21 juli 2018
In dit protocol beschrijven we het gebruik van [18F]-2-fluoro-2-deoxy-D-glucose positron emissie tomografie en computertomografie (18F-FDG PET/CT) denkbaar voor het meten van de tumor metabole respons op de gerichte therapie MLN0128 in een Kras/Lkb1 mutant muis model van longkanker en gekoppelde imaging met hoge resolutie ex vivo autoradiografie en kwantitatieve histologie.
Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van belangrijke vragen op het gebied van kankermetabolisme en kankertherapie. Zoals de identificatie van nieuwe therapieën die de tumorgroei kunnen moduleren, evenals tumormetabolisme. Het grote voordeel van deze techniek is dat we niet-invasieve beeldvorming van longtumoren kunnen uitvoeren terwijl ze zich in de loop van de tijd ontwikkelen.
Dit is belangrijk omdat we beter kunnen begrijpen hoe tumormetabolisme reageert op verschillende therapeutische interventies in realtime. Het demonstreren van deze procedures zal worden gedaan door beeldvormingswetenschappers vanuit het Crump Institute's Preclinical Imaging Center. Let op: gebruik beschermende uitrusting en volg alle toepasselijke regelgevende procedures bij het hanteren van radioactiviteit.
Begin door de kooi met muizen die geïmaged zullen worden een uur voorafgaand aan de injectie van fluor-18 gelabeld fluoro-deoxyglucose te verwarmen tot 37 graden Celsius. Dit vermindert de consumptie van bruin vet van de tracer. Weeg de eerste muis en noteer zijn gewicht.
Na het anestheseren van de muis met een institutioneel goedgekeurde methode, test de diepte van de anesthesie door in de teen te knijpen. Als er geen reactie wordt gezien, gaat u verder met de procedure door oogzalf aan te brengen op de ogen om uitdroging tijdens de anesthesie te voorkomen. Verdun zorgvuldig fluor-18 gelabeld fluoro-deoxyglucose, dat een radioactieve halfwaardetijd van 109 minuten heeft, in steriele zoutoplossing tot een aangepaste, gecorrigeerde injectieconcentratie van 70 tot 75 microcurie per 100 microliters.
Trek vervolgens 100 microliters op in een insulinesyringe met een naald van 28 gauge en meet de radioactiviteitsdosis met behulp van een dosiscalibrator. Noteer de meting en tijdstip van de meting om de vervalcorrectie te bepalen. Plaats de spuit in een loden spuithouder.
Om te injecteren, verwarm eerst de staart gedurende 1 tot 2 minuten met een gaasje gedrenkt in warm water. En veeg vervolgens af met 70% isopropanol om de staarader te verwijden net voorafgaand aan de injectie. Toedien de volledige inhoud in de spuit met een bolusinjectie via de laterale staarader.
En noteer het tijdstip van injectie. Meet vervolgens de resterende dosis in de spuit met behulp van de dosiscalibrator en noteer de meting en tijd. Plaats tenslotte de geïnjecteerde muis in een anesthesiekamer met 1,5 tot 2% isofluraangedurende 37 graden Celsius om de sonde te laten verdelen via de systemische circulatie van de muis gedurende één uur voorafgaand aan de PET-scan.
Na een uur plaatst u de eerste muis in een beeldvormingskamer ingesteld op 37 graden Celsius onder isofluraange-anesthesie met een neuskoker. En bevestig zijn ledematen op hun plaats met medische tape in een rugligging. Plaats de beeldvormingskamer in de PET CT-scanner en verwerf de PET- en CT-scans zoals beschreven in de handleiding van de PET CT-scanner.
Nadat de PET CT is voltooid, verwijdert u de muis uit de beeldvormingskamer en laat hem herstellen in zijn kooi. Importeer de gereconstrueerde PET CT-beelden in de AMOD-software door te klikken op Bestand, vervolgens op Bestand importeren. En selecteer het juiste DICOM-bestand.
Klik met de rechtermuisknop op de PET-gegevensset. En zoek het procent injectie dosis per gram veld op het tabblad basisinformatie. Voer het percentage geïnjecteerde dosis per gram in dat eerder is gerapporteerd.
Teken de regio's van belang op de tumor en normale weefsels door op Bewerken te klikken en vervolgens op ROI toevoegen. Selecteer de vorm voor de ROI en geef de ROI een naam. Teken ROI's over tumoren en weefsels en pas hun afmetingen aan om het weefsel van belang in alle drie de assen te bedekken.
Fluor-18 gelabeld fluoro-deoxyglucose PET-beeldvorming werd uitgevoerd op muizen met tumoren met KRAS en LKB1 co-mutaties, aangeduid als KL-muizen. De tumoren bij deze muizen waren zeer glycolytisch. Zoals aangetoond door een verhoogde F-FDG-consumptie.
In overeenstemming met eerder gepubliceerde studies. Een resectie van de hele longen onthulde de aanwezigheid van verschillende tumoren, hier getoond in transversale, sagittale en coronale views. De vijf lobben van de muizenlong werden gekleurd met H&E om de morfologie van het weefsel te visualiseren.
Lobben 1-5 werden gekleurd voor glucosetransporter 1. De expressie en lokalisatie van Glut1 naar het plasmamembraan van tumorcellen correleert direct met de standaardopnamewaarde voor fluor-18 gelabeld fluoro-deoxyglucose. Bij het uitvoeren van deze procedure is het belangrijk om te onthouden dat FDG-biodistributie afhankelijk is van de omstandigheden van het dier.
Zoals anesthesie, opwarming en vasten. Om reproduceerbaarheid te garanderen, moeten deze stappen consistent worden uitgevoerd. Volgens deze algemene procedure kunnen andere PET-sporen worden gebruikt om verschillende biologische processen in vivo te meten, zoals aminozuurmetabolisme en receptor-ligandinteracties.
Dit protocol beschrijft het gebruik van [18F]-2-fluoro-2-deoxy-D-glucose positronemissietomografie en computertomografie (18F-FDG PET/CT)-beeldvorming om de metabole respons van tumoren op de doelgerichte therapie MLN0128 te beoordelen in een Kras/Lkb1-mutant muismodel voor longkanker. Het benadrukt het belang van niet-invasieve beeldvormingstechnieken voor het begrijpen van het tumormetabolisme tijdens therapeutische interventies.
Dynamische meting van het glucosemetabolisme met behulp van 18F-FDG PET/CT en kwantitatieve histologie in genetisch gemodificeerde muismodellen maakt een niet-invasieve, real-time beoordeling van de therapeutische respons bij longkanker mogelijk. Deze geïntegreerde aanpak ondersteunt het voorspellende vertrouwen bij het evalueren van de modulatie van metabole routes en informeert beslissingen in een vroeg stadium van de portfolio voor doelgerichte therapieën. De methode verbetert de translationele continuïteit door in vivo imaging te koppelen aan ex vivo biomarker-kwantificering.
Deze methode integreert in het continuüm van ontdekking tot preklinisch onderzoek door vroege, kwantitatieve beoordeling mogelijk te maken van de therapeutische impact op het tumormetabolisme in vivo.