Name: Kwantificering van bacteriële histidine kinase autofosforylering Met een Nitrocellulose bindingsassay (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-01-11T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 17 s
Description: Leer hoe je autofosforylering van bacteriële histidine kinasen kwantificeert met een nitrocellulose bindingsassay. Deze gevoelige methode detecteert picomolen fosfohistidine en levert kinetische parameters voor signaaltransductieonderzoek.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit werk werd ondersteund door het Ministerie van Onderwijs door de Graduate bijstand op gebieden van het nationale programma Need (P200A100044).

Let op: Dit protocol vereist een passende opleiding in het gebruik en de verwerking van radioactief materiaal. Gebruik de vereiste persoonlijke beschermingsmiddelen bij het uitvoeren van deze test, met inbegrip van beta-straling afscherming. Radioactief afval moet zorgvuldig worden behandeld, als grote hoeveelheden afval worden gegenereerd tijdens het wassen fase van het experiment. Zorg ervoor dat het afval wordt opgeslagen in een rechtopstaande container, zoals een grote emmer of een fles die zal niet gemakkelijk over worden geslagen of gemorst. Zodra het experiment wordt gesloten, zorgvuldig overdracht van alle vloeibare afvalstoffen op passende wijze gemerkt radioactief afval containers. Behandel alle materialen met zorg, en houdt een geigerteller in de buurt om de werkruimte op vervuiling controleren. LET OP: Dit protocol is een herziene versie van een eerder gerapporteerde test van onze groep. 15 Phosphohistidine stabiliteit H 3 PO 4 moeten worden getest voor gekarakteriseerde histidine kinase voordat met deze methode. De phosphohistidine stvermogen test is eerder beschreven. 15 Een negatieve controle die geen kinase bevat moet worden opgenomen. Dit is noodzakelijk om het achtergrondsignaal van elk monster af te trekken en zorgen dat [γ- 32 P] -ATP voldoende uit het membraan gewassen. 1. Bereiding van reagentia en materialen <ol><li> Zuiver histidine kinases van bacteriecultuur voorafgaand aan het gebruik van deze test. <ol><li> Zuiver een histidine kinase (gen ID 1.189.383) uit Vibrio parahaemolyticus (EB101, ATCC 17.802) voor de ontwikkeling van deze test. Kloon het kinase in expressievector pET-23aHis-TEV behulp Ndel en Xhol restrictieplaatsen en voert plaatsgerichte mutagenese onder verkrijging van de mutant te construeren Vp1876 D499A. </li><li> Transformeren van het plasmide in E. coli BL21 (DE3) pLysS en groeien cellen in TB medium bij 37 ° C. Supplement kweken met ampicilline (100 ug / ml) en chlooramfenicol (34 ug / ml) en onder roeren groeien(250 rpm) tot een OD 600 van 0,6. </li><li> Induceren eiwitexpressie met IPTG tot een uiteindelijke concentratie van 25 uM en groeien kweken overnacht bij 16 ° C. Oogst cellen door centrifugeren (5000 x g), Lyse door sonicatie en centrifuge om cellulair afval (18.000 x g) te verwijderen. </li><li> Zuiver het His-tag kinase met behulp van Ni-NTA agarose. Bevestig de zuiverheid door SDS-PAGE. Optimaliseer zuivering voor elk eiwit, en bevestig zuiverheid voorafgaand aan het gebruik van deze test. </li></ol></li><li> Bereid de 25 mM H 3 PO 4 wasoplossing. Tot 1 liter gedestilleerd gedeïoniseerd water, voeg H 3 PO 4 tot een eindconcentratie van 25 mM. De pH van de oplossing is ongeveer 2,0. Plaats 25 mM H 3 PO 4 op ijs. </li><li> Bereid een 13x voorraadoplossing van 325 mM H 3 PO 4, te gebruiken om kinase reactie af te schrikken. De pH van de oplossing is ongeveer 1,5. Plaats 325 mM H 3 PO 4 op ijs. LET OP: H 3 PO 4 </sub&gt; Bij een uiteindelijke concentratie van 25 mM lest voldoende het reactiemengsel en helpt ook om radioactief gemerkt fosfaat dat niet is gebonden aan histidine binden aan het nitrocellulosemembraan blokkeren. </li><li> Bereid een 4x reactiebuffer voorraadoplossing van 160 mM Tris-HCl pH 8,0, 600 mM KCI, 16 mM MgCl2 en 40% glycerol. </li><li> Kwantificeren histidine kinase concentratie van gevestigde methoden eiwitconcentratie (Bradford, UV-Vis, etc.). 16,17 Bereid een histidine kinase oplossing met een concentratie die 4 maal de gewenste eindconcentratie. Voldoende signaal te verkrijgen, moet de uiteindelijke eiwitconcentratie in de reactie idealiter ten minste 5 uM. </li><li> Bereid een 4x radiolabeled [γ- 32 P] -ATP oplossing met de juiste 4x concentratie ongemerkt ATP en gelabeld: ongelabelde verhouding voor het experiment. OPMERKING: De hoeveelheid [γ- 32 P] -ATP die moeten worden opgenomen in deze mix is afhankelijk van hoeveel [^7, - 32 P] -ATP uiteindelijk gespot voor elke reactie. We hebben voldoende signaal verkregen met de uiteindelijke concentraties in het gebied tussen 0,1-5 uCi per reactie. Het is belangrijk dat de aangegeven: ongelabeld ATP ratio voor alle reacties in een bepaald experiment constant gehouden. Seriële verdunningen moeten wanneer meerdere ATP concentraties worden naar wens worden gemaakt, omdat dit goed te houden het label: ongelabelde ATP-verhouding constant in alle concentraties. Final ATP concentraties typisch variëren van 10 uM tot minstens 1 mM, en elke concentratie worden getest in drievoud betrouwbare kinetische gegevens te verkrijgen. </li><li> 96- goed dot blot apparaat <ol><li> Snij een 8 cm x 12 cm stuk nitrocellulose membraan (0,2 pm poriegrootte). </li><li> Positie nitrocellulose in een dot blot apparaat, zodat het membraan sluit zodat de inrichting wordt gesloten en alle wells volledig onder het membraan. Indien correct gemonteerd, mag er geen luchtlekken zijn wanneer het vacuüm is applied. </li><li> Om filtraat verzamelen, sluit het apparaat aan een secundaire zijarm kolf. Van het ventiel sluit adequate buis zodat de inrichting gemakkelijk kan worden gebruikt zonder kantelen secundaire kolf. </li><li> Sluit de secundaire zijarm kolf met aspirator / vacuum bron. </li><li> Testen of de inrichting volledig is afgedicht door een vacuüm aan de inrichting. Indien de inrichting correct is gemonteerd, wordt een sterke onderdruk aanwezig in alle wells. Alle slangaansluitingen kan worden gewikkeld in Parafilm of Saran wikkel om een ​​goede afdichting te garanderen. </li><li> Eventueel, het vacuüm Pipetteer 100 ul reactiebuffer Onderzoekkolom in een. Het vacuüm moet sterk genoeg zijn om alle vloeistof te trekken door de put en op het membraan. </li><li> Schakel vacuüm totdat alle monsters zijn klaar om te worden gespot op het membraan. </li></ol></li></ol> 2. Reaction Initiatie en Afschrikken <ol><li> Mengen van reactiecomponenten <ol><li> Vóór initiatie, voor te bereiden alle vier de reactie componenten zoals 4x voorraad oplossingen: reactie buffer (zie paragraaf 1.4), histidine kinase (1,5), [γ- 32 P] -ATP (1.6), en DDH 2 O. </li><li> Meng gelijke volumes reactiebuffer, histidine kinase en DDH 2 O. Laat deze reactiecomponenten equilibreren bij kamertemperatuur gedurende een korte tijd (10 min). NB: De uiteindelijke reactievolume is afhankelijk van of het experiment tijdsafhankelijke, enzym-afhankelijke, of substraat-afhankelijke. Tijdsafhankelijke reacties moet groter zijn, als meerdere aliquots van hetzelfde reactiemengsel genomen en afgeschrikt op het gewenste tijdstip. Het reactievolume is afhankelijk van het aantal gewenste tijdstippen. De bepaling wordt geoptimaliseerd voor elke plek op het nitrocellulose membraan om 30 ul van de reactie bevatten. Dus als 10 tijdstippen gewenst, het reactievolume moet minimaal 300 uL (een hoger volume als 330 pi de voorkeur in het geval van pipetteren fouten).Enzym en substraat-afhankelijke experimenten vereist kleiner reactievolume. Het reactievolume van deze experimenten kan zo klein als 30 pi zijn, aangezien dit het eindvolume die worden gespot op de nitrocellulose membraan. </li><li> Om de reactie te initiëren, dient een hoeveelheid van [γ- 32 P] -ATP oplossing voor de reactie en meng door en neer te pipetteren. Volg verstreken reactietijd met een timer en laat de reactie doorgaan gedurende de gewenste tijd. </li><li> Om de reactie te blussen, voeg 1/13 van het totale reactievolume ijskoude 325 mM H 3 PO 4 aan de reactie en meng door en neer te pipetteren. Als alternatief, voeg een hoeveelheid van het reactiemengsel tot 325 mM H 3 PO 4. Opmerking: De uiteindelijke concentratie van H 3 PO 4 moet 25 mM om de reactie voldoende blussen. Voeg bijvoorbeeld 2,5 ul 325 mM H 3 PO 4 tot 30 pi reactie of voeg 30 ul reactie 2,5 ui 325 mM H 3 PO &lt;sub&gt; 4. De uiteindelijke pH van de reactie ongeveer 4,0. Deze concentratie van H 3 PO 4 is getest en bevestigd aan de kinasereactie in deze buffer blussen zonder afbreuk phosphohistidine. <ol><li> Bijvoorbeeld, mix 7,5 ul 4x reactiebuffer, 7,5 pi 4x histidine kinase en 7,5 pl DDH 2 O. ingewijde reactie met 7,5 pi [γ- 32 P] -ATP. Schrik de reactie af met 2,5 pl 325 mM H 3 PO 4. </li></ol></li><li> Plaats onmiddellijk afgeschrikt reacties op ijs totdat alle reacties beëindigd. Opmerking: Om de efficiëntie te maximaliseren, is het raadzaam om een ​​reactie iedere 15 s of 20 totdat alle reacties geïnitieerd initiëren, en zodra de gewenste reactietijd is verstreken, doof één reactie om 15 of 20 jaren totdat alle worden gedoofd. Voor degenen die het gebruik van de test voor de eerste keer, kan een langere interval beter beheersbaar zijn. </li></ol></li></ol> 3. Spotting of Veredelde Reacties op Nitrocellulose <ol><li> Begin vacuüm op 96-well dot blot apparaat <ol><li> Plaats de voorgemonteerde 96-well dot blot inrichting (paragraaf 1.7) in een tweede container. Dit flesje moet groot zijn dat de inrichting gemakkelijk worden gedemonteerd, aangezien de inrichting en membraan radioactieve na gebruik zal zijn. </li><li> Toepassen vacuüm op het 96-well dot blot apparaat. </li><li> Zodra de inrichting onder vacuüm voorzichtig pipet het afgeschrikte reactiemengsel direct op het nitrocellulosemembraan in elk putje. Herhaal dit totdat alle reacties op het membraan worden geladen. Aangezien de bindingscapaciteit van nitrocellulose (75-110 gg / cm 2) groter is dan de hoeveelheid histidine kinase dat wordt gespot, kan worden aangenomen dat bijna alle van de kinase bindt aan het membraan wanneer correct geplaatst. OPMERKING: Afhankelijk van de gebruikte apparatuur, moet erop worden gelet de nitrocellulose niet te doorboren. Vast dat alle reactie contact met th heefte nitrocellulose. Het is gemakkelijk voor sommige of alle van de reactie te houden aan de wanden van de put en de nitrocellulose niet bereikt. </li><li> Was de putjes met 100 pl ijskoude 25 mM H 3 PO 4. Dit zal enige reactie volume die in de put kan gevangen aan het membraan te bereiken mogelijk te maken, zorgen voor volledige belading van alle reacties. Laat het gehele volume door het membraan stromen. </li></ol></li><li> Apparatuur demontage en nitrocellulose membraan overdracht <ol><li> Voorzichtig uit elkaar te halen het apparaat vóór het afsluiten van het vacuüm. Let erop dat zowel de inrichting en nitrocellulosemembraan radioactief momenteel. Gebruik geen apparaat onderdelen niet uit de secundaire container op dit moment. </li><li> Met een pincet voorzichtig overdracht van de nitrocellulose membraan van de inrichting naar een houder van ongeveer 200 ml 25 mM ijskoude H 3 PO 4. Leg een deksel op de verpakking, zoals het wassen Radi zal zijnoactive. Op dit moment kan het vacuüm worden afgesloten. </li></ol></li></ol> 4. Nitrocellulose Processing <ol><li> nitrocellulose wassen <ol><li> Plaats de houder met het wassen membraan op een rocker. Laat de folie schud gedurende 20 min. </li><li> Na 20 min, voorzichtig giet de gebruikte wasoplossing in een grote emmer om te worden gebruikt voor de opslag van tijdelijke afval. Voeg 200 ml ijskoude 25 mM H 3 PO 4 aan het membraan en herhaal. OPMERKING: Ten minste drie 20 min wassingen nodig achtergrond [γ- 32 P] -ATP signaal van het membraan te verwijderen. Na de derde wasbeurt, test de gebruikte wasoplossing voor straling met een geigerteller. Verder wassen van het membraan zoals hierboven totdat geen signaal in de wasoplossing is beschreven. </li></ol></li><li> nitrocellulose drogen <ol><li> Nadat het membraan voldoende wordt gewassen, kan de membraan kort aan de lucht drogen. Dit duurt meestal 5 minuten of minder.</li></ol></li></ol> 5. Blootstelling aan Storage Phosphor Screen Opmerking: Deze sectie is optioneel. Het blootstellen van het membraan aan een fosforscherm is gunstig doordat het zorgt voor visualisatie van de intensiteit van radioactief gemerkte kinase in elke plek op het membraan. De relatieve intensiteit van deze plekken is recht evenredig met de hoeveelheid gefosforyleerd histidine kinase in elke plek. De intensiteit kan worden gekwantificeerd beeldverwerkingssoftware, en deze resultaten worden vergeleken met die gevormd uit hoofdstuk 7. Bovendien deze stap maakt kwaliteitscontrole. Afwijkingen waargenomen bij deze scan kan onregelmatige resultaten van scintillatietelling leggen. <ol><li> Fosforscherm voorbereiding <ol><li> Voorafgaand aan het membraan blootgesteld aan het fosforscherm opslag, het fosforscherm blootgesteld aan wit licht gedurende ten minste 5 min. Dit zorgt ervoor dat het resterende afbeelding die kan worden ingenomen door het scherm wordt gewist. </li><li> Zorg ervoor dat het scherm schoonen droog. Indien nodig, reinig het scherm met een fosforscherm reinigingsoplossing door de fabrikant scherm goedgekeurd, en veeg droog. </li></ol></li><li> Nitrocellulose membraanpreparaat <ol><li> wikkelen zorgvuldig de droge nitrocellulose membraan in een dunne plastic folie om de resterende vocht te voorkomen dat schade aan het fosforscherm. Zorg ervoor dat er geen rimpels of bellen. </li></ol></li><li> Blootstelling aan fosforscherm <ol><li> Plaats de ingepakte nitrocellulose membraan in de opslag fosforscherm cassette, plaatst u het scherm naar beneden op het membraan, en sluit de cassette. Laat de cassette niet open of verplaats het membraan totdat het tijd is om het fosforscherm te scannen, zoals membraan verschuiven tijdens de blootstelling zal leiden tot een tweepersoonsbed of besmeurd beeld vast te leggen. </li><li> Expose gedurende ten minste 4 uur, of zolang de fabrikant fosforscherm suggereert. </li><li> Zodra belichting is voltooid, scant het fosforscherm en vastleggen van de afbeelding met een fosfor scanner. </li></ol></li></ol> 6. Voorbereiding nitrocellulosemembraan voor scintillatietelling <ol><li> Ponceau S kleuring en ontkleuren <ol><li> Kort Dompel het nitrocellulose membraan Ponceau S kleuroplossing (0,1% Ponceau S (w / v) in 5% azijnzuur) gedurende 1-2 min. Bevochtig het gehele membraan met de vlek voorafgaand aan ontkleuren. </li><li> Giet overtollige Ponceau S uit het membraan. </li><li> Spoel de membraan met DDH 2 O totdat alleen de spots van de histidine kinase zijn gekleurd. Merk op dat deze procedure alleen werkt wanneer alle spots detecteerbare hoeveelheden eiwit. Opmerking: Deze stap is noodzakelijk om te bevestigen dat de kinase gebonden aan de nitrocellulose en dat eiwitbelading zelfs in alle spots. Ook kan de gevlekte kinase gemakkelijk worden geknipt uit het membraan. </li></ol></li><li> Het verwijderen van vlekken <ol><li> Met een schaar, uitgesneden elke plek op het nitrocellulose membraan. Het is niet noodzakelijk om perfect snijden AlonG de rand van de gebrandschilderde spot; indien het membraan voldoende werd gewassen, zal de achtergrond als gevolg van wisselende omvang van uitgesneden plekken te verwaarlozen zijn. Het is alleen belangrijk te snijden de gehele spot per reactie. </li><li> Met behulp van een tang, zorgvuldig overbrengen elke plek in scintillatieflesjes. Nr scintillatiecocktail is nodig omdat de 32 P gemakkelijk detecteerbaar tsjerenkov-effect. LET OP: U kunt ter plaatse worden gesneden met behulp van een geslepen kurkboor. Verwijder elke plek uit de nitrocellulose met de kurk boor, en duw het in een scintillatieflesje met een pin. Bij deze methode worden de membraan niet te worden aangeraakt, verder minimaliseren van de blootstelling aan straling. </li></ol></li><li> Bepalen CPM / pmol [γ- 32 P] -ATP oplossing <ol><li> Spot verschillende verdunningen van [γ- 32 P] -ATP-oplossing (punt 1.5) op 1 cm x 1 cm pleinen van nitrocellulose. Kort aan de lucht drogen. </li><li> Met behulp van een tang, zorgvuldig overbrengen elk vierkant in scintillatieflesjes. Nr scintillatiecocktail nodig. Deze monsters worden gebruikt om een ​​standaardcurve de CPM / pmol ATP oplossing te bepalen genereren. </li></ol></li></ol> 7. scintillatietelling <ol><li> Laad alle flesjes scintillatieteller in scintillatieteller cassettes. Laad cassettes in scintillatieteller. </li><li> Uitvoeren scintillatietelling programma CPM voor elk flesje te meten. Deze gegevens, samen met de CPM / pmol van de radioactief gemerkte ATP mix (uit paragraaf 6.3), kan worden gebruikt om de hoeveelheid gefosforyleerd kinase histidine aanwezig in elke plek, en dus de snelheid van autofosforylatie te berekenen. 18,19 </li></ol>

<ol><li>Stock, A. M., Robinson, V. L., Goudreau, P. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two-component+signal+transduction%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Biochem%22%5BJournal%5D)">Two-component signal transduction.</a> Annu. Rev. Biochem. 69, 183-215 (2000).</li>
<li>Jung, K., Fried, L., Behr, S., Heermann, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Histidine+kinases+and+response+regulators+in+networks%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Histidine kinases and response regulators in networks.</a> Curr. Opin. Microbiol. 15 (2), 118-124 (2012).</li>
<li>Parkinson, J. S., Kofoid, E. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Communication+modules+in+bacterial+signaling+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Genet%22%5BJournal%5D)">Communication modules in bacterial signaling proteins.</a> Annu. Rev. Genet. 26, 71-112 (1992).</li>
<li>Laub, M. T., Biondi, E. G., Skerker, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phosphotransfer+profiling%3A+systematic+mapping+of+two-component+signal+transduction+pathways+and+phosphorelays%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Enzymol%22%5BJournal%5D)">Phosphotransfer profiling: systematic mapping of two-component signal transduction pathways and phosphorelays.</a> Methods Enzymol. 423, 531-548 (2007).</li>
<li>Ronson, C. W., Nixon, B. T., Ausubel, F. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Conserved+domains+in+bacterial+regulatory+proteins+that+respond+to+environmental+stimuli%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Conserved domains in bacterial regulatory proteins that respond to environmental stimuli.</a> Cell. 49 (5), 579-581 (1987).</li>
<li>Szurmant, H., Bu, L., Brooks, C. L., Hoch, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+essential+sensor+histidine+kinase+controlled+by+transmembrane+helix+interactions+with+its+auxiliary+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+USA%22%5BJournal%5D)">An essential sensor histidine kinase controlled by transmembrane helix interactions with its auxiliary proteins.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 105 (15), 5891-5896 (2008).</li>
<li>Price, M. S., Chao, L. Y., Marletta, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Shewanella+oneidensis+MR-1+H-NOX+regulation+of+a+histidine+kinase+by+nitric+oxide%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Shewanella oneidensis MR-1 H-NOX regulation of a histidine kinase by nitric oxide.</a> Biochemistry. 46 (48), 13677-13683 (2007).</li>
<li>Zhulin, I. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+superfamily+of+chemotaxis+transducers%3A+from+physiology+to+genomics+and+back%5BTitle%5D)+AND+%22Adv.+Microb.+Physiol%22%5BJournal%5D)">The superfamily of chemotaxis transducers: from physiology to genomics and back.</a> Adv. Microb. Physiol. 45, 157-198 (2001).</li>
<li>Robinson, V. L., Buckler, D. R., Stock, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+tale+of+two+components%3A+a+novel+kinase+and+a+regulatory+switch%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Struct.+Biol%22%5BJournal%5D)">A tale of two components: a novel kinase and a regulatory switch.</a> Nature Struct. Biol. 7 (8), 626-633 (2000).</li>
<li>Attwood, P. V., Piggott, M. J., Zu, X. L., Besant, P. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Focus+on+phosphohistidine%5BTitle%5D)+AND+%22Amino+acids%22%5BJournal%5D)">Focus on phosphohistidine.</a> Amino acids. 32 (1), 145-156 (2007).</li>
<li>Kee, J. -M., Muir, T. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chasing+phosphohistidine%2C+an+elusive+sibling+in+the+phosphoamino+acid+family%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Chem.+Biol%22%5BJournal%5D)">Chasing phosphohistidine, an elusive sibling in the phosphoamino acid family.</a> ACS Chem. Biol. 7 (1), 44-51 (2012).</li>
<li>Tawa, P., Stewart, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Kinetics+of+CheA+Autophosphorylation+and+Dephosphorylation+Reactions%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Kinetics of CheA Autophosphorylation and Dephosphorylation Reactions.</a> Biochemistry. 33 (25), 7917-7924 (1994).</li>
<li>Marina, A., Mott, C., Auyzenberg, A., Hendrickson, W. A., Waldburger, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structural+and+mutational+analysis+of+the+PhoQ+histidine+kinase+catalytic+domain.+Insight+into+the+reaction+mechanism%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Structural and mutational analysis of the PhoQ histidine kinase catalytic domain. Insight into the reaction mechanism.</a> J. Biol. Chem. 276 (44), 41182-41190 (2001).</li>
<li>Fuhs, S. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monoclonal+1-+and+3-Phosphohistidine+Antibodies%3A+New+Tools+to+Study+Histidine+Phosphorylation%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Monoclonal 1- and 3-Phosphohistidine Antibodies: New Tools to Study Histidine Phosphorylation.</a> Cell. 162 (1), 198-210 (2015).</li>
<li>Ueno, T. B., Johnson, R. A., Boon, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimized+assay+for+the+quantification+of+histidine+kinase+autophosphorylation%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem.+Biophys.+Res.+Commun%22%5BJournal%5D)">Optimized assay for the quantification of histidine kinase autophosphorylation.</a> Biochem. Biophys. Res. Commun. 465 (3), 331-337 (2015).</li>
<li>Bradford, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+rapid+and+sensitive+method+for+the+quantitation+of+microgram+quantities+of+protein+utilizing+the+principle+of+protein-dye+binding%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Biochem%22%5BJournal%5D)">A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding.</a> Anal. Biochem. 7 (72), 248-254 (1976).</li>
<li>Stoscheck, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitation+of+protein%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Enzymol%22%5BJournal%5D)">Quantitation of protein.</a> Methods Enzymol. 182, 50-68 (1990).</li>
<li>Funt, B. L., Hetherington, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Scintillation+counting+of+beta+activity+on+filter+paper%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Scintillation counting of beta activity on filter paper.</a> Science. 131 (3413), 1608-1609 (1960).</li>
<li>Bem, E. M., Bem, H., Reimchüssel, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determination+of+phosphorus-32+and+calcium-45+in+biological+samples+by+%C4%8Cerenkov+and+liquid+scintillation+counting%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Appl.+Radiat.+Isot%22%5BJournal%5D)">Determination of phosphorus-32 and calcium-45 in biological samples by Čerenkov and liquid scintillation counting.</a> Int. J. Appl. Radiat. Isot. 31 (6), 371-374 (1980).</li>
</ol>

De auteurs hebben niets te onthullen.

De nitrocellulose bindingstest we hebben beschreven heeft vele voordelen ten opzichte van eerder gebruikte werkwijzen om histidine kinases karakteriseren. In vergelijking met traditionele SDS / PAGE-autoradiografie gebaseerde, onze werkwijze hogere doorvoer en minder tijdrovend. Het nitrocellulosemembraan gemakkelijker te hanteren dan SDS gels en hoeft niet te worden vastgesteld. Ponceau kleuren van de nitrocellulose maakt de eiwitvlekken worden gevisualiseerd. Dit biedt een eenvoudige manier uit te snijden elke plek vo...

Adaptieve respons is essentieel voor de overleving van bacteriën. Op te sporen en te reageren op veranderingen in het milieu, bacteriën gebruiken een stimulus-respons systeem bekend als tweecomponenten signalering. 1,2 In een typisch twee-componentensysteem, histidine kinase detecteert verwante stimulus, autophosphorylates de geconserveerde histidine residu vervolgens overdraagt fosfaat een geconserveerde aspartaat residu op de ontvanger domein van een response regulator eiwit. 3 Deze gebeurtenis veroorzaakt een verandering in de activiteit van de response regulator, die een stroomafwaarts effect stimuleert. 4,5 Aldus bacteriën kunnen detecteren en aanpassen aan wijzigingen in de lokale omgeving. Sommige tweecomponenten signaleringssystemen afwijken archetype. In sommige gevallen, de zintuiglijke domein van de histidine kinase is een stand-alone-eiwit, die direct detecteert de zintuiglijke en wijzigt kinase activiteit door middel van eiwit-eiwit interactie. 6-8 Echter, het fondsamental werkwijze en algemene rol van het systeem blijft hetzelfde. Tweecomponenten signalering is een alomtegenwoordige stimulus-respons systeem dat essentieel is voor bacteriële overleving en histidine kinasen spelen een belangrijke rol in de transductie van het signaal. 9 Ondanks het belang van histidine kinases bacteriële biologie, blijven ze slecht gekarakteriseerd. Dit komt door de inherente instabiliteit van phosphohistidine en het ontbreken van een praktische werkwijze voor het meten van autofosforylatie. Phosphohistidine meer labiele dan fosfoserine, fosfotreonine en fosfotyrosine. 10 Dus, technieken die vaak worden gebruikt om Ser / Thr / Tyr kinases analyseren gelden niet voor histidine kinases. 11 In vitro assays histidine kinases bestuderen grotendeels beperkt tot SDS PAGE-autoradiografie. 12,13 Bij deze werkwijze [γ- 32 P] -ATP geïncubeerd met de kinase en fosforylering van het kinase wordt geanalyseerd door polyacrylamide gelelektroforese (PAGE) gevolgd door autoradiografie van het gel. Deze methode kan worden gebruikt voor het kinase autofosforylering en fosfotransfer van het kinase beantwoord regulator controleren. Deze werkwijze heeft opmerkelijke tekortkomingen. PAGE-gebaseerde testen zijn lage doorvoer en tijdrovend. Dergelijke beperkingen zijn niet bevorderlijk voor het karakteriseren van een eiwit en het vaststellen van de kinetische parameters. Een alternatieve methode voor het bestuderen histidine kinases die onlangs gepubliceerd werd gebruikt phosphohistidine antilichamen autofosforylering detecteren. 14 Hoewel deze methode heeft het voordeel van onderscheid tussen 1-en 3-phosphohistidine phosphohistidine, afhankelijk van de instrumentatie gebruikt voor detectie, kan deze methode niet over een groot dynamisch bereik of high bovenste detectiegrens. Er is dus behoefte aan een snellere, minder arbeidsintensief en meer gevoelige test die kan worden gebruikt om deze belangrijke eiwitten te bestuderen. We beschrijven hier en demonstrate een zorgvuldig ontwikkeld nitrocellulose bindingstest die gebruikt kunnen worden om autofosforylering van gezuiverde bacteriële histidine kinases in vitro kwantificeren. Deze test is een hogere doorvoersnelheid en minder tijdrovend dan PAGE gebaseerde testen. De werkwijze gebruikt ook Cherenkov straling phosphohistidine kwantificering, die een hoge bovengrens van detectie en een groot dynamisch bereik heeft. De test kan worden gebruikt om kinetische parameters voor histidine kinases bepalen.

<table><tbody><tr><td>Fosforzuur</td><td>VWR</td><td>AAAA18067-AP</td><td>Voor het blussen van reacties en het wassen van nitrocellulose</td></tr><tr><td>Tris base</td><td>RPI</td><td>T60040-5000.0</td><td>Tris-HCl pH 8.0, voor kinase reactiebuffer</td></tr><tr><td>Kaliumchloride</td><td>RPI</td><td>P41000-2500.0</td><td>Voor kinase reactiebuffer</td></tr><tr><td>Magnesiumchloride</td><td>RPI</td><td>M24000-500.0</td><td>Voor kinase reactiebuffer</td></tr><tr><td>Glycerol</td><td>RPI</td><td>G22020-4000.0</td><td>Voor kinase reactiebuffer</td></tr><tr><td>5'-ATP</td><td>Promega</td><td>E6011</td><td>Kinase substraat</td></tr><tr><td>[&gamma;-32P]-5'-ATP</td><td>Perkin Elmer</td><td>NEG002Z250UC&nbsp;</td><td>6.000 Ci/mmol</td></tr><tr><td>96-well dot blot apparaat</td><td>Bio-rad</td><td>1706545</td><td>Voor spotting reacties</td></tr><tr><td>Nitrocellulose</td><td>Whatman</td><td>32-10401396-PK</td><td>Voor spotting reacties</td></tr><tr><td>Ponceau S</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P3504-50G</td><td>Voor het kleuren van nitrocellulose</td></tr></tbody></table>

kwantificering van bacteriële histidine kinase autofosforylering met een nitrocellulose bindingsassay

Quantification of Bacterial Histidine Kinase Autophosphorylation Using a Nitrocellulose Binding Assay

We demonstreren een nuttige methode voor het kwantificeren van autofosforylering van gezuiverde bacteriële histidinekinasen. Histidinekinasen staan bekend om hun betrokkenheid bij twee-component signaaltransductie, een wijdverbreid systeem waarmee bacteriën omgevingsstimuli waarnemen en daarop reageren. Twee-component signalering omvat autofosforylering van een histidinekinase, gevolgd door fosfotransfer naar de ontvangerdomein van een responsregulator-eiwit, wat uiteindelijk leidt tot een outputrespons. Autofosforylering van de histidinekinase reageert op de aanwezigheid van een cognate omgevingsstimulans, waardoor bacteriën een middel krijgen om veranderingen in de omgeving te detecteren en daarop te reageren. Ondanks hun belang in de bacteriële biologie blijven histidinekinasen slecht begrepen vanwege de inherente instabiliteit van fosfohistidine. Conventionele methoden voor het bestuderen van deze eiwitten, zoals SDS-PAGE autoradiografie, hebben aanzienlijke tekortkomingen. We hebben een nitrocellulose-bindingstest ontwikkeld die kan worden gebruikt om histidinekinasen te karakteriseren. Het protocol voor deze test is eenvoudig en gemakkelijk uit te voeren. Onze methode heeft een hogere doorvoer, is minder tijdrovend en biedt een groter dynamisch bereik dan SDS-PAGE autoradiografie.

<html> Een representatieve gegevens set werd gegenereerd die een beeld vastgelegd met een fosfor-imager (figuur 1), Ponceau S kleuring van de nitrocellulose membraan (figuur 2), en scintillatietelling data (figuur 3). Figuur 3A toont het enzym kinetische constanten in een Lineweaver-Burk plot. Deze resultaten werden verkregen met een gezuiverd histidine kinase van de gram-negatieve species Vibrio parahaemolyticus...

We rapporteren en demonstreren een geoptimaliseerde nitrocellulose-bindendheidstest die kan worden gebruikt om de autofosforylering van gezuiverde bacteriële histidinekinasen te kwantificeren. Onze methode heeft verschillende voordelen ten opzichte van traditionele SDS-PAGE-gebaseerde technieken en biedt een waardevolle alternatief voor het karakteriseren van deze belangrijke eiwitten.

Kwantificering van bacteriële histidine kinase autofosforylering Met een Nitrocellulose bindingsassay

We demonstrate a useful method for quantifying autophosphorylation of purified bacterial histidine kinases. Histidine kinases are known for their ...

Het algemene doel van dit protocol is het kwantificeren van de autofosforylering van gezuiverde bacteriële histidinekinasen. Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van kernvragen op het gebied van twee-componentensignalering, zoals het effect van cognate stimuli in eiwit-eiwitinteracties op de autofosforylering van histidinekinasen.De belangrijkste voordelen van deze techniek zijn dat het een methode met een hoge doorvoercapaciteit is waarmee picomolen gevormd fosfohistidine nauwkeurig gedetecteerd kunnen worden en waarmee kinetische parameters voor histidinekinasen kunnen worden verkregen. Als postdoctoraal onderzoeker gebruik ik filtratie op nitrocellulosemembranen om radioactieve liganden gebonden aan eiwitten te kwantificeren. Daarom was het logisch om een soortgelijke techniek te ontwikkelen voor het kwantificeren van histidinefosforylering in bacteriële histidinekinasen.Begin deze procedure met de bereiding van reagentia en materialen zoals beschreven in het tekstprotocol. Om het 96-well dot-plot apparaat op te stellen, snijdt u een stuk nitrocellulosemembraan van acht centimeter bij 12 centimeter. Plaats de nitrocellulose in het dot-plot apparaat.Zorg ervoor dat het membraan zodanig past dat het apparaat is afgesloten en alle putjes volledig door het membraan worden bedekt. Om het filtraat op te vangen, sluit u het apparaat aan op een secundaire zijkolffles. Sluit aan de klepsteel geschikte slang aan zodat het apparaat comfortabel gebruikt kan worden zonder dat de secundaire fles kantelt.Sluit vervolgens de secundaire zijarmkolf aan op een aspiratorvacuümbron. Controleer of de opstelling volledig luchtdicht is door een vacuüm aan te brengen. Als de opstelling correct is gemonteerd, zal er in alle putjes een sterk vacuüm aanwezig zijn.Alle slangverbindingen kunnen worden omwikkeld met Parafilm of Saran wrap om een luchtdichte afsluiting te garanderen. Bereid vóór aanvang alle vier de reactiecomponenten als vier X-stamsolutions voor, zoals beschreven in het tekstprotocol. Meng gelijke volumes reactiebuffer, histidinekinase en dubbel gedestilleerd water.Laat deze reactiecomponenten korte tijd equilibreren bij kamertemperatuur. Om de reactie te starten, voegt u één volume gamma-32 P ATP-oplossing toe en mengt u dit door herhaaldelijk te pipetteren. Houd de verstreken reactietijd bij met een timer en laat de reactie de gewenste tijd doorgaan.Stop de reactie. Voeg een aliquot van de reactie toe aan 325 millimolar fosforzuur. Plaats de gestopte reacties onmiddellijk op ijs totdat alle reacties beëindigd zijn.Plaats het vooraf geassembleerde 96-well dot-plot apparaat in een secundaire container. Deze container moet groot genoeg zijn om het apparaat gemakkelijk te kunnen demonteren, aangezien het apparaat en het membraan na gebruik radioactief zullen zijn. Pas een vacuüm toe op het 96-well dot-plot apparaat.Zodra de apparatuur onder vacuüm staat, pipetteert u de gestopte reactie voorzichtig direct op het nitrocellulosemembraan in elke put. Herhaal dit proces totdat alle reacties op het membraan zijn aangebracht. Aangezien de bindingscapaciteit van nitrocellulose groter is dan de hoeveelheid opgespotte histidinekinase, kan er worden aangenomen dat bijna alle kinase aan het membraan bindt wanneer dit correct is geladen.Afhankelijk van de gebruikte apparatuur moet men er zorg voor dragen dat de nitrocellulose niet wordt doorprikt. Controleer of de gehele reactie in contact is gekomen met de nitrocellulose. Het komt vaak voor dat een deel van de reactie aan de wanden van de well blijft kleven.Was de wells met 100 µL ijskoude 25 mM fosforzuur. Dit zorgt ervoor dat elk reactievolume dat mogelijk in de well is achtergebleven het membraan bereikt, waardoor het volledig laden van alle reacties wordt gegarandeerd. Laat het volledige volume door het membraan vloeien.Demonteer het apparaat zorgvuldig voordat u het vacuüm uitschakelt. Houd er rekening mee dat zowel het apparaat als het nitrocellulosemembraan op dit moment radioactief zijn. Verwijder geen enkel onderdeel van het apparaat uit de secundaire opvangbak.Breng het nitrocellulosemembraan met een pincet voorzichtig over van het apparaat naar een houder met ongeveer 200 milliliter 25 millimolair ijskoud fosforzuur. Sluit deze houder met een deksel, aangezien het wasmiddel radioactief zal zijn. Op dit punt kan het vacuüm worden uitgeschakeld.Plaats de houder met het wasmembraan op een rocker. Laat het membraan 20 minuten lang zachtjes schudden. Giet na 20 minuten de gebruikte wasoplossing voorzichtig af in een grote emmer voor tijdelijke afvalopslag.Voeg 200 milliliter ijskoud 25 millimolair fosforzuur toe aan het membraan. Was het membraan op deze manier minstens drie keer om het achtergrondsignaal van gamma-32 P ATP van het membraan te verwijderen. Test na de derde wasbeurt de gebruikte wasoplossing op straling met een geigerteller.Kruid de membraan verder met wassen totdat er geen signaal meer aanwezig is in de wasoplossing. Nadat de membraan voldoende is gewassen, laat deze kort aan de lucht drogen, wat gewoonlijk vijf minuten of minder duurt. Na blootstelling van de nitrocellulose aan een fosforgroen, zoals beschreven in het tekstprotocol, bereid de Ponceau S-kleuring en ontkleuring voor.Dompel het nitrocellulosemembraan kort gedurende één tot twee minuten onder in Ponceau S-kleuringsoplossing. Maak het gehele membraan vochtig met de kleurstof voordat u het membraan ontkleurt. Schenk vervolgens het overtollige Ponceau S van het membraan af.Spoel het membraan met dubbel gedestilleerd water totdat alleen de vlekken van de histidinekinase zijn gekleurd. Let op dat deze procedure alleen werkt als alle vlekken detecteerbare hoeveelheden eiwit bevatten. Knip met een schaar elke vlek op het nitrocellulosemembraan uit.Het is niet nodig om perfect langs de rand van de gekleurde vlek te snijden. Als het membraan voldoende is gewassen, is de achtergrondruis door variërende grootten van de uitgesneden vlekken verwaarloosbaar. Het is alleen belangrijk om voor elke reactie de volledige vlek uit te snijden.Breng met een pincet elke spot zorgvuldig over naar scintillatieflacons. Er is geen scintillatiecocktail nodig, aangezien fosfor 32 gemakkelijk detecteerbaar is via Cherenkov-straling. Zet vervolgens verschillende verdunningen van de gamma-32 P ATP-oplossing op nitrocellulosevierkantjes van één centimeter bij één centimeter.Breng elk vierkantje met een pincet voorzichtig over naar scintillatiebuisjes zonder scintillatiecocktail. Deze monsters worden gebruikt om een standaardcurve op te stellen om de counts per minute per picomol van de ATP-oplossing te bepalen. De Ponceau-kleuring van het nitrocellulosemembraan wordt hier getoond.De kleuring is uniform over alle monsters, wat aangeeft dat alle monsters gelijkmatig zijn geladen. De fluorografieresultaten van het nitrocellulosemembraan tonen het relatieve niveau van radiogestuurd fosfohistidine in elke spot. De vierde en achtste rij zijn negatieve controles die aantonen dat overtollig ATP van het nitrocellulosemembraan is gewassen.Hier worden representatieve resultaten van de kwantificering van de autofosforylering van histidinekinase getoond. Deze gegevens zijn gegenereerd uit scintillation-tellingen van elke uitgesneden spot van het membraan. De hier getoonde standaardcurve van counts per minute per picomool ATP is eveneens gegenereerd uit scintillation-tellingen en wordt gebruikt om de picomolen fosfohistidine in elk monster te berekenen.Na deze procedure kunnen andere methoden, zoals het introduceren van cognate-stimuli of eiwitten waarvan wordt verondersteld dat ze de kinase-activiteit moduleren, aan het experiment worden toegevoegd om aanvullende vragen te beantwoorden, zoals het effect van deze additieven op de kinase-activiteit. Vergeet niet dat werken met radioactiviteit uiterst gevaarlijk kan zijn. Voorzorgsmaatregelen, zoals een passende training in stralingsveiligheid en het gebruik van persoonlijke beschermingsmiddelen en afscherming, moeten altijd worden getroffen bij het uitvoeren van deze procedure.

quantification-bacterial-histidine-kinase-autophosphorylation-using

Research

JoVE Journal

Biochemistry

Biochemie

This video demonstrates a sensitive quantification technique of protein phosphorylation using a single-molecule pull-down assay. The functionalization of polyethylene glycol-biotin and the use of labeled antibodies increases the detection of phosphorylated tyrosine with specificity.

Single-Molecule Pull-Down Assay for Protein Phosphorylation Analysis: A High Throughput Technique to Quantify Protein Phosphorylation in Cell Lysate

This video demonstrates the differential radial capillary action of ligand assay — a technique for systematic high-throughput screening of intracellular nucleotide second messenger-binding proteins. This technique allows for direct binding of the messengers to the overexpressed target protein in the cell lysate — bypassing the need for protein purification.

Differential Radial Capillary Action of Ligand Assay: A High-Throughput Technique to Identify Bacterial Nucleotide Second Messenger-Binding Intracellular Proteins

We beschrijven hier een methode om meerdere fosforylaties van een intrinsiek ongeordend eiwit te identificeren door middel van Kernspinresonantiespectroscopie (NMR), met behulp van het Tau-eiwit als casestudie. Recombinant Tau wordt isotopisch verrijkt en gemodificeerd in vitro door een kinase voorafgaand aan gegevensverwerving en analyse.

Nucleaire magnetische resonantie spectroscopie voor de identificatie van verschillende fosforyleringen van intrinsiek ontvouwen eiwitten

Proteïne kinasen zijn hoog geëvolueerde signaal enzymen en steigers die kritisch zijn voor inter- en intracellulaire signaaltransductie. Wij presenteren een protocol voor het meten van kinase-activiteit door middel van radioactief gemerkte adenosintrifosfaat ([γ-32P] ATP), een betrouwbare methode om te helpen bij het ophelderen van cellulaire signalering regulering.

Analyse van proteïnekinaseactiviteit met radiolabelde ATP

Cycline-afhankelijk kinase 1 (Cdk1) wordt geactiveerd in de G2-fase van de celcyclus en regelt veel cellulaire routes. Hier presenteren we een protocol voor een kinase in vitro assay met Cdk1, dat voorziet in de identificatie van Cdk1-specifieke fosforylatie sites vaststelling van cellulaire doelen van deze belangrijke kinase.

Identificatie van cycline-afhankelijk Kinase 1 specifieke fosforylatie Sites door een Kinase In Vitro Assay

Hier beschrijven we een methode voor de zuivering van histidine-gelabelde pyrophosphokinase enzymen en met behulp van Dunnelaagchromatografie van radioactief gelabelde substraten en producten voor de enzymatische activiteit in vitroassay. De enzym activiteit bepaling geldt in grote lijnen aan kinase, nucleotide cyclase, of fosfor-overdracht reactie waarvan mechanisme nucleotide trifosfaat hydrolyse omvat.

Een zuivering en In Vitro activiteit Assay voor een (p) ppGpp Synthetase van Clostridium difficile

Klasse 1 histone deacetylases (HDACs), zoals RpdA hebben opgedaan belang als potentiële doelstellingen voor de behandeling van schimmelinfecties. Hier presenteren we een protocol voor de specifieke verrijking van TAP-Tagged RpdA gecombineerd met een HDAC activiteit assay die het mogelijk maakt in vitro effectiviteit testen van histone deacetylase remmers.

Enkele stap verrijking van een TAP-Tagged histone deacetylase van de gloeiende schimmel Aspergillus nidulans voor enzymatische activiteit assay

We kenmerkten een nieuwe kinase eiwit met behulp van robuuste biochemische benaderingen: Western Blot analyse met een dedicated specifieke antilichaam op verschillende cel lijnen en weefsels, interacties door coimmunoprecipitation experimenten, kinase activiteit gedetecteerd door westerse Vlek gebruikend een phospho-specifiek antilichaam en door γ [32P] ATP etikettering.

Karakterisering op moleculair niveau met behulp van robuuste biochemische benaderingen van een nieuwe kinase proteïne

Dit protocol beschrijft een niet-radioactieve test om kinase activiteit van polynucleotide kinases (PNKs) te meten op kleine DNA- en RNA-substraten.

Niet-radioactieve test om polynucleotide fosforylatie van kleine nucleotide substraten te meten

Het huidige protocol beschrijft monstervoorbereiding en gegevensanalyse om eiwitfosforylering te kwantificeren met behulp van een verbeterde single-molecule pull-down (SiMPull) assay.

Een geoptimaliseerde single-molecule pull-down test voor kwantificering van eiwitfosforylering

Snelle en nauwkeurige chemische tests om te screenen op specifieke remmers zijn een belangrijk hulpmiddel in het arsenaal aan geneesmiddelenontwikkeling. Hier presenteren we een schaalbare acetyl-klikchemietest om de remming van HAT1-acetyleringsactiviteit te meten.

Een acetyl-klikchemietest om histonacetyltransferase 1-acetylering te meten

Leer hoe je autofosforylering van bacteriële histidine kinasen kwantificeert met een nitrocellulose bindingsassay. Deze gevoelige methode detecteert picomolen fosfohistidine en levert kinetische parameters voor signaaltransductieonderzoek.

Kwantificering van bacteriële histidine kinase autofosforylering Met een Nitrocellulose bindingsassay

Meer video's verkennen