1 september 2017
Dit werk presenteert een stapsgewijze protocol voor de onbevooroordeelde stereological schatting van Dopaminerge neuronale cel nummers in de muis substantia nigra met behulp van standaard microscopie apparatuur (dat wil zeggen, een lichte Microscoop, een tabel van de gemotoriseerde object (x, y, z vliegtuig), en publiek domein-software voor digitale beeldanalyse.
Het algemene doel van dit protocol is om de ontwerpgebaseerde stereologische schatting van het aantal dopaminerge cellen in de muis SN te beschrijven met behulp van standaard microscoopapparatuur. Deze methode is nuttig om het aantal dopaminerge neuronen in de muis substantia nigra te schatten voor preklinisch Parkinson-ziekteonderzoek met behulp van onbevooroordeelde stereologie op basis van ontwerp. Het grote voordeel van deze techniek is dat deze kan worden uitgevoerd met standaard microscoopapparatuur zonder dat er een commercieel verkrijgbare volledige stereologie-setup nodig is.
Demonstratie van de procedure zal worden gedaan door Louisa Friez, een technicus uit mijn laboratorium. Begin door een met paraformaldehyde gefixeerde muizenhersenen in een hersenmatrix te plaatsen en een snede te maken plus 0,74 millimeter vanaf bregma. Breng het caudale deel van de hersenen inclusief de SN over in 4% PFA in 0,1 molair en fixeer een nacht bij vier graden Celsius.
De volgende dag vervangt u de PFA voor 30% sucrose in 0,1 molair PBS en incubeert u nog twee dagen bij vier graden Celsius om het monster te cryo beschermen. Nadat de hersenen na twee dagen in de sucrose zijn gezonken, plaatst u het weefsel in een Cryomold gevuld met een optimaal snijtemperatuurcompound en bevriest u het weefsel langzaam in vloeibare drooggekoelde isopentaan. Gebruik een cryostat om serieel 30 micron cryo-secties in het coronale vlak te snijden.
Markeer het rechter halfrond door een klein gaatje te prikken in het bovenste gebied van de hersenstam. Verzamel vier reeksen secties beginnend bij min 2,46 millimeter vanaf bregma en eindigend bij 4,04 millimeter vanaf bregma. Breng elke reeks secties over in een buis gevuld met cryoprotectant en bewaar bij min 20 graden Celsius.
Maak digitale afbeeldingen van tyrosinehydroxylase immunohistochemisch gekleurde SN-secties met beeldvormingssoftware gekoppeld aan een microscoop. Begin met het bepalen van de werkelijke montage en dikte van de secties op drie willekeurig geselecteerde telplaatsen per sectie. Klik eerst op view top offset om de bovenkant van de sectie te definiëren.
Klik vervolgens op stop view top. Klik daarna op view bottom offset en vervolgens op stop view bottom. Schrijf de dikte van de sectie op.
Bereken de wachtzone door drie micron van de topoffset af te trekken en typ het resultaat in het top offset vak. Trek vervolgens de 13 micron hoogte van de optische dissector af van het top offset nummer en typ het resultaat in het bottom offset vak. Selecteer de volgende parameters, stappen 14, grootte 1,00.
Selecteer de map om het bestand op te slaan. Klik op sequence om de acquisitie te starten. Nadat de beelden zijn verkregen, klikt u op processing en selecteert u de volgende parameters, alle vlakken van sequence, montage en de fast en stitching vakken met een beeldoverlap van 10% Begin met het samenvoegen van de beelden door op start te klikken.
Dit genereert stackafbeeldingen voor analyse. Om te beginnen, opent u het beeld door op bestand en openen te klikken. Stel de beeldschaal in door de analyse en set scale opdracht te gebruiken.
Verander vanaf dit punt de gedefinieerde grootte van pixels naar microns. Selecteer de plugins dan raster dan rastertype lijnen commando om willekeurig een raster in te voegen. Vink het vakje willekeurig offset aan.
Definieer de grootte van een vierkant binnen het raster als 130 micron door 130 micron om gelijk te zijn aan 16.900 vierkante microns. Verander het beeldtype van 16-bit naar RGB-kleur door op beeld te klikken dan type dan RGB-kleur. Zoek de substantia nigra pars compacta.
Omcirkel het gebied met het penseelgereedschap met een penseelbreedte van 11. Ongedaan maken van de set scale opdracht door op analyse te klikken dan set scale dan op verwijderen schaal om in pixels te berekenen in plaats van microns. Maak een screenshot, sla het beeldbestand op en open het nieuwe bestand met ImageJ.
Selecteer penseel en een penseelbreedte van 25. Markeer elk rastervierkant dat contact maakt met de SN voor plaatsing van een optische dissector. Selecteer een rastervierkant dat delen van de SN omvat. Meet de bovenste linkerhoek van het vierkant met de cursor in ImageJ om de start x en y coördinaten te definiëren.
Selecteer het spreadsheet-sjabloon met de titel optische dissector positie en bereken de optische dissector positie. Schat vervolgens het celgetal in met behulp van de celtellingsspreadsheet zoals beschreven in het schriftelijke deel van het protocol. Deze laagvermogen afbeelding toont een sectie van muizenhersenen na TH-kleuring voor dopaminerge neuronen.
Een hogere vergroting toont TH-positieve dopaminerge neuronen. Het inzetstuk toont het omkaderd gebied met verhoogde vergroting. Deze afbeelding toont een reeks TH-gekleurde SN-secties die de hele muizen SN van rostrale naar caudale bedekken.
Elke sectie is gescheiden van de opeenvolgende sectie door 120 micron. Het aantal TH-positieve neuronen in de rechter en linker muis SN werd geschat met behulp van de methode die in deze video wordt getoond en met behulp van een commercieel verkrijgbaar stereologiesysteem. Zoals hier te zien is, resulteerden beide methoden in vergelijkbare celtellingen en er waren geen significante verschillen tussen de datasets.
Vergeet niet dat het werken met paraformaldehyde uiterst gevaarlijk kan zijn en dat voorzorgsmaatregelen zoals het dragen van persoonlijke beschermingsmiddelen zoals beschermende handschoenen altijd moeten worden genomen tijdens het uitvoeren van deze procedure. Na het bekijken van deze video, zou u een goed begrip moeten hebben van hoe u onbevooroordeelde stereologische schatting van het aantal dopaminerge neuronen in de muis substantia nigra kunt uitvoeren met behulp van de optische fractiemethode en standaard microscoopapparatuur.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel beschrijft een protocol voor de onbevooroordeelde stereologische schatting van het aantal dopaminerge neuronen in de substantia nigra van de muis met behulp van standaard microscopie-instrumenten. De methode is bedoeld om preklinisch onderzoek naar de ziekte van Parkinson te faciliteren door een betrouwbare benadering voor celkwantificering te bieden zonder dat er gespecialiseerde stereologische systemen nodig zijn.
Nauwkeurige kwantificering van het verlies van dopaminerge neuronen in de substantia nigra is een cruciaal eindpunt in preklinisch onderzoek naar de ziekte van Parkinson, wat direct bijdraagt aan targetvalidatie en het mechanistisch verminderen van risico's bij neuroprotectieve strategieën. Dit protocol maakt betrouwbare, onbevooroordeelde stereologische schatting mogelijk met standaard microscopieapparatuur, waardoor de afhankelijkheid van gespecialiseerde stereologiesystemen wordt verminderd en de toegankelijkheid voor discovery biology-workflows wordt vergroot. Door kwantitatieve, reproduceerbare gegevens van celtellingen te leveren, ondersteunt deze methode het voorspellend vertrouwen bij het testen van target-hypotheses in een vroeg stadium en bij beslissingen over portfolioprioritering.
De methode past binnen het ontdekkingscontinuüm van hypothesetesting van targets via lead-identificatie tot preklinische evaluatie van de werkzaamheid, en biedt een kwantitatieve histologische readout die bijdraagt aan het mechanistische begrip en het vertrouwen in het target.