Name: Bottlenose dolfijn (Tursiops truncatus) Spermatozoa: collectie, cryopreservatie en heterologe In Vitro bevruchting (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-08-21T12:30:00.000+00:00
Duration: 11 min 42 s
Description: Leer de collectie, cryopreservatie en heterologe IVF van dolfijnsperma met runderoöcyten. Deze methode evalueert de functionaliteit van cryopreserveerd sperma voor reproductief onderzoek.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

zijn werk werd gefinancierd door het Spaanse ministerie van economie en concurrentie (AGL2015-70140-R naar D. Rizos), AGL2015-66145R A. Gutierrez-Adan en J. F. Pérez-Gutiérrez en Seneca Stichting van Murcia (Grant 20040/kiem/16 naar F. García-Vázquez)

ethische verklaring: alle experimentele procedures werden herzien en goedgekeurd door de institutionele Animal Care en gebruik van het Comité van het Instituto Nacional de Investigación y Tecnología Agraria y Alimentaria (INIA). Alle experimenten werden uitgevoerd in overeenstemming met de gids voor de zorg en het gebruik van proefdieren, zoals aangenomen door de vereniging voor de studie van de voortplanting en de Animal Welfare Act voor de verzorging van zeezoogdieren.
 1. dolphin sperma collectie en cryopreservatie <ol><li>voorbereiding <ol><li>maken FERT medium (heparine - en hypotaurine-gratis). Bereiden FERT-TALP medium aangevuld met 25 mM bicarbonaat, 22 mM natrium lactaat, 1 mM natrium pyruvaat, 6 mg/mL vetzuur-vrije BSA en 10 mg/mL heparine (pH 7.4). 
		Opmerking: Dit medium voor te bereiden op de dag van gebruik en bewaar deze bij 38.5 ° C in een atmosfeer van 5% CO 2, en in de lucht met een maximale vochtigheidsgraad voor ten minste 2 uur vóór gebruik.</li>
		<li>Bereiden TRIS ei dooier gebaseerde buffer. Los 30.28 g/L Tris, 16.75 g/L citroenzuur 12,5 g/L fructose en 0,5 g/L streptomycine in ultrazuiver water (pH 7,3, osmolaliteit = 310 mOsm/kg). Voeg het eigeel 20% (v/v).</li>
	</ol></li> <li>Trainen een bewezen fokken mannelijke tuimelaar te liggen in de dorsale recumbence in de buurt van de rand van het zwembad voor vrijwillige spermacentrum. 
	Opmerking: De mannelijke dolfijn moet worden opgeleid over 6 maanden door positieve versterking, zoals eerder beschreven 4.</li>
	<li>Verschillende tactiele stimulaties uitvoeren door zachtjes te drukken op de craniale gebied van de genitale groef van de dolfijn te verduidelijken met vrijwillige extrusie van de penis vanaf de genitale groove.</li>
	<li>Direct na het bereiken van een volledige erectie, het uiteinde van de penis in een steriele container te verkrijgen van het ejaculaat.</li>
	<li>Handhaving van het spermastaaltje bij 37 ° C tot de analyse. Herhaal stap 1.3 en 1.4 voor opeenvolgende ejaculaat collecties, met een nieuwe propyleen-glas telkens.</li>
	<li>Onmiddellijk na het verzamelen, bepalen het volume met behulp van een gegradueerde glazen cilinder eerder opgewarmd tot 37 ° C. evalueren de kleur, pH en osmolariteit (met behulp van een micro-osmometer) van het ejaculaat.</li>
	<li>Om te evalueren van de concentratie van spermacellen in het ejaculaat, 10 µL van de sperma-ophanging aan een eppendorf buis met 90 ÂµL van gedistilleerd water toevoegen. Bepaal de concentratie van de zaadcellen met behulp van een zaadcel tellen kamer. 
	Opmerking: Tijdens de evaluatieperiode, houd de rest van het ejaculaat bij 37 ° C.</li>
	<li>De motiliteit parameters evalueren.
	<ol><li>10 µL van het sperma monster nemen en breng dit in een voorverwarmde sperma kamer.</li>
		<li>Evalueren de beweeglijkheid met behulp van een computer-assisted sperma analysesysteem, eerder gevalideerd voor de Tuimelaar, objectief beoordelen de beweeglijkheid van sperma 2. 
		Opmerking: Indien nodig, Verdun het spermastaaltje met FERT medium (heparine - en hypotaurine-gratis) voor de adequate visualisatie van de beweeglijkheid van de zaadcellen. Tijdens de evaluatie, het monster bij 37 ° C te handhaven op een verwarmde Microscoop podium.</li>
	</ol></li> <li>20 µL van spermastaaltje nemen en beoordelen van de levensvatbaarheid en sperma morfologie als eerder beschreven 5.</li>
	<li>Het spermastaaltje overbrengen in een centrifugebuis. Centrifugeer het spermastaaltje bij 250 x g gedurende 5 min. Na het bepalen van de concentratie van de zaadcellen met behulp van een tellen kamer, aanpassen van de concentratie sperma tot 400 x 10 6 spermacellen/mL. 
	Opmerking: Indien nodig, Verdun de pellet van de geconcentreerde ejaculeert met geïsoleerde rudimentaire plasma van een bovenmatige hoeveelheid het dezelfde ejaculaat door middel van centrifugeren (250 x g, 10 min).
	<ol><li>In de loop van 5 min, langzaam verdund het sperma monster 1:1 (v/v) met een TRIS ei dooier gebaseerde buffer met 1,5% glycerol. De buis met de schorsing van het sperma bij 5 ° C gedurende 1 h 30 min.</li>
		<li>Uitvoeren een tweede verdunning van de schorsing van de zaadcellen met een TRIS ei dooier gebaseerde buffer met glycerol om een concentratie van 3% laatste glycerol en een eindconcentratie van 200 x 10 6 sperma/mL te verkrijgen. De sperma schorsen bij 5 ° C gedurende 10 minuten</li>
	</ol></li> <li>De sperma schorsing in 0,25 mL rietjes laden. Heat-Seal de rietjes. Plaats de rietjes in een rack 4.5 cm boven de vloeibare stikstof voor 10 min. de rietjes duik in de vloeibare stikstof en bewaren tot evaluatie.</li>
</ol> 2. Heterologe In Vitro bevruchting met behulp van Zona Intact boviene eicellen <ol><li>voorbereiding <ol><li>voorbereiden de kleuring oplossing en het medium van de montage.
		<ol><li>Bereiden Hoechst stockoplossing door ontbinding van 1 mg van Hoechst in 1 mL gedestilleerd water. 30 µL aliquots maken en houd ze in het donker bij-20 ° C tot gebruik. Bereiden kleurstofoplossing door het toevoegen van 25 µL van Hoechst stockoplossing tot 5 mL-fosfaatgebufferde zoutoplossing (PBS) aangevuld met 1 g/L PVA. Meng goed en houden in het donker bij 4 ° C tot gebruik.</li>
			<li>Voorbereiden montage medium door het mengen van 6,25 mL PBS met 6,25 mL glycerol en 6,25 µL van de stockoplossing Hoechst. Meng goed en houden in het donker bij 4 ° C tot gebruik.</li>
		</ol></li> <li>Het medium voorbereiden oöcyt collectie en in vitro bevruchting.
		<ol><li>Zoutoplossing bereiden door toevoeging van 0,5 mL gentamycine tot 0,9% NaCl gedistilleerd water.</li>
			<li>Bereiden het medium voorraad rijping door toevoeging van 10 ng/mL epidermale groeifactor (EGF) en 10% foetaal kalfsserum (FCS) tot 10 mL van TCM-199. Beide media bij 38.5 ° C in een atmosfeer van 5% CO 2, en in de lucht met een maximale vochtigheidsgraad voor ten minste 2 uur vóór gebruik handhaven.</li>
		</ol></li></ol></li> <li>De eierstokken in het slachthuis bevinden in zoutoplossing bij 33-35 ° C verzamelen en transporteren naar het laboratorium binnen 4 uur uit collectie.</li>
	<li>Eenmaal in het laboratorium, spoel de eierstokken driemaal te verwijderen van het puin en bloed met zoutoplossing eerder opgewarmd tot 37 ° C. handhaven de eierstokken zoutoplossing bij 37 ° C gedurende het proces.</li>
	<li>Aspirate 2 tot en met 8 mm follikels met een 18G naald en een spuit van 10 mL. Verzamelen van de aanzuiging folliculaire vloeistof in de buizen van 50 mL.</li>
	<li>Toestaan de folliculaire vloeistof met de eicellen te staan gedurende ongeveer 15 minuten bij 37 ° C, totdat het sediment cellen. Verwijder het supernatant van de buis met een pipet van Pasteur en resuspendeer de pellet in PBS.</li>
	<li>Herstellen van de cumulus-oöcyt complexen (COCs) in 90 mm gerechten onder een stereomicroscoop.</li>
	<li>De COCs wassen drie keer in PBS en eenmaal in rijping middellange.</li>
	<li>Overbrengen morfologisch normale COCs 4-well gerechten, elk putje met 500 mL voor rijping medium, in groepen van 50 COCs per putje. 
	Opmerking: Hier drie wells &#8211; één goed voor heterologe IVF, één besturingselement goed voor homologe IVF en een putje met alleen verviel COCs als een ongeslachtelijke besturingselement &#8211; dienden.</li>
	<li>De COCs gedurende 24 uur bij 38.5 ° C in een atmosfeer van 5% CO 2, en in de lucht met maximale luchtvochtigheid Incubeer.</li>
	<li>Bereiden van het medium en het verloop van de dichtheid.
	<ol><li>Om te bereiden bevruchting medium (FERT), vullen FERT-TALP medium met 25 mM bicarbonaat, 22 mM natrium lactaat, 1 mM natrium pyruvaat, 6 mg/mL vetzuur-vrije BSA en 10 mg/mL heparine. Zorg ervoor dat u 38.5 ° C, onder een atmosfeer van 5% CO 2, en in de lucht met een maximale vochtigheidsgraad voor ten minste 2 uur vóór gebruik.</li>
		Het verloop van de dichtheid bereid <li>door toevoeging van 1 mL van de kleurovergang medium dichtheid voor een tube van 15 mL en 3 mL oplossing tot een 15-mL koker te wassen. Ze onderhouden bij 38.5 ° C gedurende ten minste 1 h.</li>
	</ol></li> <li>Was de in vitro verviel eicellen tweemaal in FERT middellange.</li>
	<li>Overbrengen in de eicellen 4-well gerechten, elk putje met 50 COCs in 250 mL FERT. De 4-well gerechten bij 38.5 ° C in een atmosfeer van 5% CO 2, en in de lucht met een maximale vochtigheidsgraad houden bij de voorbereiding van het sperma voor de bevruchting.</li>
	<li>Ontdooien een bevroren stro met dolfijn spermatozoïden in een waterbad bij 37 ° C gedurende 50 s. 
	Opmerking: Rundersperma voor homologe IVF moet worden verwerkt parallel, na het standaardprotocol voor homologe boviene IVF.</li>
	<li>Nemen 10 µL van het sperma monster en breng dit in een voorverwarmde zaadcellen tellen kamer. Evalueren de beweeglijkheid met behulp van een computer-assisted sperma analysesysteem, eerder gevalideerd voor de soort, objectief beoordelen de beweeglijkheid van de zaadcellen. Gedurende deze tijd, het handhaven van het sperma monster bij 38,5 ° C.</li>
	Het spermastaaltje toevoegen <li>aan de dichtheid kleurovergang buis (stap 2.10.2). Centrifugeer gedurende 10 min op 250 x g.</li>
	<li>Verwijder voorzichtig de bovendrijvende vloeistof met behulp van een precisiepipet Pasteur. Voeg 3 mL van de oplossing van het wassen aan de buis met de pellet. Resuspendeer de pellet door voorzichtig mengen.</li>
	<li>Centrifuge voor 5 min op 250 x g. Verwijder de bovendrijvende vloeistof met een pipet van Pasteur een sperma volume van 300 µL.</li>
	<li>Toevoegen 5 µL van de ophanging van het sperma om een microcentrifuge met 95 ÂµL van gedistilleerd water. De sperma schorsen op 38,5 ° C. opvulling het tellen van de cel kamer met 10 µL van de 1:20 sperma verdunnings- en maatregel de concentratie. Berekenen van de hoeveelheid FERT medium dat moet worden toegevoegd aan 100 µL van het sperma te verkrijgen van 2 x 10 6 spermacellen/mL.</li>
	<li>De berekende FERT en sperma volume toevoegen voor een tube van 15 mL en meng voorzichtig met behulp van een precisiepipet Pasteur.</li>
	<li>Voeg toe 250 µL van het sperma-FERT schorsing aan elk putje van de 4-well schotel met het FERT medium met de gerijpte eicellen te verkrijgen van een eindconcentratie van 1 x 10 6 spermacellen/mL.</li>
	<li>Co Incubeer de gameten voor 18u bij 38.5 ° C in een atmosfeer van 5% CO 2, en in de lucht met maximale luchtvochtigheid.</li>
	<li>Bereiden op basis van de synthetische oviductal vloeistof aangevuld met 5% FCS voedingsbodem. Bereiden van 25 µL van synthetische oviductal vloeistof cultuur druppels in 35-mm gerechten bedekt met 3 mL minerale olie. Zorg ervoor dat u 38.5 ° C, onder een atmosfeer van 5% CO 2, en in de lucht met een maximale vochtigheidsgraad voor ten minste 2 uur vóór gebruik.</li>
	<li>Op 2,5 h post co incubatie, 20 eicellen uit de schotel verwijderen; de resterende eicellen in de incubator onder dezelfde voorwaarden te handhaven.
	<ol><li>Verwijderen van de losjes gekoppelde spermacellen door krachtig pipetteren de helft van de eicellen via een smalle-boring Pasteur Pipetteer 10 keer.</li>
		<li>Bevestigen van de 20 eicellen in 50 µL van 0,5% Glutaaraldehyde voor 30 min. Wash de eicellen in PBS voor 5 min. Transfer de eicellen tot 50-µL van Hoechst kleurstofoplossing gedurende 15 minuten en wassen van de eicellen in PBS voor 5 min.</li>
		<li>Overbrengen in de eicellen individueel 2 µL druppels van montage medium met een snelheid van 10 eicellen per dia. Zachtjes dek af met een dekglaasje aan en verzegel met nagellak.</li>
		<li>Het aantal spermacellen gekoppeld aan de boviene eicellen met behulp van een Microscoop van de fase contrast uitgerust met epifluorescerende optiek en een 361 nm excitatie filter op 40 x vergroting.</li>
	</ol></li> <li>Na 12u co incubatietijd, 10 vermoedelijke zygoten verwijderen uit de 4-well gerechten; de resterende vermoedelijke zygoten in de incubator onder dezelfde voorwaarden te handhaven.
	<ol><li>Overdracht de 10 vermoedelijke zygoten aan een centrifuge 15 mL tube met 2 mL PBS en vortex gedurende 2 min zachtjes te verwijderen van de cumulus cellen. Wash tweemaal in PBS fix en vlek, zoals hiervoor is beschreven (stap 2.23.2.)</li>
	</ol></li> <li>Na 18, 20, 22 en 24-uurs co incubatietijd, verwijderen van 10 vermoedelijke zygoten uit de 4-well gerechten en vortex, vast te stellen, en vlekken hen zoals hiervoor is beschreven (2.23.2 stap). De rest van de vermoedelijke zygoten in de incubator onder dezelfde voorwaarden handhaven.
	<ol><li>Pronuclear formatie en polyspermy onder een Microscoop fase-contrast/epifluorescerende in beide het homologe en heterologe IVF-groepen evalueren door kleuring met Hoechst.</li>
		<li>Evalueren pronuclear formatie in 10 willekeurig gekozen vermoedelijke hybride zygoten per monster. Bevestigen van de pronuclear formatie onder een confocale laser scanning microscoop op 488-nm argon laser excitatie en detectie van 515 tot 530 nm.</li>
		<li>Afdeling optisch vermoedelijke zygoten sequentieel (2 mm) en het verzamelen van beelden met behulp van een imaging software. Visualiseren met behulp van een 3D analyse softwarepakket.</li>
		<li>Na 24u van co incubatie, wassen 50 vermoedelijke zygoten viermaal PBS en tweemaal kweekmedium.</li>
	</ol></li> <li>Overbrengen in groepen van 25 naar microdruppels van kweekmedium eerder bereid en geëquilibreerd.</li>
	<li>Behouden bij 38.5 ° C in een atmosfeer van 5% O 2 / 5% CO 2 en in de lucht met maximale luchtvochtigheid.</li>
	<li>Na 26 28 nonies van co incubatie, 10 vermoedelijke zygoten verwijderen uit de gerechten en de vortex, de correctie en vlekken van hen, zoals hiervoor is beschreven (stap 2.23.2).</li>
	<li>Na 48u van cultuur, observeren het splijten onder een stereomicroscoop.</li>
	<li>Verwijderen van de zona zitten (ZP) door de overdracht van de embryo's aan een protease-oplossing van 5 mg/mL.</li>
	<li>Individueel wassen elk embryo drie keer in PBS. Module-freeze ze in vloeibare stikstof in 0,2 mL microcentrifuge buizen. Bewaar ze bij-80 ° C tot analyse.</li>
</ol> 3. PCR <ol><li>materialen en reagentia Opmerking: de reagentia, materialen en apparatuur die wordt gebruikt voor het uitvoeren van het PCR protocol worden beschreven in de tabel van materialen en omvatten een PCR buis rack en een aantal micropipetten (P2, P20 P200, P1000), 1,5 mL microcentrifuge buizen, PCR buizen en caps, een thermische cycler, een UV illuminator, agarose gel en buffer (Tris boraat EDTA (FSME)).
	<ol><li>Voorzichtig ontdooien alle reagentia op ijs. Handhaven in ijs gedurende het gehele experiment. Gebruik deoxynucleotides (dNTPs; dATP, dCTP, dTTP en dGTP), target inleidingen op de referentie gen codeert voor de dolfijn 18 S ribosomal eiwit (DQ404537.1); R1: TTGGACACACCCACGGTGCGG en F2: CAGAAGGACGTGAAGGATGGA), polymerase van DNA, 5 X buffer voor de polymerase van DNA, DNA sjabloon steriel water en magnesiumchloride (MgCl 2 op een eindconcentratie van 5.0 mM).</li>
		<li>Agarose gel en sample voorbereiding.
		<ol><li>Voorbereiden dolfijn en runderen sperma DNA-monsters.
			<ol><li>Dooi een bevroren rietje van elke soort in een waterbad bij 37 ° C voor 50 s. Voeg 3 mL oplossing te wassen. Centrifugeer bij 250 x g gedurende 10 min. Verwijder de bovendrijvende substantie. Voeg 30 µL van STES lysis buffer (50 mM Tris-HCl, pH 8; 20 mM NaCl; en 1 mM 0,1% SDS), 2 µL van proteïnase K (20 mg/mL) en 5 µL van dithiothreitol (DTT); eindconcentratie: 150 mM. Zorg ervoor dat u 's nachts 55 ° C. toevoegen 200 µL ultrazuiver water. Centrifugeer bij 250 x g gedurende 5 min. houden het supernatant. Meten van de concentratie van de DNA met een spectrofotometer.</li>
			</ol></li> <li>Uitvoeren van seriële verdunningen van het DNA van dolfijn spermacellen (d.w.z., 0.4, 40 en 4 ng/mL) met ultrazuiver water om te controleren dat de PCR voorwaarden staat zijn opsporen van een kleine hoeveelheid dolphin DNA.</li>
			<li>Uitvoeren van seriële verdunningen van boviene sperma DNA (d.w.z., 4.000, 400, 40 en 4 ng/mL) met ultrazuiver water om te controleren dat de PCR voorwaarden zijn voor het opsporen van een kleine hoeveelheid boviene DNA van.</li>
			<li>Bereiden de dolfijn en runderen embryo's. Ontdooi de embryo's op het ijs. Voeg 8 µL van 100 µg/mL proteïnase K en onderhouden 's nachts bij 55 ° C. Om te stoppen met de reactie, leg de monsters bij 96 ° C gedurende 5 min.</li>
			<li>2% agarose gel TBE buffer bereiden en Voeg 20 µL van nucleïnezuur vlek met behulp van standaardtechnieken.</li>
		</ol></li> <li>PCR voorbereiding.
		<ol><li>Label PCR sproeibuis(-buizen): dolfijn seriële verdunningen (0.4, 40 en 4 ng/mL), runderen seriële verdunningen (4.000, 400, 40 en 4 ng/mL), homologe boviene embryo van de twee cellen, twee cellen vermoedelijke heterologe embryo's en negatieve controle.</li>
			<li>Bereiden een master mengsel in een steriele 1.5-mL microcentrifuge buis tot een eindvolume van 25 µL per reactie.
			<ol><li>Toevoegen 5 µL van 5 X DNA polymerase flexi buffer, 0,5 µL van dNTPs (10 mM) 1.5 µL van MgCl 2 (25 mM), 0,5 µL voor voorwaartse en omgekeerde primer (10 µM), 1.5 µL van DNA sjabloon (sperma) of 8 µL van DNA sjabloon (twee-cel embryo's) , 0,07 µL van polymerase Taq, en steriel gedistilleerd water tot een eindvolume van 25 µL. Meng goed.</li>
			</ol></li></ol></li></ol></li> <li>Amplificatie Protocol <ol><li>plaatsen van de buizen in de thermische cycler. Selecteer het volgende programma: 94 ° C gedurende 3 minuten; 40 cycli van 94 ° C voor 15 s, 59 ° C gedurende 25 s, 72 ° C gedurende 20 s; en nog 72 ° C gedurende 5 min. het programma Start.</li>
		<li>Slaan de buizen bij 4 ° C. toevoegen 2.5 µL van het laden van de buffer aan elke PCR product bij 4 ° C en belasting 15 µL van het mengsel in de putten van de 2% agarose gel. Gebruik van een DNA-ladder marker voor de schatting van de nauwkeurige grootte van PCR fragmenten.</li>
		<li>Uitvoeren elektroforese voor 15 min om DNA migratie. Banden met behulp van een UV-illuminator gevisualiseerd.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

<ol><li>Montano, G. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+motility%2C+membrane+status+and+DNA+integrity+of+frozen-thawed+bottlenose+dolphin+%28Tursiops+truncatus%29+spermatozoa+after+sex-sorting+and+recryopreservation%5BTitle%5D)+AND+%22Reproduction%22%5BJournal%5D)">Evaluation of motility, membrane status and DNA integrity of frozen-thawed bottlenose dolphin (Tursiops truncatus) spermatozoa after sex-sorting and recryopreservation.</a> Reproduction. 143 (6), 799-813 (2012).</li>
<li>Sánchez-calabuig, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Validation+of+a+field+based+chromatin+dispersion+assay+to+assess+sperm+DNA+fragmentation+in+the+bottlenose+dolphin+%28Tursiops+truncatus%29%5BTitle%5D)+AND+%22Reprod+Domest+Anim%22%5BJournal%5D)">Validation of a field based chromatin dispersion assay to assess sperm DNA fragmentation in the bottlenose dolphin (Tursiops truncatus).</a> Reprod Domest Anim. 49 (5), 761-768 (2014).</li>
<li>Sánchez-calabuig, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heterologous+murine+and+bovine+IVF+using+bottlenose+dolphin+%28Tursiops+truncatus%29+spermatozoa%5BTitle%5D)+AND+%22Theriogenology%22%5BJournal%5D)">Heterologous murine and bovine IVF using bottlenose dolphin (Tursiops truncatus) spermatozoa.</a> Theriogenology. 84 (6), 983-994 (2015).</li>
<li>Keller, K. V. <a target="_blank" href="https://books.google.com/books/about/Training_Atlantic_Bottlenose_Dolphins_Tu.html?id=RKstOAAACAAJ">Training of the Atlantic bottlenose dolphins (Tursiops truncatus) for artificial insemination.</a> IAAAM. 14 (22), 22-24 (1986).</li>
<li>Robeck, T. R., O'brien, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+cryopreservation+methods+and+precryopreservation+storage+on+bottlenose+dolphin+%28Tursiops+truncatus%29+spermatozoa%5BTitle%5D)+AND+%22Biol+Reprod%22%5BJournal%5D)">Effect of cryopreservation methods and precryopreservation storage on bottlenose dolphin (Tursiops truncatus) spermatozoa.</a> Biol Reprod. 70 (5), 1340-1348 (2004).</li>
<li>Coy, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hardening+of+the+zona+pellucida+of+unfertilized+eggs+can+reduce+polyspermic+fertilization+in+the+pig+and+cow%5BTitle%5D)+AND+%22Reproduction%22%5BJournal%5D)">Hardening of the zona pellucida of unfertilized eggs can reduce polyspermic fertilization in the pig and cow.</a> Reproduction. 135 (1), 19-27 (2008).</li>
<li>Seager, S., W, G., Moore, L., Platz, C., Kirby, V. Semen collection (electroejaculation), evaluation and freezing in the Atlantic bottlenose dolphin (Tursiops truncatus). Proceedings of the American Association of Zoo Veterinarians. 136, (1981).</li>
<li>Schroeder, J. P. Breeding Bottlenose Dolphins in captivity. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSchroeder%2C+JP+%22The+Bottlenose+dolphin%22">The Bottlenose dolphin</a>. Leatherwood, S., Reeves, R. R. , Academic Press. San Diego. 447-460 (1990).</li>
<li>Sánchez-Calabuig, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+cryopreservation+on+the+sperm+DNA+fragmentation+dynamics+of+the+bottlenose+dolphin+%28Tursiops+truncatus%29%5BTitle%5D)+AND+%22Reprod+Domest+Anim%22%5BJournal%5D)">Effect of cryopreservation on the sperm DNA fragmentation dynamics of the bottlenose dolphin (Tursiops truncatus).</a> Reprod Domest Anim. 50 (2), 227-235 (2015).</li>
<li>Robeck, T. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Estrous+cycle+characterisation+and+artificial+insemination+using+frozen-thawed+spermatozoa+in+the+bottlenose+dolphin+%28Tursiops+truncatus%29%5BTitle%5D)+AND+%22Reproduction%22%5BJournal%5D)">Estrous cycle characterisation and artificial insemination using frozen-thawed spermatozoa in the bottlenose dolphin (Tursiops truncatus).</a> Reproduction. 129 (5), 659-674 (2005).</li>
<li>Robeck, T. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+and+evaluation+of+deep+intra-uterine+artificial+insemination+using+cryopreserved+sexed+spermatozoa+in+bottlenose+dolphins+%28Tursiops+truncatus%29%5BTitle%5D)+AND+%22Anim+Reprod+Sci%22%5BJournal%5D)">Development and evaluation of deep intra-uterine artificial insemination using cryopreserved sexed spermatozoa in bottlenose dolphins (Tursiops truncatus).</a> Anim Reprod Sci. 139 (1-4), 168-181 (2013).</li>
<li>Schroeder, J. P. Breeding Bottlenose Dolphins in captivity. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSchroeder%2C+JP+%22The+Bottlenose+dolphin%22">The Bottlenose dolphin</a>. Leatherwood, S., Reeves, R. R. , Academic Press. San Diego. 447-460 (1990).</li>
<li>Madeddu, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+cooling+rate+on+the+survival+of+cryopreserved+rooster+sperm%3A+Comparison+of+different+distances+in+the+vapor+above+the+surface+of+the+liquid+nitrogen%5BTitle%5D)+AND+%22Anim+Reprod+Sci%22%5BJournal%5D)">Effect of cooling rate on the survival of cryopreserved rooster sperm: Comparison of different distances in the vapor above the surface of the liquid nitrogen.</a> Anim Reprod Sci. , (2016).</li>
</ol>

De auteurs hebben niets te onthullen.

Voor veel verschillende soorten zoogdieren zijn er verschillende voordelen aan het gebruik van bevroren-ontdooid sperma. Het gaat hierbij om de mogelijkheid om de overdracht van waardevol genetisch materiaal, het potentieel voor wereldwijde distributie, het geringe risico van verontreiniging en het vermogen om te bewaren van mannelijke gameten voor decennia. Het gebruik van cryopreserved sperma is essentieel voor de Tuimelaar, want deze soort is beschermd op grond van bijlage II van CITES, waardoor het transport en de ui...

Geassisteerde voortplanting technologieën zijn slecht ontwikkeld in wilde dieren, met inbegrip van mariene zoogdieren. Het ontbreken van gevoelige methoden voor het beoordelen van sperma waardegevende bestanddelen succes draagt bij aan de trage ontwikkeling van reproductieve technologieën in soorten zoals dolfijnen. Het was niet tot voor kort dat de rudimentaire basisparameters van de Tuimelaar (Tursiops truncatus) gerapporteerde1,2 waren. Variabelen zoals de motiliteit en morfologie, geven hoewel op grote schaal gebruikt, echter beperkte informatie over reproductieve efficiëntie. De beste indicator van de kwaliteit van het sperma is de evaluatie van de waardegevende bestanddelen potentieel.
Onlangs, onze fractie gebruikt een methode ter beoordeling van de dolfijn sperma Bemestings-potentieel door mannelijke pronuclear vorming en/of hybride embryo vorming na heterologe IVF met zona intact boviene eicellen3te bepalen. Het gebruik van dolfijn-runderen heterologe IVF heeft belangrijke voordelen ten opzichte van homologe IVF, zoals het overwint de moeilijkheidsgraad van het verkrijgen van eicellen van de dolfijn en vergemakkelijkt het gebruik van goed getest in vitro boviene oöcyt rijping systemen. Om te voorkomen dat soorten specificiteit, is heterologe bevruchting algemeen uitgevoerd bij gebrek aan ZP. Hoewel het mogelijk voor de evaluatie van het vermogen van de spermacellen Acrosoom-gereageerd om te fuseren met het vitelline membraan maakt, schaadt het de evaluatie van andere kenmerken in verband met bemesting. De beschreven procedure maakt gebruik van zona intact eicellen en vergunningen van de evaluatie van de volgende parameters: sperma zona bindende en bijlage, penetratie, polyspermy, pronuclear formatie en hybride embryo decollete.
Hier, presenteren wij diverse protocollen voor sperma collectie, fundamentele sperma-analyse, spermacellen bevriezing, alsmede de evaluatie van de dolfijn sperma functionaliteit door mannelijke pronuclear en/of hybride embryo vorming na heterologe IVF te bepalen met behulp van zona intact boviene eicellen.

<table><tbody><tr><td>FERT-TALP medium</td><td>Merck</td><td></td><td></td></tr><tr><td>TCM-199</td><td>Sigma</td><td>M-4530</td><td></td></tr><tr><td>Hoechst 33342</td><td>Sigma</td><td>B-2261</td><td></td></tr><tr><td>4-wells schotels</td><td>Nunc</td><td>176740</td><td></td></tr><tr><td>Density gradient BoviPure</td><td>Nidacon International</td><td>BP-100</td><td></td></tr><tr><td>Wasoplossing Boviwash</td><td>Nidacon International</td><td>BW-100</td><td></td></tr><tr><td>Magnesium chloride</td><td>Promega</td><td>A35 1H</td><td></td></tr><tr><td>Steriele water</td><td>Mili Q sintesis A10 Millipore</td><td>A35 1H</td><td></td></tr><tr><td>Buffer Tris Borate EDTA</td><td>Sigma</td><td>T4415</td><td></td></tr><tr><td>MB agarose</td><td>Biotools</td><td>20.012</td><td></td></tr><tr><td>5X GoTaq flexi buffer</td><td>Mili Q sintesis A10 Millipore</td><td>M 890 A</td><td></td></tr><tr><td>MB agarose</td><td>Biotools</td><td>20.012</td><td></td></tr><tr><td>Taq polymerase</td><td>Promega</td><td></td><td></td></tr><tr><td>SafeView</td><td>NBS Biologicals Ltd.</td><td>M 890 A</td><td></td></tr><tr><td>Makler tellingkamer</td><td>Sefi Medical</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Thoma kamer</td><td>Hecht-Assistant</td><td></td><td></td></tr><tr><td>pHmeter MicropH 2000</td><td>Crison Instruments</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Osmometer Advanced micro osmometer 3300</td><td>Norwood</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Computer gestuurd spermaanalysesysteem</td><td>Projectes y Serveis R+D</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Stereomicroscoop MZ 95</td><td>Leica</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Epifluorescent optica Eclipse Te300</td><td>Nikon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Confocal assistent 4.02 software</td><td>Bio-Rad</td><td>3D analyse software</td><td></td></tr><tr><td>Confocal laser scanning microscopie</td><td>Bio-Rad</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Micropipetten (P2, P20, P200, P1000)</td><td>Gilson</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microcentrifuge buisjes</td><td>VWR</td><td></td><td></td></tr><tr><td>UV iluminator</td><td>Bio-Rad</td><td></td><td></td></tr><tr><td>PCR Thermal cycler Primus 96 Plus</td><td>MWG AG Biotech</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

bottlenose dolfijn (tursiops truncatus) spermatozoa: collectie, cryopreservatie en heterologe in vitro bevruchting

Bottlenose Dolphin (Tursiops truncatus) Spermatozoa: Collection, Cryopreservation, and Heterologous In Vitro Fertilization

Het gebruik van de cryopreserved dolfijn spermacellen vergemakkelijkt de uitwisseling van genetisch materiaal tussen aquatische parken en spermacellen toegankelijk maakt voor laboratoria voor studies om ons begrip van zeezoogdieren reproductie. Heterologe IVF, een vervanging voor homologe IVF, kan dienen als een middel om te testen de sperma vruchtbaarheid potentiële; studie gameet fysiologie en vroege embryo-ontwikkeling; en om te voorkomen dat het gebruik van waardevolle dolfijn eicellen, die moeilijk te verkrijgen. Hier presenteren we de protocollen die zijn geopend met succes cryopreserve dolfijn spermacellen te verzamelen. Het verzamelen van sperma wordt uitgevoerd door handmatige stimulatie bij getrainde dolfijnen. Cryopreservatie wordt bereikt met behulp van een TRIS-ei-dooier gebaseerd extender met glycerol. Daarnaast presenteren wij een protocol die beschrijft heterologe IVF met dolfijn spermacellen en eicellen van runderen en die wordt gecontroleerd of het hybride karakter van het resulterende embryo met behulp van PCR. Heterologe bevruchting roept vragen op over bevruchting en kan worden gebruikt als een instrument gameet fysiologie en vroege embryo-ontwikkeling te gaan studeren. Bovendien, toont het succes van heterologe IVF het potentieel van deze techniek voor het testen van de dolfijn sperma Bemestings-capaciteit, die is de moeite waard nader onderzoek.

Alle de resultaten, tabellen en figuren (1 en 2) die hier werden gereproduceerd met toestemming3.
Dolfijn spermacellen hebben hoge beweeglijkheid na bevriezen en ontdooien
De bevroren-ontdooid dolfijn ejaculeert toonde percentages (% ± SD) 84.5 ± 5.3 totaal motile en 69.1 ± 5.1 progressieve motile spermacellen. Deze nummers zijn in termen van de mo...

Hier presenteren we protocollen die met succes zijn gebruikt voor dolphin spermacellen collectie, cryopreservatie en heterologe IVF-prestaties met boviene eicellen.

Bottlenose dolfijn (Tursiops truncatus) Spermatozoa: collectie, cryopreservatie en heterologe In Vitro bevruchting

The use of cryopreserved dolphin spermatozoa facilitates the exchange of genetic material between aquatic parks and makes spermatozoa accessible to ...

Het algemene doel van deze techniek is om de functionaliteit van cryobewaard dolfijnensperma te beoordelen via heterologe in vitro fertilisatie met gebruik van cryobewaarde dolfijnspermatozoën en zona-intacte runder-oocyten. In deze video laten we zien hoe dolfijnspermatozoën worden verzameld, geëvalueerd en cryobewaard. Vervolgens zullen we de interactie van de spermatozoën en de penetratie tot aan de zona pellucida beoordelen.Vorming van de mannelijke pronucleus en klieving van hybride embryo's. Een kritisch punt bij de ontwikkeling van geassisteerde voortplantingstechnieken is de evaluatie van de spermafunctie, die het best wordt aangegeven door het vermogen tot bevruchting. Homologe IVF-technieken worden gewoonlijk gebruikt voor de evaluatie van de spermafunctie, maar het verkrijgen van dolfijneicellen is zeer moeilijk.Het belangrijkste voordeel van heterologe in vitro fertilisatie is de eenvoud ervan. Bovine oocyten zijn gemakkelijk verkrijgbaar en kunnen in vitro worden verwerkt via goed geteste protocollen. We zullen ook demonstreren hoe dolfijnenspermatozoïden kunnen worden cryobewaard met behulp van vloeibare stikstofdampen.Een eenvoudige techniek die geen zeer gespecialiseerde vriesapparatuur vereist. Voor deze procedure moet de mannelijke dolfijn vooraf zes maanden getraind zijn met behulp van positieve bekrachtiging. Laat het dier in rugligging bij de rand van het bassin liggen.Voer daar vervolgens diverse tactiele stimulaties uit door voorzichtig op het craniale gebied van de genitalgroef te drukken om een vrijwillige extrusie van de penis op te wekken. Richt de penispunt na het bereiken van een volledige erectie op een steriel reservoir. Houd het ejaculaat op 37 °C tot aan de analyse.Herhaal indien nodig de tactiele stimulatie voor opeenvolgende verzamelingen van ejaculaat, waarbij elke keer een nieuw polypropyleenglas wordt gebruikt. Evalueer de ejaculaten onmiddellijk na verzameling, waarbij ze gedurende het hele proces op 37 °C worden gehouden. Bepaal het volume, de kleur, de pH en de osmolariteit van de ejaculaten.Bepaal vervolgens uit een aliquot van 10 µL de spermatozoa-concentratie in een telkamer. Plaats het ejaculaat op een objectglas op een verwarmde microscooptafel bij 37 °C. Evalueer de motiliteit van de sperma met behulp van een computergestuurd analysesysteem.Verdun het sperma indien nodig met fert-medium om de observatie te vergemakkelijken. Evalueer vervolgens de levensvatbaarheid en morfologie van het sperma met een aliquot van 20 µL ejaculaat via conventionele kleuring met Eosin Nigrosin en Spermac. Breng voor cryopreservatie de spermaproef eerst over naar een centrifugebuis.Pelleteer vervolgens de sperma bij 250 G gedurende vijf minuten. Maak nu in een tijdsbestek van vijf minuten langzaam een 1:1 verdunning van de spermaproef met een trace eigeelgebaseerde buffer die 1,5% glycerol bevat. Koel de proef vervolgens 1,5 uur af bij 5 °C.Herhaal een uur later de 1:1 verdunning met dezelfde buffer en houd de spermasuspensie vervolgens gedurende 10 minuten op vijf graden Celsius. Laad de suspensie daarna in straws van 0,25 milliliter en verzegel de straws hittebestendig. Plaats de straws in een rek en hang het rek 10 minuten lang 4,5 centimeter boven vloeibare stikstof.Dompel de straws vervolgens in vloeibare stikstof voor langdurige bewaring. Gebruik voor dit protocol rundereierstokken die in warme zoutoplossing zijn bewaard en binnen de afgelopen drie uur zijn verzameld. Begin met het drie keer wassen van de eierstokken met zoutoplossing.Houd ze constant op 37 °C. Aspireer vervolgens alle follikels van 2 mm tot 8 mm met een 18-gauge naald en spuit. Breng dit over naar een buis van 50 mL en laat de oocyten 15 minuten bezinken.Verwijder vervolgens het supernatant en resuspendeer de follikels in PBS. Herstel de COCs onder een stereomicroscoop in schalen van 90 millimeter. Selecteer oocyten van graad één en twee die een homogeen cytoplasma hebben en omringd zijn door ten minste drie lagen cumuluscellen.Breng deze oocyten over naar PBS in een schaal van 35 millimeter. Was de COC's vervolgens drie keer in PBS en één keer in rijpmedium. Breng daarna de COC's over naar schalen met vier putjes, met 50 COC's en 500 milliliters rijpmedium per putje, en incubeer de COC's vervolgens gedurende 24 uur.Zodra de oocyten expanderende cumuluscellen hebben, zijn ze rijp. Was ze vervolgens tweemaal in fert-medium en breng ze over naar vier-wellschalen in groepen van 50, met 250 milliliters fert-medium per well. Plaats de COC's nu terug in hun incubator en bereid het sperma voor op de fertilisatie.Vul een bevroren pipet met dolfijnspermatozoa en een pipet met runder-spermatozoa in een waterbad bij 37 °C gedurende 50 seconden. Evalueer vervolgens hun beweeglijkheid subjectief met behulp van een fasecontrastmicroscoop. Breng daarna het spermaproef monster over naar een density gradient-buis en centrifugeer dit gedurende 10 minuten bij 250 G. Verwijder voorzichtig het supernatant.Voeg vervolgens drie milliliters van de wasoplossing toe. Resuspendeer daarna de sperma door voorzichtig te mengen. Centrifugeer de buis nu opnieuw en verwijder het grootste deel van het supernatant, waarbij het sperma in 300 microliters achterblijft.Tel nu de spermatizoa en pas de concentratie aan naar twee miljoen per milliliter, verdund met fert-medium. Voeg 250 microliters van de suspensie toe aan elke put met oocyten om een uiteindelijke spermaconcentratie van één miljoen per milliliter te verkrijgen. Observeer onder een stereomicroscoop de uitgezette, gerijpte oocyten omringd door ofwel de beweeglijke runder- of dolfijnspermatizoa, waarbij die van de dolfijn kleiner zijn dan de runder-spermatizoa.Cointubate de gameten gedurende 18 uur. Om de interactie van de spermaten met de zona pellucida te evalueren, worden 2,5 uur na het begin van de co-incubatie 20 oocyten uit de schaal verwijderd. Verwijder de losjes gehechte spermatozoa door krachtig te pipetteren met een Pasteur-pipet met een smalle opening.Fixeer en kleur vervolgens de oocyten met haken volgens 3342. Breng de gekleurde oocyten individueel over naar druppels van twee microliter monteermedium en tel het aantal spermatozoïen dat aan de oocyten is gehecht met behulp van een fasecontrastmicroscoop. Breng vanaf 18 uur co-incubatie de 10 vermoedelijke zygoten over naar een centrifugebuis van 15 milliliter met twee milliliter PBS en vortex deze voorzichtig gedurende drie minuten om de cumuluscellen te verwijderen.Was twee keer in PBS, fixeer en kleur zoals eerder beschreven. Verzamel daarnaast na 18 uur co-incubatie 50 zygoten voor cultivering. Vortex deze drie minuten in PBS en was ze vervolgens twee keer in PBS.Select na het wassen zygoten met een homogeen cytoplasma voor de kweek. Breng deze in groepen van 25 over naar druppels van 25 µL synthetische eileidvloeistof aangevuld met 5% foetaal kalfsserum. Kweek de vermeende zygoten vervolgens gedurende 48 uur en evalueer hun delingspercentage met een stereomicroscoop.Evalueer later hun genetische opmaak verder via PCR volgens het tekstprotocol. De spermatozoa van ontdooide, bevroren dolfijnejaculaten waren voor ongeveer 85% motiel en voor 70% progressief motiel. Deze getallen zijn representatief voor cryogepreserveerde spermatozoa van hoge kwaliteit.Dolfijnspermatozoïa hechtten zich na 2,5 uur co-incubatie in een hoger percentage aan de runder zona pellucida dan runderpermatozoïa. De dolfijnspermatozoïa waren in staat om de zona van intacte runder-oocyten te penetreren, wat leidde tot pronucleusvorming en klieving. In de heterologe in vitro fertilisatiegroep werd geen polyspermie waargenomen.De pronucleusvorming bereikte het hoogste percentage na 24 uur. De pronucleusvorming verliep sneller in de homologe groep. De splitsingsgraad na 48 uur was bij heterologe bevruchtingen lager dan bij homologe bevruchtingen.PCR bevestigde de aanwezigheid van genetisch materiaal van dolfijnen in de hybride embryo's. Er werd getest met primers voor het 18 s ribosoomgen van de dolfijn, wat resulteerde in een product van 190 baseparen. Banen één tot 30 zijn dolfijn-runderhybriden.Controles waren dolfijn-DNA in de S-banen en twee cellen van rundembryo's in de C-banen. Het gepresenteerde protocol voor autologe in vitro fertilisatie heeft aangetoond dat tuimeldolfijnen in staat zijn om intacte oocyten van runderen te bevruchten, wat resulteert in hybride embryo's.Verdere ontwikkeling en optimalisatie van deze techniek zullen de evaluatie van de functionaliteit van dolfijnsperma vergemakkelijken. Cryopreservatie van dolfijnspermatozoa met behulp van vloeibare stikstofdampen is een goedkope, snelle en eenvoudige methode die goede parameters voor progressieve motiliteit oplevert en succesvolle heterologe in vitro fertilisatie mogelijk maakt. De observatie dat dolfijnsperma in staat is om runder-oocyten te bevruchten, opent een nieuw onderzoeksveld voor de reproductie van de dolfijn en andere zeedieren.Het roept ook vragen op over de mechanismen van bevruchtiging die grotendeels onbeantwoord blijven.

bottlenose-dolphin-tursiops-truncatus-spermatozoa-collection

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Ontwikkelingsbiologie

In deze video-artikel stellen we een stap-voor-stap demonstratie over hoe het verzamelen en hamster eicellen cryopreserve met een hoge post-dooi overleving. Dezelfde procedure kan ook worden toegepast om met succes vorst en dooi muis embryo's in verschillende stadia van pre-implantatie ontwikkeling.

Verzamelen en Cryopreservatie van Hamster Eicellen en muis embryo&#39;s

Dit is een high-throughput sperma cryopreservatie protocol voor zebravis. Sperma gecryopreserveerde gebruik van dit protocol is een gemiddelde van 25% in de daaropvolgende vruchtbaarheid vitro fertilisatie en is stabiel gedurende vele jaren.

Een high-throughput-methode voor zebravis sperma cryopreservatie en In Vitro Bevruchting

Een ethyleen-glycol-gebaseerde methode voor verglazing muis embryo's wordt beschreven. Is het voordelig om andere methoden in zijn eenvoud en lage embryonale toxiciteit, en kan dus worden breed toepasbaar voor vele stammen van muizen, met inbegrip van inteelt en gen-gemodificeerde muizen.

Invriezen van embryo&#39;s door Mouse Ethyleen Glycol-Based Vitrificatie

Hier laten we zien de nieuw ontwikkelde I • Cryo-kit voor de muis sperma cryopreservatie. Twee-cellig stadium embryo ontwikkeling met ingevroren-ontdooid sperma werd steeds verbeterd in 5 muizenstammen met het gebruik van deze kit. Over een periode van 1,5 jaar werden 49 genetisch gemodificeerde muis lijnen gearchiveerd door sperma cryopreservatie met de I • Cryo-kit en later met succes teruggevorderd door IVF.

Muis Sperma Cryopreservatie en herstel met behulp van de I · Cryo Kit

De zebravis is een krachtig modelsysteem voor ontwikkelingsbiologie en onderzoek naar menselijke ziekten vanwege hun genetische overeenkomsten met hogere gewervelde dieren. Dit protocol beschrijft een methodologie om haploïde zebravis-embryo's te creëren die kunnen worden gebruikt voor forward screen-strategieën om recessieve mutaties in genen die essentieel zijn voor vroege embryogenese te identificeren.

Productie van Haploid zebravis embryo&#39;s door<em&gt; In Vitro</em&gt; Bemesting

Een gewijzigde protocol voor ploïdie manipulatie maakt gebruik van een heat shock naar een één-cyclus kraam in cytokinese induceren in de vroege embryo. Dit protocol wordt gedemonstreerd in de zebravis, maar kan voor andere soorten.

Ploïdie Manipulatie van zebravis embryo&#39;s met Heat Shock 2 Treatment

Het belangrijkste doel van deze studie was aan te passen de naald ondergedompeld verglazing (NIV) procedure om te cryopreserve hele zebrafish teelballen. Daarnaast is de herhaalbaarheid van de methode in vijf verschillende zebrafish stammen was getest.

Cryopreservatie van zebravis testis van hele Testes Needle ondergedompeld Ultra snelle koeling

Dit protocol beschrijft een procedure van vis sperma evaluatie met behulp van computer-assisted sperma-analyse en koelingsapparaten. De software geeft een snelle, nauwkeurige en kwantitatieve analyse van vis spermakwaliteit gebaseerd op de beweeglijkheid van de spermacellen, die kan hierbij een nuttig instrument in de aquacultuur te verbeteren reproductie succes.

Vis sperma beoordeling softwarematig en koelingsapparaten

Protocollen voor Europese aal rijping en sperma cryopreservatie hebben verbeterd in de afgelopen jaar. Dit artikel beschrijft het beste protocol beschikbaar met behulp van humaan choriongonadotrofine (hCG) voor inducerende rijping en methanol als cryoprotectant.

Voor de verwerking en behandeling van mannelijke Europese aal (Anguilla anguilla) voor hormonale rijping en sperma cryopreservatie

Dit protocol beschrijft een semi-geautomatiseerde route om de efficiëntie en capaciteit van de verwerking en cryopreservatie van sperma van bedreigde koraalsoorten te verbeteren, met als doel de genetische diversiteit veilig te stellen en de inspanningen voor rifherstel te ondersteunen.

Een semi-geautomatiseerde workflow voor de cryopreservatie van koraalsperma ter ondersteuning van biobanking en aquacultuur

Dit protocol biedt een eenvoudige microaspiratietechniek om levensvatbare somatische cellen (SC's) te isoleren uit cryopgereserveerd paardenzaad. In tegenstelling tot traditionele methoden voorkomt deze techniek lange in vitro-kweken en voorkomt het spermabesmetting, waardoor direct gebruik bij somatisch celklonen mogelijk wordt.

Een eenvoudige microaspiratietechniek om somatische cellen te isoleren uit gecryopreserveerd paardenzaad als nucleaire donoren voor klonen

Leer de collectie, cryopreservatie en heterologe IVF van dolfijnsperma met runderoöcyten. Deze methode evalueert de functionaliteit van cryopreserveerd sperma voor reproductief onderzoek.

Bottlenose dolfijn (Tursiops truncatus) Spermatozoa: collectie, cryopreservatie en heterologe In Vitro bevruchting

Meer video's verkennen