September 4th, 2017
Dit protocol toont de inductie van cerebrale cavernous malformatie ziekte in een muismodel en gebruik contrast enhanced micro computertomografie voor het meten van de laesie Last. Deze methode verbetert de waarde van gevestigde Muismodellen te bestuderen van de moleculaire basis en mogelijke therapieën voor cerebrale cavernous misvorming en andere cerebrovasculaire ziekten.
Het algemene doel van deze procedure is om cerebrale caverneuze malformaties bij neonatale muizen te induceren en de ziektelast te meten met behulp van micro-CT. Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van belangrijke vragen in het veld van cerebrale vaatziekten, zoals cerebrale caverneuze malformaties. Het grote voordeel van deze techniek is dat de ziektelast van cerebrale caverneuze malformaties bij neonatale muizenmodellen nauwkeuriger en efficiënter kan worden bepaald in vergelijking met bestaande methoden.
Visuele demonstratie van deze methode is cruciaal, omdat het induceren van cerebrale caverneuze malformaties en de stappen voor micro-CT-analyse moeilijk te leren zijn, omdat het ervaring en het gebruik van geavanceerde software vereist. Begin met het oplossen van 4-HT in 100% ethanol tot een concentratie van 10 milligram per milliliter. Bereid 30 microliter alaquads voor en bewaar deze vervolgens bij minus 80 graden Celsius.
Op de dag van gebruik, verdun de alaquads met 4-HT in koolzaadolie tot 0,5 milligram per milliliter. Gebruik vervolgens een insulinesyringe om 50 microliter 4-HT intragastrisch te injecteren in P1 neonatale pups om experimentele CCM-laesies te induceren. Begin met de monstervoorbereiding door een 10 milliliter spuit gevuld met drie milliliter 2% paraformaldehyde en PBS, uitgerust met een 29 gauge naald, te vullen.
Voer vervolgens intracardiale perfusie uit op een geeuthaniseerde P8 pup door de naald in het ventrikel van het muizenhart in te brengen en langzaam het volledige volume paraformaldehyde te injecteren. Nadat je met een schaar het hoofd hebt losgemaakt, verwijder je de huid van het hoofd en scheurt u de schedel af met behulp van pincetten om de hersenen in hun geheel te dissecteren in 4% paraformaldehyde en PBS. Bevestig de hersenen 's nachts bij 4-HT graden Celsius.
De volgende dag los je de achterhersenen los met behulp van pincetten en spoel je ze af met PBS-oplossing. Incubeer vervolgens de achterhersenen gedurende 48 uur in Lugol's jodiumoplossing. Droog de achterhersenen vervolgens kort in de lucht om overtollig Lugol's jodiumoplossing te verwijderen.
Vervolgens verpak je de Lugol's jodium gekleurde achterhersenen in 0,65 microliter microcentrifugebuizen en verzegel je ze volledig met plastic paraffinefolie om weefselkrimp te voorkomen. Plaats de microcentrifugebuizen in vijf milliliter plastic buizen met sponzen om te voorkomen dat ze tijdens het scannen bewegen. Monteer de buis met een achterhersenen verticaal op een aluminium houder in het micro-CT-systeem.
Stel de scanparameters in. Gebruik 540 projecties en een blootstellingstijd van twee seconden met bronvoorwaarden van 50 kilovolt en 10 watt om de tomografische datasets te verkrijgen. Radiografiën van de scan worden automatisch gereconstrueerd door hardware-gebaseerde projectiereconstructiesoftware, geleverd door het micro-CT-systeem, waardoor een beeldserie van 16-bits axiale plakken ontstaat.
Lugol's jodium gecontrasteerde micro-CT detecteerde voldoende CCM-laesies. Gescande röntgenbeelden werden gereconstrueerd om 3D-beelden van de muizenhersenen te produceren, wat de visualisatie van volledige laesies in het hersenparenchym mogelijk maakte, op verschillende diepten en oriëntaties, en de beoordeling van de structuur in 3D-locatie van laesies in de hersenen. Deze tabel toont een voorbeeld van kwantitatief resultaat van de gelabelde individuele laesies.
Na de ontwikkeling ervan heeft deze techniek onderzoekers op het gebied van vaatziekten de weg geëbaand om mechanismen en therapeutische opties voor cerebrale caverneuze malformaties in muizenmodellen te verkennen. Na het bekijken van deze video zou je een goed begrip moeten hebben van hoe je CCM-laesies in muizenmodellen kunt induceren, en hoe je de CCM-laesielast kunt verkrijgen en analyseren met de micro-CT-techniek.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Dit protocol demonstreert de inductie van cerebrale caverneuze malformaties bij neonatale muizen en maakt gebruik van micro-CT om de lesiebelasting te meten. Deze methode verbetert het begrip van de moleculaire basis en mogelijke therapieën voor cerebrale caverneuze malformaties en andere cerebrovasculaire aandoeningen.
Quantitative micro-CT imaging of cerebral cavernous malformations (CCMs) in genetically engineered mouse models enables precise assessment of lesion burden, supporting mechanistic de-risking and target validation in cerebrovascular disease research. This approach enhances predictive confidence for early-stage therapeutic hypothesis testing and informs portfolio triage by providing robust, reproducible lesion quantification. Integration of high-resolution imaging with genetic disease models positions this workflow as a critical inflection point for translational continuity in vascular biology pipelines.
This method bridges early discovery and preclinical research by enabling hypothesis-driven genetic manipulation and quantitative phenotyping in mouse models, supporting lead identification and translational biomarker alignment.