5 januari 2017
Er wordt een methode voorgesteld voor het analyseren van de DNA-integriteit in de celvrije supernatantfractie van urinemonsters. De methode is geschikt voor vroege detectie van urologische maligniteiten en heeft bewezen nauwkeurig te zijn voor de vroege diagnose van blaaskanker.
Het algemene doel van deze methode is om de integriteit van urine cel-vrij DNA te beoordelen bij specifieke oncogensequenties. Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van sleutelvraagstukken in het veld van urologische kanker, zoals vroege niet-invasieve diagnose van blaas- en prostaatkanker. Het grote voordeel van deze techniek is dat het gemakkelijk te doen en te analyseren is.
De implicaties van deze techniek strekken zich uit naar de diagnose van urologische maligniteiten, omdat ze normaal gesproken cellen en vrije nucleïnezuren in de urine afgeven. Hoewel deze methode inzicht kan geven in urinemonsters, kan deze ook worden toegepast op andere systemen zoals serum of plasma. Over het algemeen zouden mensen die nieuw zijn met deze methode, problemen ondervinden omdat de concentratie van urine cel-vrij DNA vaak laag is.
We hadden voor het eerst het idee voor deze methode toen we probeerden een eenvoudige methode te vinden voor niet-invasieve vroege detectie van blaaskanker. Om de procedure te starten, moet u een schone vangst van 50 milliliter eerste ochtendurine nemen die gedurende maximaal drie uur op vier graden Celsius is bewaard. Draai het monster twee keer om en verdeel het monster vervolgens in twee 50 milliliter kegelcentrifugebuizen.
Centrifugeer het monster gedurende 10 minuten bij 850 keer G op vier graden Celsius. Transfer vervolgens voor elke buis 10 milliliter van het bovenste deel van de supernatant naar twee vijf milliliter buizen, waarbij minimaal twee milliliter supernatant boven de pellet wordt achtergelaten. Gooi de pellets weg en bewaar de supernatant op min 80 graden Celsius.
Herhaal dit proces voor aanvullende urinemonsters indien nodig. Om met DNA-zuivering te beginnen, ontdooi voor elk monster een aliquot van urinesupernatant. Vortex het ontdooide monster en draai de buis twee keer om.
Plaats één milliliter van het monster in een vijf milliliter buis en bewaar de rest op min 80 graden Celsius. Bereid een DNA-zuiveringskit voor urinmonsters voor volgens de instructies van de fabrikant. Voeg 100 microliter proteïnase K en één milliliter lysisbuffer toe aan het monster en meng goed met een pipette.
Incubeer het monster gedurende 15 minuten bij 56 graden Celsius. Tijdens de incubatie, bereid de spoelbuffers in een spinkolom. Na incubatie, laat het monster afkoelen tot kamertemperatuur en voeg vervolgens één milliliter absolute ethanol toe en meng goed door te pipetteren.
Breng 650 microliter van het monster over naar de kolom. Centrifugeer gedurende één minuut bij 6000 keer G. Vervang de opvangbuis en herhaal dit proces totdat al het monster op de kolom is geladen.
Voeg vervolgens 500 microliter van de eerste spoelbuffer toe en centrifugeer de kolom gedurende één minuut bij 6000 keer G. Vervang de opvangbuis, voeg 500 microliter van de tweede spoelbuffer toe en centrifugeer de kolom gedurende drie minuten op maximale snelheid. Plaats de kolom in een schone opvangbuis en centrifugeer gedurende nog eens drie minuten op maximale snelheid om resterende spoelbuffer te verwijderen.
Breng de kolom over naar een schone 1,5 milliliter microcentrifugebuis. Laad 50 microliter elutiebuffer op de kolom en laat de buffer gedurende zeven minuten in de kolom weken. Centrifugeer vervolgens de kolom gedurende één minuut bij 6000 keer G.
Pipetteer het eluaat terug in de kolom en centrifugeer de kolom gedurende één minuut op maximale snelheid om het urine cel-vrije DNA te verkrijgen. Om de standaarden voor te bereiden, isoleer eerst DNA van een geschikte cellijn met behulp van een zuiveringskit. Kwantificeer het DNA van elk gezuiverd urinemonster in de cellijn met een spectrofotometer volgens de instructies van de kitfabrikant.
Verdun het UCF DNA tot één nanogram per microliter en bewaar de verdunde monsters op min 20 graden Celsius tot ze klaar zijn voor de integriteitstest. Verdun het cellijn DNA om zes standaarden van 100 microliter met verschillende concentraties te maken. Bewaar de standaarden op min 20 graden Celsius.
Om de DNA-integriteitstest te starten, ontdooi de UCF DNA-monsters, de standaarden, de geschikte PCR-primers en groene supermix op ijs. Zet vervolgens de 72-wels rotor schijfplaat met stripbuizen op. Plaats twee, 10 microliter aliquoten van standaard en vervolgens elke monster in de putjes.
Bereid twee putjes van 10 microliter RNAse-vrij water voor als negatieve controles. Bereid voor elke gevulde put een mix van één microliter van elke primer, 12,5 microliter groene supermix en 6,5 microliter RNAse-vrij water. Breng 15 microliter van de mix over in elke gevulde put en breng vervolgens de putjes over in een 72-wels rotor schijf.
Voer de PCR uit met een realtime instrument volgens de specificaties van de fabrikant. Controleer met behulp van de instrumentsoftware of er replieken zijn met een verschil in cyclische drempelwaarde van één of meer. Gooi deze monsters weg uit de analyse en evalueer de mediaan cyclische drempelwaarde voor de resterende monsters.
Voer smeltanalyse uit op elk monster met een mediaan cyclische drempelwaarde van 36 of minder om de specificiteit van het PCR-product te evalueren. Gebruik vervolgens de standaardcurve om een concentratie in nanogram per microliter te bepalen voor elke applicon. Urine cel-vrij DNA werd geïsoleerd en de DNA-integriteit werd geëvalueerd in vier regio's die een verhoogde DNA-kopienummer in solide tumoren vertonen.
Een controlesequentie werd ook geëvalueerd om te verifiëren of de DNA-hoeveelheid in elk monster voldoende was voor de integriteitstest. De totale vrije DNA-concentratie en de variantiecoëfficiënten werden voor elk gen berekend. Deze methode vertoont 73% gevoeligheid en 84% specificiteit voor het detecteren van blaaskanker, maar slechts 58% gevoeligheid en 44% specificiteit voor prostaatkanker.
Eenmaal onder de knie, kan deze techniek in één werkdag worden uitgevoerd als deze correct wordt uitgevoerd. Volgens deze procedure kunnen andere methoden zoals digitale PCR of next generation sequencing worden uitgevoerd om aanvullende vragen te beantwoorden, zoals het induceren van kopienummer van de genen van belang. Na het bekijken van deze video zou u een goed begrip moeten hebben
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel presenteert een methode voor het analyseren van de DNA-integriteit in de celvrije supernatantfractie van urine-monsters, gericht op de vroege detectie van urologische maligniteiten. Deze methode heeft een nauwkeurigheid getoond bij het non-invasief diagnosticeren van blaas kanker.
De ontdekking van niet-invasieve biomarkers voor urologische kankers blijft een kritieke onvervulde behoefte in trajecten voor vroege detectie. Integriteitsanalyse van celvrij DNA in urine biedt een snelle methode met een lage input om oncogen-loci te onderzoeken via kwantitatieve PCR-metingen, wat target-validatie en assay-ontwikkeling in discovery-workflows ondersteunt. De eenvoud en aanpasbaarheid aan andere biofluïda maken cross-functioneel hergebruik in translationele biomarkerprogramma's mogelijk.
De methode past binnen het ontdekkingscontinuüm, van hypothesegestuurde targetvalidatie tot assaykwalificatie, in het bijzonder voor urologische kankerprogramma's die op zoek zijn naar niet-invasieve biomarkers.