17 april 2018
Hier beschrijven we een chromatografische test in combinatie met de ion mobiliteit scheiding van peptide precursoren gevolgd door de hoge resolutie (~ 30.000) MS-detectie van peptide fragmenten voor de kwantificering van puntige peptide normen in een monoclonal antilichaam Digest.
Het algemene doel van de HS-MRM-test is om het MRM-interferentiefenomeen te verminderen dat de kwantificering van peptiden of eiwitten beïnvloedt door ionmobiliteitsscheiding van peptide-precursoren te combineren met hoogwaardige massaspectrometrische detectie van fragment-ionen. Deze methode kan helpen om belangrijke vragen te beantwoorden op het gebied van biotherapeutische karakterisering, evenals kwantificering van eiwit- of peptide-biomarkers en kwantitatieve proteomics. Het belangrijkste voordeel van deze techniek is dat het de detectie mogelijk maakt van laag-abundantie gastheercel-eiwitten die mogelijk aanwezig zijn in biofarmaceutische eiwitten.
Klik eerst op 'analysemethode maken' in de data-acquisitiesoftware en kies voor 'genereren en verwerven en verwerken methode'. Typ de methodenaam en beschrijving, blader naar de methodemap en klik op volgende. Kies voor analysetype peptide map IMS en klik op volgende.
Selecteer vervolgens de huidige systeeminstellingen en klik op volgende en voltooien. Klik in de nieuw gemaakte methode op het instrumententabblad, selecteer de binaire oplosmiddelmanager en bewerk de gradiëntinstellingen om peptidescheiding bij een stroomsnelheid van 0,2 milliliter per minuut te bereiken. Gebruik een gradiëntverdunning van één tot 40% oplosmiddel B in 30 minuten, gevolgd door een twee-minuten kolomwas en een 10-minuten evenwicht met een totale looptijd van 45 minuten.
Selecteer vervolgens de monstersmanager en stel de monstertemperatuur in op 10 graden Celsius en de kolomtemperatuur op 60 graden Celsius. Selecteer in het instrumententabblad het Vion IMS QTof-instrument. Selecteer in het instellingengedeelte gevoeligheid voor analyzeerdermodus en voer drie kilovolt in voor capillaire spanning, 100 graden Celsius voor brontemperatuur, 250 graden Celsius voor ontbindingstemperatuur, 50 liter per uur voor kegelgasstroom en 500 liter per uur voor ontbindingsgasstroom.
Klik op het experimenttabblad en selecteer high definition MSE voor modus. Voer vervolgens 100 in voor laag massa, 2000 voor hoog massa en 0,4 seconden voor scantijd. Typ in het sectie botsingsenergie zes elektronvolt voor de laag energie-instelling en kies een hoge energie-oploop van 15 tot 40 elektronvolt.
Voor de verwervingstijd gebruikt u een aangepaste looptijd tussen vijf en 30 minuten. Klik vervolgens op het optiestabblad en selecteer de automatische vergrendelingscorrectiemodus met een automatische vergrendelingscorrectie-interval van vijf minuten. Selecteer vervolgens de optie doorgaan met vergrendelingscorrectie en om ervoor te zorgen dat de automatische detectorcontrole is uitgeschakeld.
Selecteer in het huidige systeemconfiguratiemenu het Vion IMS QTof-instrument en klik op gereedschappen. Voer drie kilovolt in voor capillaire spanning, 40 volt voor bemonsteringskegel, 100 volt voor bronoffset, 100 graden Celsius voor brontemperatuur, 250 graden Celsius voor ontbindingstemperatuur, 50 liter per uur voor kegelgasstroom, 500 liter per uur voor ontbindingsgasstroom en drie kilovolt voor referentie capillaire spanning. Analyseer een eerder bereide 10 nanomolaire faux gespikte monster met behulp van de LC-HDMSE-test zojuist beschreven door 10 microliter monster in het instrument te injecteren.
De individuele sequenties van zes phosphorylase B-peptidestandaarden die in de faux-peptidemixtuur zijn opgenomen, worden hier samen met hun retentietijden en hun meest abundant voorkomende precursors die in het HDMSE-experiment zijn waargenomen, getoond. De HDMSE-spectra die zijn verkregen voor een van de faux-peptiden die zijn gespikt in de Infliximab-digest, worden hier weergegeven. Klik in de data-acquisitiesoftware op 'analysemethode maken' en kies voor 'genereren en verwerven en verwerken methode'.
Typ de methodenaam en beschrijving, blader naar de methodemap en klik op volgende. Kies voor analysetype kwantificeren, selecteer Quantify Assay Tof 2D Chromatographic en klik op volgende. Selecteer vervolgens de huidige systeeminstellingen en klik op volgende en voltooien.
Klik in het nieuw gemaakte methode op het instrumententabblad. Selecteer de binaire oplosmiddelmanager en bewerk de gradiëntinstellingen om peptidescheiding bij een stroomsnelheid van 0,2 milliliter per minuut te bereiken. Gebruik gradiëntverdunning van één tot 40% oplosmiddel B in 30 minuten, gevolgd door een twee-minuten kolomwas en een 10-minuten evenwicht met een totale looptijd van 45 minuten.
Selecteer in het instrumententabblad de monstersmanager en stel de monstertemperatuur in op 10 graden Celsius en de kolomtemperatuur op 60 graden Celsius. Selecteer nu het Vion IMS QTof-instrument en selecteer in het instellingengedeelte gevoeligheid voor analyzeerdermodus. Typ vervolgens drie kilovolt voor capillaire spanning, 100 graden Celsius voor brontemperatuur, 250 graden Celsius voor ontbindingstemperatuur, 50 liter per uur voor kegelgasstroom en 500 liter per uur voor ontbindingsgasstroom.
Klik op het experimenttabblad en voor experimenttype kies functietabel één of meer MS, MSMS of MRM-functies. Verwijder de standaardverwervingsfunctie, klik op toevoegen plus MRM en bewerk de retentie-vensterparameters in het looptijdgedeelte. Voer in de Tof MRM-functie-editor het masterladingsverhouding van peptide-precursor in, selecteer laag voor precursorresolutie en voer de precursorladingstoestand in.
Voer vervolgens de productmasterladingsverhouding in, 16 elektronvolt voor de startbotsingsenergie, 0,1 seconden voor de vaste scantijd en breed voor de spectrumkolom. Gebruik de knop dupliceren om 10 meer MRM-overgangen toe te voegen en gebruik verschillende botsingsenergiewaarden in het bereik van 18 tot 36 elektronvolt. Nadat de drie beste overgangen voor elk peptide zijn vastgesteld, werd een Tof MRM-experiment uitgevoerd om de optimale botsingsenergie te vinden om de signalen voor elk peptide te maximaliseren.
Stel vervolgens een HS-MRM-methode in die slechts één fragment-ion per peptide bevat. Wijzig de eerder gemaakte Tof MRM-methode door de HS-MRM-functie te selecteren in plaats van de Tof MRM-functie. Voer in de HS-MRM-functie-editor de masterladingsverhouding in, selecteer laag voor precursorresolutie en voer de precursorladingstoestand in.
Voer vervolgens de precursor CCS-waarde in en selecteer laag voor precursor CCS-res
Deze studie presenteert een high-sensitivity multiple reaction monitoring (HS-MRM) assay die ionenmobiliteitsscheiding integreert met massaspectrometrie met hoge resolutie voor peptidekwantificering. De methode is bijzonder nuttig voor het analyseren van laag-abundante gastheercelproteïnen in biofarmaca.
Een nauwkeurige kwantificering van gastcelproteïnen (HCP's) bij lage concentraties (1-100 ppm) is essentieel voor het waarborgen van de veiligheid en werkzaamheid van proteïne-biotherapeutica. De HS-MRM-assay pakt een belangrijke analytische uitdaging in de biofarmaceutische ontwikkeling aan door MRM-interferentie te minimaliseren via ionmobiliteitsseparatie en MS-detectie met hoge resolutie. Dit maakt een betrouwbare detectie van laag-abundante onzuiverheden mogelijk, wat risicobeoordelingen en de consistentie tussen batches in de productie ondersteunt.
De HS-MRM-analyse past binnen het continuüm van ontdekking tot prekliniek en ondersteunt vroege onzuiverheidsprofielering, wat bijdraagt aan de selectie van lead-verbindingen en de preklinische veiligheidsbeoordeling.