30 november 2016
We beschrijven het gebruik van een multiplexe hoogdoorvoerige genexpressieplatform die genexpressie kwantificeert door middel van barcodes en het tellen van moleculen in biologische substraten zonder de noodzaak voor amplificatie. We gebruikten het platform om microRNA (miRNA) expressie in vol bloed te kwantificeren bij personen met en zonder prikdarm syndroom.
Het algemene doel van dit multiplex-protocol voor de kwantificering van nucleïnezuur is om de expressie van microRNA in vol bloed digitaal te kwantificeren. Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van belangrijke vragen in de studie van spijsverteringsstoornissen. Het helpt bij de identificatie van gereguleerd moleculaire mechanismen en biomarker-signaturen, zoals microRNA's.
Het belangrijkste voordeel van deze techniek is dat de kwantificering van microRNA niet afhankelijk is van amplificatie. Deze technologie telt moleculaire doelen digitaal en is grotendeels geautomatiseerd. Om totaal RNA te zuiveren, ontdooi en incubeer eerder verzamelde en bevroren volbloedmonsters gedurende twee uur.
Gebruik een draaiende emmerrotor om de buisjes te centrifugeren bij 5.000 keer g bij kamertemperatuur gedurende tien minuten. Verwijder vervolgens de supernatanten door voorzichtig te gieten of te pipetten in een afvalbuisje, zorg ervoor dat de pellet niet wordt verstoord. Voeg vier milliliter RNase-vrij water toe aan de pellet.
Plaats de dop stevig weer op en vortex tot de pellet zichtbaar is opgelost. Centrifugeer vervolgens de buis opnieuw en verwijder de supernatant. Voeg vervolgens 350 microliter BM1-buffer toe aan de pellet en vortex tot de pellet zichtbaar is opgelost.
Breng vervolgens het monster over naar een twee milliliter verwerkingsbuis voor geautomatiseerde extractie van totaal RNA. Gebruik een commercieel verkrijgbaar RNA-extractiekit en voer een geautomatiseerde zuivering uit van intracellulair RNA, inclusief microRNA uit het volbloedmonster, door de voorgeladen pipettentips, centrifugebuizen, buffers en reagentia die in de RNA-zuiveringskit zijn meegeleverd, in het robotische RNA-extractiesysteem te laden. Kies uit het protocolselectiemenu het Blood miRNA PartA-protocol en start de uitvoering.
Voltooi de RNA-extractie en bewaar de monsters volgens het tekstprotocol. Bereid microRNA-monsters voor door eerst RNase-vrij water te gebruiken om 12 RNA-monsters te normaliseren tot 33 nanogram per microliter. Bereid met nuclease-vrij water een 1-in-500 verdunning van de microRNA-controles voor die in de assaykit zijn meegeleverd en bewaar op ijs.
Bereid vervolgens de annealing master mix voor door 13 microliter annealingbuffer, 26 microliter micro R-tag reagens en 6,5 microliter microRNA-controles te combineren. Voeg aan elk van de 12 0,2 milliliter stripbuisjes 3,5 microliter van de annealing master mix toe en voeg vervolgens 3 microliter van het RNA-monster toe. Schep de buisjes om te mengen, centrifugeer ze met een bench-top mini microcentrifuge bij 2000 keer g en draai de buisjes in een thermocycler volgens het volgende programma.
Bereid vervolgens een ligatie master mix voor door drie microliter van de ligatiebuffer en 19,5 microliter PEG te combineren. Voeg vervolgens 2,5 microliter van de ligatie master mix toe aan elk van de reacties. Na het mengen en centrifugeren van de buisjes, plaats ze terug in de thermocycler bij 48 graden Celsius gedurende vijf minuten.
Voeg vervolgens een microliter ligase rechtstreeks toe aan elk monster terwijl deze nog in de thermocycler-blok zit en incubeer de buisjes volgens het volgende programma. Meng voorzichtig en centrifugeer de buisjes en voeg een microliter ligatie opruimingsenzym toe aan elk monster. Incubeer vervolgens de buisjes in de thermocycler zoals hier getoond.
Na de incubatie, voeg 40 microliter RNase-vrij water toe aan de monsters voor het mengen en centrifugeren. Om microRNA-hybridisatie uit te voeren, ontdooi de reporter en capture probe sets die op ijs zijn bewaard en centrifugeer ze. Voeg 130 microliter hybridisatiebuffer toe aan de Reporter Code Set 2 en meng om de hybridisatie master mix te creëren.
Voeg in 12 nieuwe 0,2 milliliter stripbuisjes 20 microliter van de hybridisatie master mix toe. Denatureer de zojuist bereide microRNA-monsters gedurende vijf minuten bij 85 graden Celsius en koel ze af op ijs. Voeg vervolgens 5 microliter van de microRNA-monsters toe aan elk van de stripbuisjes die de hybridisatie master mix bevatten.
Programmeer de thermocycler naar 65 graden Celsius, bij een temperatuur berekend op een volume van 30 microliter en de verwarmde deksel op de Forever-tijdinstelling, zodat deze niet aflopen naar 4 graden Celsius aan het einde van de uitvoering. Voeg 5 microliter van de capture probe set toe aan elke buis en meng. Plaats de buisjes na het centrifugeren onmiddellijk in de thermocycler bij 65 graden Celsius.
Incubeer de monsters gedurende minimaal 12 uur en maximaal 30 uur. Zet de prep-station op door de cartridge en platen eerst op te warmen tot kamertemperatuur. Centrifugeer vervolgens de platen.
Om de prep-station te laden, opent u de stationsdeur en laadt u de reagentiaplaten, cartridge, pipettentips, bereide monsters in 0,2 milliliter stripbuisjes en twee lege 0,2 milliliter 12-buisjes stripbuisjes op de juiste locaties in de robot. Verwijder de stripbuisjesdoppen en deksel van de reagentiaplaat. Sluit vervolgens de prep-stationdeur en voer het juiste assay uit vanaf het bedieningspaneel.
Om de barcodes van de geïmmobiliseerde en georiënteerde tripartite complexen te visualiseren en te tellen, verwijdert u de cartridge uit de prep-station, gebruikt u het meegeleverde deksel om deze te verzegelen en plaatst u deze in de digitale analyzer in een beschikbare sleuf. Gebruik het touchscreen om een cartridge definitiebestand, of CDF, te maken. Zorg ervoor dat het juiste reporter bibliotheekbestand aan elk monster in de CDF is toegewezen.
Nadat het scannen is voltooid, downloadt u de databestanden van de digitale analyzer via een USB-drive of per e-mail, voordat u de gegevens verwerkt en analyseert, volgens het bijbehorende QC- en analyseprotocol. Het genexpressieplatform assaysysteem vermindert technische ruis door zijn hoog geautomatiseerde aard en de unieke chemie die het gebruikt, produceert hoogprecisie genexpressiedata. De technische replica's die hier worden getoond, demonstreren de hoge reproduceerbaarheid in zowel endogene als virale microRNA expressiekwantificering die mogelijk is.
Met behulp van deze methode kunnen virus-gecodeerde en endogene menselijke microRNA's die afwijken van de verwachte expressie, zoals gedefinieerd door gezonde studie deelnemers, worden geïdentificeerd als doelwitten van belang in IBS. De precisie en gevoeligheid van de methode maakt het mogelijk om verstoringen onder laag-
Dit artikel presenteert een multiplexed hoog-doorvoer genexpressie platform ontworpen om microRNA expressie in gehele bloedmonsters te kwantificeren. De methode maakt nauwkeurige meting zonder amplificatie mogelijk, waardoor het geschikt is voor het bestuderen van aandoeningen zoals het prikkelbare darmsyndroom.
This multiplexed high-throughput gene expression platform enables robust, amplification-free quantification of circulating miRNAs, supporting biomarker discovery in digestive disorders such as irritable bowel syndrome. By providing high sensitivity and reproducibility in detecting low-expression miRNA perturbations, the method enhances target validation confidence and reduces mechanistic ambiguity in early discovery. Its automated workflow and digital counting approach improve assay standardization and scalability for cross-functional R&D teams.
The method fits within the discovery continuum from hypothesis-driven biomarker screening to assay validation, supporting progression from early discovery to lead identification in digestive disorder research.