11 juni 2017
Anesthesie-geïnduceerde ontwikkelingsneurotoxiciteit (AIDN) onderzoek heeft zich gericht op knaagdieren, die niet breed van toepassing zijn op mensen. Niet-menselijke primatenmodellen zijn relevanter, maar zijn kosteloos en moeilijk te gebruiken voor experimenten. Het piglet is daarentegen een klinisch relevant, praktisch diermodel dat ideaal is voor de studie van anesthetische neurotoxiciteit.
Het algemene doel van deze experimentele procedure is om de effecten van anesthetica op de neonatale hersenen te beoordelen in een klinisch relevant translatief bigmodel. Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van belangrijke vragen op het gebied van anesthesie-geïnduceerde neurotoxiciteit, zoals hoe toxiciteit optreedt en de ontwikkelingsveranderingen die gepaard gaan met dergelijke toxiciteit. Het belangrijkste voordeel van deze techniek is dat het een translatief relevant diermodel biedt voor de studie van anesthesie-geïnduceerde ontwikkelingsneurotoxiciteit waarbij de fysiologische homeostase tijdens het experiment wordt gehandhaafd.
Tijdens de inductie van de anesthesie en gedurende het hele proces, moet u het volgende monitoren: pulsoximetrie, niet-invasieve bloeddruk, elektrocardiografie en temperatuur. De meest cruciale stap tijdens deze procedure is het handhaven van de fysiologische homeostase. Dit omvat monitoring, temperatuurbeheersing, mechanische ventilatie en bloedchemie-analyse.
Om het big te bereiden voor de operatie, plaatst u eerst een perifere intraveneuze katheter van 24 gauge in de marginale oorvene. Verwarm het big met verwarmde geforceerde lucht. Controleer de temperatuur met een rectale thermometer en infundeer continu isotone vloeistof met dextrose op een onderhoudssnelheid.
Plaats vervolgens het big in de dorsale rugligging voor een tracheale intubatie. Besproei vervolgens de stembanden met 0,5 milliliter 2% lidocaine om spasmen tijdens de intubatie te voorkomen en breng een tracheale buis met een drie millimeter manchet in de luchtpijp. Zet de buis vast en controleer vervolgens op bilaterale ademhalingsgeluiden met behulp van borstauscultatie met een stethoscoop en controleer op aanhoudend end-tidal koolstofdioxide.
Breng vervolgens oogzalf aan op de ogen. Net voordat u met de operatie begint, dient u een breed spectrum antibioticum toe via de perifere intraveneuze lijn om infectie van de operatiewond te voorkomen. Steriliseer nu beide liesgebieden met minimaal twee scrubs met chloorhexidine om een goed steriele werkveld te garanderen.
Laat het operatiepersoneel mutsen, maskers, handschoenen en oogbescherming dragen. Bedek vervolgens het dier. Begin met het palperen van de femurpuls in de liesplooi.
En maak vervolgens met een scalpel een oppervlakkige craniocaudale incisie van 1,5 centimeter. Maak vervolgens een stompe dissectie tussen de twee koppen van de gracilis-spier. Lokaliseer nu het femorale neurovasculaire bundel.
Deze wordt meestal tussen de twee spieren gevonden. Gebruik vervolgens vasculaire lussen of zijden banden om de slagader aan het proximale en distale uiteinde te isoleren. Gebruik vervolgens de lus aan het proximale uiteinde om de slagader op te trekken tot het niveau van de huid distaal en oefen trekkracht uit op de proximale band om de bloedstroom te onderbreken.
Terwijl u de trekkracht handhaaft, maakt u een kleine arteriotomie met behulp van tenotomie-schaar. Breng vervolgens de katheter of polyethyleenbuis direct in het vat. Bloedterugkeer zou onmiddellijk moeten worden waargenomen.
Bevestig vervolgens onmiddellijk en zet vast een katheter die is aangesloten op een druktransducer. Bedek vervolgens de voltooide incisie met steriel gaas en spoel de katheter met fysiologisch zout. Gedurende de hele anesthesieblootstelling, controleert u de vitale functies van het big.
Let op verstoringen die kunnen wijzen op hypotensie, aritmie, hypo- of hyperthermie of hypoxie. Trek minstens één keer per uur tijdens het experiment een arteriële bloedmonster uit de femorale arteriekatheter. Gebruik vervolgens een geautomatiseerd analysesysteem om bloedwaarden uit het monster te verzamelen.
Na voldoende blootstelling aan anesthesie, verwijdert u de femorale arteriekatheter en bindt u voorzichtig de proximale vasculaire zijden naad vast om de femorale slagader permanent te occluderen en bloeding te voorkomen. Irrigeer vervolgens de incisie met 10 tot 20 milliliter zoutoplossing om infectie te helpen voorkomen. Zodra volledige hemostase is bevestigd, sluit u de incisie met een 3-0 zijden naad in een eenvoudig onderbroken patroon.
Infiltreer nu de wond met bupivacaïne en epinefrine voor pijnbestrijding. Bedek vervolgens de incisie met een steriele chirurgische huidlijm, stop met anesthesie en laat het big wakker worden. 40 mannelijke biggen werden bestudeerd.
Tussen de controle- en experimentele groepen was er geen significant verschil wat betreft hun leeftijd of gewicht. Ze werden allemaal grondig bewaakt tijdens de procedure en allen verdroegen het goed. De gemiddelde laboratoriumwaarden tijdens de experimenten in de isofluraangroep illustreren de interne consistentie en reproduceerbaarheid van de procedure.
De consistentie werd waargenomen gedurende een periode van twee jaar met gegevens die werden samengevoegd van verschillende operatoren. Nadat u deze video heeft bekeken, zou u een goed begrip moeten hebben van hoe u een fysiologisch geschikt translatief bigmodel kunt gebruiken om bijna elke preklinische pediatrische onderzoeksvraag te beantwoorden. Vergeet niet dat het werken met anesthetische middelen gevaarlijk kan zijn en dat voorzorgsmaatregelen zoals geschikte anesthesiegasopvang altijd moeten worden genomen bij het uitvoeren van deze procedure.
Deze studie onderzoekt de effecten van anesthetica op de neonatale hersenen met behulp van een klinisch relevant biggenmodel. Het onderzoek beoogt anesthetica-geïnduceerde ontwikkelingsneurotoxiciteit en de implicaties hiervan voor de pediatrische anesthesie te begrijpen.
Het biggenmodel biedt een translationeel relevant systeem voor het beoordelen van door anesthetica geïnduceerde ontwikkelingsneurotoxiciteit, waarmee een kritisch hiaat in de preklinische veiligheidsbeoordeling bij kinderen wordt gedicht. Door de fysiologische homeostase gedurende het gehele experiment te handhaven, maakt het model een betrouwbare mechanistische analyse van de effecten van anesthetica op de ontwikkelende hersenen mogelijk. Dit ondersteunt voorspellende risicoreductie in de vroege ontdekkingsfase door biologische paden te verduidelijken die gekoppeld zijn aan neurodevelopmentele uitkomsten, wat bijdraagt aan go/no-go-beslissingen in pijplijnen van CNS-actieve verbindingen.
De methode kan worden geïntegreerd in vroege discovery-workflows door hypothesetesten van anesthetische verbindingen mogelijk te maken in een fysiologisch stabiel neonataal model, wat de identificatie van lead-verbindingen direct ondersteunt door middel van mechanistische risicoreductie.