Name: Toepassing van geautomatiseerde beeldgeleide patchclamp voor de studie van neuronen in hersenschijven (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-07-31T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 5 s
Description: Leer geautomatiseerde beeldgeleide patchclamp voor elektrofysiologisch onderzoek in acute hersenschijven. Deze methode verhoogt de experimentele doorvoer en ondersteunt farmacologische screenings.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Wij zijn dankbaar voor de financiële steun van de Whitehall Foundation. We willen Samuel T. Kissinger bedanken voor de waardevolle opmerkingen.

1. Systeeminstelling <ol><li> Constructeer de drukregelaar. <ol><li> Monteer de drukregelaar volgens de schakelkaart ( Figuur 1 ). Soldeert de benodigde onderdelen op de printplaat (PCB) die is vervaardigd volgens de elektrische schema&#39;s ( Figuur 1b ). Gebruik standaard weerstanden, LED&#39;s, Metaal-Oxide Semiconductor Field-Eeffect Transistors (MOSFET&#39;s), condensatoren en connectoren (zie de Tabel van Materialen ). Soldeerseloïde kleppen op de printplaat. Sluit de luchtpomp en de luchtdruksensor aan op de printplaat met elektrische draad. OPMERKING: Het duurt ongeveer 2 uur om de drukregelaar te construeren met alle benodigde onderdelen die beschikbaar zijn. </li></ol></li><li> Sluit de raad van de secundaire gegevensverzameling (DAQ) aan. <ol><li> Sluit de uitgangen van de printplaat aan op de DAQ-kaart, volgens tabel 1 . OPMERKING: De DAQ board wilIk loop in de modus Single-ended. De havenkaart is te vinden in de gebruikershandleiding (zie de Tabel van Materialen ). </li><li> Sluit &quot;AIn Pr S&quot; aan op een van de analoge ingangen (AI) kanalen en &quot;R-Gr&quot; op een van de analoge gronden op het secundaire DAQ board. </li><li> Sluit de primaire uitgang van de versterker aan op een van de AI-kanalen en de grond op de analoge grond van de secundaire DAQ-kaart. OPMERKING: een standaard BNC-kabel kan worden gebruikt om de primaire uitgang van de versterker te verbinden. </li><li> Strip het andere uiteinde en verbind het positieve signaal ( dwz koperkern) aan het AI-kanaal en de grond ( dwz de dunne draad om de kern) op de analoge grond. Herhaal deze stap voor een tweede kanaal als er meerdere patchkanalen worden gebruikt. OPMERKING: De analoge ingang van de DAQ-kaart wordt in latere stappen geconfigureerd. </li><li> Sluit de stroom aan op de stroomuitgang van de secundaire DAQ-kaart. Gebruik hiervoor een aparte 12 V stroomUrce voor de pomp. </li></ol></li><li> Sluit de slang aan. <ol><li> Sluit de luchtpomp en de twee kleppen aan volgens tabel 2 . Gebruik een 3-polige stekker om de zachte buis te verbinden met de bovenste poort van de klep 2, de druksensor en de pipethouder in de laatste stap. </li><li> Voeg een andere 3-polige connector toe aan de buis die op de pipethouder is aangesloten, als er twee pipetten worden gebruikt. Schakel handmatig tussen de kleppen en de pipetten in gebruik bij het plakken. </li></ol></li><li> Installeer Autopatcher IG. OPMERKING: Systeemvereiste: Autopatcher IG werd alleen getest op een pc met Windows 7. Het is niet gevalideerd voor andere besturingssystemen. De beschreven procedure is specifiek van toepassing op de hardware die vermeld staat in de Tabel. <ol><li> Download Autopatcher-IG van GitHub (https://github.com/chubykin/AutoPatcher_IG). </li><li> Installeer Python (zie de Tabel van Materialen voor de versie en downloadadres). </li><li> Verwijder de PyQt4Bibliotheek door te typen &quot;pip verwijderen PyQt4&quot; in een command line terminal. OPMERKING: Het systeem maakt gebruik van een oudere versie van de PyQt4-bibliotheek om compatibiliteit met de Qwt- en Opencv-bibliotheken te bereiken. </li><li> Installeer Python bibliotheken uit historische wielbestanden (http://www.lfd.uci.edu/~gohlke/pythonlibs/). Zoek de volgende bestanden: Numpy (pymc-2.3.6-cp27-cp27m-win32.whl), Opencv (opencv_python-2.4.13.2-cp27-cp27m-win32.whl), Pyqt (PyQt4-4.11.4-cp27-geen -win32.whl) en Qwt (PyQwt-5.2.1-cp27-none-win32.whl). <ol><li> Om de wielbestanden te installeren, ga naar de map waar de bestanden opgeslagen zijn en typ &quot;pip install *** wheelfilename ***. Whl.&quot; Vervangend &quot;*** wheelfilename ***&quot; met de werkelijke naam van het bestand. OPMERKING: &quot;cp27&quot; in de wielbestandnaam geeft aan Python 2.7 en &quot;win32&quot; geeft Windows 32-bits aan. Als &quot;win32&quot; niet werkt, probeer dan &quot;win64.&quot; </li></ol></li><li> Om de CCD-camera te bedienen, download en installeer het installatieprogrammaVoor 64-bits (https://www.qimaging.com/support/software/). Download dan MicroManager voor 64-bits (https://micro-manager.org/wiki/Download_Micro-Manager_Latest_Release) om de camera in Python te controleren. </li><li> Om de manipulatoren en het microscoopfase te controleren, installeer de besturingssoftware die door de fabrikant wordt geleverd. OPMERKING: hiermee wordt de bestuurder die nodig is om de manipulatoren te controleren, ook geïnstalleerd. Het installatiepakket wordt meestal op een cd-rom geleverd. </li><li> Om de secundaire DAQ-kaart te bedienen, installeer u de universele bibliotheek van cd-rom, voorzien van de aankoop van de DAQ-kaart. </li></ol></li><li> Configureer de hardware voor Autopatcher IG. <ol><li> Sluit de microscoopfase en de manipulatorregelaars aan op de computer via USB-poorten. </li><li> COM-poortnummers toewijzen aan eenheid 0: microscoopfase, eenheid 1: linker manipulator en eenheid 2: rechter manipulator, in deze volgorde, in het configuratiebestand &quot;ports.csv&quot; in de map &quot;configuratie&quot;. LEave de andere parameters in het ports.csv bestand ( dwz &quot;SCI&quot; ​​en &quot;1&quot;) ongewijzigd. OPMERKING: De COM-poortnummerinformatie kan worden gevonden door de door de fabrikant geleverde software voor de configuratie van de manipulator te gebruiken. Ga naar het tabblad &#39;Instellingen&#39;, selecteer &#39;Instellingen&#39; en de &#39;Beweging&#39; pagina en lees de labels voor elke tabblad bovenaan. Als alternatief kan deze informatie worden gevonden in de PC Device Manager. </li><li> Analoge ingangskanaalnummers op de DAQ-kaart toewijzen voor een druksensor en patchkanalen 1 en 2 (overeenkomend met eenheid 1 en 2). Voer het kanaalnummer in in het bestand &quot;DAQchannels.csv&quot; in de map &quot;configuratie&quot;. OPMERKING: Het is aan te raden om de .csv-bestanden te openen met de notitiebloktoepassing in plaats van een spreadsheet, omdat het de informatie kan wijzigen bij het opslaan van wijzigingen. </li></ol></li><li> Run Autopatcher IG. <ol><li> Zet de versterker, de microscoopcontroller en de controller aan. ensuLet erop dat de versterkersoftware loopt. </li><li> Voer Autopatcher IG met Python uit een command line-terminal als volgt uit: eerst de directory wijzigen (commando &quot;cd&quot; voor de meeste gebruikelijke terminals) waar Autopatcher IG is geïnstalleerd, typ &quot;python Autopatcher_IG.pyw&quot; in de command line terminal en druk op de &quot;Enter toets. OPMERKING: Rij niet de software voor het bedienen van de manipulator voordat u Autopatcher IG uitvoert omdat het de microscoopfase en de manipulator zal bezetten, waardoor Autopatcher IG de hardware niet kan vinden. Manipulator controle software kan worden uitgevoerd nadat Autopatcher IG volledig is gestart als er extra modules zijn die moeten worden bestuurd ( bijvoorbeeld de inline-verwarming). </li></ol></li><li> Kalibreer de primaire pipet. <ol><li> Trek patchpipetten zoals eerder beschreven 9 . Vul een getrokken glaspipet met interne oplossing en laad het op de hoofdtrap. OPMERKING: Leeg glazen pipetten hebben verschillende contrasten onderDe microscoop en kan leiden tot onnauwkeurige kalibratie. </li><li> Verplaats de pipettip naar het visuele veld van de microscoop en breng hem in focus. Als de draaiknop wordt gebruikt om de manipulatoren en / of de microscoopfase te verplaatsen, moet u de coördinaten updaten door op &quot;z&quot; op het toetsenbord te drukken. OPMERKING: Deze actie is niet nodig als het toetsenbord (microscoopfase: A / D - x-as, W / S - y-as, R / F - z-as; manipulatoren: H / K - x-as, J - y-as, O / L - z-as, 1/2 - eenheidsnummer) wordt gebruikt om beweging te regelen omdat de coördinaten in real time worden geüpdatet. </li><li> Klik op de knop &#39;Start kalibreren&#39; op de hoofd Grafische gebruikersinterface (GUI) voor het corresponderende apparaat waarop de pipet is geladen ( Figuur 2 ). OPMERKING: een pop-upvenster verschijnt wanneer de kalibratie is voltooid. OPMERKING: De kalibratie wordt automatisch uitgevoerd, wat ongeveer 3,5 minuten duurt. Door op dezelfde knop te klikken (nu geschakeld naar &quot;kalibrering annuleren&quot; afTer instelling van de kalibratie) zal de kalibratiepoging afbreken. </li><li> Bewaar de kalibratie door op &quot;Onderhoud kalibratie&quot; onderaan de hoofd GUI te slaan (het bewaart de huidige kalibratie voor beide manipulatoren en kan in de toekomst worden geladen). OPMERKING: Het zichtveld bij lage (4 of 10X) en hoge (40x) vergroting moet uitgelijnd zijn voor secundaire kalibratie om goed te functioneren. Raadpleeg de gebruiksaanwijzing van het optische systeem dat in gebruik is voor de uitlijningsprocedures. </li></ol></li></ol> 2. Automatische Patch Clamp Procedure <ol><li> Bereid acute hersenplakken, zoals eerder beschreven 10 . </li><li> Bereid de glazen pipetten voor de patch klem. </li><li> Plaats een breinschijf in het midden van de opname kamer. Stabiliseer het snijstuk met een plakknop, of &#39;harp&#39;. </li><li> Ontdek de fluorescerende cel. <ol><li> Vind het gebied van belang onder de 4X lens. Verplaats de microscoopfase door cli aan te zettenCk-to-move (&quot;CTM&quot;) modus en klik op het midden van het gewenste gebied. Als alternatief gebruik u het toetsenbord om de microscoopstadium te verplaatsen (A / D - x-as, W / S - y-as, R / F - z-as). </li><li> Overschakelen naar de hoge vergrotingslens en pas de focus aan door de microscoop in de z-as te verplaatsen, met behulp van R / F op het toetsenbord. OPMERKING: Het is aan te raden het waterbadniveau aan te passen, zodat het brandpuntvlak onder de lage en hoge vergrotingslensjes hetzelfde of vergelijkbaar is in de z-as. </li><li> Klik op de knop &#39;Detect Cell&#39; in de hoofd GUI kolom, &#39;Unit 0.&#39; Als de LED of laserlichtbron van de instelling niet door het TTL-signaal kan worden bediend, schakelt u de LED / laser handmatig in; Een pop-upvenster verschijnt wanneer de cel detectie is voltooid. <ol><li> Zet de LED / laser uit indien nodig; Een lijst met celcoördinaten verschijnt in de GUI van de &quot;Geheugenposities&quot;. Verwijder ongewenste cellen uit de lijst door op de knop &quot;X&quot; naast de coördinaten te klikken. </li><li>Als alternatief, als targetcellen niet fluorescent gelabeld zijn, klikt u op &quot;Muismodus&quot; in de hoofd GUI. Klik op de cel van belang; Een gele stip met een nummer verschijnt op de cel, en de coördinaten van de cel verschijnen in de GUI van de &quot;Geheugenposities&quot;. </li></ol></li></ol></li><li> Kalibreer het secundaire pipet. <ol><li> Vul 1/3 van een glazen pipet met interne oplossing. Laad de pipet op de pipethouder die op de hoofdtrap is bevestigd. </li><li> Gebruik de lage vergrotingslens. Breng de pipet in het zichtveld en pas de focus aan met behulp van het toetsenbord (H / K - x-as, U / J - y-as, O / L - z-as). Gebruik &quot;1&quot; en &quot;2&quot; om te schakelen tussen eenheid 1 en eenheid 2. </li><li> Laad de primaire kalibratie door op &quot;Kalibratie laden&quot; te klikken. Klik op de knop &quot;Secundaire kalibratie&quot; op de hoofd GUI onder het apparaat dat in gebruik is. Als bijvoorbeeld eenheid 2 in gebruik is, klikt u op de knop &quot;Secondary calibration&quot; in de &quot;Unit 2&quot; column. Volg de instructies van het pop-upvenster om over te schakelen naar de hoge vergrotingslens. </li></ol></li><li> Patch een doelcel. <ol><li> Zorg ervoor dat de software &quot;MultiClamp&quot; ( ie versterker) wordt uitgevoerd. Klik op de knop &quot;Patch control&quot; om de &quot;Patch control&quot; GUI te openen; Het kan tot een paar minuten duren om deze GUI te openen. </li><li> Gebruik de 40X vergrotingslens door &quot;40X&quot; in de hoofd GUI &quot;Unit 0&quot; kolom te selecteren. Klik op de knop &quot;Ga naar&quot; naast de cel van belang in de coördinatielijst in de GUI van de &quot;Geheugenpositie&quot; De microscoop zal naar de cel gaan. </li><li> Klik op de CTM-knop van het apparaat dat in gebruik is in de hoofd GUI om de beweging na een muisklik te activeren. Klik op de cel van belang; De pipet tip zal verhuizen naar de cel. </li><li> Klik op de &quot;Patch&quot; knop op de &quot;Patch control&quot; GUI. OPMERKING: Automatisch patchen begint en de druk en weerstand kunnen worden gecontroleerdDe &quot;Patch control&quot; GUI. <ol><li> Gebruik de &quot;Unit 1 selected&quot; knop om het ingangssignaal tussen de twee units te schakelen. OPMERKING: Het systeem zal de doelcellen naderen, negatieve druk toepassen, het celmembraanpotentieel aanpassen en gigaseformatie detecteren op basis van een reeks druk- en weerstandsdrempels en logica. </li><li> Manipuleer het automatische proces op elk gewenst moment door op de respectieve knoppen op de GUI te klikken. Klik bijvoorbeeld opnieuw op de knop &quot;Patch&quot; om het patchproces te annuleren en klik op &quot;Next stage&quot; om het patchproces naar de volgende stap te bevorderen, ongeacht de drempelwaarde. OPMERKING: een pop-up venster zal de gebruiker op de hoogte stellen wanneer een gigaseal is gevormd, en de optie om zap samen te werken met grote negatieve druk wordt gepresenteerd. </li></ol></li><li> Selecteer &quot;Ja&quot; om in te gaan met gecombineerde zap en zuigkracht. Als alternatief selecteert u &quot;Nee&quot; om alleen in te zuigen. <br/&gt; OPMERKING: Wanneer een succesvolle full-cell patch is voltooid, zal een pop-upvenster de gebruiker herinneren om het experiment patch logboek op te slaan. </li><li> Sla het experimentlogboek op. OPMERKING: Als een patchproef mislukt is, zal een pop-upvenster de gebruiker in kennis stellen en wordt het patchproces opnieuw ingesteld. </li><li> Ga terug naar stap 2.4 en herhaal de stappen met een andere cel. </li></ol></li><li> Verfijn de laaddrempels (optioneel). OPMERKING: Drempelwaarden voor het initiële pipetresistentiebereik, positieve en negatieve druk, gigase-resistentie, enz . Kan gewijzigd worden vanuit een configuratiebestand. <ol><li> Open het bestand &quot;PatchControlConfiguration.csv&quot; in de map &quot;Configuration&quot; op de plaats waar het systeem is geïnstalleerd. Verander de nummers die overeenkomen met elke drempelwaarde. Verander de namen van de waarden niet; Dit zal resulteren in onherkenbare invoer in het systeem. </li><li> Installeer de nieuwe drempelwaarden onmiddellijk door te drukken op &quot;CtRl + l &quot;zonder het programma opnieuw te starten; het programma wordt herstart door de nieuwste drempelwaarde uit het bestand te implementeren. </li></ol></li></ol> 3. Opnamen uitvoeren OPMERKING: De modus in de computer gestuurde micro-elektrode versterker wordt automatisch ingesteld op Current Clamp (&quot;IC&quot;) door de autopatcher software zodra een succesvolle patch is bereikt. Opnameprogramma&#39;s voor hele cellen kunnen worden uitgevoerd met behulp van de gewenste opnameprogramma (dit systeem bevat geen opnamefunctie). Als er meerdere targetcellen zijn geïdentificeerd, ga je na een opname terug naar stap 2.4 en probeer een andere cel. <ol><li> Voer automatische lokale drugtoepassingsexperimenten uit met behulp van een picospritzer (optioneel). OPMERKING: hier wordt een lokaal drug applicatie experiment gebruikt als voorbeeld om te beschrijven hoe u de extra &quot;Command Sequence&quot; functie kunt gebruiken om externe hardware te controleren via TTL signalen. <ol><li> Verbind poort A chaNnel 0 en de grond op de secundaire DAQ board naar de start trigger ingang op de digitizer met behulp van een gestripte BNC kabel (zoals beschreven in stap 1.2.3). Sluit een digitale uitgangskanaal op de digitizer aan op de externe trigger op de picospritzer. </li><li> Bereid de picospritzer volgens de gebruikershandleiding op. Sluit de picospritzer-luchttoevoer aan op de pijphouder die aan een micromanipulator is bevestigd. </li><li> Laad een pipet vol met een geneesmiddel van keuze. Bevestig het aan de pipethouder. Kalibreer de pipet, zoals beschreven in stap 1.7. </li><li> Nadat u een cel heeft gelegd zoals beschreven in stap 2.6, selecteert u een gewenste locatie voor de levering van geneesmiddelen door met de muis te klikken in de GUI van de cameraweergave onder &quot;muismodus&quot; (geschakeld vanaf de hoofd GUI). Als alternatief gebruik je de GUID &#39;Grid&#39; om een ​​raster te ontwerpen, met elke pixel in het raster als één van de doellocaties. OPMERKING: Het raster kan gemanipuleerd worden in de GUI van de cameraweergave door met de muis te slepen. </li><li> In de &quot;Command SequEnce &quot;GUI, selecteer de manipulatie-eenheid waarop de drugpipet is gemonteerd. Klik op&quot; Muispunten laden &quot;of&quot; Laadpunten laden &quot;om alle coördinaten voor de levering van geneesmiddelen te importeren. <ol><li> Klik op elke coördinatenpost om het specifieke TTL-signaal van de opdracht in de rechterkolom te bewerken. Klik in het eerste commando-ingang op het rechterste cijfer om het van &quot;0&quot; naar &quot;1&quot; te zetten, om een ​​+ 5-V TTL-signaal te verzenden. Stel de tijd (T) in op de gewenste TTL-signaalduur, in ms. </li><li> Stel in de tweede opdrachtinvoer alle cijfers in op &quot;0&quot; en stel T in op de duur van de opnamelengte van de proef. Beheer opdrachten voor alle coördinaten. Voeg commando-vermeldingen toe door op &quot;+&quot; te klikken als meerdere TTL-signalen nodig zijn. OPMERKING: De 8-cijferige bits vertegenwoordigen poort A-kanalen 0-7 op de secundaire DAQ (poorten 1 - 3 worden bezet door de pomp en twee afsluiters) kunnen eventueel worden geschakeld. </li></ol></li><li> Maak een opname protocol in de data acquisition module dusDat het begin van een sweep wordt geactiveerd door de externe start-trigger. Bewerk het protocol om het geneesmiddel op de gewenste tijd te leveren. </li><li> Klik in de GUI van de opdrachtregel op &quot;Run&quot; aan de linkerkant om alle coördinaten uit te voeren. Als alternatief klikt u op &quot;Uitvoeren&quot; rechts om alleen de geselecteerde volgorde te draaien. OPMERKING: De pipet zal naar elke coördinaat verplaatsen en het TTL-signaal uitvoeren zoals gedefinieerd om de opname-sweep te starten. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Sakmann, B., Neher, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patch+clamp+techniques+for+studying+ionic+channels+in+excitable+membranes%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Physiol%22%5BJournal%5D)">Patch clamp techniques for studying ionic channels in excitable membranes.</a> Annu Rev Physiol. 46, 455-472 (1984).</li>
<li>Collins, M. D., Gordon, S. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Giant+liposome+preparation+for+imaging+and+patch-clamp+electrophysiology%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Giant liposome preparation for imaging and patch-clamp electrophysiology.</a> J Vis Exp. (76), (2013).</li>
<li>Kodandaramaiah, S. B., Franzesi, G. T., Chow, B. Y., Boyden, E. S., Forest, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Automated+whole-cell+patch-clamp+electrophysiology+of+neurons+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Automated whole-cell patch-clamp electrophysiology of neurons in vivo.</a> Nat Methods. 9 (6), 585-587 (2012).</li>
<li>Desai, N. S., Siegel, J. J., Taylor, W., Chitwood, R. A., Johnston, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MATLAB-based+automated+patch-clamp+system+for+awake+behaving+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">MATLAB-based automated patch-clamp system for awake behaving mice.</a> J Neurophysiol. 114 (2), 1331-1345 (2015).</li>
<li>Kodandaramaiah, S. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assembly+and+operation+of+the+autopatcher+for+automated+intracellular+neural+recording+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protocols%22%5BJournal%5D)">Assembly and operation of the autopatcher for automated intracellular neural recording in vivo.</a> Nat Protocols. 11 (4), 634-654 (2016).</li>
<li>Wu, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Integration+of+autopatching+with+automated+pipette+and+cell+detection+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Integration of autopatching with automated pipette and cell detection in vitro.</a> J Neurophysiol. 116 (4), 1564-1578 (2016).</li>
<li>Perin, R., Markram, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+computer-assisted+multi-electrode+patch-clamp+system%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">A computer-assisted multi-electrode patch-clamp system.</a> J Vis Exp. (80), e50630(2013).</li>
<li>Fertig, N., Blick, R. H., Behrends, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Whole+cell+patch+clamp+recording+performed+on+a+planar+glass+chip%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys+J%22%5BJournal%5D)">Whole cell patch clamp recording performed on a planar glass chip.</a> Biophys J. 82 (6), 3056-3062 (2002).</li>
<li>Brown, A. L., Johnson, B. E., Goodman, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Making+patch-pipettes+and+sharp+electrodes+with+a+programmable+puller%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Making patch-pipettes and sharp electrodes with a programmable puller.</a> J Vis Exp. (20), (2008).</li>
<li>Segev, A., Garcia-Oscos, F., Kourrich, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Whole-cell+Patch-clamp+Recordings+in+Brain+Slices%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Whole-cell Patch-clamp Recordings in Brain Slices.</a> J Vis Exp. (112), (2016).</li>
<li>Campagnola, L., Kratz, M. B., Manis, P. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ACQ4%3A+an+open-source+software+platform+for+data+acquisition+and+analysis+in+neurophysiology+research%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Neuroinform%22%5BJournal%5D)">ACQ4: an open-source software platform for data acquisition and analysis in neurophysiology research.</a> Front Neuroinform. 8 (3), (2014).</li>
<li>Kolb, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cleaning+patch-clamp+pipettes+for+immediate+reuse%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Cleaning patch-clamp pipettes for immediate reuse.</a> Sci Rep. 6, (2016).</li>
</ol>

Een niet-voorlopige octrooiaanvraag &quot;SYSTEMEN EN METHODEN VOOR AUTOMATISCHE BEELD-GELEIDE PATCH-CLAMP ELECTROPHYSIOLOGY IN VITRO&quot;, US-serienummer: 15 / 353.719, werd ingediend op 16 november 2016, Ref. Nr .: PRF 67270-02.

Hier beschrijven we een methode voor automatische beeldgeleide patchclamp opnames in vitro . De belangrijkste stappen in dit proces worden als volgt samengevat. Ten eerste wordt computervisie gebruikt om de pipettip automatisch te herkennen met behulp van een reeks beelden die via een microscoop zijn verkregen. Deze informatie wordt dan gebruikt om de coördinaat transformatie functie te berekenen tussen de microscoop en de manipulator coördinatensystemen. Computervisie wordt gebruikt om fluorescent gelabelde ce...

De patch clamp techniek werd in de jaren 1970 ontwikkeld door Neher en Sakmann om de ionische kanalen van excitabele membranen 1 te bestuderen. Sindsdien is patchclamping toegepast op de studie van veel verschillende onderwerpen op het cellulaire, synaptische en circuitniveau - zowel in vitro als in vivo - in veel verschillende celsoorten, waaronder neuronen, cardiomyocyten, Xenopus-oocyten en kunstmatige liposomen 2 . Dit proces omvat de juiste identificatie en targeting van een cel van belang, ingewikkelde micromanipulatorbesturing om de patchpipet in de nabijheid van de cel te bewegen, de toepassing van positieve en negatieve druk op het pipet op het juiste moment om een ​​strakke gigasepatch te vestigen, En een inbraak om een ​​configuratie van een hele celcartridge te maken. Patch klemmen worden doorgaans handmatig uitgevoerd en vereist uitgebreide training om te beheersen. Zelfs voor een onderzoeker die ervaring heeft met de patchKlem, de succesfrequentie is relatief laag. Meer recent zijn er meerdere pogingen gedaan om patch-clamp experimenten te automatiseren. Twee hoofdstrategieën zijn ontwikkeld om automatisering te verwezenlijken: standaard patch klem apparatuur verlenen om automatische controle van het patchproces en het ontwerp van nieuwe apparatuur en technieken vanaf de grond te bieden. De voormalige strategie is aan te passen aan bestaande hardware en kan worden gebruikt in een verscheidenheid aan patchclamp toepassingen, waaronder in vivo blind patch klem 3 , 4 , 5 , in vitro patch klem van acute hersenplakken, organotypische snij culturen en gekweekte gedissocieerde neuronen 6 . Het stelt de interrogatie van complexe lokale circuits mogelijk tegelijkertijd in gebruik door meerdere micromanipulatoren 7 . De platte patchmethode is een voorbeeld van de nieuwe ontwikkelingsstrategie, die de gelijktijdige p-high-throughput kan bereikenAtch klem van cellen in suspensie voor geneesmiddel screening doeleinden 8 . De platte patchmethode is echter niet van toepassing op alle celtypes, met name neuronen met lange processen of intacte schakelingen die uitgebreide verbindingen bevatten. Dit beperkt de toepassing ervan om de ingewikkelde schakelingen van het zenuwstelsel in kaart te brengen, wat een belangrijk voordeel is van de traditionele patchclamp-technologie. We hebben een systeem ontwikkeld dat het handmatig patch clamp proces in vitro automatiseert door de standaard patch clamp hardware te versterken. Ons systeem, Autopatcher IG, biedt automatische pipette-kalibratie, identificatie van de fluorescerende cel, automatische controle van pipettebeweging, automatische full-cell patching en data logging. Het systeem kan automatisch meerdere beelden van breinschijfjes op verschillende diepten verwerven; Analyseren ze met behulp van computer visie; En extract informatie, inclusief de coördinaten van fluorescent gelabelde cellen. Deze informatie kan dan zijnGebruikt om de cellen van belang te richten en automatisch te patcheren. De software is geschreven in Python, een gratis open source-programmeertaal, met behulp van verschillende open-source bibliotheken. Dit zorgt voor toegankelijkheid voor andere onderzoekers en verbetert de reproduceerbaarheid en nauwkeurigheid van elektrofysiologische experimenten. Het systeem heeft een modulair ontwerp, zodat extra hardware gemakkelijk kan worden aangesloten op het huidige systeem dat hier wordt aangetoond.

<table><tbody><tr><td>CCD Camera</td><td>QImaging</td><td>Rolera Bolt</td><td></td></tr><tr><td>Electrophysiology rig</td><td>Scientifica</td><td>SliceScope Pro 2000</td><td>Inclusief microscoop en manipulatoren. De door de fabrikant geleverde manipulatorbesturingssoftware die in dit manuscript wordt gedemonstreerd, is &ldquo;Linlab2&rdquo;.</td></tr><tr><td>Amplifier</td><td>Molecular Devices</td><td>MultiClamp 700B</td><td>computergestuurde micro-elektrode versterker</td></tr><tr><td>Digitizer</td><td>Molecular Devices</td><td>Axon Digidata 1550</td><td></td></tr><tr><td>LED-lichtbron</td><td>Cool LED</td><td>pE-100</td><td>488 nm golflengte</td></tr><tr><td>Data-acquisitiekaart</td><td>Measurement Computing</td><td>USB1208-FS</td><td>Secundaire DAQ. Zie handleiding op: http://www.mccdaq.com/pdfs/manuals/USB-1208FS.pdf</td></tr><tr><td>Solenoïdekleppen</td><td>The Lee Co.</td><td>LHDA0531115H</td><td></td></tr><tr><td>Luchtpomp</td><td>Virtual industry</td><td>VMP1625MX-12-90-CH</td><td></td></tr><tr><td>Luchtdruksensor</td><td>Freescale semiconductor</td><td>MPXV7025G</td><td></td></tr><tr><td>Slice-beugel</td><td>Warner instruments</td><td>64-1415 (SHD-40/2)</td><td>Slice Anchor Kit, Flat voor RC-40 Chamber, 2,0 mm, 19,7 mm</td></tr><tr><td>Python</td><td>Anaconda</td><td>versie 2.7 (32-bit voor Windows)</td><td>https://www.continuum.io/downloads</td></tr><tr><td>Schroefterminals</td><td>Sparkfun</td><td>PRT - 08084</td><td>Schroefterminals 3,5 mm Pitch (2-Pin)</td></tr><tr><td>(2-Pin)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>N-kanaals MOSFET 60 V 30 A</td><td>Sparkfun</td><td>COM - 10213</td><td></td></tr><tr><td>DIP-sockets met soldeerstaart - 8-pins</td><td>Sparkfun</td><td>PRT-07937</td><td></td></tr><tr><td>LED - Basic Red 5 mm</td><td>Sparkfun</td><td>COM-09590</td><td></td></tr><tr><td>LED - Basic Green 5mm</td><td>Sparkfun</td><td>COM-09592</td><td></td></tr><tr><td>DC-vatconnector/schakelbare voeding (SMD)</td><td>Sparkfun</td><td>PRT-12748</td><td></td></tr><tr><td>Wandadapter voeding - 12 V DC 600 mA</td><td>Sparkfun</td><td>TOL-09442</td><td></td></tr><tr><td>Verbindingsdraad - Assortiment (solid core, 22 AWG)</td><td>Sparkfun</td><td>PRT-11367</td><td></td></tr><tr><td>Vergrendelbare mannelijke x vrouwelijke x vrouwelijke stopcock</td><td>ARK-PLAS</td><td>RCX10-GP0</td><td></td></tr><tr><td>Fisherbrand Tygon S3 E-3603 flexibele slang</td><td>Fisher scientific</td><td>14-171-129</td><td>Buitendiameter: 1/8 inch Binnendiameter: 1/16 inch</td></tr><tr><td>BNC-mannetje naar BNC-mannetje coax-kabel</td><td>Belkin Components</td><td>F3K101-06-E</td><td></td></tr><tr><td>560 Ohm weerstand (5% tolerantie)</td><td>Radioshack</td><td>2711116</td><td></td></tr><tr><td>Picospritzer</td><td>General Valve</td><td>Picospritzer II</td><td></td></tr></tbody></table>

toepassing van geautomatiseerde beeldgeleide patchclamp voor de studie van neuronen in hersenschijven

Application of Automated Image-guided Patch Clamp for the Study of Neurons in Brain Slices

Hele-cel patch klem is de gouden standaard methode om de elektrische eigenschappen van enkele cellen te meten. De in vitro patchclamp blijft echter een uitdagende en low-throughtechniek vanwege de complexiteit en hoge afhankelijkheid van gebruikersoperatie en -controle. Dit manuscript demonstreert een beeldgeleid automatische patchclamp systeem voor in vitro full-cell patch clamp experimenten in acute hersenplakken. Ons systeem implementeert een computergebaseerd algoritme om fluorescente gelabelde cellen te detecteren en te richten op volautomatische patches met behulp van een micromanipulator en interne pipetdrukregeling. Het gehele proces is zeer geautomatiseerd, met minimale eisen voor menselijke interventie. Realtime experimentele informatie, inclusief elektrische weerstand en interne pipettedruk, worden elektronisch gedocumenteerd voor toekomstige analyse en voor optimalisatie voor verschillende celtypen. Hoewel ons systeem wordt beschreven in het kader van acute braiN snijopnamen, kan het ook worden toegepast op de geautomatiseerde beeldgeleide patchclamp van gedissocieerde neuronen, organotypische snijculturen en andere niet-neuronale celtypes.

<html> Ons systeem is getest op het vermogen om cellen in acute hersenplakken te plakken, met muis geïnduceerde Pluripotent Stamcellen (iPSC&#39;s) die gedifferentieerd zijn in neuronen, en HEK 293 cellen kunstmatig kanalen van belangstelling uitdrukken. Figuur 3 toont een experiment met behulp van Thy1-ChR2-YFP transgene muizen (B6.Cg-Tg (Thy1-COP4 / EYFP) 18Gfng / J), gericht op fluorescent gelabelde laag 5 pyramidale neuronen in de visuele cortex. De doelc...

Dit protocol beschrijft hoe u automatische beeldgeleide patch-clamp experimenten kunt uitvoeren met behulp van een systeem dat onlangs is ontwikkeld voor standaard in vitro elektrofysiologie apparatuur.

Toepassing van geautomatiseerde beeldgeleide patchclamp voor de studie van neuronen in hersenschijven

Whole-cell patch clamp is the gold-standard method to measure the electrical properties of single cells. However, the in vitro patch clamp remains a ...

Het algemene doel van deze technologie is om computervisie te gebruiken voor de automatische detectie van fluorescente cellen en het uitvoeren van een geautomatiseerde patchclamp van deze cellen in acute hersenplakken. Deze methode kan helpen bij het overwinnen van cruciale moeilijkheden in het veld van de patchclamp-elektrofysiologie, zoals de identificatie, het targeten en de patchclamp van fluorescentie-gelabelde cellen. Het belangrijkste voordeel van deze techniek is dat het automatisch patchpipetten en fluorescente cellen kan detecteren en deze stappen kan integreren met geautomatiseerde patchclamp.Deze innovatie verhoogt de experimentele doorvoer aanzienlijk. De implicaties van deze techniek strekken zich uit tot de therapie of diagnose van neurologische aandoeningen, aangezien high-throughput beeldgestuurde automatische patchclamp kan worden ingezet voor farmacologische screenings in meer fysiologische neuronale preparaten. Deze methode kan ook worden toegepast op andere in vitro preparaten, zoals neuronale organotypische kweek of slice-culturen, gedissocieerde neuronen en alle niet-neuronale cellen.Om deze procedure te starten, schakelt u de versterker, de microscoopcontroller en de manipulatorcontroller in. Start vervolgens Autopatcher IG met python vanuit een opdrachtregelterminal door eerst naar de directory te navigeren waar Autopatcher IG is geïnstalleerd. Typ daarna Python Autopatcher_IG.Typ PYW in de opdrachtregelterminal en druk op de entertoets. Vul daarna de gehele glazen pipet met interne oplossing en plaats deze op de head stage. Verplaats de pipetpunt naar het gezichtsveld van de microscoop en stel deze scherp.Als het draaischijfpaneel wordt gebruikt om de manipulatoren op de microscooptafel te bewegen, werk dan de coördinaten bij door op Z op het toetsenbord te drukken. De primaire kalibratie converteert de hoek en afstand van de beweging van de manipulator naar het coördinatensysteem van de microscoop. De manipulator beweegt in drie richtingen met een vooraf ingestelde afstand en de software detecteert de coördinaten van de pipetpunt binnen het gezichtsveld van de microscoop.Klik op de knop voor het starten van de kalibratie in de hoofdgrafische gebruikersinterface (GUI) voor de overeenkomstige eenheid waarop de pipet is geladen. Sla de kalibratie vervolgens op door onderaan de hoofd-GUI op de knop voor het opslaan van de kalibratie te klikken. Deze primaire kalibratie hoeft slechts éénmaal te worden uitgevoerd, tenzij de fysieke configuratie van de opstelling wordt gewijzigd.Plaats in deze stap één hersensectie in het midden van de registratiekamer. Stabiliseer de hersensectie met een klem voor secties of een harp. Om de fluorescerende cel te detecteren, zoekt u het gebied van interesse op bij een viervoudige vergroting.Verplaats vervolgens de objecttafel van de microscoop door de modus 'on click to move' in te schakelen en op het centrum van het gebied van belang te klikken. Gebruik alternatief het toetsenbord om de objecttafel van de microscoop te verplaatsen. Schakel daarna over naar de lens met hoge vergroting en stel de focus in door de microscoop in de Z-as te bewegen met behulp van RF op het toetsenbord.De software stuurt de microscoop en de camera aan om een reeks beelden op verschillende dieptes op te nemen. Vervolgens worden deze beelden verwerkt met computer vision om fluorescentielabelled cellen te identificeren. De uiteindelijke output is een lijst met de coördinaten van de gedetecteerde cellen.Klik op de knop 'detect cell' in de hoofdkolom van de GUI bij eenheid nul. Als de LED- of laserlichtbron van de opstelling niet kan worden aangestuurd via het TTL-signaal, schakel de LED of laser dan handmatig in. Schakel de LED of laser indien nodig uit.Een lijst met celcoördinaten verschijnt in de GUI voor geheugenposities. Verwijder ongewenste cellen uit de lijst door op de X-knop naast de coördinaten te klikken. Indien de doelcellen niet fluorescentie-gelabeld zijn, klik dan op de muismodus in de hoofd-GUI.Klik vervolgens op de cel van belang; er verschijnt een gele stip met een nummer op de cel en de coördinaten van de cel verschijnen in de GUI voor de geheugenposities. Om een secundaire kalibratie uit te voeren voor het detecteren van de offset-coördinaten van de pipet, vult u een glazen pipet voor 1/3 met interne oplossing. Plaats daarna de pipet in de pipethouder die aan de head stage is bevestigd.Gebruik bij een lage vergroting de toetsen één en twee op het toetsenbord om te schakelen tussen unit één en unit twee. Breng vervolgens de pipet in het gezichtsveld en stel de focus in met behulp van het toetsenbord. Laad daarna de primaire kalibratie door op 'load calibration' te klikken.Schakel de microscooplens naar een hoge vergroting en klik 40 keer op de hoofd-GUI. Breng de pipetpunt naar het midden. Klik vervolgens op de knop voor secundaire kalibratie op de hoofd-GUI, onder de eenheid die in gebruik is.Om een doelcel te patchen, klikt u op de knop voor patchbesturing om de GUI voor patchbesturing te openen. Klik op de knop 'ga naar' naast de betreffende cel in de coördinaatlijst in de GUI voor geheugenposities. Klik vervolgens op de CTM-knop van de unit in de hoofd-GUI om de beweging in te schakelen.Klik op de gewenste cel om de pipetpunt naar de cel te verplaatsen. Vanwege mechanische beperkingen van de manipulator kan er een kleine positioneringsfout optreden bij verplaatsingen van meer dan 500 micrometer. Om een grote mechanische positioneringsfout te voorkomen, dient een secundaire kalibratie vlakbij de doelcel te worden uitgevoerd.Gebruik vervolgens de geselecteerde knop voor een enkel apparaat om het ingangssignaal tussen de twee apparaten te schakelen. Klik op de patch-knop in de GUI voor patchcontrole. De automatische patching begint en de druk en weerstand kunnen worden gemonitord via de GUI voor patchcontrole.Het automatische patching-algoritme bewaakt de weerstand en reguleert de druk via een reeks logische lussen om een gigaseal te vormen. Een pop-upvenster meldt de vorming van een gigaseal. Het systeem maakt gebruik van de verandering in weerstand om contact met het celoppervlak te herkennen.Indien het contact met het celoppervlak niet tijdig wordt gedetecteerd, gebruik dan de knop 'volgende' om de patching-fase te laten vorderen terwijl u in dezelfde automatische patching-poging blijft. U kunt het automatische proces op elk gewenst moment manipuleren door op de betreffende knoppen in de GUI voor patchcontrole te klikken. Selecteer vervolgens 'ja' om in te breken met een combinatie van Zap en zuiging.Selecteer anders 'nee' om uitsluitend met zuiging in te breken. Sla vervolgens het logboek van de experimentele patch op. Deze figuur toont de geselecteerde locaties die zijn geladen in de GUI van de opdrachtsequentie.De linkerkolom toont de lijst met coördinaten en de rechterkolom toont de lijst met commando's in de vorm van TTL-signalen voor elke locatie. Hier zijn de screenshots tijdens het experiment met medicatietoediening, overeenkomstig de drie geselecteerde locaties. KCL-oplossing werd gemengd met rode fluorescerende kleurstof voor visualisatiedoeleinden.Eenheid één was de pipet met KCl en eenheid twee was de patching-pipet. In deze figuur laten de stapsgewijze stroominjecties een regelmatige spiekende neuron zien. Hier worden de voltage clamp-registratiesessies getoond van de lokale toediening van een 500 millimolaire kaliumchloride-oplossing op drie locaties.De rode lijn met binnenwaartse stroom werd geregistreerd tijdens de proef waarbij de toediening van kaliumchloride vlak bij de patchcel plaatsvond. De rode pijl geeft het tijdstip van de toediening van kaliumchloride aan. Met deze methode kan men binnen vier minuten een patchclamp-experiment uitvoeren zonder uitgebreide training in vergelijking met handmatig patchen.Na deze procedure kunnen andere methoden, zoals optogenetica, chemogenetica en farmacologische manipulaties, worden uitgevoerd om vragen te beantwoorden die verband houden met uw onderzoeksproject. Na de ontwikkeling kan deze techniek de weg vrijmaken voor onderzoekers in het vakgebied van de neurowetenschappen om high-throughput studies van synaptische receptoren en ionkanalen in verschillende in vitro preparaten te verkennen. Na het bekijken van deze video zou u een goed inzicht moeten hebben in hoe u beeldgestuurde geautomatiseerde patchclamp-experimenten uitvoert.

application-automated-image-guided-patch-clamp-for-study-neurons

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neurowetenschap

This video demonstrates a technique for patch-clamp recording from the dendritic membrane surface. This helps to directly examine the electrical properties of dendrites and underlying voltage-gated ion channels in dopaminergic neurons.

Patch-Clamp Recordings from the Dendrite of a Dopaminergic Neuron in a Brain Slice

This video demonstrates positioning a fine-pointed pipette near brain slices, forming a seal with a neuronal cell. Suction breaks the cell membrane, thereby creating a whole-cell patch clamp that enables current measurements for electrophysiology experiments.

Establishing a Whole-Cell Voltage-Clamp Configuration for Electrophysiological Recordings in Brain Slices

This video outlines a method for simultaneously imaging and recording electrical activity from transgenic brain slices that contain neuron-specific fluorescent proteins. The procedure involves maintaining the brain slice in a perfusion chamber with aerated artificial cerebrospinal fluid, using a light source to excite fluorescent-labeled cells, and recording the electrical signals with a multichannel probe and patch clamp.

Simultaneous Optical and Electrophysiological Monitoring of Neuronal Cells in Brain Slices

In this video, brain slices are immobilized in a recording chamber, and cells of interest are located and focused on using a computer-controlled microscope. The automated image processing system then precisely positions a patch pipette to seal the cell membrane and monitor electrical signals.

Automated Image-Guided Patch Clamp Technique for Studying Neurons in Brain Slices

This video demonstrates the procedure to map synaptic connections by securing a brain slice, positioning pipettes to achieve whole-cell configurations, and stimulating presynaptic neurons to record postsynaptic responses, thereby elucidating neuronal connectivity.

Paired Patch Clamp Recording of the Neuronal Connections in Acute Brain Slices

In dit artikel beschrijven we een bruikbare methode om ligand-gated ionkanalen functie te bestuderen in neuronen van acuut geïsoleerd hersenen plakjes. Deze methode omvat het gebruik van een geneesmiddel gevulde micropipet voor lokale toepassing van geneesmiddelen voor neuronen opgenomen met standaard patch-clamp technieken.

Lokale toepassing van geneesmiddelen aan nicotine acetylcholine receptor functie in de hersenen van muizen Slices Studie

Patch-clamp opnames en gelijktijdige intracellulaire biocytinevulling van synaptisch gekoppelde neuronen in acute herfsneden maken een gecorreleerde analyse van hun structurele en functionele eigenschappen mogelijk. Het doel van dit protocol is om de essentiële technische stappen van elektrofysiologisch opnemen van neuronale microcircuits en hun daaropvolgende morfologische analyse te beschrijven.

Elektrofysiologische en morfologische analyse van neuronale Microschake in Acute Brain Slices Met behulp Paired Patch-Clamp Recordings

Dit protocol laat zien op de uitvoering van een geoptimaliseerde N-methyl-D-glucamine (NMDG) beschermende herstelmethode van hersenen segment voorbereiding. Een formulering van één medium wordt gebruikt om op betrouwbare wijze het verkrijgen van gezonde hersenen segmenten van dieren van alle leeftijden en voor diverse experimentele toepassingen.

Voorbereiding van Acute hersenen segmenten met behulp van een geoptimaliseerde N-Methyl-D-glucamine beschermende herstelmethode

Dit protocol beschrijft elementaire procedurele stappen voor het uitvoeren van whole-cell patch-clamp opnames. Deze techniek maakt het onderzoek mogelijk van het elektrisch gedrag van neuronen, en wanneer uitgevoerd in hersencoupes, kan worden nagegaan of verschillende neuronale functies van neuronen die nog geïntegreerd in goed behouden hersenen circuits.

Whole-cell patch-clamp opnamen in Brain Slices

Het segment patch-clamp techniek is een effectieve methode voor het analyseren van leren-geïnduceerde veranderingen in de intrinsieke eigenschappen en de plasticiteit van excitatory of inhiberende synapsen.

Segment Patch-Clamp techniek voor het analyseren van leren-Induced Plasticity

Ex vivo hersenplakken kunnen worden gebruikt om de effecten van vluchtige anesthetica op opgeroepen reacties op afferente inputs te bestuderen. Optogenetica wordt gebruikt om zelfstandig thalamocorticale en corticocorticale afferente stoffen te activeren voor niet-primaire neocortex, en synaptische en netwerkresponsen worden gemoduleerd met isofluraan.

Optogenetische activering van afferente paden in hersenplakken en modulatie van reacties door vluchtige anesthetica

Leer geautomatiseerde beeldgeleide patchclamp voor elektrofysiologisch onderzoek in acute hersenschijven. Deze methode verhoogt de experimentele doorvoer en ondersteunt farmacologische screenings.

Toepassing van geautomatiseerde beeldgeleide patchclamp voor de studie van neuronen in hersenschijven

Meer video's verkennen