Name: Een nieuwe Mammary Fat Pad Transplantation Technique om de Vessel Generation van Vasculaire Endotheliale Stamcellen te visualiseren (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-08-03T13:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 41 s
Description: Ontdek een nieuwe mammary fat pad transplantatietechniek om vasculaire endotheliale stamcellen te evalueren. Deze methode maakt in vivo beoordeling van proliferatie, differentiatie en vaatvorming mogelijk via whole-mount preparatie en microscopische observatie.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit werk werd ondersteund door de Nationale Natuurwetenschappenstichting van China (31530045 en 31371500 naar YAZ, 31401245 naar QCY), het ministerie van Wetenschap en Technologie van China (2014CB964800), de Chinese Academie van Wetenschappen (XDB19000000 tot YAZ) en de Chinese Samenleving van Celbiologie (Early Career Fellowship to QCY).

Experimentele procedures werden goedgekeurd door het Animal Care and Use Committee van het Shanghai Institute of Biochemistry and Cell Biology, Chinese Academie van Wetenschappen onder het goedgekeurde protocol SIBCB-NAF-15-002-S335-003. 1. Isolatie van VESC&#39;s uit de Mammary Mammary Gland <ol><li> Mammary gland oogst en weefsel spijsvertering. <ol><li> Gebruik 8 week oude Actin-GFP rijpe maagdelijke muizen, met gewichten tussen 20 en 25 g, als weefseldonoren. Opmerking: Cellen die afkomstig zijn van de donor kunnen gemakkelijk worden gevolgd door GFP expressie. </li><li> Bereid weefsel-verteringsbasismedium op bestaande uit 5% foetaal bovenserum (FBS), 1% pen / strep en 25 mM HEPES in RPMI1640. Filter het mengsel door een 0,22 μm filter om te steriliseren en voorverwarmen tot 37 ° C in een waterbad. </li><li> Offer de muizen in een CO 2 kamer. Dissecteer het vierde paar inguinale borstklippen door eerst een verticale huid te makenNcision bij de onderste buikmidlijn met behulp van een scalpel (of chirurgische schaar). Schil de huid voorzichtig naar de ene kant om de ingewandenkanker met behulp van tang te openbaren. Verkrijg de vierde inguinale borstklachten van beide kanten en snijd ze in fijne stukken in een 6 cm petrische schotel met behulp van een schaar. <ol><li> Meet het totale gewicht van gehakt weefsel en plaats het in een 50 ml buis. Opmerking: Zorg ervoor dat het resulterende weefselmesje kleiner is dan 1 mm 3 in grootte voor elk stuk. Een typische opbrengst is ongeveer 5000 VESC&#39;s per dier. </li></ol></li><li> Bereid het verteringsbasismedium in een 50 ml afgedekte centrifugebuis met een volume van 10 ml per 1 g weefselgraan. Voeg collageen type 3 toe bij een concentratie van 300 eenheden per 10 ml verteringsbasismedium om de verteringsbuffer te vormen. Meng gelijkmatig en voeg het toe aan het weefselmesje. </li><li> Plaats de 50 ml-centrifugebuis horizontaal op een schommelplatform en stel de snelheid in op 100 rpm en de temperatuur tot 37 ° C. agiterenHet weefselweefsel gedurende 2 uur Controleer en manueel de buis handmatig om de 20 minuten om de juiste spijsvertering te verzekeren. Opmerking: Het doel van weefselvertering voorafgaand aan FACS is het bereiden van een enkelvoudige oplossing uit vast weefsel. Daarom, bij het einde van de spijsvertering, moet de inhoud een dikke oplossing zijn zonder zichtbare weefselstukken. </li></ol></li><li> Eén-cel oplossing bereiding. <ol><li> Na de spijsvertering, vul de 50 ml centrifugebuis met voorverwarmen, steriele PBS en draai de buis om om gelijkmatig te mengen. Centrifugeer de buis bij 200 xg gedurende 5 minuten om een ​​celpelletje te verkrijgen. </li><li> Verwijder de supernatant en flip de bodem van de buis om de celpelletje los te maken. Voeg in 3 ml rode bloedcel lyseringsbuffer toe (zie de tabel van materialen) en incubeer gedurende 5 minuten in een weefselkweekkap bij kamertemperatuur (RT) om de rode bloedcellen te elimineren. </li><li> Voeg 10 ml steriele PBS toe en draai de buis in om gelijkmatig te mengen. Centrifugeer het weefselgehalte bij 200 xg gedurende 5 minuten en schijfHet supernatant Voeg in 3 ml voorverhitte 0,05% trypsine toe en houd de buis bij 37 ° C gedurende 5 minuten om het resterende weefsel verder te verteren. </li><li> Voeg in 3 ml voorverwarmde IMDM toe en voeg vervolgens 100 μL DNase I oplossing (0,25 mg DNase I verdund in 1 ml PBS) toe. Bewaar de buis bij 37 ° C om de DNA-filamenten op te breken. Verzend het weefselmengsel door een 70 μm celfilter om de celoplossing te verkrijgen. Spoel de zeef tweemaal tweemaal met 2 ml PBS + 5% FBS om de enzymatische spijsvertering te neutraliseren. </li><li> Centrifugeer het celmengsel bij 200 xg gedurende 5 minuten om de cellen te pelletiseren. Verwijder de supernatant en resuspendeer de celpellet in 1 ml PBS + 5% FBS voor antilichamen kleuring. </li></ol></li><li> FACS-gebaseerde Procr + VESC isolatie. <ol><li> Onderwerp het celmengsel dat is verkregen van donor mammierweefsel tot antilichamenkleuring volgens gepubliceerde routineprotocollen 8 . Opmerking: De volgende antilichamen werden gebruikt: anti-muisBloedafstoting-FITC, anti-muis CD31 (PECAM1) -PECY7, anti-muis CD105-APC (alle gebruikt bij een concentratie van 1 μg / ml), anti-muis CD201 (Procr) biotine (gebruikt bij een concentratie van 2,5 Μg / ml) en streptavidine-v450 (gebruikt bij een concentratie van 0,5 μg / ml). <ol><li> Na het antilichamen kleuren, vul de cellen op met PBS + 5% FBS en centrifugeer vervolgens gedurende 5 minuten bij 200 g. Gooi de supernatant weg en verwijder de cellen met 1 ml PBS + 5% FBS. Filter door een 40 μm celsuur. Plaats op ijs tot FACS sorteren. </li></ol></li><li> Ga door naar FACS-gebaseerde sortering om Procr + VESC&#39;s te isoleren. <ol><li> Analyseer het niet-gestikte monster en elke enkele kleurregeling om de spanning voor elke kleur te bepalen. Bereken de compensatieparameters om automatische fluorescentie of achtergrondkleuring te vermijden. Stel de sjabloon op voor het juiste gaten en sorteren voor de gewenste celpopulaties. </li><li> Om de hiërarchie van FACS-sortering vast te stellen, verwijder eerst afval uitAlle gebeurtenissen en verwijder dan dubleten of kleefcellen clusters door te treden met breedte. Gate-out bloedlijncellen en gebruik dan CD31 + en CD105 + om de endotheliale populaties te definiëren. Opmerking: Procr + cellen werden geïsoleerd uit CD31 + CD105 + ECs in vergelijking met een FMO-controle. Een representatief FACS analyse-grafiek is weergegeven in figuur 1 . Een FACS-geïsoleerde VESC-populatie moet worden opgehangen in IMDM + 50% FBS en op ijs opgeslagen tot verdere verwerking. </li></ol></li></ol></li></ol> 2. Vivo VESC Vessel Formation Assay Met behulp van het Mammary Fat Pad <ol><li> Bereid de primaire EC&#39;s voor transplantatie op. <ol><li> Vul de FACS-gesorteerde cellen op met 10 ml PBS + 5% FBS en centrifugeer vervolgens gedurende 5 minuten bij 200 xg om de cellen naar beneden te vestigen. </li><li> Aspireer de vloeistof zorgvuldig, tel het celnummer met behulp van een hemocytometer en resuspendeer de celpelletje met basismembraanmatrixmengsel (consiSting van 50% basementmembraanmatrix en PBS met 20% FBS, aangevuld met 100 ng / ml rmVEGF en 60 U / ml heparine) om een ​​werkconcentratie van 15.000 cellen / 15 μl te bereiken. Opmerking: Het keldermembraanmatrixmengsel moet altijd op ijs worden opgeslagen. </li><li> Verdun de gesorteerde en getelde cellen serieel om de benodigde invoerconcentraties in een 1,5 ml microtube te bereiken, zodat de uiteindelijke injectievolumes niet in totaal 15 μL bedragen. Voeg 0,1% Trypan blauw toe aan elke buis voor een betere contentvisualisatie tijdens transplantatie. Pipet grondig om te mengen. Bewaar de buizen op ijs tot aan het gebruik. Opmerking: succesvol vaartuiggeneratie kan worden bereikt met minimaal 100 VESC&#39;s. </li></ol></li><li> Transplanteer de primaire EC&#39;s naar het vetpasta. <ol><li> Desinfecteer de chirurgische instrumenten en de bocht. Als u dezelfde instrumenten op meerdere dieren gebruikt, kan een sterilisator gebruikt worden voor desinfectie. </li><li> Verdoof 3 week oude BALB / c naakt micE door gebruik te maken van het verdovingsprotocol dat door uw instituut dierenarts en IACUC wordt aanbevolen. Leg elke muis in de rugstand, met zijn rug op de operatietafel. Immobiliseer de ledematen met kleefband. </li><li> Dompel een katoenen pootje in op jodium gebaseerde antiseptische oplossing. Veeg het hele buikgebied van de muis grondig om het huidoppervlak voor de operatie te steriliseren. </li><li> Houd de muis van de buik op de buikhuid met de pincet. Gebruik een chirurgische scalpel om een ​​kleine, 1 cm verticale snede te maken. Maak twee snijdingen ongeveer 0,5 - 1 cm lang, elk naar het achterbeen, om een ​​ondersteboven, Y-vormige incisie te bereiken. <ol><li> Gebruik tang en een katoenen poot om de huid zachtjes van de buik af te scheiden en de huid zijwaarts te knijpen om de ingewanden van de ingewanden te openbaren. Plaats de muis onder een stereoscoop en zet de vergroting op 2.0X. Zorg ervoor dat de focus zo wordt aangepast dat het dikke vetpadscherm duidelijk zichtbaar en bediend kan worden. </li></ol></li><li> Plaats een 27G 1/2 &quot;haakE op ijs om te chillen. Voer vooraf een 1 ml spuit met keldermembraanmatrixmengsel voor om eventuele luchtbellen in het naaldbevestigingsgebied te verwijderen. Pipette 15 μL gemengde oplossing op de kap van de microcentrifugebuis uit en haal vervolgens het volledige volume in de geperforeerde injectiespuit. </li><li> Houd de dikke vetpoot voor het inguikale lymfeklieren vast, gebruik fijne pincetjes en lig het licht op om de injectie makkelijk te injecteren. Steek ongeveer 1/4 van de spuitnaald zachtjes in het vetpaneel. <ol><li> Laat de pincet los van de kussenslot om de spuitnaald vast te grijpen en te stabiliseren. Spuit de oplossing langzaam in om vloeistoflek te voorkomen. Houd een paar seconden vast om ervoor te zorgen dat het celmengsel stevig is om het lek te minimaliseren wanneer u de naald trekt. </li></ol></li><li> Sluit de huidklep met absorbeerbare hechtingen. Zuig de huidklep aan met behulp van een 5-0 non-reactieve monofilament hechting en sluit de wonden met een knoop van een chirurgische stijl, elke knoop benadering0,3 cm apart Alternatief, sluit de huid met wond nietjes. </li><li> Plaats muizen in een aparte kooi voor herstel. Plaats een verwarmingslamp over de kooi om te voorkomen dat de verdovende muizen aan hypothermie lijden. Plaats zacht papier en katoen onderaan de kooi om de muizen warm na de operatie te houden. <ol><li> Let op de muizen zorgvuldig totdat alle ontvangers volledig wakker zijn. Voor de volgende paar dagen, gebruik de post-chirurgische pijnstillers voorop bij alle dieren of zoals aangegeven door de dierenarts. Breng antibiotica aan volgens het goedgekeurde dierprotocol indien wondinfectie optreedt. Als de chirurgische wond afgesloten was met wondklieren, verwijder de wondklemmen 10 dagen na de operatie, wanneer de wond volledig is gesloten. </li></ol></li></ol></li></ol> 3. Voorbereiding van de hele weefsel voor microscopische waarneming <ol><li> Weefsel oogst <ol><li> Na 2 tot 4 weken na implantatie bedanken de ontvanger BALB / cNaakte muizen met een intraperitoneale injectie van 2,5% verdovingsmiddel bij een dosering van 0,12 ml per 20 g lichaamsgewicht, zoals in stap 2.2.2. Opmerking: Positieve vaartengroei kan 2 tot 4 weken na celtransplantatie worden gedetecteerd. </li><li> Benoem de ontvanger systeemcirculatie met een staart-ader injectie van isolectin-647 kleurstof bij een dosering van 50 μg / 25 g lichaamsgewicht, geresuspendeerd in 50 μL steriele PBS. Laat een rusttijd van 5 - 10 min. Offer de muizen met behulp van CO 2 . </li><li> Dissecteer het gebied van mammierweefsel waar de cellen aanvankelijk geïnjecteerd werden na stap 2.2.4; Gebruik chirurgische scharen. Gebruik een chirurgisch mesje, knip het weefsel in ongeveer 3 tot 4 mm 3 kubussen in een 6 cm Petri-schotel. </li></ol></li><li> Weefselvertering en voorbereiding op antilichamenkleuring. <ol><li> Verdeel de weefselstukken in een 15 ml centrifugebuis gevuld met 10 ml voorverwarmd verteringsbasismedium (stap 1.1.2) aangevuld met collagenase III(300 U per 10 ml). </li><li> Plaats de 15 ml centrifugebuis horizontaal op een schommelplatform met de snelheid ingesteld op 100 rpm en de temperatuur stelt ongeveer 1 uur op 37 ° C om de weefselstructuur op te lossen en overmatig adipocytweefsel te verwijderen. Opmerking: Adipocyten hebben de neiging om auto-fluorescentie te produceren die kan leiden tot een luidruchtige fluorescerende achtergrond. Aan het einde van de spijsvertering moeten de weefselstukken een zachte, bewolkte uitstraling hebben. De optimale spijsverteringstijd hangt af van de grootte van de gehakte weefselstukken en moet daarom dienovereenkomstig worden aangepast om de beste resultaten te verkrijgen. Aangezien de weefselvasculatuur al is gemerkt met fluorescentie-gelabelde Isolectin, dienen alle volgende procedures te worden uitgevoerd beschermd tegen licht. </li><li> Was de weefselstukken met PBS bij kamertemperatuur gedurende 10 minuten. Bevestig het gehele bodemweefsel door de stukken zorgvuldig in een 6 cm Petri-schotel halfvol met 4% PFA (pH 7,2 - 7,4) te plaatsen om de fluorescentie te behouden. Plaats de petrischotelOp een schommelplatform en roer het weefsel gedurende 30 minuten bij RT. Opmerking: PFA is kankerverwekkend en moet met voorzichtigheid worden behandeld. </li><li> Verwijder de resterende PFA en doe het vaste weefsel drie keer met een volledige opbergwasbuffer (0,1% tween in PBS), met een interval van 10 minuten tussen elke was. </li></ol></li><li> Gehele bergweefsel antilichamen kleuring. <ol><li> Verdun het primaire antilichaam in antilichaamkleuringbuffer in een 2 ml centrifugebuis. Incubeer het weefsel met het primaire antilichaam &#39;s nachts bij 4 ° C. Opmerking: Rat anti-CD31 (concentratie: 10 μg / ml) of rat anti-VE-Cadherin (CD144 / Cdh5; concentratie: 2,5 μg / ml) werden gebruikt als de primaire antilichamen. Zowel CD31 als VE-Cadherin zijn celoppervlakmarkers gebruikt om endothelium te herkennen. 5x antilichaamkleuringbuffer wordt bereid met 500 mM maleïnezuur, pH 7,5; 750 mM NaCl; En 0,5% (v / v) tween oplossen in PBS. Voeg alleen een geschikt serumvolume (5%) toe bij het bereiden van verse 1x werkoplossing9 . </li><li> Verwijder de antilichaamkleuringbuffer en wasser het gehele vezelweefsel driemaal met wasbuffer, met een interval van 10 minuten. Incubeer het weefsel met secundair antilichaam (zie de Tabel van Materialen ) plus DAPI bij RT gedurende 4 uur op een schommelplatform of overnacht bij 4 ° C. Opmerking: Gebruik DAPI (4 &#39;, 6-diamidino-2-fenylindool) bij een uiteindelijke concentratie van 5 μg / ml om de kernen te visualiseren. </li><li> Was de hele bergweefsel met wasbuffer 3 keer per 10 minuten elk. Incubeer de weefselstukken in 80% glycerol of 80% sucrose gedurende de nacht om het weefsel te dehydreren voor een beter behoud. </li><li> Plaats de afzonderlijke weefselstukken op een glazen glijbaan en verwijder de buitensporige uitdrogingsbuffer. Bedek het weefsel met montagemedium, plaats een deklaag en druk het weefsel zachtjes om het te plaatsen. </li><li> Voer confocal microscopische beeldverwerving uit. Voor volledige bergkliere, koop beelden met een 40X met NA = 1.3 olie objectieve. Verkrijg de tegelschalen van Z-stapels bij een optische sectie resolutie van 1.024 x 1.024 en een laag scheiding van 1,0 - 1,2 μm. Opmerking: Om het juiste fluorescentie-lichtsignaal vast te leggen, moet de filterbundel splitser worden ingesteld op triple dichroic (TD) 488/553/638, met de winstinstelling bij PMT Gain 600-800. De volgende excitatie- / emissiebronnen dienen te worden gebruikt: mGFP, met excitatie- / emissie maxima van 488/509 nm; MTomato met excitatie- / emissie maxima van 532/588 nm; Alexa-647, met excitatie- / emissie maxima van 594/665; En DAPI, met excitatie- / emissie maxima van 350/470. </li></ol></li></ol> 4. Lineage Tracing met behulp van een genetisch gemodificeerd muis model <ol><li> Ontdek Procr + VESCs met behulp van het muismodel. <ol><li> Gebruik de Procr Creert2-IRES-tdTomato / + (aangeduid als Procr CreERT2 ) knock-in muisstam . Opmerking: In dit muismodel, een Creert2-IRES-tdTomatocassette Procr 11 . <ol><li> Cross Procr CreERT2 muizen met de Rosa26 mTtomatomGFP (aangeduid als R26 mTmG ) reporter stam om het lot van endogene Procr + EC&#39;s in vivo 11 te detecteren. Identificeer alle gelabelde endogene Procr + EC&#39;s en hun nakomelingen met behulp van GFP-expressie. </li></ol></li><li> Administreer tamoxifenoplossing 11 (10 mg tamoxifen opgelost in 1 ml pindaolie + 10% ethanol om een ​​voorraadoplossing van 10 mg / ml op te leveren) intraperitoneaal met een dosis van 4 mg / 25 g lichaamsgewicht tijdens de pubertalentijd (5 weken Oud) om het ontwikkelingsgehalte van Procr + EC&#39;s te volgen. </li><li> Analyseer de kloonvormende efficiëntie van gelabelde cellen door middel van immunotaining met volledige montage volgens de voorbereidingsstappen die zijn beschreven in stap 3. Verkrijg mammariumvetpadsjes van behandelde muizen, zowel na korte termijn (2 dagen) en verlengde tijdsperioden (tot 10 maanden). Zie figuur 3 . </li></ol></li></ol>

<ol><li>Thomas, E. D., Lochte, H. L., Lu, W. C., Ferrebee, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intravenous+infusion+of+bone+marrow+in+patients+receiving+radiation+and+chemotherapy%5BTitle%5D)+AND+%22N+Engl+J+Med%22%5BJournal%5D)">Intravenous infusion of bone marrow in patients receiving radiation and chemotherapy.</a> N Engl J Med. 257 (11), 491-496 (1957).</li>
<li>Chao, M. P., Seita, J., Weissman, I. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Establishment+of+a+normal+hematopoietic+and+leukemia+stem+cell+hierarchy%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harb+Symp+Quant+Biol%22%5BJournal%5D)">Establishment of a normal hematopoietic and leukemia stem cell hierarchy.</a> Cold Spring Harb Symp Quant Biol. 73, 439-449 (2008).</li>
<li>Bompais, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+endothelial+cells+derived+from+circulating+progenitors+display+specific+functional+properties+compared+with+mature+vessel+wall+endothelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Human endothelial cells derived from circulating progenitors display specific functional properties compared with mature vessel wall endothelial cells.</a> Blood. 103 (7), 2577-2584 (2004).</li>
<li>Fang, S., Wei, J., Pentinmikko, N., Leinonen, H., Salven, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+functional+blood+vessels+from+a+single+c-kit%2B+adult+vascular+endothelial+stem+cell%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Biol%22%5BJournal%5D)">Generation of functional blood vessels from a single c-kit+ adult vascular endothelial stem cell.</a> PLoS Biol. 10 (10), e1001407(2012).</li>
<li>Naito, H., Kidoya, H., Sakimoto, S., Wakabayashi, T., Takakura, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+and+characterization+of+a+resident+vascular+stem%2Fprogenitor+cell+population+in+preexisting+blood+vessels%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+J%22%5BJournal%5D)">Identification and characterization of a resident vascular stem/progenitor cell population in preexisting blood vessels.</a> EMBO J. 31 (4), 842-855 (2012).</li>
<li>Yoder, M. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Redefining+endothelial+progenitor+cells+via+clonal+analysis+and+hematopoietic+stem%2Fprogenitor+cell+principals%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Redefining endothelial progenitor cells via clonal analysis and hematopoietic stem/progenitor cell principals.</a> Blood. 109 (5), 1801-1809 (2007).</li>
<li>Snippert, H. J., Clevers, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tracking+adult+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Embo+Rep%22%5BJournal%5D)">Tracking adult stem cells.</a> Embo Rep. 12 (2), 113-122 (2011).</li>
<li>Yu, Q. C., Song, W., Wang, D., Zeng, Y. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+blood+vascular+endothelial+stem+cells+by+the+expression+of+protein+C+receptor%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Res%22%5BJournal%5D)">Identification of blood vascular endothelial stem cells by the expression of protein C receptor.</a> Cell Res. 26 (10), 1079-1098 (2016).</li>
<li>Rios, A. C., Fu, N. Y., Lindeman, G. J., Visvader, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+situ+identification+of+bipotent+stem+cells+in+the+mammary+gland%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">In situ identification of bipotent stem cells in the mammary gland.</a> Nature. 506, 322-327 (2014).</li>
<li>Barker, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+stem+cells+in+small+intestine+and+colon+by+marker+gene+Lgr5%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Identification of stem cells in small intestine and colon by marker gene Lgr5.</a> Nature. 449, 1003-1007 (2007).</li>
<li>Wang, D. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+multipotent+mammary+stemcells+by+protein+C+receptor+expression%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Identification of multipotent mammary stemcells by protein C receptor expression.</a> Nature. 517, 81-U201 (2015).</li>
<li>Stahl, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Mouse+Retina+as+an+Angiogenesis+Model%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophth+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">The Mouse Retina as an Angiogenesis Model.</a> Invest Ophth Vis Sci. 51 (6), 2813-2826 (2010).</li>
<li>Mammoto, T., Mammoto, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Implantation+of+Fibrin+Gel+on+Mouse+Lung+to+Study+Lung-specific+Angiogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Implantation of Fibrin Gel on Mouse Lung to Study Lung-specific Angiogenesis.</a> J. Vis. Exp. (94), e52012(2014).</li>
<li>Snippert, H. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intestinal+crypt+homeostasis+results+from+neutral+competition+between+symmetrically+dividing+Lgr5+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Intestinal crypt homeostasis results from neutral competition between symmetrically dividing Lgr5 stem cells.</a> Cell. 143 (1), 134-144 (2010).</li>
<li>Soriano, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generalized+lacZ+expression+with+the+ROSA26+Cre+reporter+strain%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Genet%22%5BJournal%5D)">Generalized lacZ expression with the ROSA26 Cre reporter strain.</a> Nat Genet. 21 (1), 70-71 (1999).</li>
<li>Barker, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lgr5%28%2Bve%29+stem+cells+drive+self-renewal+in+the+stomach+and+build+long-lived+gastric+units+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Lgr5(+ve) stem cells drive self-renewal in the stomach and build long-lived gastric units in vitro.</a> Cell Stem Cell. 6 (1), 25-36 (2010).</li>
<li>Solar, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pancreatic+exocrine+duct+cells+give+rise+to+insulin-producing+beta+cells+during+embryogenesis+but+not+after+birth%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Cell%22%5BJournal%5D)">Pancreatic exocrine duct cells give rise to insulin-producing beta cells during embryogenesis but not after birth.</a> Dev Cell. 17 (6), 849-860 (2009).</li>
</ol>

De auteurs verklaren dat ze geen concurrerende financiële belangen hebben.

Angiogenese analyses vormen een goede experimentele benadering om vasculaire dynamiek te bestuderen. Muis-retinale vasculatuur, die postnataal ontwikkelt, blijkt een aantrekkelijk model te zijn om angiogenese 12 te bestuderen. Ondanks het feit dat het relatief toegankelijk is, is de feitelijke manipulatie binnen het retina-vaatstelsel nogal moeilijk. Tot nu toe is de best omschreven in vivo transplantatie de proefanalyse uitgevoerd, die cellen in een matrix van de basismembraan en chirur...

Tijdens ontwikkeling en homeostase vinden vasculaire groei en remodeling trouwen plaats in overeenstemming met orgaantengroei en reparatie. Angiogenese beschrijft de opkomst van nieuwe vaten van bestaande bloedvaten en wordt beschouwd als een belangrijke kracht die deze dynamische vasculaire veranderingen bemiddelt. Elk bloedvat is binnenkant met een laag endotheliale cellen (EC&#39;s), en ze lijken de basis te zijn van de vaartuigarchitectuur. Het mechanisme waardoor de EC-pool tijdens de homeostase is aangevuld, bleef lang en onduidelijk, en er werden argumenten aangevoerd over de vraag of vasculaire omzet het gevolg is van volwassen EC proliferatie of is de bijdrage van vasculaire stam- / stamcellenactiviteiten. Door het gebrek aan direct fysiologisch bewijs bleef het bestaan ​​en de cellulaire identiteit van vasculaire endotheel stamcellen (VESC&#39;s) ook controversieel. Een van de meest voorkomende benaderingen die gebruikt worden om het gedrag van stamcellen te verifiëren, is via het transplanTation van vermeende stamcellen in ontvanger muizen. Deze methode meet het stamme potentieel van kandidaat stamcellen in vivo. Transplantatie werd eerst toegepast op het onderzoek van beenmergstamcellen 1 , die bijgedragen heeft tot de vaststelling van de hiërarchische kenmerken van het hematopoietische systeem 2 . In het endotheel veld, een basaalmembraan matrix (bv Matrigel) plug subcutaan ingebracht onder de huid flank een standaard in vivo angiogenese assay toegepast om de bloedvatvorming mogelijkheden van getransplanteerde EC pakken. Veelvoudige experimentele methoden, waaronder kolonievorming in 3D-cultuursystemen en transplantatie, hebben potentiële EC-stamvogens / VESC-populaties 3 , 4 , 5 , 6 voorgesteld. Echter, aangezien EC&#39;s ingebed in basismembraanmatrix relatief gescheiden zijn vanHet omliggende weefsel biedt dit niet de optimale nicheomgeving die nodig is om het angiogene potentieel van getransplanteerde cellen volledig te onderzoeken. Als gevolg daarvan zijn vaten die in de matrixplug zijn gevormd overwegend capillaireachtig en functioneel onmetelijk. De borstkanker ontwikkelt postnataal, met de meest robuuste groei die zich voordoet tijdens puberteit en zwangerschap. In het pubertalische stadium ondergaat het mammary epithelium een ​​snelle expansie, om het hele dikke vetpadsysteem in te nemen, vergezeld van een efficiënte remodellering van de omliggende vasculaire structuren. Zo biedt de borstklier een uitstekend model voor de studie van angiogenese. Het biedt ruimte, matrix en rijke angiogene stimuli uit het groeiende mammary epithelium en is daarom een ​​ideale transplantatieplaats voor het beoordelen van het angiogene potentieel van exogene cellen. Daarnaast maakt het vetvoet van het mammarium de gevormde exogene vaten mogelijk te integreren met het gastheercirculatiesysteem, waardoor verdere f mogelijk wordt gemaaktUnctionele evaluatie en een voordeel over subcutane transplantatie. Hoewel in vitro- kweek- en transplantatietesten even doeltreffend zijn om de regeneratie-eigenschappen van een celpopulatie te onderzoeken, is het bekend dat dergelijke analyses plasticiteit kunnen stimuleren als cellen weggenomen worden van hun natieve habitats en veranderingen kunnen worden geïnduceerd wanneer cellen worden losgekoppeld van Hun fysiologische omgeving 7 . Daarom is het verkrijgen van direct in vivo bewijs van celfate de sleutelbenadering om het huidige begrip van het gedrag van endotheelbevolkingen te bevorderen. Genetische kaartvorming ( dwz in vivo lineage tracing) is essentieel voor de identificatie van VESC&#39;s en voor het onderzoek van hun eigenschappen in het lichaamsysteem, omdat het in vivo stamcellen gedrag in zijn fysiologische context kan onthullen en de werkelijke stevigheid kan zijn beoordeeld. Lineage traciNg biedt direct bewijs van de langdurige persistentie ( dwz zelfvernieuwing) van kandidaat-VESC&#39;s en hun vermogen om celtypen voor het weefsel van oorsprong te produceren ( dwz differentiatiekracht). Dit protocol beschrijft een nieuwe transplantatietechniek voor mammary fat pad transplantatie en een lineage traceringsmethode om het vaartuiggeneratievermogen van VESC&#39;s te waarnemen. Deze technieken overwinnen tekortkomingen van momenteel beschikbare analyses en bieden een nieuwe manier om de stamcel eigenschappen van VESCs optimaal te evalueren. Deze benaderingen zijn efficiënte hulpmiddelen die kunnen worden gebruikt om het gedrag en de vaatvormende eigenschappen van endotheelbevolkingen te beoordelen, evenals om veranderingen in de vasculaire celsterkte binnen een pathologische omgeving te bepalen.

<table><tbody><tr><td>0.05% Trypsin-Ethylene Diamine Tetraacetic Acid(EDTA) (1x)</td><td>Gibco (Life Technologies)</td><td>25300-062</td><td>0.05% Trypsin</td></tr><tr><td>0.22 &micro;m Filter Unit</td><td>Merck Millipore Ltd.</td><td>SLGP033RB</td><td>0.22 &micro;m Filter</td></tr><tr><td>2-Methylbutanol-2, ReagentPlus</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>24, 048-6</td><td>Tert Amyl Alcohol</td></tr><tr><td>222, Tribromethanol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T48402-25g</td><td>222, Tribromethanol</td></tr><tr><td>4',6-diamidino-2-phenylindole(DAPI)</td><td>Invitrogen</td><td>D1306</td><td>DAPI</td></tr><tr><td>70 &micro;m Cell Strainer</td><td>BD FAL</td><td>352350</td><td>70 &micro;m Cell Strainer</td></tr><tr><td>Adhesion Microscope Slides</td><td>CITOGLAS</td><td>188105</td><td>Glass slides</td></tr><tr><td>Anti-mouse CD105 APC</td><td>eBioscience</td><td>17-1051-82, clone MJ7/18</td><td>for FACS analusis use at 1 &micro;g/mL</td></tr><tr><td>Anti-mouse CD201 Biotin</td><td>eBioscience</td><td>13-2012-82</td><td>for FACS analusis use at 2.5 &micro;g/mL</td></tr><tr><td>Anti-mouse CD31 PE-Cyanine 7</td><td>eBioscience</td><td>25-0311-82, clone 390</td><td>for FACS analusis use at 1 &micro;g/mL</td></tr><tr><td>BD FACSJazz Cell Sorter</td><td>BD Biosciences</td><td>655489</td><td>FACS</td></tr><tr><td>Bovine Serum Albumin</td><td>Sigma</td><td>100190332</td><td>BSA</td></tr><tr><td>Centrifuge</td><td>Eppendorf</td><td>5810R</td><td>Centrifuge</td></tr><tr><td>Collagenase type 3</td><td>Worthington-Biochem</td><td>#LS004183</td><td>Collagenase III</td></tr><tr><td>Confocal microscopy</td><td>Leica</td><td>sp8</td><td>Confocal</td></tr><tr><td>Deoxyribonuclease I from bovine pancreas</td><td>Sigma</td><td>D2463-5VL</td><td>Dnase I</td></tr><tr><td>Donkey anti-Rat Cy3</td><td>Jackson ImmunResearch</td><td>712-165-150</td><td>Secondary antibody, use at 0.5 &micro;g/mL</td></tr><tr><td>Dumont Forceps</td><td>WPI</td><td>500342</td><td>Froceps</td></tr><tr><td>Dumont Forceps - Micro-Blunted Tips</td><td>FST</td><td>11253-20</td><td>Forceps</td></tr><tr><td>Fetal Bovine Serum</td><td>Hyclone</td><td>SH30396.03</td><td>FBS</td></tr><tr><td>FITC Ms CD3/Gr1/CD11b/CD45R(B220)/Ter-119</td><td>BioLegend</td><td>78022</td><td>Blood lineage cocktail for FACS analysis, use at 25 &micro;L per test</td></tr><tr><td>Glycerol</td><td>Sigma</td><td>G6279</td><td>Glycerol</td></tr><tr><td>Iscov's Modified Dulbecco's Medium</td><td>Gibco (Life Technologies)</td><td>12440-053</td><td>IMDM</td></tr><tr><td>Isolectin GS-IB4 from Griffonia Simplicifolia, Alexa Fluora&nbsp; 647</td><td>Invitrogen</td><td>Z32450</td><td>Isolectin-647</td></tr><tr><td>Matrigel&nbsp; Matrix (growth factor reduced)</td><td>BD</td><td>356231</td><td>Matrigel</td></tr><tr><td>Mouse strain (Actin-GFP)</td><td>Jax Laboratories</td><td>3773</td><td>Actin-GFP</td></tr><tr><td>Mouse strain (C57BL/6)</td><td>SLAC</td><td>C57BL/6</td><td>C57BL/6</td></tr><tr><td>Mouse strain&nbsp; (BALB/c nude)</td><td>SLAC</td><td>BALB/c nude</td><td>Nude mice</td></tr><tr><td>Paraformaldehyde</td><td>Sigma</td><td>P6148</td><td>PFA</td></tr><tr><td>Penicilin Streptomycin</td><td>Gibco (Life Technologies)</td><td>5140-122</td><td>Pen/Strep</td></tr><tr><td>Phosphate Buffered Saline (pH7.2) 1x</td><td>Gibco (Life Technologies)</td><td>c20012500BT</td><td>PBS</td></tr><tr><td>PRIM1640</td><td>Gibco (Life Technologies)</td><td>c11875500CP</td><td>PRIM1640</td></tr><tr><td>ProLong Gold antifade reagent</td><td>Life Technologies</td><td>P36934</td><td>Mounting Medium</td></tr><tr><td>Rat anti CD144</td><td>BD Biosciences</td><td>550548</td><td>for whole-mount analysis, anti-VE-Cadherin / Cdh5 antibdy for endothelial tight junction, use at 2.5 &micro;g/mL</td></tr><tr><td>Rat anti CD31-biotin</td><td>BD Biosciences</td><td>553371</td><td>for whole-mount analusis, anti-CD31/PECAM1 antibody for endothelial surface adhesion molecule, use at 10 &micro;g/mL</td></tr><tr><td>Red Cell Lysis Buffer</td><td>Sigma</td><td>R7767-100ML</td><td>Red blood cell lysing buffer</td></tr><tr><td>Straight/Sharp-Blunt/10cm</td><td>FST</td><td>14028-10</td><td>Fine Scissors</td></tr><tr><td>Streptavidin eFluor 450</td><td>eBioscience</td><td>48-4317-82</td><td>for FACS analysis use at 0.5 &micro;g/mL</td></tr><tr><td>Tamoxifen</td><td>Sigma</td><td>101551374</td><td>TAM</td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T8787-250ML</td><td>TritonX</td></tr><tr><td>Wax Coated Braided Silk (Size 5-0 USP (1 Metric), 18 inches (45 cm) BLACK on C-1 Needle)</td><td>COVIDIEN</td><td>S1173</td><td>Suture&nbsp;</td></tr><tr><td>Sterile Disposable Scaplels</td><td>Swann Morton</td><td>#10</td><td>Scalpel</td></tr><tr><td>Betadine</td><td>Yifeng Medical</td><td>20160101</td><td>Antiseptic solution</td></tr></tbody></table>

een nieuwe mammary fat pad transplantation technique om de vessel generation van vasculaire endotheliale stamcellen te visualiseren

A Novel Mammary Fat Pad Transplantation Technique to Visualize the Vessel Generation of Vascular Endothelial Stem Cells

Endotheelcellen (EC&#39;s) zijn de fundamentele bouwstenen van de vasculaire architectuur en bemiddelen van vasculaire groei en remodeling om de juiste ontwikkeling van het vaartuig en homeostase te waarborgen. Echter, studies over de endotheliale afstammingshiërarchie blijven onduidelijk wegens het gebrek aan hulpmiddelen om toegang te krijgen en hun gedrag in vivo direct te evalueren. Om deze tekortkoming aan te pakken, is een nieuw weefselmodel ontwikkeld om angiogenese te bestuderen met behulp van het vetpadschuim. De borstklier ontwikkelt zich meestal in de postnatale stadia, waaronder puberteit en zwangerschap, gedurende welke robuuste epithelium proliferatie gepaard gaat met uitgebreide vasculaire remodeling. Mammary fat pads bieden ruimte, matrix en rijke angiogene stimuli uit het groeiende mammary epithelium. Bovendien bevinden zich dikke vetpadsjes buiten de peritoneale holte, waardoor ze een gemakkelijk toegankelijke inplantingsplaats zijn voor het beoordelen van het angiogene potentieel van exogene cellen. Dit werk beschrijft ook een efficiëntieNt tracing benadering met behulp van fluorescerende reporter muizen om specifiek de doelgroep van vasculaire endotheliale stamcellen (VESCs) in vivo te meten. Deze afstammingsmethode, gekoppeld aan de daaropvolgende microscopie van het weefsel, maakt de directe visualisatie van gerichte cellen en hun nakomelingen mogelijk, waardoor de proliferatiecapaciteit kan worden gekwantificeerd en de differentiatieverbintenis kan worden vastgelegd. Met behulp van deze methoden is onlangs een populatie van bipotente proteïne C-receptor (Procr) die VESC&#39;s uitdrukt, geïdentificeerd in meerdere vasculaire systemen. Procr + VESCs, die aanleiding geven tot zowel nieuwe EC&#39;s als pericytes, actief bijdragen tot angiogenese tijdens de ontwikkeling, homeostase en herstel van letsels. In het algemeen beschrijft dit manuscript een nieuwe transplantatie van de dikke dikke padtransplantatie en in vivo lineage tracing technieken die kunnen worden gebruikt om de stamcel eigenschappen van VESCs te evalueren.

Mammary VESCs Isolatie: Om de endotheelpopulatie te isoleren voor de daaropvolgende transplantatietest, volwassen (8 weken oud), werden maagklippen voor maagmuizen geoogst als donormateriaal. Endothelcellen werden geïsoleerd met behulp van een antilichaam gebaseerde cel sorteringstechniek. Representatieve grafieken van de FACS-analyse van de VESC bevolking in 8 weken oude C57BL / 6 borstklier EC worden getoond in <strong class="x...

Dit werk demonstreert een nieuwe aanpak om het proliferatie-, differentiatie- en vaartuigvormende potentieel van vasculaire endotheliale stamcellen (VESC&#39;s) te beoordelen door middel van transpiratie van de dikke dikvliesvoeding, gevolgd door een full-mount weefselbereiding voor microscopische observatie. Ook wordt een lineage-tracingsstrategie om het gedrag van VESC&#39;s in vivo te onderzoeken, ook voorgesteld.

Een nieuwe Mammary Fat Pad Transplantation Technique om de Vessel Generation van Vasculaire Endotheliale Stamcellen te visualiseren

Endothelial cells (ECs) are the fundamental building blocks of the vascular architecture and mediate vascular growth and remodeling to ensure proper ...

Het algemene doel van dit experiment is om het proliferatie-, differentiatie- en vaatgeneratiepotentieel van vasculaire endotheliale stamcellen te beoordelen via een transplantatietechniek in het melkvetkussentje, gevolgd door een whole-mount weefselpreparatie voor microscopische observatie. Deze methode biedt een nieuwe manier om de stamceleigenschappen van vasculaire endotheliale stamcellen in vivo optimaal te evalueren. Het belangrijkste voordeel van deze techniek is dat de melkklier tijdens de puberteit een ideale angiogene omgeving biedt voor de generatie en integratie van nieuw gevormde vaten.Dit maakt de functionele evaluatie van getransplanteerde endotheelcellen mogelijk. De implicaties van deze techniek beperken zich niet tot het testen van de endotheelfunctie. Ze kunnen worden uitgebreid naar het evalueren van het effect van angiogene factoren op lokale vaatremodellering.Deze benaderingen zijn efficiënte instrumenten die kunnen worden toegepast op meerdere disciplines, waaronder studies naar de endotheelpopulatie in de tumuromgeving en naar veranderingen in de potentie van cellen. De procedure zal worden gedemonstreerd door Wenqian Song, een promovendus uit ons laboratorium. Na het bereiden van het medium voor weefseldigestie en het opofferen van acht weken oude Actin-GFP volwassen maagdelijke reportermuizen volgens het tekstprotocol, gebruikt u een scalpel om het vierde paar inguinale melkklieren te dissekeren door eerst een verticale huidincisie te maken in de middellijn van de onderbuik.Weeg het fijngehakte weefsel en plaats het in een buis van 50 milliliter. Om de digestiebuffer samen te stellen, voegt u 300 units collagenase type drie per 10 milliliter digestie-medium toe. Meng dit gelijkmatig en voeg het toe aan het fijngehakte weefsel.Plaats de centrifugebuis van 50 milliliter horizontaal op een schudplatform en stel de snelheid in op 100 rpm en de temperatuur op 37 graden Celsius. Agiteer het borstweefsel gedurende twee uur. Vul de centrifugebuis van 50 milliliter na de digestie aan met voorverwarmde steriele PBS en keer de buis om om alles gelijkmatig te mengen.Centrifuge de buis vervolgens vijf minuten bij 200 ×g. Verwijder het supernatant en tik tegen de onderkant van de buis om de cellpellet los te maken. Voeg daarna drie milliliter rode bloedcel-lysebuffer toe en incubeer de buis vijf minuten bij kamertemperatuur om de rode bloedcellen te elimineren.Voeg 10 milliliters steriel PBS toe en keer de buis om om gelijkmatig te mengen. Centrifugeer vervolgens het weefsel, verwijder het supernatant en voeg drie milliliters voorverwarmde 0,05%trypsin toe. Incubeer de buis vijf minuten bij 37 degrees Celsius om het overgebleven weefsel verder te verteren. Voeg daarna drie milliliters voorverwarmd IMDM toe, gevolgd door 100 microliters DNase I-oplossing.Incubeer de buis bij 37 °C om de DNA-filamenten af te breken. Leid het weefselmengsel vervolgens door een cellstrainer van 70 micron om de celoplossing te verkrijgen. Gebruik twee milliliter PBS plus 5% FBS om de strainer twee keer te spoelen om de enzymatische digestie te neutraliseren.Centrifugeer het cellenmengsel bij 200 ×g gedurende vijf minuten. Verwijder het supernatant en resuspendeer de celpellet in één milliliter PBS plus 5% FBS voor antilichaamkleuring. Vul na de antilichaamkleuring de cellen aan met PBS plus 5% FBS en centrifugeer het monster vervolgens bij 200 ×g gedurende vijf minuten.Gooi vervolgens het supernatant weg en gebruik één milliliter PBS plus 5% FBS om de cellen opnieuw te resuspenderen. Filtreer de suspensie door een cellzeef van 40 micron. Voer vervolgens FACS-gebaseerde sortering uit om proteïne C-receptor positieve vasculaire endotheliale stamcellen te isoleren volgens het tekstprotocol.Vul de FASC-gesorteerde cellen aan met 10 milliliters PBS plus 5%FBS en centrifugeer de monsters vervolgens bij 200 times g gedurende vijf minuten om de cellen op de bodem van de buis te laten bezinken. Na het voorzichtig aspireren van de vloeistof, gebruik een hemocytometer om het aantal cellen te tellen en resuspendeer de celpellet met basement membrane matrix mengsel tot 15 000 cellen per 15 microliters. Verdun de gesorteerde en getelde cellen serieel in een 1,5 milliliter microcentrifugebuis om de vereiste inputconcentraties te bereiken, waarbij u erop let dat de uiteindelijke injectievolumes 15 microliters niet overschrijden.Voeg vervolgens 0,1% trypaanblauw toe aan elke buis voor een betere visualisatie van de inhoud tijdens de transplantatie. Pipetteer grondig om te mengen en bewaar de buizen op ijs tot gebruik. Om primaire endotheelcellen of EC's in het vetkussen van de melkklier te transplanteren, legt u elke muis in rugligging op de operatietafel.Gebruik vervolgens plakband om de ledematen te immobiliseren. Doop een wattenstaafje in een antisepticumoplossing op basis van jodium. Veeg het gehele buikgebied van de muis grondig af om het huidoppervlak voor de chirurgische ingreep te steriliseren.Gebruik vervolgens een pincet om de huid van de buik van de muis vast te pakken en op te tillen. Maak daarna met een chirurgisch scalpel een kleine verticale incisie van één centimeter. Maak twee sneden van elk ongeveer 0,5 tot één centimeter in de richting van het achterpootje om een omgekeerde Y-vormige incisie te verkrijgen.Gebruik een pincet en een wattenstaafje om de huid voorzichtig van de buik te scheiden en spel de huid opzij om de inguinale melkklieren bloot te leggen. Plaats de muis vervolgens onder een stereomicroscoop en stel de vergroting in op 2X. Plaats een 27 gauge 1/2 inch naald op ijs om deze voor te koelen.Pipetteer, na het ontluchten van de spuit, 15 µL basementmembraanmatrix-oplossing op de dop van de microcentrifugebuis en zuig vervolgens het volledige volume op in de ontluchte spuit. Om een volledige injectie van de celinhoud te garanderen, moet u ervoor zorgen dat er geen lucht in de naald aanwezig is na het ontluchten en het opzuigen van de cellen. Houd met een fijne pincet het vetkussen van de melkklier voor de inguinale lymfeklier en til dit lichtjes op voor een eenvoudige injectie.Voer vervolgens voorzichtig ongeveer 1/4 van de spuitnaald in het vetkussentje in. Laat de pincet los van het vetkussentje om de spuitnaald vast te grijpen en te stabiliseren. Injecteer de oplossing langzaam om lekkage van vloeistof te voorkomen.Houd de naald vervolgens enkele seconden op zijn plaats om er zeker van te zijn dat het celmengsel is gestold, zodat lekkage bij het uittrekken van de naald wordt geminimaliseerd. Gebruik resorbeerbare 5-0 gut-hechtdraden om de huidflap te sluiten en hecht de wonden met chirurgische knopen, waarbij elke knoop ongeveer 0,3 centimeter uit elkaar staat. Om het weefsel te oogsten, wordt de systemische circulatie van de ontvanger gelabeld met een staartaderinjectie van Isolectine 647-kleurstof in PBS.Hanteer een rustperiode van vijf tot 10 minuten. Na het opofferen van de muizen volgens het tekstprotocol, gebruikt u een chirurgische schaar om het gebied met borstweefsel waar de cellen aanvankelijk werden geïnjecteerd, uit te snijden. Hak het weefsel in een Petri-schaal van zes centimeter met een chirurgisch mesje in blokjes van ongeveer drie tot vier kubieke millimeter.Om de weefselstukjes vervolgens te verteren, brengt u deze over in een buis van 15 milliliter gevuld met 10 milliliter voorverwarmd digestiemedium aangevuld met collagenase drie. Plaats de centrifugebuis van 15 milliliter horizontaal op een schudplatform bij 100 rpm en 37 °C gedurende ongeveer één uur om de weefselstructuur los te maken en overtollig adipocytenweefsel te verwijderen. Was het weefsel daarna gedurende 10 minuten met PBS bij kamertemperatuur.Om de fluorescentie te behouden, wordt het hele-mount weefsel gefixeerd door de stukken voorzichtig in een petrischaal van zes centimeter te plaatsen die half gevuld is met 4% PFA. Plaats de petrischaal op een schudplateau en agiteer het weefsel voorzichtig gedurende 30 minuten bij kamertemperatuur. Nadat het weefsel is gewassen en is geïncubeerd in het verdunde primaire antilichaam volgens het tekstprotocol, wordt de kleuring verwijderd en wordt wasbuffer gebruikt om het weefsel drie keer te wassen gedurende telkens 10 minuten.Incubeer het weefsel vervolgens met het secundaire antilichaam plus DAPI gedurende vier uur bij kamertemperatuur op een schudplatform of overnight bij vier graden Celsius. Nadat het monster is gewassen volgens het tekstprotocol, wordt het weefsel overnight overgebracht naar 80% glycerol of 80% sucrose om het te dehydrateren voor een betere preservering. Monteer het weefsel en voer confocale microscopie uit volgens het tekstprotocol.Hier wordt een representatief resultaat getoond van celisolatie met behulp van FACS. Bloedlijnen werden uitgesloten (gated out) en CD31-positieve, CD105-positieve cellen werden gebruikt om endotheelcellen te definiëren, gevolgd door verrijking van proteïne C-receptor-positieve endotheelstamcellen. Deze confocale afbeelding stelt een ontvangende mammaire vetlap voor op de plaats van transplantatie.Bloedvaten gevormd uit getransplanteerde proteïne C-receptor-positieve endotheelcellen zijn geïntegreerd en hebben bijgedragen aan de mammaire vasculatuur van de gastheer. De mammaire vasculatuur van de ontvanger wordt in deze figuur weergegeven. Intraveneuze injectie van Isolectine in ontvangermuizen onthulde dat proteïne C-receptor-positieve endotheelcellen lumenvormige functionele vaten vormden.Zodra de procedure onder de knie is, kan de transplantatie in minder dan vijf minuten worden voltooid als deze correct wordt uitgevoerd. Tijdens het uitvoeren van de procedure is het belangrijk dat u eraan denkt om de ontvangende dieren na de operatie nauwlettend in de gaten te houden. Er moeten passende verzorgingsmaatregelen worden getroffen indien er tekenen van stress of infectie worden waargenomen.Na deze procedure kunnen andere methoden, zoals cellijn-tracking, worden uitgevoerd om het gedrag van doelcellen tijdens verschillende biologische processen in vivo te onderzoeken. Na de ontwikkeling van deze techniek konden onderzoekers in het veld van de vasculaire biologie de potentie van endotheel-subpopulaties onder zowel fysiologische als pathologische omstandigheden verkennen. Na het bekijken van deze video moet u een goed begrip hebben van hoe u borstvetkussel-transplantatie en whole-mount weefselpreparatie kunt gebruiken om het vatvormend vermogen van endotheelpopulaties te onderzoeken en om de functionaliteit van de gevormde vaten te evalueren.

a-novel-mammary-fat-pad-transplantation-technique-to-visualize-vessel

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Ontwikkelingsbiologie

Dit artikel toont de procedure ontwikkeld door DeOme...

Borstklieren Epitheliale Transplant Procedure

Een methode voor het zaaien titanium bloed-contact biomaterialen met autologe cellen en het testen van biocompatibiliteit wordt beschreven. Deze methode maakt gebruik van endotheliale progenitor cellen en titanium buizen, zonder zaadjes binnen enkele minuten van de chirurgische implantatie in varkens venae cavae. Deze techniek is aan te passen aan vele andere implanteerbare biomedische apparaten.

Autologe endotheliale voorlopercellen-zaaien Technologie en biocompatibiliteitstests voor cardiovasculaire apparaten in grote Animal Model

Vascularisatie is de sleutel tot een succesvolle aanpak in de tissue engineering. Daarom zijn betrouwbare technologieën die voor de ontwikkeling van vasculaire netwerken in weefsel-constructen evalueren. Hier presenteren we een eenvoudige en kosteneffectieve manier te visualiseren en kwantificeren vascularisatie in vivo.

Een Full Skin Defect model te evalueren Vascularisatie Biomaterialen<em&gt; In Vivo</em

We beschrijven een matrigel-plugtest om het angiogeen potentieel van een pool van factoren te illustreren die worden afgescheiden door kankercellen, met behulp van twee complementaire beeldvormingsmodaliteiten, echografie en endomicroscopie. De matrigel, een buitencelmatrix (ECM)-nabootsende gel, wordt gebruikt om de gastheer (muis) te introduceren met angiogeen factoren die worden afgescheiden naar het geconditioneerde medium...

Monitoring Functionaliteit en morfologie van vaatstelsel aangeworven door gesekreteerd door Snelgroeiende Tumor genererende cellen

Hier presenteren we een protocol om tissue engineered vaartuig enten die functioneel zijn voor het enten in muizen door dubbel zaaien gedeeltelijk geïnduceerde pluripotente stamcellen genereren (PiPSC) - afgeleide gladde spiercellen en PiPSC - afgeleide endotheelcellen op een gedecellulariseerde schip steiger bioreactor.

Generatie en enten van-Weefselmanipulatieproducten Schepen in een muismodel

Wij presenteren een protocol voor vetweefsel afgeleide microvasculaire brokken belovend vascularisatie eenheden vertegenwoordigen isoleren. Ze kunnen snel worden geïsoleerd, vereisen geen in vitro verwerking en kunnen aldus worden gebruikt voor één-stap prevascularization op verschillende gebieden van weefselengineering.

Isolatie Murine vetweefsel afgeleide microvasculaire fragmenten als Vascularisatie eenheden voor Tissue Engineering

Dit protocol beschrijft methoden voor het zuiveren, kwantificeren en karakteriseren van extracellulaire vesicles (EVs) / exosomen van niet-aanhechtende / mesenchymale mammary epitheelcellen en voor het gebruik ervan om het vermogen van de borstkanker te overdragen naar luminale mammary epitheelcellen. EV's / exosomen afgeleid van stamachtige mammale epitheelcellen kunnen deze celeigenschap overbrengen aan cellen die de EV's / exosomen innemen.

Overdracht van Mammary Gland-vormende Vermogen Tussen Mammary Basal Epithelial Cellen en Mammary Luminale Cellen via Extracellulaire Vesicles / Exosomen

Dit artikel beschrijft een transplantatiemethode om donorrattenborstepitheelcellen te transplanteren in het interscapulaire witte vetkussen van de ontvangende dieren. Deze methode kan worden gebruikt om gastheer- en/of donoreffecten op de ontwikkeling van borstepitheel te onderzoeken en elimineert de noodzaak van pre-clearing, waardoor het nut van deze techniek wordt uitgebreid.

Rat Mammary Epitheliale Celtransplantatie in de Interscapular White Fat Pad

Deze test maakt gebruik van embryonale stamcellen van muizen gedifferentieerd in embryoïde lichamen gekweekt in 3D-collageengel om de biologische processen te analyseren die kiemende angiogenese in vitro beheersen. De techniek kan worden toegepast voor het testen van medicijnen, het modelleren van ziekten en voor het bestuderen van specifieke genen in de context van deleties die embryonaal dodelijk zijn.

In vitro Driedimensionale kiemtest van angiogenese met behulp van embryonale stamcellen van muizen voor vaatziektemodellering en drugstests

Hier wordt een protocol gepresenteerd voor de implantatie van een weefselgemanipuleerd vasculair transplantaat in de halsslagader van de muis met behulp van de manchettechniek, waardoor een geschikt diermodel wordt geboden voor het onderzoeken van mechanismen voor de regeneratie van vasculair weefsel.

Implantatie van weefselgemanipuleerd vasculair transplantaat in de halsslagader van muizen via manchettechniek

Dit artikel presenteert een protocol voor de nauwkeurige echogeleide afgifte van vasculaire stamcellen aan de aortavaatwand. De techniek richt zich effectief op de vaatwand en bevordert vasculair herstel bij aorta-aneurysma's en dissecties.

Precisie-echogeleide stamcelafgifte voor vasculair herstel bij aortaaandoeningen

Ontdek een nieuwe mammary fat pad transplantatietechniek om vasculaire endotheliale stamcellen te evalueren. Deze methode maakt in vivo beoordeling van proliferatie, differentiatie en vaatvorming mogelijk via whole-mount preparatie en microscopische observatie.

Een nieuwe Mammary Fat Pad Transplantation Technique om de Vessel Generation van Vasculaire Endotheliale Stamcellen te visualiseren (Video) | JoVE Journal

Een nieuwe Mammary Fat Pad Transplantation Technique om de Vessel Generation van Vasculaire Endotheliale Stamcellen te visualiseren

Meer video's verkennen