Leer hoe je nieuwe cardiale steigers maakt van neonataal muizenweefsel voor regeneratief onderzoek. Deze methode onthult unieke eigenschappen van de neonatale extracellulaire matrix en cel-matrix interacties.

Neonatale Cardiac Steigers: Novel Matrices voor Regenerative Studies

Meer video's verkennen