Name: Voorbereiding stappen voor meting van reactiviteit in muis retinale arteriolen Ex Vivo (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-05-08T12:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 35 s
Description: Leer een methode om de reactiviteit van muizenretina-arteriolen te meten met videomicroscopie. Deze techniek verbetert het inzicht in bloedstroomregulatie en helpt bij het onderzoek naar oogziekten.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit werk werd gesteund door subsidies van de Ernst und Berta Grimmke Stiftung en de Deutsche Ophthalmologische Gesellschaft (hond).

De experimentele procedures voor deze studie werden goedgekeurd door de Animal Care Comité van Rijnland-Palts, Duitsland. Dierenverzorgers voldaan aan de institutionele richtsnoeren en de vereniging voor onderzoek in de visie en oogheelkunde (ARVO) instructie voor het gebruik van dieren in Oogheelkunde en visie onderzoek. Dieren werden behandeld volgens de Europese richtlijn 2010/63/EG voor dierproeven. Mannelijke C57BL/6J muizen (het Jackson Laboratory, Bar Harbour, ME, USA) van 3-4 maanden oud werden gebruikt voor de experimenten. Dieren werden gehuisvest onder normale omstandigheden (temperatuur van 23 ± 2 ° C, luchtvochtigheid bereik 55 ± 10% en 12 h cycli van de licht/donker), en had toegang tot standaardmuis chow en water ad libitum.
1. isolatie van muis Retina
<ol><li>Plaats van de dissectie-instrumenten op de tafel van de voorbereiding en controleer of alle instrumenten volledig om een snelle voorbereiding.</li>
	<li>Het offeren van de muis bij CO2 inademing.</li>
	<li>Decapitate de muis met een stalen schaar, snijd de schedel-sagitally in twee helften met behulp van hetzelfde paar van schaar en verwijder de huid en de hersenen met behulp van eye schaar (Figuur 1).</li>
	<li>Het bot van de schedel te verlaten alleen het orbitale bot met behulp van eye schaar afgesneden.</li>
	<li>Breng de baan in een dissectie schotel met ijskoude Krebs-Henseleit buffer.</li>
	<li>Houd de dissectie schotel op ijs of wijzigen van de buffer elke 10 min.</li>
	<li>Snij het orbitale bot met behulp van eye schaar en zachtjes Verwijder oog ter wereld samen met de orbitale weefsel met behulp van type 4 precisie pincetten en Student Vannas voorjaar schaar (Figuur 2).</li>
	<li>Verwijder voorzichtig de klier Harderian, bindweefsel en de spieren van de extraocular met behulp van type 5 precisie pincetten en Vannas capsulotomy schaar, verzorgen niet te beschadigen de hoofdtak van de oogheelkundige slagader.</li>
	<li>Afbinden orbitale takken van de oogheelkundige slagader en uiteindelijk het proximale einde van de hoofdtak van de oogheelkundige slagader met 10-0 Nylon hechtingen (Figuur 3).</li>
	<li>Pipetteer oog ter wereld in een petrischaal met 70% ethanol 4 precisie pincetten met behulp van 10 s typt. De oog-globe terug in de dissectie schotel plaatsen en de buffer vervangen door verse Krebs oplossing. Het hoornvlies verschijnt witachtige na ethanol blootstelling.</li>
	<li>Het perifere hoornvlies aanprikken met een naald van 30 meter en het ontleden van het hoornvlies met behulp van Vannas capsulotomy schaar. Zachtjes afgesneden van het iris-weefsel, plaatst u een scherpe punt van de schaar capsulotomy Vannas tussen het vaatvlies en netvlies en afgesneden van het vaatvlies en de sclera. Laat enkele scleral weefsel rond de oogzenuw (Figuur 4).</li>
</ol>2. montage van het netvlies in de perfusie-zaal
Opmerking: De zaal van de perfusie gebruikt voor retinale arteriole experimenten is zelfgemaakte. Het bestaat uit een transparant reservoir met een in- en uitstroom buis (Figuur 5). Één uiteinde van een silicone buis is op de bodem van de kamer met histoacryl lijm en het andere uiteinde gekoppeld aan een drieweg afsluiter gelijmd. Verbinding maken met een injectiespuit met verse Krebs buffer naar de afsluiter van de drie-weg en vul de buis met buffer.
<ol><li>Neem een glas micropipet met een naald houder en duw in het uiteinde van de buis op de bodem van de kamer van de perfusie. Dan breken het topje van de micropipet met een type 4 schaar te verkrijgen van een tip van 100 µm diameter.</li>
	<li>Focus op het puntje van de micropipet en spoel het via de spuit op de buis aangesloten. Zorg dat het capillair is niet geroteerd door puin. In geval van occlusie, verwijderen, de buis spoelen en invoegen van een andere micropipet.</li>
	<li>Vul de perfusie-zaal met koude Krebs buffer en zet de kamer onder een stereomicroscoop.</li>
	<li>Plaats een doorzichtige kunststof platform in de bedwelmingsruimte perfusie. Dit platform heeft een inspringing van 1,8 mm breedte voor de oogzenuw en de oogheelkundige slagader en wordt geplaatst op de twee stalen draden van 1,6 mm diameter. Dan een roestvrij stalen ring van 2,8 mm binnendiameter en buitendiameter van het 4,0 mm op het platform te plaatsen.</li>
	<li>Het netvlies met de oogzenuw en de bijgevoegde ophthalmic slagader van de dissectie-zaal overbrengen in de bedwelmingsruimte perfusie met uiterste zorg met behulp van een lepel. Deze stap is belangrijk om te voorkomen dat potentieel oprekken van de weefsels, zoals het schadelijk voor het experiment zijn kan.</li>
	<li>Afgesneden van het sutured deel van het proximale einde van de oogheelkundige slagader, plaatst u twee voorgevormde lusjes van de 10-0 nylon hechtdraad op de micropipet en cannulate van de oogheelkundige slagader met de micropipet. Bind de slagader aan de micropipet (Figuur 6) en plaats van het netvlies naar de transparante platform met behulp van fine-punt-pincet.</li>
	<li>Zachtjes scheuren open de voorste lens capsula met twee fijne punt pincet, uitlichten van de lens en de hele lens capsula met behulp van de microscissors afgesneden.</li>
	<li>Vervolgens vier radiaal insnijdingen in het netvlies de helft de afstand van de pars plana tot de oogzenuw en plaatst een roestvrij stalen ring op het netvlies te repareren aan de onderkant. Het netvlies is nu klaar voor het experiment (Figuur 7).</li>
</ol>3. voorbereiding van de retinale arteriolen voor het Experiment
<ol><li>Plaats de perfusie kamer onder een lichte Microscoop. Het doel is een 100 X water-immersie objectief.</li>
	<li>De twee buisjes voor in - en uitgaand - flow verbinden met een pericyclische pomp en circuleren van de zaal met Krebs buffer zuurstof met 95% O2 en koolzuurhoudende met 5% CO2 bij 37 ° C. Gebruik een debiet tussen 100 en 120 mL/min.</li>
	<li>Verbinden met de silicone buis, die is aangesloten op de micropipet, een stuwmeer silicone slang via een drieweg afsluiter. Dan, vul het reservoir met Krebs buffer tot een hoogte die overeenkomt met 50 mm Hg maar het drieweg afsluiter nog niet open.</li>
	<li>Kijk door de doelstellingen van de Microscoop en de focus op het netvlies oppervlak. Zoeken naar bloedvaten of rode bloedcellen. Het is mogelijk dat de bloedvaten volledig ingestort zijn, soms slechts dat enkele rode bloedcellen zichtbaar zijn.</li>
	<li>Wanneer een bloedvat wordt gevonden, richten op het en open het drieweg afsluiter. De diameter van het vaartuig onmiddellijk moet verhogen en de rode bloedcellen verplaatsen hetzij centrifugaal, als er een arteriole of centripetaal in geval van een venule. De arteriolen zijn kleiner in diameter t.o.v. venules van dezelfde orde.</li>
	<li>Zodra een bloedvat met een goed zichtbaar muur wordt gevonden, kan het worden gebruikt voor experimenten die na een periode van evenwichtsinstelling van 30 min (Figuur 8). Tijdens de periode van evenwichtsinstelling ontwikkelen de arteriolen enige zwakke intrinsieke Toon wat resulteert in minder dan 10% van vermindering van de diameter van de luminal.</li>
</ol>4. het uitvoeren van het Experiment
<ol><li>Test de levensvatbaarheid van vaartuigen met het Thromboxaan mimetische 9,11-dideoxy-9α, 11α-methanoepoxy prostaglandine F2α (U46619) toe te voegen aan de oplossing van het bad. Deze agent knelpunt muis retinale arteriolen door ongeveer 50% van de diameter rusten bij concentraties van ≥ 10-6 M.</li>
	<li>Zodra het schip is bevestigd levensvatbare, wassen van de agonist uit het bad door de circulatiepomp en leveren verse Krebs buffer in het bad.</li>
</ol>

<ol><li>Toda, N., Nakanishi-Toda, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nitric+oxide%3A+ocular+blood+flow%2C+glaucoma%2C+and+diabetic+retinopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Prog+Retin+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Nitric oxide: ocular blood flow, glaucoma, and diabetic retinopathy.</a> Prog Retin Eye Res. 26 (3), 205-238 (2007).</li>
<li>Schuster, A. K., Fischer, J. E., Vossmerbaeumer, C., Vossmerbaeumer, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+coherence+tomography-based+retinal+vessel+analysis+for+the+evaluation+of+hypertensive+vasculopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Optical coherence tomography-based retinal vessel analysis for the evaluation of hypertensive vasculopathy.</a> Acta Ophthalmol. 93 (2), e148-e153 (2015).</li>
<li>Cherecheanu, A. P., Garhofer, G., Schmidl, D., Werkmeister, R., Schmetterer, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ocular+perfusion+pressure+and+ocular+blood+flow+in+glaucoma%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Ocular perfusion pressure and ocular blood flow in glaucoma.</a> Curr Opin Pharmacol. 13 (1), 36-42 (2013).</li>
<li>Faraci, F. M., Sigmund, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vascular+biology+in+genetically+altered+mice+%3A+smaller+vessels%2C+bigger+insight%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Vascular biology in genetically altered mice : smaller vessels, bigger insight.</a> Circ Res. 85 (12), 1214-1225 (1999).</li>
<li>Kornfield, T. E., Newman, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measurement+of+Retinal+Blood+Flow+Using+Fluorescently+Labeled+Red+Blood+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22eNeuro%22%5BJournal%5D)">Measurement of Retinal Blood Flow Using Fluorescently Labeled Red Blood Cells.</a> eNeuro. 2 (2), (2015).</li>
<li>Guevara-Torres, A., Joseph, A., Schallek, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Label+free+measurement+of+retinal+blood+cell+flux%2C+velocity%2C+hematocrit+and+capillary+width+in+the+living+mouse+eye%5BTitle%5D)+AND+%22Biomed+Opt+Express%22%5BJournal%5D)">Label free measurement of retinal blood cell flux, velocity, hematocrit and capillary width in the living mouse eye.</a> Biomed Opt Express. 7 (10), 4229-4249 (2016).</li>
<li>Schallek, J., Geng, Y., Nguyen, H., Williams, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morphology+and+topography+of+retinal+pericytes+in+the+living+mouse+retina+using+in+vivo+adaptive+optics+imaging+and+ex+vivo+characterization%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">Morphology and topography of retinal pericytes in the living mouse retina using in vivo adaptive optics imaging and ex vivo characterization.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 54 (13), 8237-8250 (2013).</li>
<li>Gericke, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+the+muscarinic+acetylcholine+receptor+subtype+mediating+cholinergic+vasodilation+in+murine+retinal+arterioles%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">Identification of the muscarinic acetylcholine receptor subtype mediating cholinergic vasodilation in murine retinal arterioles.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 52 (10), 7479-7484 (2011).</li>
<li>Gericke, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+role+of+alpha1-adrenoceptor+subtypes+in+murine+ophthalmic+arteries%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis+Sci%22%5BJournal%5D)">Functional role of alpha1-adrenoceptor subtypes in murine ophthalmic arteries.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 52 (7), 4795-4799 (2011).</li>
<li>Bohmer, T., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24749494">The alpha(1)B -adrenoceptor subtype mediates adrenergic vasoconstriction in mouse retinal arterioles with damaged endothelium.</a> Br J Pharmacol. 171 (16), 3858-3867 (2014).</li>
</ol>

De auteurs hebben geen concurrerende financiële belangen.

De meting van vasculaire reacties in het netvlies van de muis is uitdagend wegens de kleine grootte van de retinale bloedvaten. Met de voorgestelde techniek, worden retinale arteriolen gevisualiseerd door doorvallend licht microscopie. Dit is mogelijk, omdat de geïsoleerde netvlies doorschijnend is. Het voordeel van de techniek is de hoge optische resolutie. De berekende ruimtelijke resolutie is 11 px/µm. De echte oplossing voor deze optische systeem dat gebruikmaakt van wit licht is echter tussen 200 en 300 nm, die word...

Verstoringen in het netvlies perfusie zijn betrokken bij de pathogenese van verschillende oogbeschadigingen en/of ziekten, zoals diabetische retinopathie en hypertensieve retinopathie, glaucoom1,2,3. Dus, studies gericht op het meten van vasculaire reactiviteit in de retina zijn belangrijk om te begrijpen van de pathofysiologie van deze ziekten en voor de ontwikkeling van nieuwe behandeling benaderingen.
Als gevolg van de mogelijkheid van genetische manipulatie in de lymfkliertest genoom, is de muis een gebruikte diermodel voor studies over de cardiovasculaire systeem4geworden. Echter, vanwege de kleine omvang van retinale bloedvaten (≤ 30 µm), meting van vasculaire reactiviteit in de retina van de muis is uitdagend. Bijvoorbeeld, stereomicroscopic technieken voor in vivo meting zijn beperkt in hun optische resolutie en daarom alleen toestaan om precies de opsporing van wijzigingen in diameter of bloed stroom in kleine bloed van minder dan ≤ 30 µm diameter wanneer uitgerust met aanvullende geavanceerde apparaten, zoals een confocal microscoop met fluorescente kleurstoffen of de adaptieve optica Scanning licht oftalmoscoop5,6. Bovendien, de interpretatie van in vivo metingen gericht op het identificeren van lokale signalering mechanismen in netvlies bloedvaten kunnen worden verward door anesthesie, veranderingen in de systemische bloeddruk en de invloed van retrobulbaire bloedvaten.
Daarom ontwikkelden we een methode voor het meten van de reacties van het netvlies bloedvaten muis met hoge optische resolutie ex vivo. De hier vermelde techniek kunt visualisatie van retinale arteriolen via verzonden de lichte microscopie. Deze methode, die ook kan worden gebruikt bij ratten, biedt toegang tot de voordelen van gen targeting-technologie in oogbeschadigingen en/of vasculaire onderzoek.

<table><tbody><tr><td>Steel Scissors</td><td>Carl Roth GmbH</td><td>3576.1</td><td>1x 140 mm</td></tr><tr><td>Eye Scissors</td><td>Geuder</td><td>G-19390</td><td>1x recht, 10,5 cm</td></tr><tr><td>Precision tweezers, straight with fine tips</td><td>Carl Roth GmbH</td><td>LH68.1</td><td>2x type 4</td></tr><tr><td>Precision tweezers, straight with extra fine tips</td><td>Carl Roth GmbH</td><td>LH53.1</td><td>2x type 5</td></tr><tr><td>Vannas capsulotomy scissors</td><td>Geuder</td><td>19760</td><td>1x recht, 77 mm</td></tr><tr><td>Student Vannas Spring Scissors</td><td>Fine Science Tools</td><td>91501-09</td><td>1x gebogen,</td></tr><tr><td>Barraquer Needle Holder</td><td>Geuder</td><td>G-17500</td><td>1x gebogen, 120 mm</td></tr><tr><td>Needle</td><td>Becton, Dickinson and Company</td><td>305128</td><td>1x 30 G</td></tr><tr><td>Glass Capillaries (for producing micropipettes)</td><td>Drummond Scientific Company</td><td>9-000-1211</td><td>1x (1,2 x 0,8 mm; buiten/binnen diameter)</td></tr><tr><td>Nylon Suture</td><td>Alcon</td><td>198001</td><td>1x 10-0</td></tr><tr><td>Nunclon cell culture dish</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>153066</td><td>1x 35 mm diameter</td></tr><tr><td>Nunclon cell culture dish</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>172931</td><td>1x 100 mm diameter</td></tr><tr><td>Discofix C</td><td>Braun</td><td>16500C</td><td>10 cm</td></tr><tr><td>Histoacryl adhesive</td><td>B. Braun Surgical, S.A.</td><td>1050052</td><td></td></tr><tr><td>Naam</td><td>Bedrijf</td><td>Catalogusnummer</td><td>Opmerkingen</td></tr><tr><td>Utrusting</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pericylic pump&nbsp; (CYCLO II)</td><td>Carl Roth GmbH</td><td>EP76.1</td><td>1x</td></tr><tr><td>Vertical Pipette Puller Model 700C</td><td>David Kopf Instruments</td><td></td><td>1x</td></tr><tr><td>Microscope (Vanox-T AH-2)</td><td>Olympus</td><td></td><td>1x</td></tr><tr><td>Water immersion objective LUMPlanFL, 1.0 NA</td><td>Olympus</td><td></td><td>1x</td></tr><tr><td>Digital camera (TK-C1381)</td><td>JVC</td><td></td><td>1x</td></tr><tr><td>Perfusion chamber</td><td>zelf gemaakt</td><td></td><td>1x</td></tr><tr><td>Naam</td><td>Bedrijf</td><td>Catalogusnummer</td><td>Opmerkingen</td></tr><tr><td>Geneesmiddelen en oplossingen</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ethanol</td><td>Carl Roth GmbH</td><td>K928.4</td><td></td></tr><tr><td>Calcium chloride dihydrate (CaCl2)</td><td>Carl Roth GmbH</td><td>5239.1</td><td></td></tr><tr><td>Kalium chloride (KCl)</td><td>Carl Roth GmbH</td><td>6781.1</td><td></td></tr><tr><td>Kalium dihydrogen phosphate (KH2PO4)</td><td>Carl Roth GmbH</td><td>3904.2</td><td></td></tr><tr><td>Magnesium sulphate (MgSO4)</td><td>Carl Roth GmbH</td><td>261.2</td><td></td></tr><tr><td>Sodium chloride (NaCl)</td><td>Carl Roth GmbH</td><td>9265.2</td><td></td></tr><tr><td>Sodium hydrogen carbonate (NaHCO3)</td><td>Carl Roth GmbH</td><td>0965.3</td><td></td></tr><tr><td>&alpha;-(D)-(+)- Glucose monohydrate</td><td>Carl Roth GmbH</td><td>6780.1</td><td></td></tr><tr><td>9,11-dideoxy-9&alpha;,11&alpha;-methanoepoxy prostaglandin F2&alpha; (U-46619)</td><td>Cayman Chemical</td><td>16450</td><td></td></tr><tr><td>Acetylcholine chloride</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A6625-25G</td><td></td></tr></tbody></table>

voorbereiding stappen voor meting van reactiviteit in muis retinale arteriolen ex vivo

Preparation Steps for Measurement of Reactivity in Mouse Retinal Arterioles Ex Vivo

Vasculaire insufficiëntie en wijzigingen in de normale netvlies perfusie behoren tot de belangrijkste factoren voor de pathogenese van diverse zicht-bedreigende oogbeschadigingen en/of ziekten, zoals diabetische retinopathie, hypertensieve retinopathie en eventueel glaucoom. Daarom, retinale microvasculaire voorbereidingen zijn cruciale instrumenten voor fysiologische en farmacologische studies af te bakenen van de onderliggende pathofysiologische mechanismen en ontwerp therapieën voor ziekten. Ondanks het ruime gebruik van Muismodellen in ophthalmic onderzoek zijn studies over retinale vasculaire reactiviteit schaars in deze soort. Een belangrijke reden voor dit verschil is de uitdagende isolatie procedures vanwege de geringe omvang van deze netvlies bloedvaten, oftewel ~ ≤ 30 µm in diameter van de luminal. Om te omzeilen het probleem van directe isolatie van deze netvlies microvessels voor functionele studies, opgericht wij een isolatie en voorbereiding techniek waarmee ex vivo studies van de retinale vasoactivity van de muis in de buurt van de fysiologische omstandigheden . Hoewel de huidige experimentele voorbereidingen specifiek naar de muis retinale arteriolen verwijzen zal, kan deze methodologie gemakkelijk worden gebruikt om te microvessels van ratten.

U-46619 geproduceerd concentratie-afhankelijke vasoconstrictor reacties in netvlies arteriolen van wild-type muizen van de C57Bl/6J-achtergrond. Bij een concentratie van 10-6 M was afname van de diameter van de luminal ≈50% van de diameter van de rust. Figuur 9A toont een representatieve concentratie-reactie-curve van een retinale arteriole. In arteriolen preconstricted met U46619, cumulatieve beheer van acetylcholine verhoging van de concentratie-...

Veel visie-bedreigende oogbeschadigingen en/of ziekten worden geassocieerd met disfunctionele retinale microvessels. De meting van de retinale arteriole reacties is daarom belangrijk om te onderzoeken van de onderliggende pathofysiologische mechanismen. Dit artikel beschrijft een gedetailleerd protocol voor muis retinale arteriole isolatie en voorbereiding te beoordelen van de effecten van vasoactieve stoffen op vasculaire diameter.

Voorbereiding stappen voor meting van reactiviteit in muis retinale arteriolen Ex Vivo

Vascular insufficiency and alterations in normal retinal perfusion are among the major factors for the pathogenesis of various sight-threatening ocular ...

Het algemene doel van deze methode voor retina-preparatie is het gebruik van videomicroscopie om de arteriële reactiviteit van de muizenretina te meten. Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van kernvragen op het gebied van de regulatie van de bloedstroom in de retina en kan bijdragen aan een beter begrip van de pathofysiologie van diverse oogaandoeningen. Het belangrijkste voordeel van deze nieuwe techniek is dat het mogelijk maakt om de reactiviteit van de retinale bloedvaten te meten met een zeer hoge optische resolutie.Tegelijkertijd is er geen geavanceerde apparatuur voor nodig. Over het algemeen kunnen personen die nieuw zijn met deze methode moeite hebben, omdat het lastig kan zijn om de arteria ophthalmica en de vertakkingen daarvan te vinden. Ik zal deze procedure demonstreren samen met Jenia Kouchek Zadeh en Wael Omran, promovendi uit mijn laboratorium.Bereid de experimentele procedures voor door de benodigde instrumenten klaar te leggen. Gebruik vervolgens een stalen schaar om de schedel van de muis sagittaal in twee helften door te knippen en gebruik oogschaartjes om de huid en de hersenen te verwijderen. Gebruik de oogschaartjes om het schedelbot te verwijderen totdat alleen het orbitale bot overblijft en breng de orbit onder een chirurgische microscoop over naar een dissectieschaal met ijskoud Krebs-Henseleit-buffer op ijs.Knip het oogbot door met oogscharen en gebruik precisiepincetten type vier en student-Vannas veerscharen om de oogbol en het orbitale weefsel voorzichtig te verwijderen. Verwijder met precisiepincetten type vijf en Vannas capsulotomiescharen zorgvuldig de Harderse klier, het bindweefsel en de extraoculaire spieren, waarbij u er op let de hoofdtak van de arteria ophthalmica niet te beschadigen. Gebruik 10-0 Nylon hechtdraden om de orbitale takken aan het proximale uiteinde van de hoofdtakken van de arteriae ophthalmicae af te binden en gebruik de precisiepincetten type vier om de oogbol over te brengen naar een Petrischaal met 70% ethanol.Het is zeer belangrijk dat alle orbitale aftakkingen van de arteria ophthalmica worden afgebonden om lekkage tijdens het experiment te voorkomen. Plaats de oogbol na 10 seconden terug in de dissectieschaal. Het hoornvlies zal witachtig kleuren door de blootstelling aan ethanol.Vervang de buffer door verse Krebs-oplossing en gebruik de microscoop en een naald met maat drie om de perifere cornea te doorprikken. Gebruik de Vannas-capsulotomieschaar om de cornea te dissekeren en snijd voorzichtig het irisweefsel weg. Plaats vervolgens één scherpe punt van de Vannas-capsulotomieschaar tussen het choroidea en het retina en snijd het choroidea en de sclera weg.Om het netvlies te monteren in een op maat gemaakte perfusiekamer, gebruikt u eerst een naaldvoerder om het uiteinde van een glazen micropipet met een tipdiameter van 100 micrometer in de siliconen slang van de kamer te duwen. Sluit vervolgens de spuit aan op het andere uiteinde van de slang om de tip van de micropipet te spoelen en vrij te maken van eventueel vuil. Vul de perfusiekamer met koude Krebs-buffer en plaats de kamer onder een stereomicroscoop.Plaats een transparant plastic platform met een inkeping van 1,8 millimeter bovenop twee stalen draden met een diameter van 1,6 millimeter in de perfusiekamer en plaats een roestvrijstalen ring op het platform. Gebruik een lepel om het netvlies met de oogzenuw, waarbij de arteria ophthalmica nog is bevestigd, op het platform over te brengen en verwijder het gehechte uiteinde van de arteria ophthalmica. Plaats twee gevormde lussen van 10-0 nylon hechtdraad op de micropipet en zet de arterie met de hechtingen vast aan de micropipet.Gebruik één fijnpuntige pincet om het netvlies op het transparante platform te plaatsen en gebruik een tweede fijnpuntige pincet om de voorste lenscapsule voorzichtig open te scheuren. Trek de lens eruit en gebruik microschaartjes om de volledige lenscapsule en het glasachtig lichaam te verwijderen. Maak vervolgens vier radiale incisies in het netvlies op halve afstand van de pars plana tot de oogzenuw en plaats de roestvrijstalen ring op het netvlies om het netvlies aan het platform te fixeren.Om de retinale arteriolen voor analyse voor te bereiden, plaatst u de perfusiekamer onder een lichtmicroscoop en selecteert u het 100X waterimmersie-objectief. Verbind slangen met de in- en uitlaatpoorten van een paracyclische pomp en circuleer de kamer met Krebs-buffer bij 37 °C, geoxygeneerd met 95% zuurstof en gecarboneerd met 5% kooldioxide. Verbind de siliconen slang die is uitgerust met de micropipet via een driewegkraan met een reservoirslang van siliconen en vul het reservoir met Krebs-buffer tot een hoogte die overeenkomt met 50 mmHg.Gebruik de objectieven om handmatig scherp te stellen op het retinaloppervlak om naar bloedvaten of rode bloedcellen te zoeken. Wanneer een bloedvat is gevonden, stel dan scherp op het vat en open de driewegkraan. De diameter van het vat zou onmiddellijk moeten toenemen en rode bloedcellen zouden zichtbaar moeten worden.Na een equilibratieperiode van 30 minuten zullen de arteriolen een zwakke intrinsieke tonus ontwikkelen met een reductie van de luminale diameter van minder dan 10%. Voeg een restrictiereagens voor muisretina toe aan de badoplossing en bevestig de levensvatbaarheid van het vat. Laat vervolgens de pomp circuleren om de agonist uit het bad te spoelen en voeg verse Krebs-buffer toe aan de kamer.In dit representatieve experiment produceerde U46619, een tromboxaan-mimeticum, concentratie-afhankelijke vasoconstrictor-responsen in retinale arteriolen van wild-type C57Bl/6J-muizen, met een reductie van de luminale diameter van ongeveer 50% ten opzichte van de rusttoestand bij een concentratie van 1 × 10⁻⁶ M. In arteriolen die waren geconstringeerd met de agonist, riep cumulatieve toediening van acetylcholine concentratie-afhankelijke toenames in de luminale diameter op tot ongeveer 25% van de geconstringeerde diameter bij een acetylcholine-concentratie van 1 × 10⁻⁵ M, wat duidt op een intact vasculair endotheel. Zodra de techniek onder de knie is, kan deze in 90 tot 120 minuten worden uitgevoerd mits deze correct wordt toegepast.Houd bij het uitvoeren van deze procedures rekening met het ligeren van alle retrobulbaire arteriële takken om het oog in ethanol te kunnen dompelen voordat de oogbol wordt geopend, om torsie van de arteria ophthalmica te voorkomen, en controleer ten slotte de glazen micropipetpunten op occlusie. Na het bekijken van deze video zou u een goed begrip moeten hebben van hoe u het netvlies van een muis voorbereidt voor arteriële metingen met videomicroscopie in vitro.

preparation-steps-for-measurement-reactivity-mouse-retinal-arterioles

Research

JoVE Journal

Medicine

Geneeskunde

Om de permeabiliteit van de bloed-retinabarrière en de integriteit van de binnenste begrenzingsmembraan in diermodellen van retinale aandoeningen te onderzoeken, hebben we verschillende adeno-geassocieerde virus (AAV) varianten gebruikt als hulpmiddelen om retinale neuronen en gliacellen te labelen. Virusgemedieerde reportergenexpressie wordt vervolgens gebruikt als een indicator van de permeabiliteit van de retinabarrière.

Met behulp van adeno-geassocieerd virus als een instrument om retinale Barrières in ziekte te bestuderen

Dit manuscript wordt een eenvoudig protocol voor de isolatie van de arteriolen uit het netvlies rat die kunnen worden gebruikt in elektrofysiologische, calcium beeldvorming en druk myography studies beschreven.

Isolatie van retinale arteriolen voor Ex Vivo cel fysiologie Studies

Deze techniek wordt beschreven real-time opname van zuurstofverbruik en extracellulaire verzuring tarieven in het netvlies weefsel transplanteren muis met behulp van een extracellulaire flux-analyzer.

Meting van de energie-stofwisseling in transplanteren retinale weefsel met behulp van extracellulaire Flux-analyse

Zuurstofgeïnduceerde retinopathie (OIR) kan worden gebruikt om ischemische netvliesaandoeningen zoals retinopathie van prematuriteit en proliferatieve diabetische retinopathie te modelleren en om te dienen als model voor proof-of-concept studies bij het evalueren van antiangiogene geneesmiddelen voor neovasculaire ziekten. OIR induceert robuuste en reproduceerbare neovascularisatie in het netvlies die kan worden gekwantificeerd.

Zuurstofgeïnduceerde retinopathiemodel voor ischemische netvliesziekten bij knaagdieren

Dit protocol beschrijft een gedetailleerde methode voor de bereiding en immunofluorescentiekleuring van retinale flat mounts en analyse van muizen. Het gebruik van fluoresceïne fundusangiografie (FFA) voor muizenpups en beeldverwerking worden ook in detail beschreven.

Monitoring van dynamische groei van retinale vaten in zuurstof-geïnduceerde retinopathie muismodel

Hier wordt een gedetailleerd protocol beschreven voor het uitvoeren van mitochondriale stresstest en glycolytische snelheidstest in ex vivo retinale weefselmonsters met behulp van een commerciële bioanalyzer.

Bepaling van mitochondriale ademhaling en glycolyse in ex vivo retinale weefselmonsters

Diabetische retinopathie is een van de belangrijkste oorzaken van blindheid. Histologie, bloed-retinale barrièreafbraaktest en fluorescentieangiografie zijn waardevolle technieken om de pathofysiologie van het netvlies te begrijpen, wat de efficiënte screening van geneesmiddelen tegen diabetische retinopathie verder zou kunnen verbeteren.

Retinale pathofysiologische evaluatie in een rattenmodel

Dit artikel beschrijft een gevestigde en reproduceerbare lectinevlekkentest voor de gehele retinale preparaten van mount en de protocollen die nodig zijn voor de kwantitatieve meting van vasculaire parameters die vaak worden gewijzigd in proliferatieve en niet-proliferatieve retinopathieën.

Kwantificering van vasculaire parameters in whole mount retinas van muizen met niet-proliferatieve en proliferatieve retinopathieën

Hier presenteren we drie data-analyseprotocollen voor fluoresceïneangiografie (FA) en optische coherentietomografie (OCT) beelden in de studie van Retinal Vein Occlusion (RVO).

In vivo Vasculaire letseluitlezingen in het netvlies van muizen om de reproduceerbaarheid te bevorderen

Het retinale vaatstelsel van muizen is bijzonder interessant voor het begrijpen van de mechanismen van vasculaire patroonvorming. Dit protocol meet automatisch de diameter van de retinale vaten van muizen op basis van fluorescerende angiografie-fundusbeelden op een vaste afstand van de optische schijf.

Het meten van de diameter van het netvliesvat van fluorescerende angiografiebeelden van muizen

We hebben onlangs retinale capillaire verstijving geïdentificeerd als een nieuw paradigma voor retinale disfunctie geassocieerd met diabetes. Dit protocol werkt de stappen uit voor de isolatie van de retinale capillairen van muizen en de subendotheelmatrix uit retinale endotheelculturen, gevolgd door een beschrijving van de stijfheidsmeettechniek met behulp van atoomkrachtmicroscopie.

Isolatie van de retinale capillairen en subendotheliale matrix van muizen voor stijfheidsmeting met behulp van atoomkrachtmicroscopie

Leer een methode om de reactiviteit van muizenretina-arteriolen te meten met videomicroscopie. Deze techniek verbetert het inzicht in bloedstroomregulatie en helpt bij het onderzoek naar oogziekten.

Voorbereiding stappen voor meting van reactiviteit in muis retinale arteriolen Ex Vivo

Meer video's verkennen