Name: Opfok Ixodes scapularis, De Black-legged Tick: Het voeden van onvolwassen stadia op muizen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-05-08T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min
Description: Leer een kosteneffectief protocol voor het voeden van onvolwassen teken op muizen. Deze methode verhoogt de overlevingskans van bloedgevoede teken en vermindert stress bij knaagdieren.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

De auteurs erkennen de hulp van het personeel van Laboratory Animal Medicine, University of Nevada, Reno. MM ontving financiering van Nevada INBRE.

Het protocol (Number-00682) hieronder geschetst wordt goedgekeurd door de Institutional Animal Care en gebruik Comite (IACUC) aan de Universiteit van Nevada Reno en volgt de richtlijnen van de Universiteit van Nevada, Reno&#39;s dierproeven ethische commissie. In het kort werden muizen verdoofd met isofluraan en een neuskegel werd gebruikt voor het handhaven continue isofluraan niveaus gedurende 20 min. Een dierenarts zalf werd gebruikt om uitdroging van de ogen onder narcose voorkomen. Toe pinch werd gebruikt om de verdoving niveau vast te stellen en de ademhaling werd gemeten gedurende de gehele procedure. De muizen werden in individuele kooien gehouden en gecontroleerd tot bewustzijn was herwonnen. De muizen werden slechts eenmaal gebruikt voor teek voeden en werden gedood na de teek herstel. Euthanasie werd uitgevoerd door het Laboratorium voor Diergeneeskunde van personeel personeel. CO 2 en cervicale dislocatie werden toegepast voor euthanasie dieren. OPMERKING: Werken aan teken vereist het gebruik van een volledige persoonlijke beschermingsmiddelen equipment. Voor het tellen van onvolwassen ticks, draag witte labcoatjes, lange nitrilhandschoenen om de mouwopening van de labcoat te bedekken, afgedekt met rubberen banden, en gesloten-toe schoenen. Voor het mishandelen van muizen met bosjes, gebruik een haarnetje, wegwerpdeksels, lange mouwen handschoenen over de mouwen en voetdeksels. Gebruik witte of lichtgekleurde hoesjes om vrolijke tekenjes te detecteren. Controleer regelmatig handschoenen en mouwen voor teken. 1. Voorbereiding van ruimte voor dierenhuisvesting <ol><li> Geef een aparte kamer aan om muizen die met bosluizen zijn besmet te houden. Plaats een kleverige mat of dubbelzijdig tapijtbandje buiten en in de deur om onbedoelde vogelvlucht te voorkomen. </li></ol> 2. Tellen tellen voor muisinfestatie <ol><li> Zet dubbelzijdige tape rondom de bovenste randen van een 7 &quot;x 5&quot; x 14 &quot;plastic container en vul het water ongeveer 2 cm. </li><li> Plaats een andere kleine doos of Petri-schotel in het midden van de container en vul het met water tot 1 cm en maak een &amp;# 34; graaf &quot;rond deze container </li><li> Bewaar de injectieflacon met larven of nimfen in de Petri-schotel. </li><li> Gebruik een fijne verfborstel om larven of nimfen uit de injectieflacon te verwijderen en tellen onder de microscoop. Tel 50 larven of 25 nimfen in aparte scintillatieflessen. Bedek de flesjes onmiddellijk met nylon mesh of organdy doek scherm en sluit met rubberen banden. </li></ol> 3. Bevestiging van Muizen Met Onvolwassen Ticks <ol><li> Gebruik een witte of lichte werkbank en plak dubbelzijdige tape rond de omtrek van het werkgebied. </li><li> Verdoof de muis met isofluraan. Controleer het niveau van de verdoving door de teenspanning. Zodra u verdoofd hebt, overdragen de muis naar een verwarmingsblok die bedekt is met papieren handdoeken en vastzetten aan een neuskegel voor verdere aanlevering van isofluraan. </li><li> Breng olieoplossing op basis van oliën aan om droogheid te vermijden. Let op het ademhaling patroon van de muis om isofluran niveaus aan te passen (80 - 230 ademhalingen per minuut is normaal., Verminder het isofluraan niveau als breathing is minder dan 80 ademhalingen per minuut vermijden doden van het dier). </li><li> Neem een flesje van 50 larven en nimfen en 25 plaats teken onder de vacht op de kop tussen de oren met een kwast (figuur 1). Houd de muis onder narcose gedurende 20 minuten na de plaatsing om genoeg tijd op teken te hechten geven. </li><li> Beweeg de muis om een ​​standaard plastic schoenendoos wegwerpluier muizenkooi met statische deksels wit beddengoed. Zorg voor speelgoed, water en voedsel ad libitum als per gewone muis zorg. </li><li> Bewaar het muizenkooi binnen een grotere rat of gerbilverblijf gevoerd met dubbelzijdig plakband rond bovenranden. Vul het buitenkooi 3 cm water (figuur 2). </li></ol> 4. Verzamelen Teken van Muizen <ol><li> Onrijpe teken los tussen dagen 3 en 6 van het voeden. Controleer de kooien en water gracht voor gezwollen teken elke dag na dag 3. </li><li> Verzamel vrijstaande teken uit de kooi tussen dag 4 en 6. Gebruik een pijnt kwast of zachte tang voor het opnemen gezwollen teken en bewaar in schone scintillatieflesjes afgedekt met nylon mesh doek bevestigd met elastiekjes. </li><li> Verdoven en laat de muis op dag 7 voor alle resterende bijgevoegde teken. </li><li> Controleer het beddengoed, voerbak en waterfles voor overvuld teken op dag 7 muizen Euthanaseren de procedure zoals hierboven beschreven. Autoclaaf de wegwerpbare kooien, beddengoed, waterfles en voedertrog geven ontsnapt niet gevoede teken voorkomen. </li></ol> 5. Opslag van Fed Ticks <ol><li> Handhaaf gezwollen teken bij 90% vochtigheid, 20 ° C en een 12:12 licht: donker cyclus in een vochtige en geïsoleerde incubator tot vervellen optreedt. Dit kan ongeveer 12 tot 18 weken duren voor te komen. </li><li> Terwijl de hoge luchtvochtigheid bevordert tick overleving, het maakt ook de teken vatbaar voor schimmel overgroei. Controleer de fed teken onder de microscoop minstens een keer per week voor schimmels. Indien ontdekt, wassen overlevenden in 70% ethanol gedurende 5Min., Spoelen in water, overbrengen naar een filterpapier om te drogen en over te brengen naar nieuwe, schone flesjes. </li></ol>

<ol><li>Gleim, E. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Factors+associated+with+tick+bites+and+pathogen+prevalence+in+ticks+parasitizing+humans+in+Georgia%2C+USA%5BTitle%5D)+AND+%22Parasites+%26amp%3B+Vectors%22%5BJournal%5D)">Factors associated with tick bites and pathogen prevalence in ticks parasitizing humans in Georgia, USA.</a> Parasites &amp; Vectors. 9 (125), Available from:
 <a target="_blank" href="http://doi.org/10.1186/s13071-016-1408-6">http://doi.org/10.1186/s13071-016-1408-6</a> 1-13 (2016).</li>
<li>Krober, T., Guerin, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+feeding+assays+for+hard+ticks%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Parasitol%22%5BJournal%5D)">In vitro feeding assays for hard ticks.</a> Trends Parasitol. 23 (9), 445-449 (2007).</li>
<li>Kuhnert, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Feeding+of+Hard+Ticks+In+Vitro%3A+New+Perspectives+for+Rearing+and+for+the+Identification+of+Systemic+Acaricides%5BTitle%5D)+AND+%22ALTEX%22%5BJournal%5D)">Feeding of Hard Ticks In Vitro: New Perspectives for Rearing and for the Identification of Systemic Acaricides.</a> ALTEX. 13 (2), 76-87 (1996).</li>
<li>Voigt, W. P., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/8233589">In vitro feeding of instars of the ixodid tick Amblyomma variegaturn on skin membranes and its application to the transmission of Theileria mutans and Cowdria ruminantium.</a> Parasitol. 107, 257-263 (1993).</li>
<li>Gregson, J. D. Ticks. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aGregson%2C+JD+%22Insect+Colonization+and+Mass+Production%22">Insect Colonization and Mass Production</a>. Smith, C. N. , Academic Press. New York. 49-72 (1966).</li>
<li>Sonenshine, D. E. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSonenshine%2C+DE+%22Biology+of+Ticks%22">Biology of Ticks</a>. 2, Oxford University Press. New York. (1993).</li>
<li>Bouchard, K. R., Wikel, S. K. Care, maintenance, and experimental infestation of ticks in the laboratory setting. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBouchard%2C+KR+%22Biology+of+Disease+Vectors%22">Biology of Disease Vectors</a>. Marquaedt, W. C. , Elsevier. New York. 705-711 (2005).</li>
<li>Schumaker, T. S., Barros, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Life+cycle+of+Ornithodoros+%28Alectorobius%29+talaje.+%28Acari%3AArgasidae%29+in+laboratory%5BTitle%5D)+AND+%22J+Med+Entomol%22%5BJournal%5D)">Life cycle of Ornithodoros (Alectorobius) talaje. (Acari:Argasidae) in laboratory.</a> J Med Entomol. 32, 249-254 (1995).</li>
<li>Banks, C. W., Oliver, J. H., Hopla, C. E., Dotson, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laboratory+life+cycle+of+Ixodes+woodi+%28Acari%3AIxodidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Med.+Entomol%22%5BJournal%5D)">Laboratory life cycle of Ixodes woodi (Acari:Ixodidae).</a> J. Med. Entomol. 35, 177-179 (1998).</li>
<li>James, A. M., Oliver, J. H. Jr Feeding and host preference of immature Ixodes dammini,I.scapularis,and I.pacificus.(Acari:Ixodidae). <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/?term=Feeding+and+host+preference+of+immature+Ixodes+dammini%2CI.scapularis%2Cand+I.pacificus.(Acari%3AIxodidae)">J. Med. Entomol</a>. 27, 324-330 (1990).</li>
</ol>

De auteurs hebben niets te onthullen.

Kritieke stappen binnen het protocol Het is belangrijk om meerdere niveaus van veiligheidsmaatregelen te hebben bij het opslaan van bosjes om ongevallen te voorkomen. Gebruik van kleefband en een watergracht zijn cruciaal om de veiligheid te waarborgen. Het is belangrijk om de verdoofde muis op een verwarmingsblok vast te houden om de lichaamstemperatuur constant te houden. We hebben ook geconstateerd dat het scheren van de muis geen extra voordelen biedt voor het bijvullen van een vinkje. Een ...

Teken zijn obligate hematophagous ectoparasieten van gewervelde dieren en worden wereldwijd gedistribueerd. In de Verenigde Staten, minstens 11 soorten teken zijn vectoren van ziekteverwekkers van belang voor de volksgezondheid 1. Ixodes scapularis is verantwoordelijk voor de overdracht van verschillende pathogenen zoals de oorzakelijke agentia van de ziekte van Lyme (Borrelia burgdorferi) relapsing fever (B. miyamotoi), humaan granulocytic anaplasmose (Anaplasma phagocytophilum) en babesiose (Babesia spp.). Ondanks het belang van I. scapularis als een ziekte vector, het verzamelen van deze spinachtigen in overvloed in het wild voor studies in het lab is niet altijd haalbaar. Daarom is de productie van gezonde laboratorium gekweekte teken is van essentieel belang om studies op de pof biologie en vink-pathogeen interacties. De levenscyclus van alle harde teken (familie Ixodidae), met inbegrip van I. scapularis, bestaat uit het ei en drie activE stadia: larven, nimf en volwassenen. Elke actieve fase voedt op een gewervelde gastheer. De complexe interacties die plaatsvinden tussen ticks en hun gastheren gedurende meerdere dagen van aanhechting en voeding, zijn bijna onmogelijk om te repliceren met behulp van kunstmatige voedingsmiddelen, en het zal onwaarschijnlijk genoeg getallen geven voor massaopvang 2 , 3 , 4 . Daarom worden levende muizen en konijnen meestal gebruikt als gastheren voor het volwassenen (larven en nimfen), en volwassen volwassenen van ticks, respectievelijk. Het vereiste van meerdere gastheren voor bloedvoeding tijdens elke ontwikkelingsfase compliceert tikopvang, en is tijd- en kostenintensief 5 , 6 , 7 . De meeste tikopvangprotocollen vereisen het behoud van muizen in een ophanglaag 7 , 8 of in een cilindrische cage zodanige afmetingen dat de dieren niet vrij kunnen bewegen en zich verzorgen 6, 9, 10. Deze cilindrische kooien later overgebracht naar een schoenendoos kooi met een draadrooster. Gezwollen, vrijstaande teken worden daarna verzameld uit het water eronder. Deze werkwijze resulteert in blootstellen gevoede teken om verontreinigd met urine en feces die schimmelgroei kan verhogen en teken sterfte 9. Bovendien vergroot de mogelijkheid van teken ontsnappen uit de waterbak, maar waardoor stress muizen. Om deze problemen te omzeilen, we hier laten zien larven teek voeden met muizen binnen plastic schoenendoos wegwerpluier kooien. Deze werkwijze maakt het normale gedrag van muizen, toe volgezogen teek herstel en vermindert tick sterfte door vervuiling.

<table><tbody><tr><td>Puralube veterinaire zalf</td><td>Amazon</td><td></td><td>Beschikbaar bij elke dierenwinkel of online winkel</td></tr><tr><td>Wegwerp muizenkooi</td><td>&nbsp;Innovive, San Diego, CA&nbsp;</td><td>MV 2</td><td>Set van bodem en deksel</td></tr><tr><td>Witte Alpha dri beddengoed&nbsp;</td><td>Lab Supply, Fort Worth, TX</td><td>&nbsp;ALPHA-Dri&trade;</td><td></td></tr></tbody></table>

opfok<em&gt; ixodes scapularis,</em&gt; de black-legged tick: het voeden van onvolwassen stadia op muizen

Rearing Ixodes scapularis, the Black-legged Tick: Feeding Immature Stages on Mice

Ixodes scapularis, de vector van de ziekte van Lyme, is een van de meest belangrijke ziekte vectoren in het oosten en het Middenwesten. Deze soort is een drie gastheer teek die een bloedmaaltijd van een gewervelde gastheer voor elke ontwikkelingsfase vereist, en de volwassen vrouwtjes vereisen een bloedmaaltijd voor de voortplanting. Larvale teken hechten aan hun gastheer voor 3-5 dagen voor de voeding en afzetten van de gastheer wanneer deze volledig volgezogen. Deze afhankelijkheid van verschillende hosts en de lange bevestiging tijd voor stuwing compliceert tick opvoeding in het laboratorium setting. Echter, om teek biologie te begrijpen en tick-pathogeen interacties, de productie van gezonde, laboratorium gekweekte teken is van essentieel belang. Hier tonen we een eenvoudige, kosteneffectieve protocol voor onrijpe teek voeden op muizen. We pasten de bestaande protocollen voor verminderde spanning op muizen en verhoogde teek voeden en het voortbestaan ​​met wegwerp kooien zonder gaas bodems contact van teken wi voorkomenHet water besmet met muizen urine en ontlasting.

Wij hebben bestaande tikopvangprotocollen 6 , 10 aangepast voor verbeterde voedingsefficiëntie en verminderde stress op de muishost. Uit de resultaten blijkt dat de standaard schoebox-stijlkooien goed geschikt zijn voor het opslaan van tieten. Het witte beddengoed zorgde voor een goed contrast voor de gemakkelijke verzameling van gevulde ticks. De meeste bosluizen klommen op de muren van de containers na het voeden en waren gemak...

Het produceren van gezonde laboratoriumopgevoerde tegels is essentieel voor het bestuderen van bosluisbiologie en kruis-pathogeen-interacties. Hier tonen wij een simpel protocol voor onvolgroeide tikvoeding die kosteneffectief en minder stressvol is voor muizen.

Opfok<em&gt; Ixodes scapularis,</em&gt; De Black-legged Tick: Het voeden van onvolwassen stadia op muizen

Ixodes scapularis, the vector of Lyme disease, is one of the most important disease vectors in the eastern and Midwestern United States. This species is a ...

Het algemene doel van dit protocol voor het voeden van teken is om de bestaande standaarden te verbeteren door de overleving van bloedgevoede teken te verhogen, terwijl de stress voor de knaagdiergastheer wordt verminderd. Naast het vereenvoudigen van de kweek van tekenkolonies biedt deze methode een eenvoudigere manier om een groot aantal bloedgevoede teken op één verzameldag te verkrijgen, wat essentieel is voor het beantwoorden van belangrijke biologische vragen binnen de macrobiologische vakgebieden. Het belangrijkste voordeel van deze techniek is dat teken niet worden blootgesteld aan water dat muisuitwerpselen bevat, waardoor de mortaliteit van de teken wordt verminderd.Bovendien kunnen teken op één enkele dag worden verzameld, wat de stress voor de muis vermindert. Maak voor het huisvesten van de tekenbuisjes voor het tellen een container die ontsnapping tot een minimum beperkt. Plak dubbelzijdige tape langs alle bovenranden van een plastic container.Vul de container vervolgens met ongeveer twee centimeter water. Plaats daarna centraal in de container een ander klein bakje of schaaltje en vul dit met ongeveer één centimeter water, zodat het zinkt en op zijn plaats blijft. Bewaar de vials met teeklarlarven of -nimfen in dit bakje of schaaltje.Om de teken voor een infestatie te tellen, gebruik dan een microscoop en een fijn penseel om larven of nimfen uit het flesje te verwijderen. Breng 50 larven of 25 nimfen over naar een scintillatieflesje. Zodra een flesje volledig is gevuld, dek dit dan af met een nylon gaas of organdine stof en zet de afdekking vast met strakke elastieken.Wijs een aparte ruimte toe voor de muizen die besmet zijn met teken. Om onbedoelde ontsnapping van teken te voorkomen, plaatst u een kleefmat of dubbelzijdige tapijtvloertape buiten de ruimte en een andere mat net binnen de deur van de ruimte. Bereid vervolgens een gebied voor nabij de muizen om de teken te behandelen.Gebruik een witte of lichtgekleurde werkbank. Breng een rand van dubbelzijdige tape aan rondom de omtrek van het werkgebied op de bank. Anestheseer vervolgens een muis met isofluraan.Verplaats de muis, zodra deze gereed is, naar een warmtemat bedekt met papieren handdoeken en bevestig een neusmasker om continu isofluraan toe te dienen. Controleer de diepte van de anesthesie met een teenknijptest. Pas het anestheticum aan op basis van het ademhalingspatroon.80 tot 230 ademhalingen per minuut is normaal. Verlaag de isofluraan als de ademhaling trager wordt. Breng daarnaast een op petroleumgelei gebaseerde oogzalf aan op de ogen.Neem nu één vial met 50 larven of 25 nimfen en breng de tekenen met behulp van een schilderspenseel over naar de muis. Plaats de tekenen onder de vacht op de kop tussen de oren. Houd de muis na het plaatsen van de laatste teek nog 20 minuten onder anesthesie, zodat de tekenen zich kunnen hechten voordat de muis probeert ze te verwijderen.Plaats de muis na 20 minuten terug in een nieuwe thuiskooi met witte bodembedekking voor een betere zichtbaarheid van de teken. Voeg wat speeltjes toe en zorg voor ad libito toegang tot water en voedsel. Gebruik wegwerpbakken met nauwsluitende deksels.Plaats vervolgens de thuiskooi in een grotere ratten- of gerbilkooi waarin dubbelzijdige plakband langs de bovenste binnenrand van de wanden is aangebracht. Vul daarna de ruimte tussen de kooien met ongeveer drie centimeter water. Immature teken zullen zich na drie tot zes dagen voeden loslaten.Controleer vanaf dag drie en daarna dagelijks de kooien en het omringende water op verzadigde teken. Verzamel de losgelaten teken met een penseel of een zachte pincet en breng ze over naar schone scintillatieflacons die zijn afgesloten met nylon gaasdoekjes die met elastiekjes zijn vastgezet. Narcoseer de muis op dag zeven zoals voorheen en controleer op eventueel resterende aangehechte teken.Controleer daarnaast grondig de strooisel, de voerbak en het water. Euthanaseer vervolgens de muis en autoclaveer de wegwerpkooien, het strooisel, de waterfles en de voerbak om alle resterende tekenen te elimineren. Huisvest de verzadigde tekenen in een gecontroleerde incubator.Binnen 12 tot 18 weken zouden de teken moeten vervellen. Controleer de teken minstens één keer per week onder de microscoop op schimmel. Indien er schimmel wordt gedetecteerd, was de overlevende teken gedurende vijf minuten met 70% ethanol.Spoel de overlevenden vervolgens af met water en breng ze over naar filterpapier om te drogen. Zodra ze schoon en droog zijn, worden de tekenen overgebracht naar nieuwe, schone vials om hun levenscyclus voort te zetten. De meeste tekenen klommen na het voeden tegen de wanden van de containers op en waren gemakkelijk te verzamelen.Teken ontsnapten zelden uit de muizenkooien. De witte bodembedekking zorgde voor een goed contrast om gevoede teken te detecteren. Tijdens de verzamelingen waren de meeste tekenen tegen dag vier losgelaten.Enkele muizen wachtten tot dag vijf voordat ze werden vrijgelaten, en tegen dag zeven droeg geen enkele muis nog tekenen. Ongeveer 2/3 van de tekenen was in staat zich vast te bijten en zich te voeden tot verzadiging. De muizen bleven allemaal gezond en vertoonden geen tekenen van ongemak.Zodra deze methode onder de knie is, kunnen er op één enkele collectiedag honderden bloedgevoede tekenen worden verkregen. Tijdens het uitvoeren van deze procedure is het belangrijk om volledige PBM te dragen om te voorkomen dat tekenen zich per ongeluk hechten.

rearing-ixodes-scapularis-black-legged-tick-feeding-immature-stages

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie en Infectie

De collectie van besmette teek hemolymfe, speekselklieren, en speeksel is van belang om te onderzoeken hoe door teken overgedragen pathogenen ziekte te veroorzaken. In dit protocol laten we zien hoe hemolymfe en speekselklieren te verzamelen uit de...

Speeksel, speekselklieren en hemolymfe Collectie van Ixodes scapularis Teken

De ziekte van Lyme is de meest gerapporteerde vector overgedragen ziekte in Noord-Amerika. De verwekker, Borrelia burgdorferi is een spirocheet bacterie overgedragen door Ixodes teken. Transmissie en detectie van infectie bij diermodellen wordt geoptimaliseerd door het gebruik van teek voeding, die hier beschreven.

Voederen van Ticks on Animals voor Transmissie en Xenodiagnosis in Lyme Disease Research

In deze studie werd een voedingssysteem ontwikkeld voor nimfen- en larvestadia van harde teek met behulp van een capsule die aan de laboratoriummuis is bevestigd. De voercapsule is gemaakt van flexibele materialen en blijft minstens een week stevig aan de muis vast zitten en maakt een comfortabele monitoring van het voeden van teek mogelijk.

Een capsule-gebaseerd model voor onrijpe Harde Tik Stadia Besmetting op Laboratoriummuizen

Het huidige protocol beschrijft een methode voor het injecteren van tekenembryo's. Embryo-injectie is de voorkeurstechniek voor genetische manipulatie om transgene lijnen te genereren.

Embryo-injectietechniek voor genbewerking in de zwartpootteek, Ixodes scapularis

Hier wordt een methode gepresenteerd om teken in vitro te voeden via een kunstmatig membraansysteem om gedeeltelijke of volledige stuwing van een verscheidenheid aan tekenlevensfasen mogelijk te maken.

Teken kunstmatige membraanvoeding voor Ixodes scapularis

Dit artikel presenteert de methodologie voor het blootstellen van mensen aan larvale Ixodes scapularis voor klinisch onderzoek. De techniek is relatief eenvoudig, acceptabel voor de onderzoeksvrijwilligers en kan worden aangepast aan de experimentele behoeften. Dergelijk onderzoek met menselijke proefpersonen moet worden uitgevoerd volgens protocollen voor klinisch onderzoek die zijn goedgekeurd door de bevoegde regelgevende instanties.

Een model voor experimentele blootstelling van mensen aan larvale Ixodes scapularis-teken

Deze methode schetst de ontwikkeling van een in vitro teken bloedvoedingssysteem met een 3D-geprinte kamer en een in het laboratorium vervaardigd siliconenmembraan. Het systeem maakt kunstmatige voeding van teken mogelijk, waardoor bemonstering in verschillende voedingsfasen eenvoudig is en er weinig bloed wordt gebruikt, wat een onschatbaar hulpmiddel biedt voor het bestuderen van ixodidteken.

Tekenbloed dat via een kunstmatig membraan op een 3D-geprinte kamer in Ixodid Tick Research wordt gevoed

De ziekte van Lyme studies vereisen vaak generatie van de teken besmet met de ziekteverwekker Borrelia burgdorferi, een proces dat normaal gesproken duurt enkele weken. Hier laten we zien een micro-injectie-based tick infectie procedure die kan worden bereikt binnen enkele uren. We tonen ook aan een immunofluorescentie methode voor het in situ lokalisatie van B. burgdorferi in teken.

Methoden voor snelle overdracht en localisatie van Lyme pathogenen in de Tick Gut

De hier beschreven methode maakt gebruik van directe injectie van entomopathogene bacteriën in de hemocoel...

Opfok en Injectie van<em&gt; Manduca sexta</em&gt; Larven naar bacteriële virulentie beoordelen

Allergische reacties, gekenmerkt door de activering van mestcellen en basofielen, worden door de verknoping van IgE en het vrijkomen van pro-inflammatoire mediatoren. Een kwantitatieve beoordeling van allergische reacties kunnen worden bereikt door Evans Blue kleurstof veranderingen in vasculaire permeabiliteit na provocatie met allergeen controleren.

Meten Lokaal Anafylaxie in Muizen

Leer een kosteneffectief protocol voor het voeden van onvolwassen teken op muizen. Deze methode verhoogt de overlevingskans van bloedgevoede teken en vermindert stress bij knaagdieren.

Opfok

Meer video's verkennen