10 december 2016
Hier beschrijven we een werkwijze voor het visualiseren en kwantificeren gevoeligheid een endogene interacties tussen het endoplasmatisch reticulum en mitochondria in gefixeerde cellen. Het protocol is voorzien van een geoptimaliseerde in situ nabijheid ligation assay gericht op de inositol 1,4,5-trifosfaat receptor / glucose-gereguleerd eiwit 75 / voltage-afhankelijke anion kanaal / cyclofiline D-complex aan de mitochondria bijbehorende membraan interface.
Het algemene doel van dit experiment is om interacties tussen endoplasmatisch reticulum en mitochondriën te visualiseren en te kwantificeren met behulp van een in situ proximity ligatie assay in gefixeerde cellen.Deze methode kan helpen om belangrijke vragen in het biomedische veld te beantwoorden om ER mitochondriën interacties in gefixeerde cellen beter te analyseren met behulp van een eenvoudige immunofluorescentietechniek.Hopelijk suggererend nieuwe behandelingsstrategieën.Het grote voordeel van deze techniek is dat we ER mitochondriën interacties in gefixeerde cellen kunnen visualiseren en kwantificeren en deze techniek kan worden toegepast op in paraffine ingebedde weefselbiopsieën van patiënten.Met behulp van de in situ proximity ligatie assay die in deze video wordt gedemonstreerd, combineren een muis primaire antilichaam gericht tegen VDAC1 aan de buitenmembraan van de mitochondriën en een konijn primaire antilichaam gericht tegen IP3R1 aan het endoplasmatisch reticulum membraan naar hun epitopen in de nabijheid van de mitochondriën geassocieerde membraaninterface.Proximity ligatie sondes met DNA-eindstaarten die zijn gericht tegen muis en konijn IgG worden toegevoegd en kunnen sjablonen vormen voor de ligatie van connector oligo's en kunnen worden versterkt en gevisualiseerd met behulp van Texas Red Oligonucleotiden.Dit kan alleen gebeuren als de twee doelwitten zich op een afstand van minder dan 40 nanometer bevinden.In overeenstemming met de afstand tussen beide orgaanmembraan, op de mitochondriën geassocieerde membraaninterface.Om cellen te fixeren en te blokkeren voor de in situ proximity ligatie assay, plateer menselijke H7 cellen bij 150.000 cellen per ongecodeerde 35 mm glazen bodemschaal.Verwijder de volgende dag het kweekmedium en gebruik 1 ml PBS om de cellen te wassen.Zuig vervolgens de buffer op en voeg 1 ml tien procent formaldehyde toe.Incubeer de schalen bij kamertemperatuur met agitatie gedurende 10 minuten om de cellen te fixeren.Om de reactie te stoppen, voeg 1 ml 1 M glycine toe en meng de schalen door rotatie.Verwijder de glycine-oplossing en voeg 1 ml 1XPBS toe.Agiteer vervolgens kort de schalen en zuig de buffer op.Voeg vervolgens 1 ml 100 mM glycine toe aan de cellen.Incubeer de schalen bij kamertemperatuur met agitatie gedurende 15 minuten.Na het verwijderen van de oplossing, permeabiliseer de cellen door 1 ml 0,1% triton-X100 in PBS toe te voegen.Herhaal de incubatie.Zuig het detergent op en voeg 1 ml PBS toe om de cellen te wassen.Na het verwijderen van de buffer, voeg 40 microliter blokkeringsoplossing toe aan elke schaal met cellen en incubeer de monsters in een vochtige kamer bij 37 graden Celsius gedurende 30 minuten.Tik vervolgens de blokkeringsoplossing van de schalen, probeer gelijke restvolumes buffer voor elke dia te verkrijgen zonder de dia's te laten drogen.Om de proximity ligatie assay uit te voeren, gebruik PBS om de primaire antilichamen te verdunnen.Vortex en voeg de oplossing toe aan de schalen.Incubeer de monsters bij 4
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel presenteert een procedure voor het visualiseren en kwantificeren van de interacties tussen het endoplasmatisch reticulum en mitochondriën in gefixeerde cellen met een hoge gevoeligheid. De methode maakt gebruik van een geoptimaliseerde in situ proximity ligation assay om specifieke proteïnecomplexen bij de interface van het mitochondria-geassocieerde membraan te targeten.
Het kwantificeren van endogene interacties tussen het ER en mitochondria is van cruciaal belang voor het verminderen van risico's bij vroege ontdekkingshypotheses met betrekking tot cellulaire signalering en metabole regulatie. De in situ proximity ligation assay maakt gevoelige, gemultiplexte detectie van organelcontactplaatsen mogelijk zonder eiwitoverexpressie, wat het voorspellende vertrouwen in ziekterelateerde systemen ondersteunt. Deze mogelijkheid versterkt portfoliobeslissingen op het snijvlak van targetvalidatie en mechanistische pathway-analyse.
Deze in situ proximity ligation assay slaat een brug tussen vroege ontdekking en preklinisch onderzoek door een robuuste kwantificering van ER-mitochondriën-interacties in gefixeerde cellen en weefsels mogelijk te maken.