8 juni 2017
We beschrijven een muismodel van experimentele cerebrale malaria en laten zien hoe inflammatoire en microvasculaire pathologie in vivo kunnen worden gevolgd met behulp van magnetische resonantie beeldvorming.
Het algemene doel van deze methode is om pathologische veranderingen van experimentele cerebrale malaria in vivo te monitoren. Deze methode kan helpen om belangrijke vragen in de pathogenese van experimentele cerebrale malaria te beantwoorden, omdat het ons in staat stelt om in vivo te visualiseren hoe de pathologie van de hele hersenen zich in de ruimte en over tijd ontwikkelt. De techniek maakt daardoor een gedetailleerde beoordeling van hersenpathologie mogelijk en kan worden gebruikt om de effectiviteit van nieuwe behandelingsstrategieën bij cerebrale malaria te beoordelen.
Het uitvoeren van de MRI-setup zal Manuel Fischer zijn, onze labmanager. Begin met het verzamelen van vrouwelijke muggen uit hun kooi, 17 tot 22 dagen na de bloedmaaltijd. Gebruik pincetten om drie tot vier muggen op een glazen plaatje te plaatsen, gecombineerd met een druppel koud RPMI-medium.
Plaats vervolgens de plaat onder een microscoop. Rek voorzichtig de mug tussen het hoofd en het lichaam uit met behulp van pincetten en gebruik een spuit en naald om de speekselklier te isoleren. Verzamel vervolgens de speekselklieren van de glazen plaat door ze op te zuigen met een glazen pipet en over te brengen naar een centrifugeerbuisje van 1,5 milliliter.
Gebruik vervolgens een kleine plastic stok om de geïsoleerde speekselklieren gedurende drie minuten in de centrifugeerbuis te pletten om de sporozoieten van het speekselklierweefsel te isoleren. Centrifugeer gedurende drie minuten bij 1.000 keer g en vier graden Celsius om de sporozoieten van het resterende weefsel te zuiveren. Pipet de supernatant, die de sporozoieten bevat, in een nieuwe centrifugeerbuis en tel de gezuiverde sporozoieten in een Neubauer hemocytometer.
Sporozoieten vertonen een typische beweging tegen de klok in. Pas vervolgens de concentratie van de gezuiverde sporozoieten aan op 10.000 per milliliter door fosfaatgebufferd zoutwater toe te voegen. Plaats ten slotte een C57BL/6-muis in een begrenzer en dompel zijn staart in warm water om de staarader beter te visualiseren.
Injecteer vervolgens een totaal van 1.000 sporozoieten, of 0,1 milliliter, in de staarader om een infectie te starten. Breng de muis eerst naar een 9,4T kleine dier Magnetische Resonantie Beeldvorming of MRI-scanner die een volumeresonator gebruikt voor radiofrequente transmissie. Breng vervolgens dexpanthenol-oogzalf aan op beide ogen.
Schakel het temperatuurgecontroleerde waterbad in op 42 graden Celsius om de lichaamstemperatuur van de muis te handhaven. Plaats vervolgens een staarvaderkatheter in de staarader van de muis. Positioneer vervolgens de muis voor de MRI door hem op zijn buik te leggen met een gebogen rug op een dierenbed, uitgerust met een hoofdvanger en tandenstang om hoofdbeweging te minimaliseren.
Zorg ervoor dat je de nekwervelkolom van de muis niet recht maakt. Sluit een contrastmiddelinjectiesysteem gevuld met 0,3 millimol per kilogram Gd-DTPA aan op de staarvaderkatheter. Plaats vervolgens de 4-kanaals gefaseerde array-oppervlakte-ontvanger-kop op het hoofd van de muis.
Plaats ten slotte een ademhalingskussen op de rug van de muis en controleer de ademhaling op het bewakingsapparaat. Schakel de positionele laser in door op F2 op het bedieningspaneel te drukken en beweeg de muis totdat het horizontale positionele licht zich in het midden van het kleinere deel van de spiraal bevindt, die het hoofd van de muis bedekt. Schakel de positionele laser uit door opnieuw op F2 te drukken en beweeg vervolgens de muis naar de eindpositie door op F3 op het bedieningspaneel te drukken.
Begin met het uitvoeren van een lokalisatiescan om ervoor te zorgen dat de muizenhersenen zich in het isocentrum van de magneet bevinden. Beoordeel kwalitatief vasogeen oedeem door middel van 3D T2-wegingsbeeldvorming. Selecteer een multi-slice RARE-sequentie en pas de plakpositie aan, zorg ervoor dat de hele hersenen, van de neus tot de kleine hersenen, bedekt zijn.
Na het aanpassen van de verzadigingssneden, start de sequentie en wacht 10 minuten en 48 seconden om de afbeeldingen te verkrijgen. Voer vervolgens T2 relaxometrie uit om vasogeen oedeem kwantitatief te beoordelen door een multi-slice, multiple-spin echo-sequentie te selecteren. Pas de plakpositie aan en start de verwerving van de sequentie, die acht minuten en 53 seconden duurt.
Voer kwantitatief onderzoek uit naar zowel vasogeen oedeem als cytotoxisch oedeem door diffusiewegingsbeeldvorming uit te voeren door een spin-echo EPI-diffusiesequentie te selecteren. Pas de plakpositie en verzadigingsplak aan. Start vervolgens de sequentie en wacht zeven minuten en 56 seconden totdat de ruwe beelden zijn verkregen.
Beoordeel vervolgens microbloedingen met behulp van 3D T2 ster-wegingsbeeldvorming. Selecteer een flow-gecompenseerde FLASH-sequentie, pas de plakpositie aan en start de sequentie, die 15 minuten en 40 seconden duurt. Beoordeel vervolgens de arteriële doorgang met behulp van time of flight angiografie door een 3D FLASH-sequentie te selecteren.
Pas de plakpositie aan, start de sequentie en wacht vervolgens zeven minuten en 16 seconden totdat de afbeeldingen zijn verkregen. Beoordeel ten slotte de bloed-hersenbarrière-storing. Selecteer een 3D T1-wegingsbeeldvorming met een FLASH-sequentie, pas de plakpositie aan en start de sequentie.
Wacht een minuut en 14 seconden totdat afbeeldingen zonder contrast zijn verkregen. Injecteer vervolgens contrast van 0,3 millimol per kilogram en herhaal de meting. Een toename van de bloed-hersenbarrière-storing en een toename van vloeistof geeft vroeg vasogeen oedeem in de reukbol aan dat al aanwezig is in milde ziekte en zich begint te verspreiden naar de hersenstam naarmate de ernst van de ziekte toeneemt.
Op T2-kaarten kan de ernst van vasogeen oedeem worden gekwantificeerd door gebieden van belang te tekenen in specifieke anatomische regio's. Voor elk gebied kan een T2-relaxatietijd worden verkregen die toeneemt met toenemend oedeem. Verder begint het hersenvolume, indicatief voor oedeem, significant to
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel beschrijft een muismodel van experimentele cerebrale malaria en demonstreert hoe inflammatoire en microvasculaire pathologie in vivo kan worden gevolgd met behulp van magnetische resonantiebeeldvorming (MRI). De methode maakt het mogelijk om hersenpathologie in de tijd te visualiseren, wat bijdraagt aan het begrip van de ziekteprogressie en de effectiviteit van behandelingen.
Deze methode maakt non-invasieve, longitudinale monitoring mogelijk van bloed-hersenbarrière-disruptie, oedeem en microvasculaire pathologie in een translationeel model van cerebrale malaria. Door kwantitatieve MRI-uitlezingen van de ziekteprogressie te bieden, ondersteunt het de mechanistische risicoreductie van neuro-inflammatoire pathways en de predictieve evaluatie van CNS-gerichte therapeutica. De aanpak verbetert de validatie van targets door vasculaire en inflammatoire mechanismen te koppelen aan meetbare imagingbiomarkers in vivo.
De methode is geïntegreerd in het ontdekkingscontinuüm, van doelwitvalidatie via lead-identificatie tot preklinische effectiviteitstests, en biedt op imaging gebaseerde eindpunten die de functie van de bloed-hersenbarrière en de neurovasculaire gezondheid weerspiegelen.