Name: Met behulp van CRISPR/Cas9 Gene bewerken om te onderzoeken de oncogene activiteit van Mutant Calreticulin in Cytokine afhankelijke hematopoietische cellen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-01-05T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 21 s
Description: Leer CRISPR/Cas9-genbewerking om oncogene activiteit van mutant calreticulin te bestuderen in cytokine-afhankelijke hematopoëtische cellen. Deze methode biedt inzicht in driver-mutaties bij hematologische maligniteiten.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit werk werd gesteund door de NIH (R01HL131835), een Damon Runyon klinisch onderzoeker award en de Starr kanker Consortium.

1. sgRNA Design met behulp van Online Tools13
<ol><li>
Ontwerp sgRNAs gericht op het gen van belang met behulp van vrij beschikbare online tools.
	<ol>
<li>Kopieer en plak de NCBI referentie sequentie van het gen van belang in de brede Instituut sgRNA designer webtool: (http://portals.broadinstitute.org/gpp/public/analysis-tools/sgrna-design). Opmerking: Dit hulpprogramma identificeert sgRNA sequenties met decollete sites binnen exons en degenen die zich uitstrekken over de intron/exon grens maar nog steeds binnen de exon klieven.</li>
		<li>Download en open het uitvoerbestand van tekst in excel.</li>
		<li>Focus op de kolommen gevuld met de sequenties van de sgRNA en de sgRNA context sequenties. Merk op dat de sgRNA-sequenties niet het protospacer aangrenzende motief (PAM bevatten), maar de context sequenties doen.</li>
		<li>Merk op dat de score op de doelsoort werkzaamheid lijsten de voorspelde decollete efficiëntie score op een schaal van 0 tot 1 waar een score van 1 duidt op een hogere efficiëntie van de splitsing.</li>
		<li>Gebruik de 'soort'-functie van excel om ofwel de doelstellingen door de score van de werkzaamheid of door de locatie in het gen van het doel via de kolom 'Target Cut %'. Opmerking: Sorteren op locatie binnen het gen is handig voor het identificeren van sgRNAs die gericht zijn op een specifiek domein of exon van belang.</li>
		<li>Selecteer 3-6 sgRNAs die gericht zijn op het gebied van belang met hoge (> 0,6) op doelsoort zijn werkzaamheid scores. Op annuleerteken zitten nuttig om te weten wat voor soort mutaties mogelijk verantwoordelijk voor het fenotype dat gewenste (Zie Figuur 1 verklaren de targeting strategie voor calreticulin gebruikt). Opmerking: sgRNAs onder de voorgestelde drempel van de score van de 0.6 werkzaamheid moet worden overwogen als er een gebrek aan andere goede kandidaten.</li>
		<li>Gebruik de webtool voor MIT gRNA analyse naar scherm voor potentiële af-target effecten (http://crispr.mit.edu/). Voor elke sgRNA geselecteerd, voert u de volgorde van de doelgroep (met inbegrip van de PAM). Opmerking: De brede Instituut sgRNA designer webtool kan ook worden gebruikt aan het scherm voor off-target effecten (http://portals.broadinstitute.org/gpp/public/analysis-tools/sgrna-design).<ol>
<li>Merk op dat het analysehulpprogramma voor MIT sgRNA elk sgRNA scoort op een schaal van 1-100 waar een score van 100 geeft hogere specificiteit. Een score groter dan 70 is ideaal en vertegenwoordigt een sgRNA met minimale uit-target effecten. Deze website genereert ook een lijst van uit-target hits met hun locatie binnen het genoom en hoeveel incongruenties hebben zij elk met de kandidaat-gids. Opmerking: Off-target hits met vier incongruenties of meer worden beschouwd als veilige14. Af-target hits met minder dan vier incongruenties mogelijk problematisch als ze binnen exons14 vallen.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Kies 2-3 sgRNAs die richten op verschillende locaties in de regio van belang zijn voor het doel-gen, en die hebben de hoogste scores voor gepaarde decollete efficiëntie en af-target (Zie tabel 1 voor sgRNA opeenvolgingen richten exon 9 van Calr). Opmerking: Afhankelijk van de experimentele doelen, meer nadruk kan worden gelegd op de verschillende waarden, verkregen uit de genoemde instrumenten.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. klonen sgRNA Oligos13
<ol><li>
Genereren van de voorwaartse oligo
	<ol>
<li>Maak een lijst van sgRNA opeenvolgingen zonder de PAM-site.</li>
		<li>Een G toevoegen aan het einde 5' van de reeks als het 5' einde van de reeks van de sgRNA niet een G. is Opmerking: Deze G is nodig voor het maximaliseren van U6-gedreven sgRNA transcriptie niveau. Toevoeging van een G is nodig voor m1 sgRNA (tabel 1).</li>
		<li>De reeks "CACC" toevoegen aan het einde 5' van de G-geoptimaliseerde gids sequentie (geen PAM) (tabel 2) om het genereren van de overhangen vereist voor afbinding van ontharde oligos in BsmBI lentiGuide vector verteerd (zie stap 3).
</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Genereren van de omgekeerde oligo
	<ol>
<li>Omgekeerde als aanvulling op de G-geoptimaliseerde gids sequentie (geen PAM).</li>
		<li>De reeks "AAAC" toevoegen aan het einde 5' van de omgekeerde aangevuld G-geoptimaliseerde gids volgnummer (tabel 2).</li>
		<li>De ontworpen oligos van een primer synthese bedrijf bestellen</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Anneal en phosphorylate van oligos
	<ol>
<li>Voeg 1 µL van voorwaartse oligo (100 µM), 1 µL van omgekeerde oligo (100 µM), 1 µL van 10 x T4 afbinding buffer, 0,5 µL van T4 polynucleotide kinase (PNK) en 6.5 µL van H2O van de buis van een PCR (totaal = 10 µL).</li>
		<li>Het volgende programma uitvoeren in de thermocycler: 37 ˚C voor 30 min, 95 ˚C voor 5 min, helling van 95 tot en met 25 op 0.1 ° C/s.</li>
		<li>Verdun het reactieproduct op 1:250 in H2O.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. vertering van lentiGuide-Puro Vector13
<ol><li>
Digest lentiGuide-Puro vector
	<ol>
<li>Monteren van een 50 µL spijsvertering reactie met de volgende onderdelen: 5 µg circulaire plasmide, 2 µL (30 eenheden) van BsmBI restrictie-enzym, 5 µL van het restrictie-enzym buffer en maximaal 50 µL van H2O.</li>
		<li>De reactie voor 2 h uitvoeren bij 55 ° C. Na het eerste uur, voeg 1 µL meer van restrictie-enzym BsmBI toe.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Dephosphorylate de gesneden ruggengraat
	<ol>
<li>7 µL van fosfatase reactie buffer en 2 µL van fosfatase-enzym toevoegen aan de verteerd vector.</li>
		<li>Incubeer gedurende 30 minuten bij 37 ° C.</li>
	</ol>
</li>
	<li>PCR zuiveren de knippen en gedefosforyleerd ruggengraat met behulp van een commerciële kit. Opmerking: Plaatsvervanger de verstrekte roze gekleurde kolommen met de miniprep kit blauw gekleurde kolommen omdat deze beter geschikt voor grote plasmide maten. De opbrengst kan worden verhoogd door verwarming van de elutie buffer in een 90 ˚C warmte blok vóór elutie en eluerende het DNA uit de kolom twee keer aan het einde (de eluted DNA vanuit de eerste elutie terug door een tweede keer uitgevoerd).</li>
</ol>4. afbinding ofAnnealed Oligos in verteerd Backbone13
<ol><li>Voeg 50 ng van verteerd backbone, 1 µL van gegloeid oligo verdunning, 1 µL van 10 x T4 afbinding buffer, 1 µL van T4 ligase en maximaal 10 µL van H2O van een PCR-buis. Incubeer gedurende 1 uur bij kamertemperatuur</li>
	<li>Transform Stbl3 cellen met 2 µL van de afbinding reactie. Plaat op een lysogenie Bouillon (LB) agar bord met 100 µg/mL ampicilline en na een nacht bebroeden bij 37 ° C.</li>
	<li>Kies 3 kolonies en enten in een mini prep-cultuur.</li>
	<li>
Valideren van juiste oligo invoegen
	<ol>
<li>Een miniprep voor elke cultuur en volgorde via de oligo invoeging site vanaf een primer in de promotor van de U6 met behulp van een commerciële kit uitvoeren</li>
		<li>Een midi-prep- of een maxi-voorbereiding van de reeks-geverifieerd cultuur uitvoeren.</li>
	</ol>
</li>
</ol>5. generatie van cel lLines stabiel uiting van SpCas9
Opmerking: Dit protocol omvat de levering van pLX_TRC311-Cas9-plasmide door lentivirale infectie. Dit protocol wordt beschreven in detail voor lymfkliertest interleukine-3 (mIL-3) pro-B (Ba/F3) doelcellen, een cellijn van schorsing en kan worden aangepast aan andere soorten van de cellen met de gewenste cultuur voorwaarden voor elk celtype. Het kweekmedium voor Ba/F3 cellen bestaat uit RPMI, aangevuld met de foetale runderserum 10%, 1% penicilline/streptomycine/L-glutamine en 10 ng/mL lymfkliertest interleukine 3.
<ol><li>
Transfect HEK-293T cellen
	<ol>
<li>Beënt, 3 x 106 HEK-293T cellen per 10 cm weefselkweek schotel. Geplaatste cellen 's nachts voor Transfectie houden. Opmerking: HEK-293T cellen zijn een aanhangend cellijn en worden routinematig gebruikt voor de productie van het virus. De cellen worden bijgehouden in het DMEM aangevuld met de foetale runderserum 10%, 1% penicilline/streptomycine/L-glutamine. Cellen moeten ten tijde van de transfectie 80% heuvels.</li>
		<li>Pre warm verminderd serum media (Opti-MEM) en groeimedium.</li>
		<li>500 µL van verminderde serum media, 7 pLX_TRC311-Cas9-construct, 4 µg pCMV-VSV-G lentivirale verpakking plasmide en 4 µg psPAX2 lentivirale verpakking plasmide µg in een buis toevoegen Opmerking: Totale DNA per 10 cm schotel van 293T cellen is 15 µg.</li>
		<li>Meng het DNA goed en voeg 45 µL van transfectiereagens. Meng voorzichtig en laat het staan voor 20 min. Opmerking: Het is belangrijk dat verminderde serum media gebruiken omdat serum de complexe vorming tussen de transfectiereagens en plasmide DNA zal afremmen.</li>
		<li>Het oude medium in de 293T plaat gecombineerd en voeg 5 mL van nieuwe groeimedium.</li>
		<li>De mix van DNA en transfectie reagens op een verstandige manier van drop aan de plaat van de 293T toevoegen. Swirl zachtjes en Incubeer bij 37 ° C en 5% CO2 gedurende 24 uur.</li>
		<li>Oogst virale supernatant op 24 en 48 h post transfectie. Passeren van een 0,22 µm filter en aliquot in een cryovial buis (1.6 mL/buis en 1,5 mL zal worden gebruikt voor infectie).</li>
		<li>Winkel virale supernatant bij-80 ° C. Opmerking: lentivirale supernatant kan worden gebruikt binnen 6 maanden. Indien mogelijk, moeten spinfection transductions worden uitgevoerd met verse virus).</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Lentivirale infectie van cellen Ba/F3
	<ol>
<li>Ontdooi het virale supernatant op ijs, als bevroren.</li>
		<li>Centrifugeer cellen bij 300 x g gedurende 4 min.</li>
		<li>Gecombineerd supernatant en resuspendeer de cellen bij een concentratie van 3 x 106 cellen/mL.</li>
		<li>Voeg 500 µL van de geresuspendeerde cellen, 1,5 mL van het supernatans dat virale, 4 µL van polybrene (voorraad: 2 mg/mL) en 10 ng/mL van m-IL3 in een 6-well weefselkweek plaat. Zorg ervoor dat een niet-geïnfecteerde goed met 1,5 mL media in plaats van virale bovendrijvende substantie als een besturingselement. Nota: Het bedrag van virale bovendrijvende substantie toegevoegd moet overeenkomen met een veelheid aan infectie (MOI) < 1.</li>
		<li>Centrifugeer de plaat bij 440 x g gedurende 120 minuten bij 37 ° C.</li>
		<li>Nemen van de plaat uit de centrifuge en plaats in de 37 ° C en 5% CO2 incubator en laat 's nachts groeien.</li>
		<li>Spin down de cellen na 24 h en resuspendeer met 5 mL verse warme media in een 6-well-plate.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Selectie van Cas9 besmette cellen
	<ol>
<li>Spin down de cellen en resuspendeer met verse warme media, aangevuld met 5 µg/mL blasticidin, 48 h post spinfection.</li>
		<li>Selecteer de cellen gedurende 9 dagen met blasticidin of totdat niet-geïnfecteerde (negatieve) controle cellen dood zijn.</li>
		<li>Nadat de selectie voltooid is, overbrengen in de resistente cellen medium met een lagere concentratie van blasticidin.</li>
	</ol>
</li>
</ol>6. verslaggever Assay voor Cas9 activiteit15
<ol><li>Transduce ouderlijke cellen en cellen uiten stabiel Cas9 met pXPR-011 door lentivirale infectie (Zie stappen 5.1-5.2). Opmerking: Deze vector bevat zowel GFP en een gids GFP targeting. Cellen met actieve Cas9 zal resulteren in een afname van GFP (Figuur 2).</li>
	<li>Selecteer de cellen gedurende 3 dagen met 2 µg/mL puromycin, 48 h post spinfection.</li>
	<li>Analyseer de monsters voor GFP expressie door stroom cytometry. Opmerking: Een GFP-vermindering van 50% of meer vertegenwoordigt optimale Cas9 activiteit. Een hogere concentratie van blasticidin selectie kan worden gebruikt om het verhogen van de Cas9 activiteit als minder dan een korting van 50% wordt waargenomen. Niet alle cellijnen kunnen tolereren blasticidin selectie. In dit geval, kan gebruik van Cas9 vectoren met andere selectie cassettes nodig zijn. Bovendien kunnen niet alle cellijnen stabiele uitdrukking van Cas9 tolereren. In dit geval, kan voorbijgaande transfectie van Cas9 worden gebruikt.</li>
</ol>7. Spinfection van sgRNAs in Cas9 uitdrukken van cellen
<ol><li>Stappen 5.1-5.2 voor lentivirale van het sgRNAs in cellen van belang. Opmerking: Vervang In stap 5.1.3, pLX_TRC311-Cas9 constructie met de constructie van de lentiGuide-Puro gevalideerd van sectie 4.</li>
	<li>48 h spinfection post, selecteert u de cellen voor 3 dagen met 2 µg/mL puromycin.</li>
	<li>De resistente cellen omzetten in medium met een lagere concentratie van antibiotica en blijven selectie nog 4 dagen te voorzien in voldoende bewerken.</li>
</ol>8. Ba/F3 cellulaire transformatie en positieve selectie met behulp van de terugtrekking van de m-IL3
Opmerking: Deze test is beschreven voor de doelcellen Ba/F3 voor mIL-3 maar kon worden toegepast op elke regel van de afhankelijke cel cytokine.
<ol><li>Spin down exponentieel groeit Ba/F3 cellen ectopically uiten van Cas9 en de sgRNA van belang.</li>
	<li>Gecombineerd supernatant en wassen van de cellen met 5 mL van fosfaat gebufferde zoutoplossing (PBS).</li>
	<li>Spin down de cellen en herhaal de stap wassen in 8.2 viermaal (deze stap zorgt u ervoor dat de media is gratis voor IL-3).</li>
	<li>De PBS gecombineerd en resuspendeer de cellen in 5 mL verse media zonder IL-3.</li>
	<li>Met behulp van een hemocytometer of een cel levensvatbaarheid analyzer cellen tellen.</li>
	<li>Zaad cellen in drievoud in een 6-well weefselkweek plaat duikt met een concentratie van 1 x 105 cellen/mL in een totaal volume van 2 mL verse media zonder IL-3.</li>
	<li>Toezicht op en de cellen tellen om de 2 dagen voor een totaal van 8 dagen. Opmerking: Ba/F3 cellen ontbreken van IL-3 meestal sterven 2 dagen post IL-3 honger. Het is belangrijk om een negatieve controle onder de bepaling (meestal een niet-targeting gids als een besturingselement wordt gebruikt).</li>
</ol>9. screening voor het bewerken van CRISPR-On-target
<ol><li>Ontwerpen van CRISPR screening inleidingen bedrijven stroomopwaarts en stroomafwaarts van de breukzijde van de sgRNA Opmerking: gebruik inleidingen ten minste 100 bp van de voorspelde breukzijde om detectie zou niet worden beïnvloed door een grote inbrengen en/of schrapping (indel) op de doelsite sgRNA.</li>
	<li>Isoleer genomic DNA (gDNA) uit getransformeerde cellen (aan het einde van de groeicurve) en uit cellen pre-cytokine terugtrekking. Opmerking: Altijd voorzien van cellen de niet-targeting gids als een besturingselement voor het bewerken van gen overexpressing. GDNA uit cellen isoleren vóór en na transformatie zal identificeren van de klonen die positief waren geselecteerd voor en een proliferatieve voordeel hebben.</li>
	<li>Monteren van een 50 µL PCR met de volgende onderdelen: 25 µL van 2 x PCR-mix, 1 µL van voorwaartse primer (10 µM), 1 µL van omgekeerde primer (10 µM), 50-100 ng van gDNA en H2O tot 50 µL. Opmerking: Talrijke HiFi-polymerase kunnen worden gebruikt in stap 9.3.</li>
	<li>Voorbeelden uitvoeren in een thermocycler met behulp van de volgende parameters: 95° C gedurende 1 minuut, 30 cycli van (94 ° C gedurende 1 min, 52 ° C gedurende 30 s, 72 ° C gedurende 30 s), en 72 ° C gedurende 10 minuten. Deze PCR is geoptimaliseerd voor de inleidingen van de Calr vermeld in tabel 3. Optimaliseren van PCR voorwaarden voor de primer paar ontworpen in stap 9.1 op basis van het testen op gDNA.</li>
	<li>5 µL van de monsters worden uitgevoerd op een 2% agarose gel op 10 V/cm met behulp van 1 x Tris-acetaat-EDTA (TAE)-buffer. Onderzoeken van de monsters voor de aanwezigheid / afwezigheid van een versterkte band overeenkomt in grootte tot het gen van belang.</li>
	<li>De rest van de PCR-reactie (45 µL) gebruiken voor het uitvoeren van een PCR-zuivering.</li>
	<li>Kloon de waarbij met een PCR klonen kit in een plasmide-vector. Bijvoorbeeld worden pGEM T-gemakkelijk vectoren meestal gebruikt.</li>
	<li>Het plasmide omvormen van Stbl3 cellen of andere compatibele cellen en plaat op LB agar borden met de relevante antibioticum. Selecteer 10-20 kolonies, mini prep elkaar, en elk kloon onverminderd Sanger sequencing te karakteriseren de microdeleties gemaakt op basis van het bewerken van CRISPR/Cas9. Opmerking: Indien gewenst, eencellige fluorescentie geactiveerd cel die sorteren (FACS) kan worden uitgevoerd op de bulk bewerkt bevolking een kloon met een specifieke indel isoleren. Bovendien kan volgende generatie sequencing (NGS) methoden worden gebruikt om meer krachtig kwantificeren op doelsoort bewerken met behulp van diepe rangschikken van PCR waarbij verspreid over de regio van de target sgRNA. Bijvoorbeeld, kan bijhouden van microdeleties door ontleding of tij worden gebruikt in plaats van subcloning precies bepalen het spectrum en de frequentie van gerichte mutaties gegenereerd in een pool van cellen (https://tide.nki.nl/#about)16.</li>
</ol>

<ol><li>DeWitt, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selection-free+genome+editing+of+the+sickle+mutation+in+human+adult+hematopoietic+stem%2Fprogenitor+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Trans+Med%22%5BJournal%5D)">Selection-free genome editing of the sickle mutation in human adult hematopoietic stem/progenitor cells.</a> Sci Trans Med. 8, 360(2016).</li>
<li>Sander, J. D., Joung, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CRISPR-Cas+systems+for+editing%2C+regulating+and+targeting+genomes%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">CRISPR-Cas systems for editing, regulating and targeting genomes.</a> Nat Biotechnol. 4, 347-355 (2014).</li>
<li>Gaj, T., Gerbach, C. A., Barbas, C. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ZFN%2C+TALEN%2C+CRISPR%2FCas-based+methods+for+genome+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">ZFN, TALEN, CRISPR/Cas-based methods for genome engineering.</a> Trends Biotechnol. 31 (7), 397-405 (2013).</li>
<li>Jinek, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+programmable+dual-RNA-guided+DNA+endonuclease+in+adaptive+bacterial+immunity%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">A programmable dual-RNA-guided DNA endonuclease in adaptive bacterial immunity.</a> Science. 337 (6096), 816-821 (2012).</li>
<li>Wiedenheft, B., Samuel, S. H., Doudna, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA-guided+genetic+silencing+systems+in+bacteria+and+archea%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">RNA-guided genetic silencing systems in bacteria and archea.</a> Nature. 482 (7385), 331-338 (2012).</li>
<li>Slaymaker, I. M., Gao, L., Zetsche, B., Scott, D. A., Yan, W. X., Zhang, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rationally+engineered+Cas9+nucleases+with+improved+specificity%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Rationally engineered Cas9 nucleases with improved specificity.</a> Science. 351 (6268), 84-88 (2016).</li>
<li>Ran, F. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Double+nicking+by+RNA-guided+CRISPR+Cas9+for+enhanced+genome+editing+specificity%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Double nicking by RNA-guided CRISPR Cas9 for enhanced genome editing specificity.</a> Cell. 154 (6), 1380-1389 (2013).</li>
<li>Larson, M. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CRISPR+interference+%28CRISPRi%29+for+sequence-specific+control+of+gene+expression%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">CRISPR interference (CRISPRi) for sequence-specific control of gene expression.</a> Nat Protoc. 8 (11), 2180-2196 (2013).</li>
<li>Wang, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((One-step+generation+of+mice+carrying+reporter+and+conditional+alleles+by+CRISPR%2FCas-mediated+genome+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">One-step generation of mice carrying reporter and conditional alleles by CRISPR/Cas-mediated genome engineering.</a> Cell. 153 (4), 910-918 (2013).</li>
<li>Kim, H. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CRISPR%2FCas9-mediated+Gene-knockout+screens+and+target+identification+via+Whole+genome+sequencing+uncover+host+genes+required+for+picornavirus+infection%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">CRISPR/Cas9-mediated Gene-knockout screens and target identification via Whole genome sequencing uncover host genes required for picornavirus infection.</a> J Biol Chem. 10, 1074(2017).</li>
<li>Heckl, D., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4160386/">Generation of mouse models of myeloid malignancies with combinatorial genetic lesions using CRISPR-Cas9 genome editing.</a> Nat Biotechnol. 32 (9), 941-946 (2014).</li>
<li>Daley, G. Q., Baltimore, D. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/3143116">Transformation of an interleukin 3-dependent hematopoietic cell line by the chronic myelogenous leukemia-specific bcr/abl protein.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 85, 9312-9316 (1988).</li>
<li>Ran, F. A., et al. <a target="_blank" href="https://www.nature.com/nprot/journal/v8/n11/full/nprot.2013.143.html">Genome engineering using the CRISPR-Cas9 system.</a> Nat Protoc. 8 (11), 2281-2308 (2013).</li>
<li>Haeussler, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+off-target+and+on-target+scoring+algorithms+and+integration+into+the+guide+RNA+selection+tool+CRISPOR%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Biol%22%5BJournal%5D)">Evaluation of off-target and on-target scoring algorithms and integration into the guide RNA selection tool CRISPOR.</a> Genome Biol. 17, 148(2016).</li>
<li>Doench, J. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rational+design+of+highly+active+sgRNAs+for+CRISPR-Cas9-mediated+gene+inactivation%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Rational design of highly active sgRNAs for CRISPR-Cas9-mediated gene inactivation.</a> Nat Biotechnol. 32, 1262-1267 (2014).</li>
<li>Brinkman, E. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Easy+quantitative+assessment+of+genome+editing+by+sequence+trace+decomposition%5BTitle%5D)+AND+%22Nucl+Acid+Res%22%5BJournal%5D)">Easy quantitative assessment of genome editing by sequence trace decomposition.</a> Nucl Acid Res. 42, e168(2014).</li>
<li>Klampfl, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Somatic+mutations+of+calreticulin+in+myeloproliferative+neoplasms%5BTitle%5D)+AND+%22N+Engl+J+Med%22%5BJournal%5D)">Somatic mutations of calreticulin in myeloproliferative neoplasms.</a> N Engl J Med. 369, 2379-2390 (2013).</li>
<li>Nangalia, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Somatic+CALR+mutations+in+myeloproliferative+neoplasms+with+nonmutated+JAK2%5BTitle%5D)+AND+%22N+Engl+J+Med%22%5BJournal%5D)">Somatic CALR mutations in myeloproliferative neoplasms with nonmutated JAK2.</a> N Engl J Med. 369, 2391-2405 (2013).</li>
<li>Elf, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mutant+Calreticulin+requires+both+its+mutant+C-terminus+and+the+thrombopoietin+receptor+for+oncogenic+transformation%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Discovery%22%5BJournal%5D)">Mutant Calreticulin requires both its mutant C-terminus and the thrombopoietin receptor for oncogenic transformation.</a> Cancer Discovery. 6 (4), 368-381 (2016).</li>
<li>Bauer, D. E., Canver, M. C., Orkin, S. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+Genomic+Deletions+in+Mammalian+Cell+lines+via+CRISPR%2FCas9%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Generation of Genomic Deletions in Mammalian Cell lines via CRISPR/Cas9.</a> J. Vis. Exp. (95), e52118(2015).</li>
<li>Watanabe-Smith, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+acquired+mutations+in+transgenes+arising+in+Ba%2FF3+transformation+assays%3A+findings+and+recommendations%5BTitle%5D)+AND+%22Oncotarget%22%5BJournal%5D)">Analysis of acquired mutations in transgenes arising in Ba/F3 transformation assays: findings and recommendations.</a> Oncotarget. 8, 12596-12606 (2017).</li>
<li>Fu, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improving+CRISPR-Cas+nuclease+specificity+using+truncated+guide+RNAs%5BTitle%5D)+AND+%22NatBiotechnol%22%5BJournal%5D)">Improving CRISPR-Cas nuclease specificity using truncated guide RNAs.</a> NatBiotechnol. 32, 279-284 (2014).</li>
</ol>

We hebben geen conflicten van belang aan dit verslag gerelateerde.

Hier tonen we het gebruik van CRISPR/Cas9 gene bewerken om te bestuderen van de biologische functie van CALR mutaties in hematopoietische cellen. Het succes van dit protocol is sterk afhankelijk van meerdere factoren. Ten eerste is het belangrijk om te weten wat voor soort mutaties mogelijk verantwoordelijk voor het fenotype dat gewenst is. In dit protocol, de uitlezing is de transformatie van Ba/F3 cellen mIL-3 onafhankelijkheid en de soorten mutaties zijn microdeleties in exon 9 van CALR. Echter, als ...

CRISPR/Cas9 technologie heeft onlangs een revolutie teweeggebracht in het bewerken van gerichte genoom in levende cellen en organismen. Het is uitgegroeid tot een zeer krachtig hulpmiddel voor biomedisch onderzoek en wordt momenteel gebruikt als een potentiële avenue voor behandeling van genetische ziekten1. De basis voor alle genoom bewerkingsgereedschappen steunt op de oprichting van een nuclease-geïnduceerde DNA dubbele gestrande pauze (DSB) aan de genomic locus worden gewijzigd. De DSBs kunnen worden gerepareerd door niet-homologe einde-lid te worden (NHEJ) of homologie geleide reparatie (HDR)2,3. Het voordeel van de Cas9 nuclease over andere genoom engineering nucleasen, zoals zink vinger nucleasen (ZFNs) en de transcriptie activator-achtige effector nucleasen (TALENs) is de afhankelijkheid van RNA voor het targeten van de nuclease naar een gewenste opeenvolging van DNA, vergeleken om de eiwit-DNA interacties gevonden in ZFNs en TALENs2,3.
Na de ontdekking van de CRISPR/Cas9 nuclease traject als een adaptieve immuunsysteem in prokaryotische cellen4,5, is veel moeite besteed aan de aanpassing van het traject voor gebruik in zoogdieren cellijnen en model organismen2, 3. als een hulpmiddel voor het bewerken van het gen, de CRISPR/Cas9-pathway maakt gebruik van twee hoofdonderdelen: de Streptococcus pyogenes (Sp) afgeleid Cas9 nuclease en sgRNAs gericht op het gen van belang2,3. De sgRNA bestaat uit 20 nucleotiden die directe Cas9 naar een specifieke site op het genoom door RNA-DNA basenpaar complementariteit2,3. De doelsite van de sgRNA moet liggen naast een protospacer aangrenzende motief (PAM) in de vorm van 5' NGG, die is erkend door de SpCas9 nuclease. Met deze tools kan Cas9 worden omgeleid naar een DNA-sequentie door het ontwerpen van sgRNAs dat doel de regio van belang. Daarnaast Sp afgeleid Cas9, zijn er extra varianten voor Cas9 met verschillende functies afhankelijk van de specifieke toepassing. Er zijn bijvoorbeeld Cas9 varianten met hogere specificiteit voor het bewerken van de aan de doelsoort of single-strand decollete capaciteit voor DNA plukt6,7. Bovendien is onlangs catalytically inactieve Cas9 ontwikkeld voor transcriptionele voorschrift8. Wetenschappers hebben nu de CRISPR/Cas9-systeem gebruikt voor een verscheidenheid van toepassingen, zoals gene knockin en knock-out te bestuderen van de biologische functies van genen9, verlies-van-functie en winst-van-functie bibliotheek schermen10 en genetische Engineering van model organismen11.
In dit protocol combineren we de methodologie van de CRISPR/Cas9 met de bepaling van de cellulaire transformatie Ba/F3 te begrijpen van de biologische functie van CALR mutaties. BA/F3 cellen zijn een lymfkliertest IL-3 hematopoietische doelcel lijn die kan worden gerenderd IL-3 onafhankelijke op expressie van bepaalde oncogenen zoals BCR-ABL12. Om te begrijpen of mutant calreticulin Ba/F3 cellen cytokine onafhankelijke groei kan transformeren, we gericht exon 9 van de endogene Calr locus met behulp van CRISPR/Cas9 te voeren indel mutaties en trok vervolgens IL-3 uit de cellen toe te passen een positieve selectiedruk, met als doel Recapitulerend winst-van-functie CALR mutaties gevonden in MPN patiënten. Het protocol bevat het ontwerp, het klonen en de levering van sgRNAs, de ontwikkeling van stabiele Cas9 waarin cellen en screening voor CRISPR op doelsoort gene bewerken. Dit protocol kan worden toegepast op verschillende genen en verschillende cytokine-afhankelijke cellijnen van belang en is vooral waardevol in modellering en het bestuderen van de biologische functie van genen betrokken bij kanker.

<table><tbody><tr><td>BsmBI</td><td>New England Biolabs</td><td>R0580L</td><td></td></tr><tr><td>Blasticidin</td><td>Sigma Aldrich</td><td>15025</td><td></td></tr><tr><td>Puromycin</td><td>Life Technologies</td><td>A1113803</td><td></td></tr><tr><td>Stbl3 cells</td><td>Life Technologies</td><td>C737303</td><td></td></tr><tr><td>TransIT-LT1</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>MIR2300</td><td></td></tr><tr><td>Opti-MEM</td><td>Life Technologies</td><td>51985034</td><td></td></tr><tr><td>RPMI</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>MT10040CV</td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>10-017-CV</td><td></td></tr><tr><td>Fetal bovine serum (FBS)</td><td>Omega Scientific</td><td>FB-11</td><td></td></tr><tr><td>Penicillin/streptomycin/L-glutamine</td><td>Life Technologies</td><td>10378016</td><td></td></tr><tr><td>mIL-3</td><td>Peprotech</td><td>213-13</td><td></td></tr><tr><td>psPAX2</td><td>Addgene</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>pCMV-VSV-G</td><td>Addgene</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>pLX_TRC311-Cas9</td><td>Addgene</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>polybrene</td><td>Sigma Aldrich</td><td>H9268</td><td></td></tr><tr><td>pXPR-011</td><td>Addgene</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Phosphate Buffered Saline (PBS)</td><td>Genessee Scientific</td><td>25-507</td><td></td></tr><tr><td>TAE buffer</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>FERB49</td><td></td></tr><tr><td>LentiGuide-Puro</td><td>Addgene</td><td>Plasmid #52963</td><td></td></tr><tr><td>PNK</td><td>New England Biolabs</td><td>M0201S</td><td></td></tr><tr><td>T4 ligase</td><td>New England Biolabs</td><td>M0202S</td><td></td></tr><tr><td>PCR purification kit</td><td>Qiagen</td><td>28104</td><td></td></tr><tr><td>Miniprep kit</td><td>Qiagen</td><td>27104</td><td></td></tr></tbody></table>

met behulp van crispr/cas9 gene bewerken om te onderzoeken de oncogene activiteit van mutant calreticulin in cytokine afhankelijke hematopoietische cellen

Using CRISPR/Cas9 Gene Editing to Investigate the Oncogenic Activity of Mutant Calreticulin in Cytokine Dependent Hematopoietic Cells

Geclusterde regelmatig interspaced korte palindromische herhaalt (CRISPR) is een adaptieve immuniteitssysteem in prokaryoten dat heeft geweest voorzien door wetenschappers voor het genereren van RNA-geleide nucleasen, zoals CRISPR-geassocieerde (Cas) 9 voor site-specific eukaryotische genoom bewerken. Genoom techniek door Cas9 wordt gebruikt voor het efficiënt, gemakkelijk en krachtig wijzigen endogene genen in vele biomedically relevante zoogdieren cellijnen en organismen. Hier laten we een voorbeeld van het gebruik van de methodologie van de CRISPR/Cas9 om te begrijpen van de biologische functie van specifieke genetische mutaties. We calreticulin (CALR) mutaties in lymfkliertest interleukine-3 (mIL-3) pro-B (Ba/F3) doelcellen model door levering van één gids RNAs (sgRNAs) gericht op de endogene Calr locus in de specifieke regio waar inbrengen en/of schrapping (indel ) CALR mutaties optreden bij patiënten met myeloproliferatieve gezwellen (MPN), een soort bloedkanker. Dubbele strand einden (DSBs) maken de sgRNAs in het gerichte gebied dat worden gerepareerd door niet-homologe einde deelname aan (NHEJ) zodat microdeleties van verschillende grootte. We gebruiken dan de standaard Ba/F3 cellulaire transformatie bepaling te begrijpen van het effect van fysiologische niveau expressie van mutaties van de Calr op hematopoietische cellulaire transformatie. Deze aanpak kan worden toegepast op andere genen te bestuderen van hun biologische functie in verschillende zoogdieren cellijnen.

Met behulp van de methode beschreven hier, is het doel van dit experiment het bestuderen van de functionele gevolgen van de invoering van indel mutaties aan de endogene locus Calr op hematopoietische Celtransformatie. De CRISPR/Cas9-systeem is gebruikt als een instrument om endogene Calr mutaties in Ba/F3 cellen. Twee sgRNAs werden gekozen te richten exon 9 van Calr (Figuur 1), in de regio waar invoegingen en/of schrapping (indel) m...

Gerichte gene bewerken met behulp van CRISPR/Cas9, heeft het inzicht in de biologische functies van genen aanzienlijk vergemakkelijkt. Hier, gebruiken we de methode van de CRISPR/Cas9 voor model calreticulin mutaties in cytokine-afhankelijke hematopoietische cellen om hun oncogene activiteit te bestuderen.

Met behulp van CRISPR/Cas9 Gene bewerken om te onderzoeken de oncogene activiteit van Mutant Calreticulin in Cytokine afhankelijke hematopoietische cellen

Clustered regularly interspaced short palindromic repeats (CRISPR) is an adaptive immunity system in prokaryotes that has been repurposed by scientists to ...

Het algemene doel van dit experiment is om CRISPR/Cas9-genbewerking te gebruiken om calreticulinformutaties in cytokine-afhankelijke hematopoëtische cellen te modelleren om hun oncogeen activiteit te bestuderen. Deze methode kan helpen om belangrijke vragen in het veld van hematologische maligniteiten te beantwoorden, zoals de biologische functie van driver-mutaties wanneer ze op fysiologische niveaus worden uitgedrukt. Het belangrijkste voordeel van deze techniek is dat het het CRISPR/Cas9-genbewerkingssysteem gebruikt om de biologische functie van genen die betrokken zijn bij kanker te modelleren en te bestuderen.Om de oligo's te annealen en fosforyleren, voeg de reagentia toe aan een totaal van 10 microliter in een PCR-buisje dat op ijs wordt bewaard. Stel het programma in de thermocycler in. Gebruik water om de reactie na de cyclus te verdunnen.Om de lentiGuide-Puro vector te verteren, bereid 50 microliter van de digestor reactie. Begin vervolgens de verteringsreactie bij 55 graden Celsius op een heat block. Voeg na een uur een extra microliter BsmB1 restrictie-enzym toe en zet de reactie nog een uur voort.Om het ruggengraat te defosforyleren, voeg zeven microliter fosfatase reactiebuffer en twee microliter fosfatasenzym toe aan het verteerde vector. Bewaar vervolgens het mengsel gedurende 30 minuten op 37 graden Celsius. Zuiver het al gesneden en gedefosforyleerde ruggengraat met behulp van een commercieel kit.Om het ligatiemengsel voor te bereiden, voeg 15 nanogram van gesneden ruggengraat en andere reagentia toe aan een PCR-buisje op ijs en pas het volume aan tot 10 microliter met water. Bewaar de reactie op kamertemperatuur gedurende een uur. Transformeer vervolgens STBL3-compatibele cellen met twee microliter van het ligatiemengsel.Plak vervolgens op de lysogeny bouillon agar plaat met 100 microgram per milliliter ampicilline. Bewaar de plaat daarna een nacht bij 37 graden Celsius. Kies drie kolonies en inoculeer ze.Voer een mini prep uit voor elke cultuur en sequence de oligo invoegingsplaats met een U6 promotorregio primer. Zaai hek293t cellen op een 10 centimeter schaal. Laat het een nacht incuberen.Om het DNA-mengsel voor transfectie voor te bereiden, pipet 45 microliter van het transfectie reagens naar het DNA. Gebruik een pipet om het DNA en het transfectiereagens voorzichtig te mengen en laat het 20 minuten staan. Voeg vervolgens het DNA transfectiemengsel druppelsgewijs toe aan de gezaaide cellen.Zwiep de platen voorzichtig. En incubeer bij 5% koolstofdioxide en 37 graden Celsius gedurende een dag. Verzamel het virusbevattende supernatant na 24 en 48 uur door het door een 0.22 micrometer filter te laten lopen.En verdeel 1,6 milliliter supernatant in elke cryo vial. Aspireer vervolgens het supernatant en resuspendeer de Ba/F3 cellen in media door de cellen meerdere keren op en neer te pipetten. Voeg 500 microliter van de gesuspendeerde cellen, 1,5 milliliter van het virale supernatant, vier microliter polybrene en 10 nanogram per milliliter van muis interleukine 3 toe in een zes-well tissuecultuurplaat.Centrifugeer de plaat bij 440 G gedurende 120 minuten bij 37 graden Celsius. Na centrifugatie, verplaats de plaat naar een incubator voor overnachtelijke incubatie bij 37 graden Celsius met 5% koolstofdioxide. Hierna centrifugeert u de cellen bij 440 G gedurende drie minuten.En resuspendeer in vijf milliliter vers warm media in een zes-well plaat. Om de Cas9 geïnfecteerde cellen te selecteren, centrifugeert u de cellen eerst. En resuspendeer vervolgens in vers warm media aangevuld met vijf microgram per milliliter blasticidin na 48 uur van spinfectie.Selecteer cellen gedurende negen dagen met blasticidin totdat alle ongeïnfecteerde cellen dood zijn. Transfer vervolgens de resistente cellen naar een medium met één microgram per milliliter blasticidin. Transduceer de ouderlijke cellen en de cellen die stabiel Cas9 tot expressie brengen met pXPR-011 reporter construct via lentivirale infectie.Selecteer cellen gedurende drie dagen met twee microgram per milliliter puromycine, 48 uur na spinfectie. Infecteer de Cas9-expresserende cellen met single guide ribonucleïnezuur met behulp van lentivirus. Gebruik vervolgens twee microgram per milliliter puromycine om de cellen gedurende drie dagen, 48 uur na spinfectie, te selecteren.Binnen de exponentieel groeiende Ba/F3 cellen die ectopisch Cas9 en de enkele guide ribonucleïnezuur van belang tot expressie brengen. Aspireer het supernatant en was de cellen met vijf milliliter fosfaatgebufferd zoutwater. Centrifugeer de cellen en was ze drie keer met fosfaatgebufferd zoutwater.Tel vervolgens het aantal cellen met behulp van een celviabiliteitsanalysator. Zaai vervolgens cellen in drievoudigheid in twee milliliter vers media zonder interleukine 3 in zes-well cultuurplaten. Begin de cellen elke twee dagen gedurende acht dagen te monitoren en te tellen.Representatieve flow-psychometrische gegevens die de Cas9-activiteit in ouderlijke Ba/F3-cellen en Ba/F3-cellen die Cas9 overexpresseren, tonen hier aan. Het groen fluorescerende proteïne signaal wordt met 76% verminderd in Ba/F3-cellen die Cas9 overexpresseren, wat wijst op robuuste Cas9-activiteit, terwijl in ouderlijke Ba/F3-cellen het groen fluorescerende proteïne signaal op 100% blijft. Representatieve groeicurven voor cellen die de oncogeen activiteit van calreticuline tonen, worden hier weergegeven. CRISPR/Cas9-gemedieerde plus één basepaar frame shift mutatie werd geïntroduceerd in het calreticuline exon negen locus met behulp van m1 en m2 single guide RNase.Groeicurven voor calreticuline gerichte Ba/F3-thrombopoietine receptor Cas9-cellen laten muisinterleukine 3 onafhankelijke groei zien. De groeicurven voor de andere celtypen laten echter geen cytokine-onafhankelijke groei zien. Sequencresultaten bevestigen de on-target bewerking van endogene calreticuline exon negen in calreticuline gerichte Ba/F3-thrombopoietine receptor Cas9-cellen met behulp van de m1 en m2 single guide RNase.</

using-crisprcas9-gene-editing-to-investigate-oncogenic-activity

Research

JoVE Journal

Cancer Research

Kankeronderzoek

Een protocol voor snelle CRISPR/Cas9-gemedieerde gene verstoring van muis en mens primaire hematopoietische cellen wordt beschreven in dit artikel. Cas9-sgRNA ribonucleoproteins worden ingevoerd via electroporation met sgRNAs gegenereerd via in vitro transcriptie en commerciële Cas9. Hoge bewerken rendementen worden bereikt met beperkte tijd en de financiële kosten.

Hoogefficiënte Gene verstoring van lymfkliertest en menselijke hematopoïetische voorlopercellen door CRISPR/Cas9

Met behulp van een voorgemonteerd Cas9 is ribonucleoprotein complex (RNP) een krachtige methode voor het bewerken van nauwkeurige en efficiënte genoom. Hier, wijzen wij op het nut ervan over een breed scala van cellen en organismen, met inbegrip van de primaire menselijke cellen en beide klassieke en opkomende modelorganismen.

Verbeterde genoom bewerken met Cas9 Ribonucleoprotein in verschillende cellen en organismen

Beschreven zijn protocollen voor de zeer efficiënte genoom bewerking van muriene hematopoietische stam en voorlopercellen (HSPC) door het CRISPR/Cas9-systeem om snel muismodel systemen te ontwikkelen met hematopoietische systeemspecifieke genmodificaties.

Lentivirale CRISPR/Cas9-gemedieerde genoom bewerking voor de studie van hematopoietische cellen in ziekte modellen

Directe levering van voorgemonteerde Cas9/gids RNA RiboNucleoProteïne-complexen is een snel en efficiënt middel voor genoom bewerking in hematopoietische cellen. Hier gebruiken we deze aanpak om een RUNX1 intronic geluiddemper te verwijderen en de transcriptionele responsen in OCI-AML3 leukemische cellen te onderzoeken.

Onderzoek naar de transcriptionele rol van een RUNX1 Intronic geluiddemper door crispr/Cas9 Ribonucleoprotein in acute myeloïde leukemie cellen

Ontwikkeling van Murine modellen met specifieke genen gemuleerd in hoofd-en nekkanker patiënten is nodig voor het begrijpen van neoplasie. Hier presenteren we een protocol voor in vitro transformatie van primaire muriene tong cellen met behulp van een adeno-geassocieerde virus-Cas9 systeem om Murine HNC cellijnen met specifieke genomische veranderingen te genereren.

In vitro oprichting van een genetisch gemanipuleerde Muriene hoofd en nekkanker cellijn met behulp van een adeno-geassocieerde virus-Cas9 systeem

Het huidige protocol beschrijft een geoptimaliseerde hematopoietische stam- en voorlopercel (HSPC) kweekprocedure voor de robuuste engraftment van gen-bewerkte cellen in vivo.

CRISPR/Cas9-genbewerking van hematopoietische stam- en voorlopercellen voor gentherapietoepassingen

Nieuwe strategieën om somatische mutaties in hematopoietische stam- en voorlopercellen (HSPC's) getrouw te modelleren, zijn nodig om de hematopoëtische stamcelbiologie en hematologische maligniteiten beter te bestuderen. Hier wordt een protocol beschreven om heterozygote gain-of-function mutaties in HSPC's te modelleren door het gebruik van CRISPR/Cas9 en dual rAAV donortransductie te combineren.

Engineering oncogene heterozygote gain-of-function mutaties in menselijke hematopoietische stam- en voorlopercellen

We presenteren een protocol voor retrovirale transductie van gids-RNA in primaire T-cellen van Cas9 transgene muizen, en bieden een efficiënt alternatief voor genbewerking bij het bestuderen van Th17-differentiatie.

Retrovirale CRISPR/Cas9-gemedieerde gentargeting voor de studie van Th17-differentiatie in vitro

De THP-1-cellijn wordt veel gebruikt als model om de functies van menselijke monocyten/macrofagen in verschillende biologiegerelateerde onderzoeksgebieden te onderzoeken. Dit artikel beschrijft een protocol voor efficiënte CRISPR-Cas9-gebaseerde engineering en isolatie van single-cell kloons, waardoor de productie van robuuste en reproduceerbare fenotypische gegevens mogelijk wordt.

Op elektroporatie gebaseerde CRISPR-Cas9-gemedieerde genknock-out in THP-1-cellen en isolatie van eencellige klonen

Hier presenteren we een protocol dat CRISPR/Cas9-technologie integreert met de Cell Counting Kit-8 (CCK-8)-test om kandidaatgenen te identificeren die cruciaal zijn voor de abnormale proliferatieve capaciteit van hematopoëtische stam- en voorlopercellen.

Evaluatie van abnormale groeigerelateerde genen van hematopoëtische stam- en voorlopercellen door CRISPR/Cas9-technologie te combineren met celtelling

Leer CRISPR/Cas9-genbewerking om oncogene activiteit van mutant calreticulin te bestuderen in cytokine-afhankelijke hematopoëtische cellen. Deze methode biedt inzicht in driver-mutaties bij hematologische maligniteiten.

Met behulp van CRISPR/Cas9 Gene bewerken om te onderzoeken de oncogene activiteit van Mutant Calreticulin in Cytokine afhankelijke hematopoietische cellen (Video) | JoVE Journal

Met behulp van CRISPR/Cas9 Gene bewerken om te onderzoeken de oncogene activiteit van Mutant Calreticulin in Cytokine afhankelijke hematopoietische cellen

Meer video's verkennen