11 november 2017
Het segment patch-clamp techniek is een effectieve methode voor het analyseren van leren-geïnduceerde veranderingen in de intrinsieke eigenschappen en de plasticiteit van excitatory of inhiberende synapsen.
Hallo, mijn naam is Dai Mitsushima. Hier laten we zien hoe u hersenplakjes maakt van getrainde dieren door patch clamp-gegevens in ongetrainde dieren te vergelijken. Zo kunnen we leer-geïnduceerde synaptische plasticiteit analyseren.
Hallo, mijn naam is Hiroyuki Kida. In dit experiment hebben we het neuromechanisme van motorisch lopen onderzocht met behulp van de rotor rod-test. De rotor rod-test wordt veelvuldig gebruikt om de motorische cognitie van knaagdieren te evalueren.
Het voordeel van deze methode is dat we het niveau van ontdekking tijdens de test kunnen variëren door de rotatiesnelheid te verhogen. Rotarod-test. Voorafgaand aan de motorische taak moet het rotarod-apparaat worden ingesteld op de versnellingsmodus van 4 tot 40 rpms over 300 seconden.
Ratten voerden tien pogingen uit voor elke test. Het tijdsinterval tussen de pogingen bedroeg 30 seconden. Tijdens de eerste trainingssessie vallen ratten gewoonlijk van de staaf, zelfs bij lage snelheden, en lopen ze soms in de verkeerde richting.
Na herhaalde training kan de rat echter met een hogere snelheid lopen. Door de latentie op de stang te meten, kunnen we de leerprestatie van de rat met betrekking tot deze vaardigheid schatten. Hier kunnen we de resultaten van de rotor rod-test zien.
Zoals in deze figuur wordt getoond, zijn twee dagen training voldoende om de motorische vaardigheid aan te leren. Vergeleken met de latentietijd bij de eerste poging, toonde post hoc-analyse een significante verbetering bij de laatste poging op de trainingsdagen. Door de latentietijd op de stang te meten, kunnen we de leerprestatie van de rat met betrekking tot deze vaardigheid schatten.
Vervolgens laten we u een inhibitie-vermijdingstest zien. Deze test is nuttig bij het analyseren van de contextuele leerprestaties. Het apparaat voor de inhibitie-vermijdingstest bestaat uit een lichte en een donkere zijde, gescheiden door een valluik.
Tijdens de trainingssessie worden de ratten in het verlichte gebied geplaatst en krijgen ze een korte tijd om aan de omgeving te wennen. Zodra de deur opengaat, kunnen de ratten naar eigen belieft het donkere gebied betreden. Wanneer ze het donkere gebied betreden, wordt de deur gesloten en krijgen de ratten gedurende twee seconden een milde elektrische schok.
Nadat de ratten na voltooiing van de proef 30 minuten terug in hun kooien zijn geplaatst, worden ze opnieuw in het verlichte gebied van het apparaat geplaatst. Dertig minuten na de schok vertoonden de getrainde ratten consequent een langere latentietijd voordat ze het donkere gebied betraden. Hier kunnen we de resultaten van de inhibitie-vermijdingstest zien.
Na de elektrische schok leerden de ratten het donkere gebied te vermijden en aan de verlichte zijde te blijven, die ze normaal gesproken niet zouden prefereren. Deze neiging om de donkere zijde te vermijden wijst op de acquisitie van contextuele herinneringen. Hersenplakjes na training.
Vóór de incisie koelen we alle scharen, hemostaten en bekerglazen af met geplette ijs. Hier ziet u onze voorbereiding voor de dissectie. De dissectie van de hersenen moet zo snel mogelijk worden uitgevoerd.
Nadat de rat diep is genarceerd, wordt deze in een ondiepe schaal met crushed ice geplaatst en wordt er een incisie gemaakt om de buikholte te openen. Na de incisie van het diafragma wordt er een verdere laterale incisie gemaakt. Om de borstholte te openen, moet het costale kraakbeen met een hemostat worden dichtgekneld.
Na het blootleggen van het hart wordt een roestvrijstalen naald van 18 gauge in het posterieure deel van de linker ventrikel ingebracht. De punt van de naald moet zichtbaar zijn door de wand van de aorta. Na het doorknippen van het rechter aurikel wordt de perfusie gestart.
Zorg ervoor dat zowel de naald als de spuit eerst zijn gevuld met met gas verzadigde, ijskoude dissectiebuffer. Eventuele luchtbellen moeten vóór de perfusie worden verwijderd. Maak eerst een incisie aan de achterzijde van de schedel.
Maak vervolgens een laterale incisie, gevolgd door een centrale incisie om de hersenen bloot te leggen. Na dissectie moeten de hersenen gedurende vijf minuten in bubbelend ijskoud buffer worden geplaatst. Voordat er verder wordt gegaan met de dissectie, moet het filterpapier worden bevochtigd met ijskoud buffer.
Vervolgens wordt het brein op een ijskoude roestvrijstalen plaat geplaatst. De hoek van de snijplaat is cruciaal om een correcte snijhoek voor de breinplak te garanderen. Een onjuiste hoek zou potentieel de doelwit-piramidale neuronen kunnen doorsnijden.
Na het trimmen moet één druppel secondelijm op de tafel van de vibratoom worden geplaatst. Om een goede hechting te garanderen, dient overtollige dissectiebuffer te worden verwijderd met een stukje filterpapier. Met behulp van de vibratoom kunnen dunne hersencoupures worden gemaakt, terwijl deze worden in stand gehouden in een bruisende, ijskoude buffer.
Ons doelgebied is de primaire motorische cortex. Het doelgebied in de hersenen kan worden weggesneden met iris-scharen. De interfacekamer kan worden gemaakt met een plastic vershoudbakje.
Het deksel van de interfacekamer is noodzakelijk om het gas binnen te houden. Slices worden waargenomen met een infrarood-DIC-microscoop. Hier zien we een voorbeeld van laag 2/3-neuronen in de primaire motorische cortex.
Patch-registratiepipetten worden gevuld met de geschikte intracellulaire oplossing. De oplossing voor de stroomklemmetanalyse verschilt van die voor de spanningsklemmetanalyse. Representatieve resultaten.
De current-clamp techniek is nuttig voor het analyseren van intrinsieke celeigenschappen. Na training met de Rotor rod waren we in staat om current-clamp data te verkrijgen van neuronen in laag 2/3 van de primaire motorische cortex. Paneel A toont typische traces die door stroominjecties zijn geïnduceerd.
Paneel B geeft de relatie weer tussen de geïnjecteerde stroom en het aantal spikes. Ratten die één dag getraind waren, induceerden minder spikes, terwijl ratten die twee dagen getraind waren, veel meer spikes induceerden dan ongetrainde ratten. Zoals te zien is in de onderste panelen, vertoonden één dag getrainde ratten een lager rustpotentiaal, een hogere spike-drempelwaarde en een diepere afterhyperpolarisatie.
Ratten die twee dagen waren getraind, vertoonden een hoger rustpotentiaal en een hogere membraanweerstand. De voltage-clamptechniek is nuttig voor het analyseren van door leren geïnduceerde synaptische plasticiteit. Hier zien we gegevens van CA1-neuronen na contextuele training.
We hebben miniatuur postsynaptische stromen verkregen uit CA1-neuronen, geïnduceerd door enkele blaasjes van glutamaat of GABA. Panelen A en B tonen representatieve sporen van miniatuur postsynaptische stromen. In aanwezigheid van tetrodotoxine werden miniatuur EPSC's bij -16 millivolt en miniatuur IPSC's bij 0 millivolt sequentieel gemeten in dezelfde neuronen.
Paneel C toont tweedimensionale plots van de amplitudes van miniature EPSC en miniature IPSC bij ongetrainde, getrainde, ongepaarde en walk-through ratten. Paneel D toont de plots voor de miniature frequenties. Zoals te zien is in de onderste panelen, hebben contextuele trainingen zowel de exciterende als de inhiberende synapsen significant versterkt, wat de diversiteit van synaptische input naar de neuronen bevordert.
Samenvattend is de current-clamp techniek nuttig voor het analyseren van door leren geïnduceerde veranderingen in celkenmerken. Daarnaast is de voltage-clamp techniek een krachtig instrument voor het analyseren van door leren geïnduceerde plasticiteit bij excitatoire en inhibitoire synapsen. De gedetailleerde resultaten van deze analyses kunnen worden gevonden in de volgende publicaties.
Dit artikel demonstreert de slice patch clamp-techniek voor het analyseren van door leren geïnduceerde veranderingen in synaptische eigenschappen en plasticiteit. De studie richt zich op motorische cognitie en contextueel leren bij getrainde ratten.
De slice patch clamp-techniek maakt directe meting mogelijk van leer-geïnduceerde veranderingen in neuronale exciteerbaarheid en synaptische sterkte, wat mechanistische inzichten biedt in de adaptatie van neurale circuits. Deze benadering ondersteunt target-validatie bij het ontdekken van neurologische geneesmiddelen door gedragstypische fenotypes te koppelen aan cellulaire en synaptische fenotypes. Het verhoogt het voorspellend vertrouwen in de vroege ontdekkingsfase door hypothesen over de effecten van verbindingen op plasticiteitsgerelateerde pathways te reduceren in risico.
De techniek is geïntegreerd in het continuüm van ontdekkingen, van hypothesetoetsing tot lead-identificatie, in het bijzonder voor targets die de neuronale exciteerbaarheid of synaptische transmissie moduleren.