25 mei 2017
Dit protocol toont een fluorescentie gebaseerde methode om de vasculatuur te visualiseren en de complexiteit ervan te kwantificeren in Xenopus tropicalis . Bloedvaten kunnen na de injectie van een fluorescerende kleurstof in het kloppende hart van een embryo worden gedetecteerd na genetische en / of farmacologische manipulaties om in vivo cardiovasculaire ontwikkeling te bestuderen.
Het algemene doel van deze procedure is het visualiseren van de vasculatuur van Xenopus tropicalis kikkervisjes. Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van kernvragen in het veld van de cardiovasculaire biologie, zoals de regulatie van angiogenese. Het belangrijkste voordeel van deze techniek is dat bloedvaten in een intact embryo kunnen worden gevisualiseerd door middel van een eenvoudige injectie met een fluorescente kleurstof.
Begin met het vullen van een taps toelopende glazen micropipet met ongeveer 5 µL heldere diI-geacetyleerde LDL-oplossing met behulp van een microlader, waarbij nauwkeurig wordt gelet op het voorkomen van neerslagdeeltjes. Gebruik onder een dissectiemicroscoop een fijn pincet (nummer 55) om de punt van de pipet af te knippen om het volume van het geladen complex aan te passen en stel het drukgestuurde injectiesysteem zo in dat er ongeveer 5 nL oplossing per injectie wordt uitgestoten. Dompel vervolgens de pipetpunt onder in 0,04% MS-222 in 0,1X gemodificeerde Barth's zoutoplossing of MBS in een op maat gemaakte Sylgard-mal.
Transfer vervolgens het Xenopus tropicalis embryo naar de Sylgard-mal en bevestig de volledige sedatie door het ontbreken van een reactie op stimulatie van de rugvin. Plaats het embryo onder de dissectiemicroscoop met de ventrale zijde naar boven in de V-vormige inkeping van de mal in een licht schuine positie. Bevestig twee minutian-pinnen van 0,1 millimeter stevig in een pinnhouder en gebruik één pin om de huid boven het hart, dat zichtbaar moet kloppen, door te prikken.
Steek de pin door het gat in de ruimte tussen het hart en de huid zonder het hart te doorboren en positioneer de ingebrachte punt in het gebied waar de incisie zal worden gemaakt. Wrijf vervolgens de tweede pin tegen de ingebrachte pin om een lineaire incisie te maken en gebruik beide pinnen samen om de incisie voorzichtig te verbreden, zodat het hart bloot komt te liggen. Om de DiI geacetyleerde LDL-oplossing te injecteren, steekt u de glazen pipetpunt in het hart en injecteert u 50 tot 60 nanoliters van de DiI geacetyleerde LDL in ongeveer 10 uitstotingspulsen.
Wanneer de volledige kleuroplossing is toegediend, bevestig dan dat het hart nog klopt en breng het embryo over naar een nieuwe Petrischaal met 0,1X MBS. Na vijf tot 10 minuten zou de kikkervisje moeten herstellen van de anesthesie en beginnen te bewegen. Nadat een passend aantal embryo's is geïnjecteerd, worden de correct gelabelde geanestheseerde embryo's visueel gescreend onder een fluorescentiemicroscoop, waarbij alle dieren worden weggegooid bij welke andere organen gelabeld zijn.
Embryo's die onvoldoende zijn gelabeld, kunnen opnieuw worden geïnjecteerd. Leg vervolgens beelden vast van de correct gelabelde embryo's. Voor een grondigere beeldvorming van de bloedvaten worden opnieuw geneerstheticiseerde embryo's gedurende één uur bij kamertemperatuur, beschermd tegen licht, gefixeerd in 4% paraformaldehyde voor visualisatie via confocale microscopie.
Wanneer een voldoende hoeveelheid diI geacetyleerd LDL in het hart wordt geïnjecteerd, zou de posterieure kardinale vene, of PCV, onmiddellijk zichtbaar moeten zijn onder een fluorescentiemicroscoop. De intersomitische venen, of ISV's, ontspringen dorsaal uit de PCV in een anterieur-posterieure golf die begint bij stadium 36 en eindigt rond stadium 40 tot 41, waarna ze rond stadium 43 licht vertakt raken. De PCV en ISV's groeien in een stereotiep angiogeen patroon dat onder strikte ontwikkelingscontrole staat.
Interessant genoeg vermindert het uitschakelen van TIE-2-signalering door antisense morpholino's de lengte en de complexiteit van de ISV's, terwijl expressie van de constitutief actieve vorm van TIE-2 overmatige vertakking van de ISV's induceert. Een Vein Complexity Index kan worden berekend om de complexiteit van de ISV's te beoordelen, en er kunnen gerenderde paden worden gegenereerd om de algehele architectuur van de embryonale Xenopus tropicalis vasculatuur te visualiseren. Het oorspronkelijke protocol werd beschreven voor het gebruik van Xenopus laevis door Levin en Colics, en wij hebben dit aangepast voor Xenopus tropicalis.
Zodra deze techniek onder de knie is, kan deze in één uur worden voltooid mits correct uitgevoerd. Voorafgaand aan deze procedure kunnen genetische en farmacologische manipulaties worden uitgevoerd om aanvullende vragen te beantwoorden, zoals welke genen en signaleringspaden de vasculaire ontwikkeling reguleren. Met behulp van deze procedure kan het gelabelde vaatstelsel in real-time worden afgebeeld in een intact dier, wat een krachtig instrument biedt voor het onderzoek naar de dynamiek van de vasculaire ontwikkeling.
Na het bekijken van deze video zou u een goed begrip moeten hebben van hoe u diI geacetyleerd LDL in het hart van een Xenopus tropicalis kikkervisje injecteert om de vasculatuur te visualiseren.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit protocol demonstreert een fluorescentiegebaseerde methode om de vasculatuur te visualiseren en de complexiteit ervan te kwantificeren in Xenopus tropicalis. De techniek maakt beeldvorming van bloedvaten mogelijk kort na de injectie van een fluorescerende kleurstof in het hart van het embryo, wat studies naar de cardiovasculaire ontwikkeling in vivo faciliteert.
Deze methode maakt directe visualisatie en kwantificering van vasculaire complexiteit in een gewervde modelorganisme mogelijk, wat vroege targetvalidatie in angiogenese-routes ondersteunt. Door kwantitatieve resultaten van vaatuitloping en vertakking te bieden, faciliteert het de mechanistische risicoreductie van vasculaire targets voordat er wordt overgegaan tot lead-identificatiecampagnes. Het Xenopus tropicalis-systeem biedt een ziekte-relevant platform voor het beoordelen van angiogene fenotypes met voorspellende betrouwbaarheid in preklinisch cardiovasculair onderzoek.
De methode past binnen het ontdekkingscontinuüm van hypothesetesten voor targets tot leadidentificatie en levert vasculaire fenotypegegevens die de go/no-go-beslissingen in programma's gericht op angiogenese onderbouwen.