12 september 2017
Deze paper gegevens het gebruik van vaste-potentieel amperometrische opnamen met behulp van koolstofvezel elektroden en de enzymatische biosensor technologie voor het meten van de vrijlating van dopamine en glutamaat met hoge temporele resolutie tijdens natuurlijke lonende gedrag in de vrouwelijke hamster.
Het algemene doel van deze experimentele procedure is om de afgifte van neurotransmitters te meten bij wakkere, zich gedragen dieren. Hoewel deze video een toepassing in de gedragsneurowetenschap demonstreert, met de mogelijkheid om specifieke neurotransmitterafgifte te karakteriseren in relatie tot specifieke gedragsgebeurtenissen, kan deze techniek in verschillende andere neurowetenschappelijke subdisciplines worden toegepast, zoals bij het injecteren van geneesmiddelen. Het grote voordeel van deze techniek is de turnkey-aard om bijna realtime afgifte van neurotransmitters in vivo te meten.
Begin met het injecteren van 500 microgram progesteron in 0,1 milliliter katoenzaadolie, vier uur voor de introductie van het mannetje om seksuele receptiviteit te induceren. Zorg ervoor dat elk dier aan het begin van de donkere fase van hun dagelijkse cyclus wordt getest, omdat sociale gedragingen van knaagdieren onderhevig zijn aan verandering onder wit licht en rood licht testcondities. Maak de kalibratieoplossingen vers op de dag van testen in 20 milliliter glazen centrifugeerbuisjes.
Voor de analytoplossing, los 7,4 milligram L-glutaminezuur op in 10 milliliter ultra-puur water door de buis voorzichtig om te draaien. Maak vervolgens de interferentieoplossing door 176,1 milligram AA op te lossen in 10 milliliter ultra-puur water. Zet de kalibratie op door een magnetische roerder op de basis van een eenvoudige laboratoriumringstandaard te plaatsen.
Plaats een 20 milliliter gemantelde beker bovenop de magnetische roerder en klem op zijn plaats met een middelgrote klemmen met twee uitsteeksels. Verbind de gemantelde beker met een circulerend waterbad om de bufferoplossing op 37 graden Celsius te verwarmen. Voeg een magnetische roerbar en 20 milliliter 100 millimolair fosfaatgebufferd zoutwater, of PBS, toe aan de gemantelde beker.
Plaats vervolgens de sensorkalibratiehouder bovenop de gemantelde beker en zet een vierkanaals kalibratiepre-versterker bovenop, bevestig deze met een rechte hoekklem. Verbind vervolgens de pre-versterker met een dataconditionerings- en acquisitieapparaat om kalibratiegegevens op te nemen. Test de gevoeligheid van elke enzymatische biosensor voor glutamaat vóór de experimentele opname door de sonde in de kalibratiehouder te plaatsen, bovenop een gemantelde beker, en het sensorgedeelte en een deel van de zilverchloride referentiedraad in de bufferoplossing onder te dompelen.
Start een nieuwe opname op de computerinterface met behulp van gratis te downloaden acquisitiesoftware. Verbind vervolgens elke te testen sensor met een poort op een vierkanaals kalibratiepre-versterker. Laat de sensoren een stabiele basislijn bereiken.
Begin met het toevoegen van de analytinjecties wanneer de sensoren een stabiele basislijn hebben bereikt. Gebruik het gat in de kalibratiehouder om een pipettip in de bufferoplossing te introduceren. Gebruik vervolgens de sneltoets-annotatietool in de opnamesoftware om te annoteren wanneer een injectie wordt gemaakt.
Maak vervolgens 10 micromolaire injecties van glutamaat door 40 microliter van de analytoplossing in de bufferoplossing te pipetten. Wacht tot de sensor is gestabiliseerd tussen toevoegingen. Voeg vervolgens drie injecties van de analytoplossing toe voordat u een enkele injectie van de interfererende AA-oplossing toevoegt.
Bekleed de testkamer met beddengoed uit de kooibuis van het dier. Verwijder de occlusieve obdurator van de geleidingscanule en voer ofwel de koolstofvezel elektrode of de enzymatische sonde door de geleidingsschacht. Verbind de sensor met het opnamesysteem.
Stabiliseer vervolgens de sensorverbinding door een speldbevestiging op de hoofdmontage te schroeven. Plaats vervolgens het dier in de testkamer. Begin met het opnemen van de video en tijdgebonden amperometrisch signaal in het softwareprogramma.
Laat de sensor zich eerst in de hersenen evenaren voordat experimenteel testen. Introduceer vervolgens een stimulusmannetje in de testkamer. Na de eerste berging met penile insertie door het stimulusmannetje, blijf u gedurende 10 tot 30 minuten verder opnemen, afhankelijk van de experimentele doelen.
Ten slotte, na gedragstesten, koppelt u de vrouwelijke sensor los. Verwijder beide hamsters uit de testkamer, evenals de beddengoed, om de kamer schoon te maken met 70% ethanol. Begin met het bekijken en annoteren van de video's, met behulp van gratis commercieel te downloaden software, in slow motion om gedragingen nauwkeurig te coderen die tijdgebonden zijn aan het amperometrisch signaal.
Annoteer Start Lordosis in het frame wanneer het vrouwtje een dorsiflexie van haar rug initieert en haar staart omhoog buigt. Annoteer Einde Lordosis wanneer het vrouwtje deze houding beëindigt, wat vaak gebeurt wanneer het vrouwtje zich heroriënteert naar een andere locatie in de testkamer. Annoteer vervolgens Start AI wanneer het vrouwtje in de lordosehouding is en het mannetje zijn snuit richting het anogenitale gebied van het vrouwtje beweegt, waarbij snuffelen, likken of neuzelen van haar perinale gebied kan voorkomen.
Annoteer Einde AI wanneer het mannetje zijn snuit verwijdert uit de nabijheid van het anogenitale gebied van het vrouwtje. Annoteer vervolgens Start Berging wanneer het mannetje nadert en zijn voorpoten op het vrouwtje plaatst in een berende houding, ongeacht de oriëntatie van de berende poging. Annoteer eveneens Start Intromissie wanneer succesvol duwen de berende mannetje peniele toegang tot de vagina van het vrouwtje verschaft.
Annoteer eventueel Ejaculeer, wat kan worden opgemerkt door een tredbeweging met de achterpoot van het mannetje. Annoteer tenslotte Einde Intromissie en Einde Berging gelijktijdig in het frame wanneer het mannetje zijn voorste twee poten heeft verwijderd en dus geen contact meer heeft met het vrouwtje. Vanwege het vaak onvermogen om zijn terugtrekking te visualiseren, codeer deze twee gedragingen gelijktijdig om consistentie en betrouwbaarheid over meerdere paringspogingen heen mogelijk te maken.
Onder het tabblad bestand, selecteert u de Export functie en kiest u het TSV-tabblad om de spanningsmetingen op te slaan als een TSV-extensiebestand.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Deze studie onderzoekt de meting van de afgifte van dopamine en glutamaat tijdens natuurlijk beloningsgedrag bij vrouwelijke hamsters met behulp van vast-potentiaal amperometrische registraties en enzymatische biosensortechnologie. De techniek maakt een hoge temporele resolutie van neurotransmitterdynamiek in wakker, behagend gedrag vertonende dieren mogelijk, wat inzicht biedt in de gedragsneurowetenschappen.
Het meten van real-time neurotransmitterdynamiek tijdens natuurlijk gedrag maakt een mechanische risicoreductie van hypotheses over targets in onderzoek naar beloningspaden mogelijk. Deze aanpak ondersteunt het voorspellende vertrouwen bij de identificatie van lead-verbindingen door neurochemische veranderingen te koppelen aan specifieke gedragsgebeurtenissen. De technologie faciliteert translationele continuïteit van de ontdekkingsfase tot de preklinische validatie van CNS-modulerende verbindingen.
De methode integreert in het ontdekkingscontinuüm, van hypothesetesten via lead-identificatie tot preklinische validatie, door temporeel nauwkeurige neurochemische gegevens te leveren die gekoppeld zijn aan gedrag.