Name: Systematische beoordeling van welzijn in muizen voor Procedures gebruik van algemene anesthesie (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-03-20T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 50 s
Description: Leer een protocol om het welzijn van muizen te beoordelen na algemene anesthesie. Deze methode biedt wetenschappelijke data voor ernstclassificatie volgens EU-richtlijn 2010/63 en draagt bij aan dierenwelzijn in laboratoriumonderzoek.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dankzij Sabine Jacobs voor het assisteren met de sample collectie, Edith Klobetz-Rassam voor analyse van FCM, PD Dr med. vet. promoveerde. Roswitha Merle voor het assisteren met statistische analyse en Wiebke Gentner voor proeflezen van het manuscript. De studie is onderdeel van de Berlin-Brandenburg onderzoeksplatform BB3R (www.bb3r.de) en werd gefinancierd door het Duitse federale ministerie van onderwijs en onderzoek (verlenen van nummer: 031A262A) (www.bmbf.de/en/index.html).

De studie werd uitgevoerd volgens de richtsnoeren van de German Animal Welfare Act en werd goedgekeurd door de autoriteit van de staat Berlijn ("Landesamt für Gesundheit und Soziales", nummer van de vergunning: G0053/15).
Opmerking: Het hoofddoel van dit protocol was te onderzoeken van het effect van herhaalde verdoving op glucocorticoide metabolieten. Een steekproef-grootte-berekening werd uitgevoerd om te bepalen van het aantal dieren worden gebruikt: n ≥ 2 (s / µ1- µ2) ×2 × (zα + zβ)2. µ1- µ2 is het verschil tussen de populatiegemiddelden welke macht en monster grootte berekeningen worden gedaan (α = 5%, β = 80%); zα = 1.96 en zβ = 0.84 zijn de quantiles van de standaardnormale verdeling. Figuur 1 illustreert de tijdlijn van dit protocol. Als een parameter van het protocol een verschil met het besturingsniveau bevat, het dier moet nauwlettend worden gevolgd en de parameter opnieuw na een passende termijn moet worden gemeten. Bijvoorbeeld als trait anxiety-gerelateerde gedrag wordt verhoogd, moet dit probleem worden getest weer een week later, om te helpen bij het bepalen van de periode tot volledig herstel. Tijdstippen en perioden zijn gedefinieerd in dit protocol kunnen worden aangepast voor gebruik met andere procedures. Bij het wijzigen van tijdstippen, moeten gewenning perioden worden gehouden zoals beschreven in het protocol. Ter beperking van factoren die van de muizen gedrag kunnen beïnvloeden, moeten onderzoeken waarbij meer manipulatie worden uitgevoerd na tests die niet de normale werking van muizen storen. Figuur 2 geeft een overzicht van alle tests van het protocol met een samenvatting scoren vel. Figuur 3 bevat vereenvoudigde schalen van het leerjaar van welzijn, die een overzicht geven van hoe de testresultaten moet interpreteren.
1. fabriekslawaai muizen aan behandeling door experimentator
<ol><li>Kunnen muizen aan koeien aan het dier faciliteit voor ten minste 2 weken nadat zij zijn verkregen van een andere faciliteit of een ander leverancier.</li>
	<li>Huis muizen in groepen en handhaven onder standaardomstandigheden (kamertemperatuur 22 ± 2 ° C, relatieve vochtigheid 55 ± 10%) op een licht: donker cyclus van 12:12 h.</li>
	<li>Alle groepen voorzien van een tunnel en katoen nestlets als standaard verrijking, en zorgen voor voedsel en water ad libitum.</li>
	<li>Alle muizen de tunnel en/of kopje behandeling minstens een week vóór de test12koeien. Opmerking: Het oppakken van muizen door de staart kan leiden tot stress of angst, die op hun beurt van invloed is op welzijn en heeft ook een invloed op de resultaten van dit protocol12.</li>
</ol>2. voorbereiding van de gedrags test kamer en toestellen
Opmerking: Bieden een logeerkamer voor het testen, ideaal in de buurt van de kamer waar de dieren worden gehouden. Het vervoer van de muizen in hun huis kooien aan het testen kamer ten minste 60 min voordat de procedure wordt gevoerd. Indien mogelijk voeren alle tests van dit protocol in dezelfde testen kamer waar de procedure wordt uitgevoerd.
<ol><li>Bereiden een observatie kooi gravende gedrag8 te testen en om de foto's voor gebruik in de MGS13 (Figuur 4).<ol>
<li>Gebruik een glazen doos met een vloeroppervlak van ongeveer 220 × 290 mm en een hoogte van 390 mm.</li>
		<li>Betrekking hebben op de vloer van dit vak met ongeveer 0.5 cm van het strooisel.</li>
		<li>Strooi een handvol gebruikte beddengoed materiaal van de kooi op de top van het nieuwe beddengoed materiaal om nood veroorzaakt door de nieuwe omgeving.</li>
		<li>Dienen als voedsel, het dezelfde soort dat wordt normaal gesproken geleverd als voeding en water. Opmerking: als mogelijk, gebruik flessen water, omdat muizen water kommen met strooisel kunnen vullen.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Bereiden van een kooi (type III: 420 mm × 260 mm × 150 mm) voor de observatieperiode van 24-h, waarvoor de muizen zijn individueel gehuisvest (Figuur 5). Opmerking: Om te minimaliseren van de duur van de individuele huisvesting, verzamelen van gegevens voor nest bouwen van gedrag, kooi activiteit, voedselinname en fecale corticosterone metabolieten (FCM) tijdens deze periode.<ol>
<li>Plaats nieuwe strooisel in de kooi (ongeveer 0.5 cm diep) en scatter een handvol gebruikte beddengoed materiaal zonder ontlasting van de kooi op de top van het nieuwe materiaal, teneinde de nood.</li>
		<li>Bieden een gestandaardiseerde vierkante katoen nestlet van een bepaald gewicht, als milieu verrijking alleen (Zie tabel van materialen)14. Opmerking: Commerciële nestlets kunnen verschillen in gewicht. Daarom we het gewicht van de nestlet beschreven door diaken bewerkt en 2.0 g gebruikt in plaats van 2.7 g14.</li>
		<li>Monteren van de infrarood sensor op de bovenkant van de kooi, bij het gebruik van een infrarood sensor voor het meten van de kooi activiteit (Zie tabel van materialen).</li>
		<li>Zorgen voor voedsel, dezelfde soort die gewoonlijk wordt geleverd als dieet, en water ad libitum.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. muis grimas schaal
Opmerking: Foto's voor de MGS worden genomen in de kooi van de waarneming op drie tijdstippen: (i) 2 dagen vóór de behandeling aan record basislijn MGS niveaus, (ii) 30 min na de ingreep, en (iii) 150 min na de ingreep. Als welzijn aangetast is, verhogen scores op de MGS. Als verhoogde MGS scores nog steeds na 150 min waargenomen worden, extra foto's te nemen in een later stadium.
<ol><li>Het gebruik van een HD-camera voor fotografie.</li>
	<li>Zachtjes overbrengen van de muis in de kooi van de observatie en laat de muis om de koeien aan de nieuwe omgeving voor ten minste 30 min.</li>
	<li>Continu nemen over 30-40 foto's voor elke keer dat punt binnen 1-2 min.</li>
	<li>Alle foto's op de scherpe frontaal of zijdelingse foto's selecteren en teruggooi onscherpe foto's of foto's die aantonen dat muis gezichten vanuit andere perspectieven dan frontaal of zijdelingse weergave sorteren.</li>
	<li>Selecteer willekeurig één foto van elk punt met tijd, (dat wil zeggen 2 dagen voorafgaand aan de procedure, 30 min na de ingreep en 150 min na de ingreep) voor elke muis.</li>
	<li>Bijsnijden van de foto's om weer te geven alleen het hoofd van de muis, zodat de lichaamshouding niet zichtbaar13 is.</li>
	<li>Maak een spreadsheet-bestand met één blad voor elke foto en een tabel met inbegrip van de vijf eenheden van gezicht actie van de MGS aan elk taakblad toevoegen. Opmerking: Het bestand bevat zowel basislijn foto's als foto's post procedure.</li>
	<li>Randomize de volgorde van de bladen.</li>
	<li>Het bestand op een computerscherm voorleggen met drie onafhankelijke personen, die eerder werden opgeleid om de MGS ontwikkeld door Langford et al. gebruiken en hebben hen score van de facial action-eenheden met behulp van een 3-punt-schaal (0 = niet aanwezig zijn, 1 = matig presenteren, 2 = uiteraard aanwezig). Opmerking: Scoren is gebaseerd op de volgende parameters13: Orbital aanscherping ("vernauwing van de orbitale ruimte, met een strak gesloten ooglid of een oog-squeeze"); neus Ardennen ("afgerond uitbreiding van huid zichtbaar op de brug van de neus"); Wang Ardennen ("convexe weergave van de Wang spier"); oor positie ("oren uit elkaar trok en terug vanuit hun positie van de basislijn of verticale richels die vorm vanwege tips van oren wordt getrokken terug featuring"); Bakkebaard verandering ("verkeer van snorharen vanaf hun basislijn positie hetzij naar achteren, tegen het gezicht of doorsturen, alsof staande op einde; snorharen kunnen ook klomp samen").</li>
	<li>Analyseren van scores, als volgt (aangepast uit Langford et al. 13).<ol>
<li>Alle gezicht actie eenheden voor elke foto voor het genereren van de MGS-score gemiddelde. Opmerking: Als één van de units gezicht actie kon niet worden gescoord, gemiddeld de resterende eenheden van gezicht actie.</li>
		<li>Het gemiddelde voor de basislijn foto's uit het gemiddelde voor de foto's post procedure voor het verkrijgen van een MGS verschil score voor elke muis aftrekken.</li>
		<li>Test voor verschillen in de scores van MGS verschil tussen de personen (niet-parametrische test voor verwante monsters). Opmerking: Als er een significant verschil (p < 0,05), bepalen of de scores van alle foto's of alleen de scores van een paar foto's tussen de personen verschillen. Als dit waar is, herhaal het scoren van deze foto's. Anders moeten de personen Herhaal de MGS-opleiding en dan de score van de foto's weer.</li>
		<li>Gemiddelde de MGS verschil scores verkregen uit de verschillende scorers voor elke muis, als de resultaten van alle personen niet aanzienlijk verschillen.</li>
		<li>Gebruik een niet-parametrische statistische toets te vergelijken de MGS verschil scores gemiddeld tussen de studiegroepen.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. gravende gedrag8,15,16
<ol><li>Bereiden holen door het plaatsen van 140 ± 2 g voedsel pellets normaal geleverd als dieet in een standaard ondoorzichtig plastic water fles (250 mL, lengte 150 mm, diameter 55 mm, 45 mm-diameter van de hals van de fles)8. Opmerking: Zoals muizen liever breed buizen, holen met een diameter van 68 mm kunnen worden gebruikt zoals beschreven door diaken16.</li>
	<li>Plaats het hol gevuld met voedsel pellets in hun kooi 5 dagen vóór de ingreep voor acclimatisatie. Opmerking: De regelmatige verstrekking van voedsel eenheid in de kooi niet geleegd moet worden maar ook gevuld met voedsel pellets, moeten blijven zoals muizen worden gebruikt daartoe.</li>
	<li>Uitvoeren van de test tweemaal, 2 dagen vóór de ingreep (basislijn); ook de laatste 30 min post procedure uit te voeren.<ol>
<li>Laat de muis koeien voor minstens 30 min naar de kooi van de observatie waar de foto's voor de MGS werden genomen.</li>
		<li>Plaats de kunststof bidon gevuld met voedsel pellets parallel aan de achterwand van de kooi van de observatie.</li>
		<li>Weeg voedsel pellets (g) nog in het hol na 2 uur.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Bereken het gewicht van voedsel pellets verwijderd uit het hol door muizen ten opzichte van het oorspronkelijke gewicht (%).</li>
</ol>5. 24-h observatieperiode
Opmerking: Muizen zijn individueel, zoals beschreven in 2.2 gehuisvest. (Figuur 5), voor een periode van 24 uur per dag, om te meten van voedsel inname, kooi activiteit, nesten gebouw gedrag en FCM niveaus. De 24u observatie tweemaal plaatsvindt: (i) 2 dagen vóór de ingreep voor basislijn niveaus, (ii) op de dag van de procedure.
<ol><li>
Inname van voedsel
	<ol>
<li>Weeg de muizen op gezette tijden (bijv 2 dagen vóór de anesthesie, onmiddellijk vóór de anesthesie, 2 dagen na verdoving en wekelijks na verdoving), teneinde eventuele veranderingen in lichaamsgewicht (onderdeel van de scorekaart). Opmerking: Lichaamsgewicht is vereist voor het berekenen van de voedselinname per gram lichaamsgewicht. Wateropname kan ook worden gemeten tijdens de observatieperiode van 24 uur. Als de inname van voedsel wordt verminderd, kan welzijn worden aangetast.</li>
		<li>Het bepalen van het begingewicht van standaard voedseldieet (gram) waarin de eenheid van het voedsel van de kooi (ongeveer 100 g).</li>
		<li>Bepalen het gewicht van standaard voedseldieet aan het einde van de observatieperiode van 24 uur.</li>
		<li>Scannen van de kant van de kooi onder de eenheid voeding zorgvuldig voor morsen van voedsel en extra voedsel pellets gevonden aan het gewicht van voedsel pellets blijven in de eenheid voeding toe te voegen.</li>
		<li>Voedselopname per gewichtseenheid lichaam te berekenen.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Kooi activiteit Opmerking: De volgende instructies verwijzen naar het gebruik van een infrarood sensor (Zie tabel van materialen), maar de activiteit van de kooi ook met alternatieve programma's kan worden beoordeeld. Afwijking van kooi activiteit van controle niveaus (bijvoorbeeld hypoactivity, hyperactiviteit) kunnen een teken van verminderd welzijn.<ol>
<li>Start het programma.</li>
		<li>Kies een controle-interval van 1 min en een Acquisitietijd van 24 h, wat betekent dat impulsen per minuut gedurende 24 uur worden opgenomen. Opmerking: Als de experimentator de kamer meerdere keren binnenkomt na opname gestart, gebruik uitsluitend gegevens uit perioden, wanneer muizen niet gestoord waren (dat wil zeggen tijdens de donkere periode).</li>
		<li>10-min intervallen van impulsen samenvatten.</li>
		<li>Bereken de oppervlakte onder de kromme van de tijd (impulsen × min).</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Nest gebouw gedrag Opmerking: Complexe en hoge nesten kunnen dienen als een indicator van welzijn.<ol>
<li>Plaats een vierkante katoen nestlet (Zie Tabel van materialen) met een bepaald gewicht (bijvoorbeeld 2.0 g) in het midden van de kooi.</li>
		<li>Score van het nest op een 5-punts schaal (zie hieronder) volgens diaken14 de volgende ochtend ongeveer 2 uur nadat het lampje op. Weeg alle untorn nestlet stukken die ten minste 5% van het gewicht van de eerste nestlet. Score van de nesten als volgt14<ol>
<li>Toewijzen score van '1' als 90% van de nestlet intact.</li>
			<li>Score van "2" toewijzen als er 50-90% intact.</li>
			<li>Toewijzen "3" score als 50-90% van de nestlet is versnipperd.</li>
			<li>Toewijzen "4" score als meer dan 90% is versnipperd maar nest plat is, en minder dan 50% van de omtrek hoger dan de muis lichaamslengte is wanneer opgerold.</li>
			<li>Toewijzen "5" score als meer dan 90% nestlet is versnipperd en nest is hoog, en meer dan 50% van de omtrek is hoger dan de lichaamslengte van een gekrulde van muis.</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Fecale Corticosterone metabolieten Opmerking: Verhogingen van FCM boven het besturingsniveau weerspiegelen acute stress niveaus in de postanesthetic periode van 24 uur.<ol>
<li>Verzamelen van alle droge fecale pellets uit de kooi met behulp van Tang aan het einde van de observatieperiode van 24 uur en elimineren van natte pellets besmet met urine.</li>
		<li>FCM volgens Palme et al. uitpakken 17, als volgt.<ol>
<li>Droge fecale monsters bij een temperatuur van 60-70 ° C.</li>
			<li>Meng fecale monsters met behulp van een mortier.</li>
			<li>Schud een aliquoot deel van 0,05 g met 1 mL 80% methanol in een centrifugebuis gedurende 30 minuten op een multi vortex.</li>
			<li>Centrifugeer steekproeven bij 2500 x g gedurende 15 minuten.</li>
			<li>Pipetteer 0,5 mL van het supernatans dat in een centrifugebuis.</li>
			<li>Opslaan van fecale monsters (en uittreksels) ten minste-18 ° C.</li>
			<li>Analyseren met behulp van een 5α-pregnane-3b,11b,21-triol-20-one enzym immunoassay (EIA)18,19 of een ander volledig gevalideerde EIA FCM.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Bereken de procentuele verandering van FCM concentraties ten opzichte van de basislijn FCM concentraties.</li>
	</ol>
</li>
</ol>6. gratis verkennend paradigma
<ol><li>Neem de kooi uit het rek en plaats het op het oppervlak van een tabel aan het einde van de observatieperiode van 24 uur.</li>
	<li>Plaats een gerasterde kooi top (zonder voedsel of water flessen) in de kooi op een hoek van 45° met de langste zijde van de kooi. Opmerking: Niet doen vernietigen het nest, die als een schuilplaats voor de muis fungeert, maar de bovenkant van de kooi boven het nest diagonaal te plaatsen.</li>
	<li>Monitor of video-record de muizen gedurende 10 minuten op een afstand van circa 1,5 m.<ol>
<li>De timer te starten.</li>
		<li>Opmerking alle momenten waarop de muis klimt op de bovenkant van de kooi (met alle vier poten op de bovenkant van de kooi) of de bovenkant van de kooi laat (met één of meer poten op de vloer van de kooi). Opmerking: Sommige muizen kunnen klimmen op de bovenkant van de kooi en laat het om te wandelen langs de rand van de kooi. Sommige muizen ook achter op de bovenkant van de kooi. Behandel deze gevallen alsof de muizen nog op de bovenkant van de kooi.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Evalueren van de parameters na Bert et al. 20.<ol>
<li>Analyseren van latentie aan de eerste verkenning (in seconden).</li>
		<li>Aantal verkenningen te analyseren.</li>
		<li>Analyseren van totale duur (seconden) van exploratie. Opmerking: Een hoge latency eerste exploratie, een laag aantal verkenningen en een lage totale duur van exploratie kunt hogere trait-angst niveaus aangeven.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>2010 EU. Directive 2010/63/EU. Official Journal of the European Union. , L276/33-L276/29 (2010).</li>
<li>Russell, W. M. S., Burch, R. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aRussell%2C+WMS+%22The+principles+of+humane+experimental+technique%22">The principles of humane experimental technique</a>. , London: Methuen. (1959).</li>
<li>Morton, D. B., Griffiths, P. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Guidelines+on+the+recognition+of+pain%2C+distress+and+discomfort+in+experimental+animals+and+an+hypothesis+for+assessment%5BTitle%5D)+AND+%22Vet+Rec%22%5BJournal%5D)">Guidelines on the recognition of pain, distress and discomfort in experimental animals and an hypothesis for assessment.</a> Vet Rec. 116 (16), 431-436 (1985).</li>
<li>Bugnon, P., Heimann, M., Thallmair, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((What+the+literature+tells+us+about+score+sheet+design%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim%22%5BJournal%5D)">What the literature tells us about score sheet design.</a> Lab Anim. 50 (6), 414-417 (2016).</li>
<li>Boissy, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+positive+emotions+in+animals+to+improve+their+welfare%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Behav%22%5BJournal%5D)">Assessment of positive emotions in animals to improve their welfare.</a> Physiol Behav. 92 (3), 375-397 (2007).</li>
<li>Arras, M., Rettich, A., Cinelli, P., Kasermann, H. P., Burki, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+post-laparotomy+pain+in+laboratory+mice+by+telemetric+recording+of+heart+rate+and+heart+rate+variability%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Vet+Res%22%5BJournal%5D)">Assessment of post-laparotomy pain in laboratory mice by telemetric recording of heart rate and heart rate variability.</a> BMC Vet Res. 3, 16(2007).</li>
<li>Jirkof, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Burrowing+and+nest+building+behavior+as+indicators+of+well-being+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">Burrowing and nest building behavior as indicators of well-being in mice.</a> J Neurosci Methods. 234, 139-146 (2014).</li>
<li>Jirkof, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Burrowing+behavior+as+an+indicator+of+post-laparotomy+pain+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Behav+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Burrowing behavior as an indicator of post-laparotomy pain in mice.</a> Front Behav Neurosci. 4, 165(2010).</li>
<li>Hawkins, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+guide+to+defining+and+implementing+protocols+for+the+welfare+assessment+of+laboratory+animals%3A+eleventh+report+of+the+BVAAWF%2FFRAME%2FRSPCA%2FUFAW+Joint+Working+Group+on+Refinement%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim%22%5BJournal%5D)">A guide to defining and implementing protocols for the welfare assessment of laboratory animals: eleventh report of the BVAAWF/FRAME/RSPCA/UFAW Joint Working Group on Refinement.</a> Lab Anim. 45 (1), 1-13 (2011).</li>
<li>Hohlbaum, K., Bert, B., Dietze, S., Palme, R., Fink, H., Thöne-Reineke, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Severity+classification+of+repeated+isoflurane+anesthesia+in+C57BL%2F6JRj+mice-Assessing+the+degree+of+distress%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Severity classification of repeated isoflurane anesthesia in C57BL/6JRj mice-Assessing the degree of distress.</a> PLoS ONE. 12 (6), e0179588(2017).</li>
<li>Kilkenny, C., Browne, W. J., Cuthill, I. C., Emerson, M., Altman, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improving+bioscience+research+reporting%3A+the+ARRIVE+guidelines+for+reporting+animal+research%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Biol%22%5BJournal%5D)">Improving bioscience research reporting: the ARRIVE guidelines for reporting animal research.</a> PLoS Biol. 8 (6), e1000412(2010).</li>
<li>Hurst, J. L., West, R. S. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20835246">Taming anxiety in laboratory mice.</a> Nat Methods. 7 (10), 825-826 (2010).</li>
<li>Langford, D. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coding+of+facial+expressions+of+pain+in+the+laboratory+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Coding of facial expressions of pain in the laboratory mouse.</a> Nat Methods. 7 (6), 447-449 (2010).</li>
<li>Deacon, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessing+nest+building+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Assessing nest building in mice.</a> Nat Protoc. 1 (3), 1117-1119 (2006).</li>
<li>Deacon, R. M., Raley, J. M., Perry, V. H., Rawlins, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Burrowing+into+prion+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroreport%22%5BJournal%5D)">Burrowing into prion disease.</a> Neuroreport. 12 (9), 2053-2057 (2001).</li>
<li>Deacon, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Burrowing+in+rodents%3A+a+sensitive+method+for+detecting+behavioral+dysfunction%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Burrowing in rodents: a sensitive method for detecting behavioral dysfunction.</a> Nat Protoc. 1 (1), 118-121 (2006).</li>
<li>Palme, R., Touma, C., Arias, N., Dominchin, M. F., Lepschy, M. <a target="_blank" href="http://www.wtm.at/explorer/WTM/Archiv/2013/WTM_09-10-2013_Artikel_3_Palme.pdf">Steroid extraction: get the best out of faecal samples.</a> Wien Tierarz Monats. 100 (9-10), 238-246 (2013).</li>
<li>Touma, C., Palme, R., Sachser, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analyzing+corticosterone+metabolites+in+fecal+samples+of+mice%3A+a+noninvasive+technique+to+monitor+stress+hormones%5BTitle%5D)+AND+%22Horm+Behav%22%5BJournal%5D)">Analyzing corticosterone metabolites in fecal samples of mice: a noninvasive technique to monitor stress hormones.</a> Horm Behav. 45 (1), 10-22 (2004).</li>
<li>Touma, C., Sachser, N., Mostl, E., Palme, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+sex+and+time+of+day+on+metabolism+and+excretion+of+corticosterone+in+urine+and+feces+of+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Gen+Comp+Endocrinol%22%5BJournal%5D)">Effects of sex and time of day on metabolism and excretion of corticosterone in urine and feces of mice.</a> Gen Comp Endocrinol. 130 (3), 267-278 (2003).</li>
<li>Bert, B., Schmidt, N., Voigt, J. P., Fink, H., Rex, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+cage+leaving+behaviour+in+rats+as+a+free+choice+paradigm%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pharmacol+Toxicol+Methods%22%5BJournal%5D)">Evaluation of cage leaving behaviour in rats as a free choice paradigm.</a> J Pharmacol Toxicol Methods. 68 (2), 240-249 (2013).</li>
<li>Lister, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ethologically-based+animal+models+of+anxiety+disorders%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacol+Ther%22%5BJournal%5D)">Ethologically-based animal models of anxiety disorders.</a> Pharmacol Ther. 46 (3), 321-340 (1990).</li>
<li>Belzung, C., Berton, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Further+pharmacological+validation+of+the+BALB%2Fc+neophobia+in+the+free+exploratory+paradigm+as+an+animal+model+of+trait+anxiety%5BTitle%5D)+AND+%22Behav+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Further pharmacological validation of the BALB/c neophobia in the free exploratory paradigm as an animal model of trait anxiety.</a> Behav Pharmacol. 8 (6-7), 541-548 (1997).</li>
<li>Finlayson, K., Lampe, J. F., Hintze, S., Wurbel, H., Melotti, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Facial+indicators+of+positive+emotions+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Facial indicators of positive emotions in rats.</a> PLoS ONE. 11 (11), e0166446(2016).</li>
<li>Miller, A., Kitson, G., Skalkoyannis, B., Leach, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+isoflurane+anaesthesia+and+buprenorphine+on+the+mouse+grimace+scale+and+behaviour+in+CBA+and+DBA%2F2+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Appl+Anim+Behav+Sci%22%5BJournal%5D)">The effect of isoflurane anaesthesia and buprenorphine on the mouse grimace scale and behaviour in CBA and DBA/2 mice.</a> Appl Anim Behav Sci. 172, 58-62 (2015).</li>
<li>Miller, A. L., Golledge, H. D., Leach, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+influence+of+isoflurane+anaesthesia+on+the+rat+grimace+scale%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">The influence of isoflurane anaesthesia on the rat grimace scale.</a> PLoS ONE. 11 (11), e0166652(2016).</li>
<li>Deacon, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessing+burrowing%2C+nest+construction%2C+and+hoarding+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Assessing burrowing, nest construction, and hoarding in mice.</a> J Vis Exp. (59), e2607(2012).</li>
<li>Felton, L. M., Cunningham, C., Rankine, E. L., Waters, S., Boche, D., Perry, V. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MCP-1+and+murine+prion+disease%3A+separation+of+early+behavioural+dysfunction+from+overt+clinical+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiol+Dis%22%5BJournal%5D)">MCP-1 and murine prion disease: separation of early behavioural dysfunction from overt clinical disease.</a> Neurobiol Dis. 20 (2), 283-295 (2005).</li>
<li>Deacon, R. M., Croucher, A., Rawlins, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hippocampal+cytotoxic+lesion+effects+on+species-typical+behaviours+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Behav+Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Hippocampal cytotoxic lesion effects on species-typical behaviours in mice.</a> Behav Brain Res. 132 (2), 203-213 (2002).</li>
<li>Filali, M., Lalonde, R., Rivest, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subchronic+memantine+administration+on+spatial+learning%2C+exploratory+activity%2C+and+nest-building+in+an+APP%2FPS1+mouse+model+of+Alzheimer%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Neuropharmacology%22%5BJournal%5D)">Subchronic memantine administration on spatial learning, exploratory activity, and nest-building in an APP/PS1 mouse model of Alzheimer's disease.</a> Neuropharmacology. 60 (6), 930-936 (2011).</li>
<li>Guenther, K., Deacon, R. M., Perry, V. H., Rawlins, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+behavioural+changes+in+scrapie-affected+mice+and+the+influence+of+dapsone%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Early behavioural changes in scrapie-affected mice and the influence of dapsone.</a> Eur J Neurosci. 14 (2), 401-409 (2001).</li>
<li>Deacon, R. M., Reisel, D., Perry, V. H., Nicholas, J., Rawlins, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hippocampal+scrapie+infection+impairs+operant+DRL+performance+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Behav+Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Hippocampal scrapie infection impairs operant DRL performance in mice.</a> Behav Brain Res. 157 (1), 99-105 (2005).</li>
<li>Jirkof, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+postsurgical+distress+and+pain+in+laboratory+mice+by+nest+complexity+scoring%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim%22%5BJournal%5D)">Assessment of postsurgical distress and pain in laboratory mice by nest complexity scoring.</a> Lab Anim. 47 (3), 153-161 (2013).</li>
<li>Atanasov, N. A., Sargent, J. L., Parmigiani, J. P., Palme, R., Diggs, H. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+train-induced+vibration+and+its+effect+on+fecal+corticosterone+metabolites+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Assoc+Lab+Anim+Sci%22%5BJournal%5D)">Characterization of train-induced vibration and its effect on fecal corticosterone metabolites in mice.</a> J Am Assoc Lab Anim Sci. 54 (6), 737-744 (2015).</li>
<li>Voigt, C. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ingentaconnect.com/contentone/ufaw/aw/2013/00000022/00000004/art00006">Hormonal stress response of laboratory mice to conventional and minimally invasive bleeding techniques.</a> Anim Welf. 22 (4), 449-455 (2013).</li>
<li>Walker, M. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+less+stressful+alternative+to+oral+gavage+for+pharmacological+and+toxicological+studies+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Toxicol+Appl+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">A less stressful alternative to oral gavage for pharmacological and toxicological studies in mice.</a> Toxicol Appl Pharmacol. 260 (1), 65-69 (2012).</li>
<li>Miyashita, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Social+stress+increases+biopyrrins%2C+oxidative+metabolites+of+bilirubin%2C+in+mouse+urine%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem+Biophys+Res+Commun%22%5BJournal%5D)">Social stress increases biopyrrins, oxidative metabolites of bilirubin, in mouse urine.</a> Biochem Biophys Res Commun. 349 (2), 775-780 (2006).</li>
<li>Bains, R. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+individual+mouse+activity+in+group+housed+animals+of+different+inbred+strains+using+a+novel+automated+home+cage+analysis+system%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Behav+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Analysis of individual mouse activity in group housed animals of different inbred strains using a novel automated home cage analysis system.</a> Front Behav Neurosci. 10 (106), (2016).</li>
<li>Saibaba, P., Sales, G. D., Stodulski, G., Hau, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Behaviour+of+rats+in+their+home+cages%3A+daytime+variations+and+effects+of+routine+husbandry+procedures+analysed+by+time+sampling+techniques%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim%22%5BJournal%5D)">Behaviour of rats in their home cages: daytime variations and effects of routine husbandry procedures analysed by time sampling techniques.</a> Lab Anim. 30 (1), 13-21 (1996).</li>
</ol>

De auteurs hebben niets te onthullen.

Het protocol werd oorspronkelijk ontwikkeld voor de beoordeling van welzijn van C57BL/6JRj muizen die een één verdoving of herhaalde Isofluraan anesthesie ontvangen. De resultaten bevestigen dat tests van luxe gedrag, evenals andere maatregelen (bijvoorbeeld de gratis verkennend paradigma, de MGS, gravende voedselinname) waren gevoelige methoden voor de beoordeling van welzijn. Herhaalde Isofluraan anesthesie veroorzaakt op de korte termijn effecten op trait anxiety-gerelateerde gedrag, MGS en gravende gedrag. B...

EU richtlijn 2010/631 bepaalt dat het 3R-principe (vervanging, vermindering, verfijning) ontwikkeld door Russel en Burch2 worden toegepast wanneer dierlijke proefneming nodig is. Het uiteindelijke doel van de richtlijn van de EU is geleidelijk alle dierproeven, maar de richtlijn erkent dat, sommige dierproeven nog voorlopig, nodig zijn om onderzoek ter bescherming van de gezondheid van mens en dier. Dus, als een dier experiment niet kan worden vervangen door een alternatieve methode, is alleen het minimum aantal proefdieren worden gebruikt om betrouwbare resultaten te verkrijgen. Bovendien moet de hoeveelheid pijn, leed en nood begeleidende experimentele procedures worden geminimaliseerd met behulp van verfijning van de passende maatregelen. EU richtlijn 2010/63 bepaalt dat de ernst van een procedure prospectief moet worden aangemerkt als niet-invordering, lichte, matige of ernstige1. Zoals classificatie van de ernst wordt besloten op een case-by-case basis, is het belangrijk dat hulpmiddelen voor wetenschappelijk geluid te schatten van de ernst van een bepaalde procedure.
Score sheets zoals voorgesteld door Morton en Griffith3 zijn een essentieel instrument voor het opsporen van afwijkingen van de normale status, met inbegrip van negatieve gevolgen voor welzijn4. Score sheets zijn gebruikt om te bepalen met terugwerkende kracht pijn, lijden, en nood veroorzaakt door een experiment en focus op zichtbare veranderingen in de fysische toestand van het individuele dier (b.v., lichaamsgewicht, bont, gait). Hoewel, bijlage VIII van EU-richtlijn 2010/63 geeft voorbeelden van elke categorie Ernst, onderzoekers nog steeds gebrek aan tools te schatten van de mate van ernst van een bepaalde procedure met behulp van wetenschappelijk gebaseerde gegevens.
Het ontbreken van indicatoren waaruit blijkt negatieve welzijn is niet de enige manier om te bepalen wat de status van het dier; de aanwezigheid van indicatoren wijzen op positieve welzijn is ook belangrijk5,6,7,8. Bijvoorbeeld, dieren luxe gedrag zoals gravende weergeven en nesten gebouw gedrag alleen wanneer aan al hun essentiële behoeften wordt voldaan. Als welzijn wordt verminderd, zijn luxe gedragingen de eerste5,7dalen. Protocollen worden gebruikt bij de beoordeling van welzijn dient indicatoren verwijzen naar de fysieke, fysiologische, biochemische en psychologische toestanden van dieren teneinde hun welzijn in een gedetailleerde en uitgebreide wijze9.
In het kader van verfijning, werd een protocol ontwikkeld aan deze vereisten voldoen en om te beoordelen van de gevolgen van een procedure waarbij narcose op welzijn van muizen10. Op hetzelfde moment was het doel om te minimaliseren van eventuele extra stress zodat de eenvoudige integratie van het protocol in een gegeven experiment. Het protocol acht gravende gedrag, het gedrag van de kooi zoals activiteit, voedselinname en nesten en trait anxiety-gerelateerde gedrag. Daarnaast bevat het de muis grimas schaal (MGS), en de niet-invasieve analyse van corticosterone metabolieten in ontlasting. Het protocol is ontworpen om de beoordeling van welzijn in een wetenschappelijke en dier-gecentreerde manier en informatie te verstrekken over welzijn die ondersteuning biedt voor de indeling van de mate van ernst. Naast de score sheets, kan nuttige informatie voor de classificatie van de ernst van een procedure bieden. Als het protocol gemakkelijk is uit te voeren en geen uitgebreide apparatuur vereist, kan het worden geïntegreerd in een lopende experiment zonder te beïnvloeden de resultaten van een studie. Opgemerkt moet worden dat het dier onderzoek: rapportage van In Vivo experimenten (aankomen) richtsnoer11 is in acht moeten worden genomen in alle studies met betrekking tot dierproeven, met als doel verbetering van ontwerp, analyse en rapportage.

<table><tbody><tr><td>Isofluran</td><td>CP-Pharma Handelsgesellschaft mbH</td><td>1214</td><td></td></tr><tr><td>InfraMot - Sensore Units</td><td>TSE Systems</td><td>302015-SENS</td><td></td></tr><tr><td>InfraMot - Control Units</td><td>TSE Systems</td><td>302015-C/16</td><td></td></tr><tr><td>InfraMot - Software</td><td>TSE Systems</td><td>302015-S</td><td></td></tr><tr><td>Nestlet N</td><td>Ancare - Plexx</td><td>NES3600</td><td></td></tr><tr><td>Camera EOS 350D</td><td>Canon</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

systematische beoordeling van welzijn in muizen voor procedures gebruik van algemene anesthesie

Systematic Assessment of Well-Being in Mice for Procedures Using General Anesthesia

Wetenschappelijk onderzoek dient in overeenstemming met de 3R principe (vervanging, vermindering, verfijning) ontwikkeld door Russel en Burch, alternatieven voor dierproeven waar mogelijk te gebruiken. Wanneer er geen alternatief voor dierproeven is, moet het totale aantal proefdieren gebruikt het minimum nodig om waardevolle gegevens te verkrijgen. Bovendien moeten passende verfijning maatregelen worden toegepast om te minimaliseren van pijn, lijden en angst bij de experimentele procedure. De categorieën gebruikt voor het classificeren van de mate van pijn, lijden en ellende zijn teruggevorderd, mild, matig of ernstig (EU richtlijn 2010/63). Als u wilt bepalen welke categorieën van toepassing zijn in individuele gevallen, is het van cruciaal belang om wetenschappelijk verantwoorde gereedschappen te gebruiken.
Het protocol van de goed-being-beoordeling hier gepresenteerd is ontworpen voor procedures waarin narcose wordt gebruikt. Het protocol is gericht op de kooi activiteit, de muis grimas schaal en luxe gedrag zoals gravende en nest bouwen van gedrag als indicatoren van welzijn. Het gebruikt ook de gratis verkennend paradigma voor trait anxiety-gerelateerde gedrag. Fecale corticosterone metabolieten als indicatoren van acute stress worden gemeten in de 24 uur na de verdoving periode.
Het protocol biedt wetenschappelijk solide informatie over het welzijn van muizen na narcose. Vanwege haar eenvoud, kan het protocol gemakkelijk worden aangepast en geïntegreerd in een geplande studie. Hoewel het voorziet niet in een schaal om te classificeren nood in categorieën volgens de Europese richtlijn 2010/63 kan het onderzoekers schatten van de mate van ernst van een procedure met behulp van wetenschappelijk verantwoorde gegevens helpen. Het biedt een manier om het verbeteren van de beoordeling van welzijn in een wetenschappelijke, dier-gecentreerde manier.

Dit protocol werd oorspronkelijk ontwikkeld voor de beoordeling van welzijn van C57BL/6JRj muizen na een interne ervaring van Isofluraan anesthesie (één 45-min verdoving sessie, n = 13 vrouwtjes) of herhaalde Isofluraan anesthesie (zes 45-min verdoving sessies met 3-4 dagen tussen de sessies van de verdoving, n = 13 vrouwtjes) vergeleken met het welzijn van controle muizen (n = 6 vrouwtjes)10, die ontvangen geen narcose maar werden getest volgens dezelfde maatregel...

We ontwikkelden een protocol om te beoordelen van welzijn in muizen tijdens procedures met behulp van de narcose. Een aantal gedrags parameters die aangeeft niveaus van welzijn evenals glucocorticoide metabolieten zijn geanalyseerd. Het protocol kan dienen als een algemene steun voor de schatting van de mate van ernst in een wetenschappelijke, dier-gecentreerde manier.

Systematische beoordeling van welzijn in muizen voor Procedures gebruik van algemene anesthesie

In keeping with the 3R Principle (Replacement, Reduction, Refinement) developed by Russel and Burch, scientific research should use alternatives to animal ...

Het algemene doel van dit protocol is om het welzijn van muizen te beoordelen nadat ze procedures ondergingen, inclusief algemene anesthesie, en om wetenschappelijk gefundeerde gegevens te leveren ter ondersteuning van de ernstclassificatie volgens EU-richtlijn 2010/63. Dit protocol kan helpen bij het beantwoorden van belangrijke vragen over dierenwelzijn op het gebied van laboratoriumdierkunde, zoals de mate van stress veroorzaakt door procedures die algemene anesthesie omvatten. Het grote voordeel van dit protocol is dat het welzijn van elke individuele muis op een op dieren gebaseerde wetenschappelijke manier wordt geëvalueerd en dat dit protocol gemakkelijk kan worden aangepast en geïntegreerd in andere geplande studies.We hadden voor het eerst het idee voor dit protocol toen we speculeerden dat, als herhaalde anesthesie meer stress bij laboratoriummuizen veroorzaakt dan een enkele blootstelling, er wetenschappelijk gefundeerde gegevens ontbreken. In deze stap, bereid een glazen doos voor met een vloeroppervlak van ongeveer 220 millimeter bij 290 millimeter en een hoogte van 390 millimeter. Bedek de vloer met ongeveer 0,5 centimeter ligbedding. Spreid vervolgens een handvol gebruikt ligbedding uit de thuiscamer bovenop het nieuwe ligbedding om stress veroorzaakt door de nieuwe omgeving te verminderen. Voorzie van voedsel en water. Breng de muis voorzichtig over in de observatiekooi en laat de muis ten minste 30 minuten wennen aan de nieuwe omgeving.Gebruik voor de muis-grimace-schaal een high-definition camera voor fotografie. Neem voor elk tijdstip binnen één tot twee minuten ongeveer 30 tot 40 foto's. Voor het testen van het gravend gedrag volgens Deacon en Jirkof, bereid graven voor door 140 gram voedselkorrels in een standaard ondoorzichtige plastic waterfles te plaatsen.Plaats vervolgens de plastic waterfles gevuld met voedselkorrels parallel aan de achterwand van de observatiekooi. Weeg na twee uur de resterende voedselkorrels in het hol. Voer de test twee keer twee dagen voor de procedure uit als basislijn.In deze stap, bereid een kooi voor met nieuw ligbedding voor de 24-uurs observatieperiode waarin muizen individueel worden gehuisvest. De 24-uurs observatieperiode begint na de muis-grimace-schaal en het gravend gedrag. De duur van het individueel huisvesten wordt tot een minimum beperkt.Ondertussen worden de activiteit in de thuiscamer, voedselopname, nestbouwgedrag en de niveaus van fecale corticosteronmetabolieten gemeten. Verspreid vervolgens een handvol gebruikt ligbedding zonder uitwerpselen uit de thuiscamer bovenop het nieuwe materiaal om stress te verminderen. Bied een gestandaardiseerd vierkant katoenen nestje van een gedefinieerd gewicht als enige omgevingsverrijking aan.Monteer daarna de infraroodsensor bovenop de kooi voor het meten van de activiteit in de thuiscamer. Bied standaard voedselkorrels en water ad libitum aan en plaats de muis in de kooi. Score het volgende ochtend het nest volgens de vijfpuntsschaal van Deacon ongeveer twee uur nadat het licht is aangegaan.Weeg bovendien elk ongescheurd neststuk dat minstens 5% van het oorspronkelijke nestgewicht uitmaakt. Plaats vervolgens een roosterachtig kooitopje in de kooi onder een hoek van 45 graden ten opzichte van de langere kant van de kooi. Start de timer en bewaak of neem de muizen gedurende 10 minuten op vanaf een afstand van ongeveer 1,5 meter.Noteer alle tijden wanneer de muis met alle vier poten op het kooitopje klimt of het kooitopje verlaat met een of meer poten op de kooibodem, gevolgd door analyse. Enkele ervaring met anesthesie evenals herhaalde anesthesie verhoogden de verschilscores van de muis-grimace-schaal vergeleken met de controle 30 minuten na blootstelling. Bij 150 minuten na de laatste anesthesie keerden de verschilscores van de muis-grimace-schaal van alle muizen terug naar controleniveaus.Voor het gravend gedrag verminderde alleen herhaalde anesthesie significant het percentage gewicht van voedselkorrels dat de muizen uit het hol verwijderden, vergeleken met de controle. Voor het nestbouwgedrag waren er geen significante verschillen in de nestscores tussen een enkele ervaring met anesthesie, herhaalde anesthesie en de controle. In het vrije verkenningsparadigma verminderde herhaalde anesthesie significant het aantal verkennende handelingen vergeleken met de controle en de totale duur van verkenning vergeleken met een enkele anesthesie een dag na de laatste anesthesie.Acht dagen na de laatste anesthesie waren er geen verschillen meer tussen de studiegroepen. Terwijl u dit protocol probeert, is het belangrijk om muizen te hanteren door middel van tunnel- en/of cuppingmethoden. Muizen bij de staart optillen kan stress en angst induceren, wat op zijn beurt het welzijn beïnvloedt en ook de resultaten van het protocol kan beïnvloeden.Dit protocol kan gemakkelijk worden aangepast en geïntegreerd in geplande studies om de impact van een procedure op het welzijn van muizen te beoordelen. Afhankelijk van de procedure en studie-ontwerp, moet de meest geschikte test van dit protocol worden gekozen. Na het bekijken van deze video, zult u een goed begrip hebben van hoe u het welzijn van muizen kunt beoordelen die de procedure van algemene anesthesie hebben ondergaan.Het protocol helpt om de ernst van de procedure op een op dieren gebaseerde wetenschappelijke manier te classificeren.

systematic-assessment-well-being-mice-for-procedures-using-general

Research

JoVE Journal

Behavior

Gedrag

Source: Yan, Z., et al. Evaluating the Anti-depression Effect of Xiaoyaosan on Chronically-stressed Mice. J. Vis. Exp. (2019).The video demonstrates the process of establishing a mouse model of chronic stress-induced depression and assessing depressive behaviors. The chronic application of various stressors triggers the release of corticosterone, leading to neuronal over-excitation and eventual neuronal death, which results in depression-like symptoms in the mice.

Induction and Evaluation of Depression in Mice Through Chronic Stress Exposure

Verlies van de oprichtende reflex heeft lang gediend als een standaard gedrags surrogaat voor bewusteloosheid, ook wel hypnose, bij proefdieren. Veranderingen in vluchtige anesthetische gevoeligheid door farmacologische middelen kunnen worden gedetecteerd met een zorgvuldig geregelde high-throughput beoordelingssysteem, dat kan worden aangepast voor levering van elke geïnhaleerde therapeutische.

Het beoordelen van Veranderingen in Volatile narcose gevoeligheid van muizen na lokale of systemische farmacologische interventie

Deze film laat zien hoe systemische en lever hemodynamiek bij muizen te verwerven. De gehele controle omvat verkrijging van vitale parameters, systemische bloeddruk, centrale veneuze druk, gemeenschappelijk leverslagader stroomsnelheid en poortader druk en het portaal debiet in muizen.

Monitoring van Systemische en lever hemodynamische parameters in Muizen

Een uitgebreide gedrags testbatterij van motorische vaardigheden, stemming — met inbegrip van sociale interactie, depressie en angst — en cognitie is ontworpen voor de herhaalde beoordeling van neurodegeneratie-gerelateerde gedragsveranderingen bij muizen.

Een gedrags testbatterij voor de herhaalde beoordeling van motorische vaardigheden, humeur en cognitie bij muizen

Dit artikel geeft een gedetailleerde beschrijving van een nieuw muisbeoordelingsprotocol. Bewijs van de gevoeligheid van deze olfactorische graaftaak voor affectieve toestand wordt ook aangetoond en het nut ervan in verschillende onderzoeksgebieden wordt besproken.

Beoordeling van de beoordelingsbias van de muis door middel van een olfactorische graaftaak

De mechanische conflictvermijdingstest wordt gebruikt als een niet-reflexieve uitlezing van pijngevoeligheid bij muizen die kan worden gebruikt om affectieve-motiverende reacties in verschillende muispijnmodellen beter te begrijpen.

Mechanische conflictvermijdingstest om pijngedrag bij muizen te meten

De pulsatiliteit van luteïniserend hormoon (LH) is een kenmerk van de voortplantingsfunctie. We beschrijven een protocol voor het op afstand activeren van specifieke neuronale populaties gekoppeld aan seriële geautomatiseerde bloedafname. Deze techniek maakt getimede hormonale modulatie, multiplexing en het minimaliseren van manipulatie-effecten op LH-niveaus mogelijk bij bewuste, vrij bewegende en ongestoorde dieren.

Neuronale activering op afstand in combinatie met geautomatiseerde bloedafname om circulerend luteïniserend hormoon bij muizen te induceren en te meten

Dit artikel presenteert een protocol voor een contextuele en cued vreesconditionering test met een video-analysesysteem om angst leren en geheugen in muizen te beoordelen.

Contextuele en cued Fear Conditioning Test Met behulp van een video analysesysteem in Muizen

We testten de bruikbaarheid van een tablet-computer-gebaseerde applicatie (EmoCogMeter) in het onderzoek naar de effecten van leeftijd op cognitie. De resultaten tonen een leeftijd-gerelateerde cognitieve achteruitgang, waardoor de bruikbaarheid van onze applicatie te bewijzen. Bevindingen onderstrepen het grote klinische en praktische mogelijkheden van een tablet-gebaseerde applicatie voor de detectie en monitoring van cognitieve dysfunctie.

Beoordeling van Age-gerelateerde veranderingen in cognitieve functies Gebruik EmoCogMeter, een roman tablet-computer Based Approach

De mogelijkheid om executieve functies zoals gedragsflexibiliteit bij ratten te beoordelen, is nuttig voor het onderzoeken van de neurobiologie van cognitie bij zowel intacte dieren als bij ziektemodellen. Hier beschrijven we geautomatiseerde taken voor het beoordelen van strategieverschuiving en omgekeerde leerprocessen, die bijzonder gevoelig zijn voor verstoringen in prefrontale corticale netwerken.

Operante procedures voor het evalueren Behavioral Flexibiliteit in Ratten

Leer een protocol om het welzijn van muizen te beoordelen na algemene anesthesie. Deze methode biedt wetenschappelijke data voor ernstclassificatie volgens EU-richtlijn 2010/63 en draagt bij aan dierenwelzijn in laboratoriumonderzoek.

Systematische beoordeling van welzijn in muizen voor Procedures gebruik van algemene anesthesie

Meer video's verkennen