23 juli 2017
Een gemodificeerde dichtheidscentrifugatiegradient gebaseerde methodologie werd gebruikt om epitheelcellen van Rhipicephalus microplus gutweefsel te isoleren. Oppervlakte gebonden eiwitten werden biotinyleerd en gezuiverd door streptavidine magnetische kralen voor gebruik in downstream toepassingen.
Zuivering van biotinyleren celoppervlak-eiwit uit Rhipicephalus microplus epitheelcellen van darmweefsel. Binnen deze studie werd een gewijzigde Percoll-gradiënt-gebaseerde methodologie gebruikt om individuele epitheelcellen te isoleren uit Rhipicephalus microplus darmweefsel. Aan het oppervlak gebonden eiwitten werden gebiotinyleerd en gezuiverd via streptavidine magnetische kralen voor gebruik in downstream toepassingen.
Dissectie van het darmepitheel van half-volgezogen Rhipicephalus microplus. U zult de volgende materialen nodig hebben. Plak een strook plakband op de bodem van een petrischaal.
Voeg een druppel Superlijm toe aan het plakband. Plaats de teek met de buikzijde naar beneden op de Superlijm en laat het drogen. Dompel de teek volledig onder in 100 ml PBS.
Gebruik een mesje maat 11 om vanaf de bovenkant van de ogen tot aan de onderkant van de festoenen aan beide zijden van de teek te snijden. Gebruik steriele pincetten om het scutum en alloscutum volledig te verwijderen om de inwendige organen bloot te leggen. Verwijder de fijne witte draadachtige organen en andere membranen.
Verwijder de darm met behulp van pincetten. Bewaar de darm in ijskoud HBSS en PIC. Dissociatie van epitheelcellen.
U zult de volgende materialen nodig hebben. Giet het gedissekteerde darm op een 70 micron celzeef in een 50 ml Falcon-buis. Omdat zich een vacuüm kan vormen in de Falcon-buis, til de filter op om luchtcirculatie mogelijk te maken.
Spuit het darmweefsel door met 50 ml ijskoud HBSS met PIC. Resuspendeer de darmen in 30 ml ijskoud HBSS met PIC. Gebruik indien nodig een steriele schraper om de darmresuspendering te ondersteunen.
Centrifugeer bij 500 g. Verwijder de supernatant en herhaal het wasproces drie keer. Resuspendeer de darmcellen in 10 ml DMEM, 2%FCS, 5 millimolar EDTA, één millimolar TCEP en PIC.
Meng voorzichtig. Incubeer gedurende 60 minuten bij 37 graden Celsius onder langzame rotatie met behulp van een roller. Filter de suspensie door een 250 micron celzeef.
Vortex de doorstroming. En filter door een 70 micron celzeef, verzamel de resterende doorstroming. Centrifugeer de suspensie.
Isolatie van enkele epitheelcellen met behulp van een Percoll-gradiënt. U zult de volgende materialen nodig hebben. Bereid door filteren via AP15 voorfilterpapier 40% en 20% Percoll in Milli-Q water.
Laad een steriele spuit met de Percoll-oplossing. Breng deze aan op het filterapparaat en laat de Percoll langzaam uitstromen. Koel gedurende een uur op vier graden Celsius voordat u de gradiënt gaat lagen.
Stel de peristaltiekpomp in zoals weergegeven. Gebruik een peristaltiekpomp ingesteld op de laagste snelheid om drie ml van 40% Percoll in een 16 ml ultracentrifugebuis te lagen. Laat het 15 minuten op ijs bezinken.
De snelheid van de pomp moet leiden tot een stromingssnelheid van minder dan één ml per minuut. Kantel de buis in een hoek van 45 graden en gebruik de peristaltiekpomp om de 20% Percoll op de 40%-laag te lagen. Zorg ervoor dat de uitloopbuis tegen de centrifugeerbuis rust om te voorkomen dat druppels zich mengen met lagere lagen.
De snelheid van de pomp moet leiden tot een stromingssnelheid van minder dan één ml per minuut. Laat de lagen 15 minuten op ijs bezinken. Gebruik de peristaltiekpomp bij een stromingssnelheid van minder dan één ml per minuut om drie ml DMEM-oplossing met de geïsoleerde epitheelcellen over de 20 tot 40% Percoll-gradiënt te lagen.
Zorg ervoor dat de uitloopbuis tegen de centrifugeerbuis rust om te voorkomen dat druppels zich mengen met de lagere lagen en de gradiënt verstoren. Centrifugeer bij 600 g gedurende 10 minuten. Verzamel interfasen tussen de DMEM, 20% Percoll-gradiënt en de 20%40% Percoll-gradiënten om enkele epitheelcellen te isoleren.
Biotinylering van celoppervlak-eiwit en de isolatie van gebiotinyleerde oppervlakte-eiwitten. U zult de volgende materialen nodig hebben. Biotinyleer 100 microliters van enkele-cel epitheelcellen met behulp van Biotin Type A Conjugation Kit volgens de instructies van de fabrikant.
Voeg 100 microliters PBS, 1%Triton X-100, 10%glycerol, 100 micromolar geoxideerd glutathion en PIC toe aan de gebiotinyleerde cellen. Incubeer gedurende een uur op ijs met voorzichtig mengen om de 10 minuten. Centrifugeer de cellysaat bij 20.000 g bij vier graden Celsius gedurende 20 minuten en zet opzij.
Bereid 50 microliters streptavidine magnetische kralen voor door te wassen met 1.000 microliters TBS 1%Tween-20. Meng voorzichtig door te schudden met uw vinger. Plaats de buis in een magnetische stand, verzamel de kralen tegen de zijkant van de buis.
Verwijder en gooi het supernatant weg. Combineer 300 microliters biotinyleren celoppervlak-eiwitten met gewassen magnetische kralen. Incubeer gedurende twee uur bij kamertemperatuur met agitatie.
Verzamel de kralen met de magnetische stand, verwijder en gooi het supernatant weg. Voeg 300 microliters TBS 1%Tween-20 toe aan de buis, meng voorzichtig om de kralen te resuspenderen. Verzamel de kralen, verwijder en gooi het supernatant weg.
Herhaal deze wasstap twee keer. Voeg 100 microliters van de 1 molare glycine pH twee toe aan de magnetische kralen. En incubeer gedurende vijf minuten bij kamertemperatuur.
Verzamel de kralen en verwijder het supernatant dat de eluteerde gebiotinyleerde oppervlakte-eiwitten bevat. Figuur een is een weergave van het protocol dat wordt gebruikt om epitheelcellen en hun oppervlakte-eiwitten te isoleren uit een gehele teek. Met behulp van dit protocol kunnen ongeveer 1,2 bij 10 tot de zeven cellen per ml met 75 tot 80% levensvatbaarheid en 20 tot
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Deze studie presenteert een aangepaste methodologie voor het isoleren van epitheelcellen uit het darmweefsel van Rhipicephalus microplus. De oppervlakte-eiwitten van de geïsoleerde cellen werden gebiotinyleerd en gezuiverd met behulp van streptavidine-magnetische kralen voor verdere toepassingen.
Deze methode maakt de isolatie van levensvatbare epitheelcellen en hun oppervlakte-eiwitten uit darmweefsel van teken mogelijk, waardoor een gedefinieerd biologisch systeem ontstaat voor target-discovery in onderzoek naar door vectoren overdraagbare ziekten. Door gezuiverde gebiotinyleerde oppervlakte-eiwitten op te leveren, ondersteunt het downstream-applicaties zoals FACS of LC-MS/MS voor antigeenidentificatie en screening van vaccinkandidaten. Deze aanpak pakt een belangrijk knelpunt aan bij het bestuderen van interacties tussen teek en gastheer en biedt een schaalbare workflow voor het verminderen van risico's bij target-validatie in pipelines voor antiparasitaire middelen en vaccinontwikkeling.
De methode past binnen het vroege stadium van de ontdekkingfase en ondersteunt de targetidentificatie door de isolatie van natuurlijke celoppervlakte-eiwitten, wat kan bijdragen aan de leadidentificatie via bindings- of functionele assays, en preklinische beslissingen kan informeren door gevalideerde antigenen te leveren voor immunogeniciteitsstudies.