16 februari 2018
Hier presenteren we een protocol voor de detectie en kwantificering van lage overvloedige molecules in complexe oplossingen met behulp van moleculaire inprenting in combinatie met een capaciteit biosensor.
Het algemene doel van deze techniek is om laag voorkomende biomoleculen in zeer complexe monsters te detecteren en te kwantificeren met hoge gevoeligheid, eenvoud, lage kosten, snelheid, en zonder het gebruik van enige markering. Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van belangrijke vragen op het gebied van biotechnologie, biochemie en biomedische wetenschappen, zoals milieubewaking, voedselveiligheid, drinkwaterkwaliteit en medische diagnostiek. De belangrijkste voordelen van deze techniek zijn de inherente snelheid, eenvoud, hoge gevoeligheid, lage kosten, eenvoudige manipulatie en realtime detectie zonder het gebruik van markeringsreagentia.
De implicaties van deze techniek reiken tot de diagnose van ziekten vanwege het vermogen om laag voorkomende biomoleculen te kwantificeren. Bijvoorbeeld, verschillende biomarkers in real time. Om de glazen dekglasjes schoon te maken, dompel ze 10 minuten onder in 10 milliliter 1,0 molair HCl in een ultrasone reiniger op kamertemperatuur.
Dompel ze vervolgens onder in gedeïoniseerd water en 1,0 molair natriumhydroxide onder dezelfde omstandigheden. Droog de glazen dekglasjes met stikstofgas. Dompel vervolgens de schone en droge dekglasjes een uur lang in 10 milliliter APTES-oplossing om aminogroepen op het oppervlak van het dekglas te introduceren op kamertemperatuur.
Spoel de dekglasjes af met gedeïoniseerd water voordat je ze opnieuw droogt met stikstofgas. Dompel de APTES-gemodificeerde dekglasjes twee uur lang in een 10 milliliter oplossing van glutaaraldehyde om de aminogroepen op het oppervlak bij kamertemperatuur te activeren. Na incubatie spoelt u de dekglasjes af met 10 millimolair fosfaatbuffer om overtollig glutaaraldehyde van het oppervlak te verwijderen.
Droog de dekglasjes met stikstofgas. Bereid vervolgens 1,0 milliliter sjabloonoplossing in 10 millimolair fosfaatbuffer in een concentratie van 0,1 milligram per milliliter. Laat 200 microliter van deze sjabloonoplossing vallen op de gemodificeerde dekglasjes en incubeer ze een nacht bij vier graden Celsius.
Om de elektroden schoon te maken, dompel je de elektroden eerst 10 minuten onder in een klein bekertje met vijf milliliter 70% ethanol in een ultrasone reiniger op kamertemperatuur. Dompel vervolgens de elektroden achtereenvolgens onder in gedeïoniseerd water, aceton, gedeïoniseerd water, Zure Piranha-oplossing en gedeïoniseerd water onder dezelfde omstandigheden. Droog de elektroden met stikstofgas.
Voer de elektropolymerisatie van tyramine uit door acht milliliter 10 millimolair tyramine-oplossing te bereiden in 10 millimolair fosfaatbuffer met twee milliliter ethanol. Voer 15 cycli van cyclische voltammetrische scans uit in deze oplossing met behulp van een potentiostaat die een potentiaalbereik van nul tot 1,5 volt en een scanfrequentie van 50 millivolt per seconde dekt. Spoel vervolgens de elektroden af met gedeïoniseerd water voordat u de elektroden droogt met stikstofgas.
Dompel de elektroden in een oplossing met 30 millimolair acryloylchloride en 30 millimolair trimethylamine in tolueen bij kamertemperatuur gedurende de nacht voordat u de elektroden opnieuw spoelt en droogt. Bereid voorafgaand aan de polymerisatie een monimeeroplossing met monomeren en cross-linker in 820 microliter ultrapuur water. Bereid vervolgens 5%volume op volume TEMED in ultrapuur water.
Voeg 20 microliter van de TEMED-oplossing toe aan de monomeroplossing en spoel vijf minuten lang met stikstofgas. Voeg vervolgens 20 microliter vers bereide APS toe aan de monomeroplossing. Pipet 1,5 microliter van de monomeroplossing op het gemodificeerde gouden elektrodeoppervlak.
Start nu de polymerisatie door de sjabloonstempel in contact te brengen met het met monomeren behandelde oppervlak en laat het vijf uur op kamertemperatuur staan. Verwijder na polymerisatie de sjabloonstempel voorzichtig van het oppervlak, met behulp van een pincet. Spoel vervolgens de elektrode af met gedeïoniseerd water en droog met stikstofgas.
Dompel de elektroden gedurende twintig minuten onder in één milliliter tien millomer van een dodecanetheol bereid in ethanol om de pinholes op het oppervlak van de elektrode te bedekken. Spoel vervolgens de elektroden af met gedeïoniseerd water en droog de elektroden met stikstofgas voordat u hun oppervlakken karakteriseert met rasterelektronenmicroscopie. Plaats de geïmprenteerde capacitieve gouden elektroden in de elektrochemische flowcel geïntegreerd in een capacitieve biosensor.
Bereid 100 milliliter regeneratiebuffer en een liter loopbuffer. Begin de analyse met de injectie van regeneratiebuffer om het systeem te regenereren en loopbuffer om het systeem gedurende 25 minuten opnieuw in evenwicht te brengen. Bereid standaard sjabloonoplossingen voor in het gewenste concentratiebereik in loopbuffer.
Injecteer vervolgens 250 microliter van deze standaardoplossingen sequentieel in het systeem onder optimale omstandigheden. De oppervlaktekarakterisering van de gouden elektroden wordt uitgevoerd door rasterelektronenmicroscopie. Het blote gouden oppervlak wordt getoond.
Ook getoond zijn bacteriofagen die op verschillende vergrotingen op het oppervlak van de elektrode hechten. Hier wordt de realtime binding van bacteriofagen aan de geïmprenteerde gouden elektrode weergegeven door middel van een sensogram. Een stabiele basislijn wordt vastgesteld na regeneratie en hernieuwde evenwichtstoestand van het systeem vóór de injectie van het monster.
Er zijn faagspecifieke holtes op de elektrode. Injectie van de monster-inducerende bacteriofagen resulteert in een verminderde capaciteit, als gevolg van de binding van doelbacteriofagen aan de geïmprenteerde holtes op het oppervlak van de gouden elektroden. Kalibratiecurven tonen de veranderende capaciteit ten opzichte van eiwitinjectie bij bacteriofage-injectie.
Uit de vergelijkingen in deze grafieken is het mogelijk om de concentratie van bacteriofagen of eiwitten in een monster te berekenen. Na het bekijken van deze video zou u een goed begrip moeten hebben van hoe u een ultragevoelig, snel en realtime detect
Dit artikel presenteert een protocol voor het detecteren en kwantificeren van biomoleculen met een lage abundantie in complexe oplossingen met behulp van moleculaire imprinting en een capacitieve biosensor. De methode kenmerkt zich door een hoge gevoeligheid, eenvoud en kostenefficiëntie, waardoor deze geschikt is voor diverse toepassingen binnen de biotechnologie en biomedische wetenschappen.
Deze methode voldoet aan de behoefte aan labelvrije detectie met een hoge gevoeligheid van biomarkers met een lage abundantie in complexe matrices, een kritische tekortkoming bij targetvalidatie in vroege stadia en de ontwikkeling van assays. Door moleculaire imprinting te combineren met capacitieve biosensing, maakt het real-time kwantificering mogelijk zonder antilichamen of fluorescente labels, waardoor de complexiteit en de kosten van de assay worden verminderd. De aanpak ondersteunt de voorspellende betrouwbaarheid in workflows voor biomarkerdetectie, met name voor toepassingen waarbij snelle screening van milieu- of klinische monsters vereist is.
De methode past binnen het ontdekkingscontinuüm, van het testen van target-hypothesen tot biomarkerdetectie die klaar is voor assay-toepassing, ter ondersteuning van fasen voor lead-identificatie waarbij sensitiviteit en specificiteit van cruciaal belang zijn.