Name: Muis en mens-afkomstige primaire maag epitheliale enkelgelaagde cultuur voor de studie van regeneratie (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-05-07T13:30:00.000+00:00
Duration: 11 min 48 s
Description: Leer een primaire maagmonolaagcultuur opzetten van muis- en mensweefsel voor regeneratiestudies met wondgenezingsassays. Deze methode maakt grootschalig onderzoek naar epitheliale celmigratie mogelijk.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit werk werd gesteund door de NIH (NIDDK) 5 R01 DK083402-07 verlenen (YZ).

Om besmetting te voorkomen, voeren protocol in zijn geheel binnen een steriele weefselkweek kap. Menselijke fundic weefsel werd verzameld van patiënten die een sleeve Gastrectomie volgens het goedgekeurde protocol van de Universiteit van Cincinnati IRB (IRB protocolnummer: 2015-4869). Alle muis studies werden goedgekeurd door de Universiteit van Cincinnati institutionele dierenverzorgers en gebruik Comité (IACUC) die een Amerikaanse vereniging van beoordeling en erkenning van Laboratory Animal Care (AAALAC) faciliteit onderhoudt.
1. invoering van mens-afgeleide 3D maag Fundic Organoids
Opmerking: Dit protocol is gebaseerd op onderzoek eerder gepubliceerd in dit lab8.
<ol><li>3D organoid media die uit 50% Wnt-geconditioneerd en 20% R-spondin geconditioneerd media bestaat voor te bereiden.<ol>
<li>Bereiden van Wnt geconditioneerd media, cultuur van de L-cellen in Wnt groeimedium (Dulbecco gewijzigd van Eagle Medium (DMEM), 10% foetale runderserum (FBS), 1% penicilline/streptomycine) voor 7 dagen, oogst het medium, en filteren met behulp van een 0,22 µm filter.</li>
		<li>R-spondin geconditioneerd media voor te bereiden. Groeien van een gemodificeerde HEK-293T R-spondin dat cellijn in R-spondin groeimedium (Dulbecco gewijzigd van Eagle Medium (DMEM), 10% foetale runderserum (FBS), 1% penicilline/streptomycine). Op bijlage na 2U, omzetten in het medium van deze cellen OPTIMEM groei medium, 1% penicilline/streptomycine. Cultuur de cellen gedurende 7 dagen. Dan de R-spondin geconditioneerd media oogst en filteren met behulp van een 0,22 µm filter. Opmerking: Dit protocol is eerder gepubliceerd en voor een meer gedetailleerde protocol verwijzen naar 6,7,8.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Ontdooi de groeifactor verminderde, fenol red-gratis kelder membraan matrix voor 16u op het ijs bij 4 ° C. Verzamelen van het weefsel in de ijskoude Ca2 +/Mg2 +-gratis DBPS in een grote plastic container. Opslaan op het ijs tot begin stap 1.4. Opmerking: Weefsel wordt verzameld van patiënten die een sleeve Gastrectomie.</li>
	<li>Met behulp van Tang, wassen het weefsel krachtig in een steriele bekerglas van 100 mL Ca2 +/Mg2 +-gratis Dulbecco van fosfaat gebufferde zoutoplossing (DPBS). Wassen voor ongeveer 30 s of totdat het puin en het bloed heeft verwijderd. Vervolgens met behulp van steriel gaas, veeg weg de slijmvliezen laag van het epithelium.</li>
	<li>Met behulp van grote pincet, stevig begrijpen de spier laag van het weefsel en met kracht, het epithelium met behulp van de grote gebogen hemostatische verlostang weg te schrapen. De geschraapt epitheliale fragmenten in een petrischaal steriele, polystyreen verzamelen.</li>
	<li>Mince de epitheelweefsel in ongeveer 2.0 x 2.0 mm2 formaat stukjes weefsel vertering optimaliseren met scheermessen. Wassen van de weefsels fragmenten met Ca2 +/Mg2 + -gratis DBPS aangevuld met antibiotica (Ca2 +/Mg2 + -gratis DPBS, 1% penicilline/streptomycine, 0,25 mg/mL amfotericine B 10 mg/mL gentamicine, kanamycine 50 mg/mL), totdat de wash is vrij van bloed. Meerdere wasbeurten uitvoeren indien nodig. Verwijderen uit het wassen met een zorgvuldig het wassen door middel van een steriel gaas filter in een bekerglas van afval.</li>
	<li>Verzamel gewassen fragmenten in een glas 125 mL ronde onderkant kolf met een 25 mm roer bar en voorverwarmde incubatie media (basale media, aangevuld met 2 mM L-glutamine, 1% penicilline/streptomycine, 10 mM HEPES-Buffer, 1 mg/mL Collagenase Type 1, de cultuur van de cel van 2 mg/mL graad van bovien serumalbumine). Het zegel van de kolf met ronde bodem met rubber septa.</li>
	<li>Invoegen van een spinale naald van 20 G in de septa en sluit deze aan op een zuurstoftank met rubber hosing. Als u wilt filteren op eventuele verontreinigingen, kunt u het papieren zakdoekje invoegen door de buis om een filter te maken. Inschakelen van de uitstroom van de zuurstof op laag. 10-15 uitstroom naalden in de septa om te voorkomen dat de breuk van de septa invoegen.</li>
	<li>Beveilig de set up naar een stand van de ring met behulp van klemmen en plaatst u deze in een waterbad gekalibreerd tot 37 ° C met een roer-plaat voor 30-45 min. Nadat het weefsel heeft geweest incubatie gedurende 15 minuten, verwijder 50 µL van incubatie media en Controleer visueel gedissocieerde klieren. Als de klieren niet dicht of niet gescheiden van het weefsel, verlof voor een extra 5-10 min.</li>
	<li>Onmiddellijk na incubatie, voeg 50 mL pre-water verwarmd DMEM/F12 incubatie media met behulp van een steriele serologische pipet of door gieten direct in het incubatie-mengsel.</li>
	<li>Filtreer het mengsel van de klier door middel van een steriel gaas in vier 50 mL conische buizen. Houd het filtraat op ijs gedurende 15 minuten zodat uitgepakte klieren om af te wikkelen naar de onderkant van de conische buis. Wees voorzichtig niet te verstoren de gevestigde klieren, te verwijderen en te verwijderen uit de top 40 mL van het supernatant gebruik een serologische pipet. Resuspendeer de overblijvende 10 mL 10 ml van DPBS aangevuld met antibiotica.</li>
	<li>Het mengsel gelijkmatig verdelen in 5 mL cel cultuur reageerbuizen. Centrifugeer gedurende 5 minuten bij 65 x g bij 4 ° C en verwijder het supernatant zorgvuldig met behulp van een precisiepipet. Resuspendeer de pellet klier in ontdooide kelder membraan matrix met een pipet of een 200 µL breed pipette uiteinde. Meng tot homogene. Opmerking: Het is van cruciaal belang voor het uitvoeren van deze stap op het ijs en om te voorkomen dat de polymerisatie van kelder membraan matrix tijdens het mixen. Daarnaast is het belangrijk om het visueel inspecteren de dichtheid van de klier door middel van steekproeven voor 50 µL. De optimale dichtheid is ~ 70% confluentie.</li>
	<li>Vervolgens plaat de klieren in 50 µL van kelder membraan matrix met behulp van een precisiepipet wide-tipped. Vermijd produceren bubbels terwijl beplating.</li>
	<li>Dat kelder membraan matrix polymeriseren, Incubeer gedurende 10-15 minuten bij 37 ° C. Als plating in een 12-well cultuur bord, voeg 1 mL van hFGO media (Advanced Dulbecco gemodificeerde Eagle medium/F12 medium aangevuld met 2mM L-glutamine, 1% penicilline/streptomycine, 0,25 mg/mL amfotericine B 10 mg/mL gentamicine, 50 mg/mL kanamycine, 10 mM HEPES Buffer, 1 mM n-Acteylcystine, 1 x N2, 1 x B27, 50% Wnt-geconditioneerd medium, 20% R-spondin-geconditioneerd medium aangevuld met 100 ng/mL bot morfogenetische eiwit remmer 1 nM gastrine, 50 ng/mL epidermale groeifactor, 200 ng/mL Fibroblast groeifactor 10, 10 mM Nicotinamide, en 10 µM Y-27632 ROCK remmer) per putje. Als dat niet genoeg media te dompelen de zeepbel van de matrix kelder membraan met behulp van een 12-well cultuur plaat toevoegen.</li>
	<li>Cultuur van de cellen bij 37 ° C in een 5% CO2 bevochtigde cel cultuur incubator. Media elke 4-5 dagen wijzigen.</li>
</ol>2. invoering van muis-afgeleide 3D maag Fundic Organoids
Opmerking: Dit protocol is eerder gepubliceerde 6. Kelder membraan matrix op het ijs ontdooien en bereiden alle reagentia voordat u begint.
<ol><li>Offeren muizen met behulp van een methode goedgekeurd door de onderzoeksinstelling waar onderzoek wordt uitgevoerd. Verwijderen van de maag van de muis en ontleden volgens de eerder gepubliceerde protocollen 6. Wassen in 20 mL ijs koud Ca2 +/Mg2 +-gratis DBPS. Opmerking: C57BL/6 muizen, leeftijd van 8-10 weken, worden gebruikt voor fundic maag organoid culturen. Muizen werden euthanized inademing van kooldioxide gevolgd door handmatige cervicale dislocatie voordat zij zijn afgehaald van de maag.</li>
	<li>Strippen van de laag van de spieren van de maag en zichtbare bloedvaten zoals eerder gepubliceerd 6.</li>
	<li>Scheiden de fundus van het antrum en de voormaag met behulp van een steriele scheermesje. Gesneden fundus met behulp van kleine heelkundige schaar in fragmenten ongeveer 2.0 x 2.0 mm. met pincet, verzamelen de fragmenten in een conische tube van 15 mL EDTA incubatie buffer met (Ca2 +/Mg2 +-gratis DPBS, 5 mM EDTA) en Incubeer bij 4 ° C voor 2 h met zachte agitatie.</li>
	<li>In een steriele kap, laat conische buis en fragmenten op ijs voor ongeveer 5 min. gebruik een pipet om zoveel incubatie buffer mogelijk verlaten fragmenten onaangeroerd. Voeg 5 mL buffer schudden (1 g D-Sorbitol, 1,47 g sacharose in 100 mL Ca2 +/Mg2 +-gratis DPBS) en met de hand schudden met een kracht voor 2 min. laten de grote fragmenten te regelen en te verwijderen met haast, met behulp van een precisiepipet 1000 p, de kleine fragmenten die nog moeten regelen in de bovenste laag.</li>
	<li>Draai de verwijderde fragmenten voor 5 min bij 4 ° C bij 65 x g.</li>
	<li>Terwijl het vermijden van luchtbellen, verwijder het supernatant en resuspendeer in de kelder membraan matrix mix totdat het homogene.</li>
	<li>Een brede tip pipet kunt op plaat van de kelder membraan matrix op 50 µL per putje en vervolgens Incubeer bij 37 ° C gedurende 20 minuten.</li>
	<li>Voeg genoeg mFGO groei media (Advanced Dulbecco bewerkt Eagle medium/F12 medium aangevuld met 2mM L-glutamine, 1% penicilline/streptomycine, 10 mM HEPES-Buffer, 1mM n-Acteylcystine, 1 x N2, 1 x B27, 50% Wnt-geconditioneerd medium, 20% R-spondin-geconditioneerd medium aangevuld met 100 ng/mL bot morfogenetische eiwit remmer, 10 nM gastrine, 50ng/mL epidermale groeifactor, 10 ng/mL Fibroblast groeifactor 10 en 10 µM Y-27632 ROCK remmer) te dompelen de zeepbel.</li>
	<li>Cultuur van de cellen bij 37 ° C, 5% CO2 bevochtigde cel cultuur incubator. De media iedere 4-5 dagen wijzigen.</li>
</ol>3. collageen Coating voor 2D overdracht
Opmerking: Voer alle procedures in een steriele weefselkweek kap tenzij anders aangegeven. Begin collageen 24 h vóór de overbrenging van 3D organoids aan de enkelgelaagde coating. Houd de rat staart collageen op het ijs en beschermd tegen licht. Collageen gecoate platen zijn goed voor maximaal 2 weken. Als geen gebruik maakt van de gecoate platen onmiddellijk, wikkel de plaat in parafilm en winkel bij 4 ° C totdat het nodig is.
<ol><li>Verdun de rat staart collageen met 50 µg Mo/mL met behulp van 20 mM azijnzuur.</li>
	<li>Voldoende dekking van het oppervlak van de put met verdunde collageen. Voor een goed in een standaard 12-well-plate, jas met ongeveer 1 mL van collageen. Laat 's nachts bij kamertemperatuur in een steriele kap.</li>
	<li>Wassen tweemaal met 1 mL Ca2 +/Mg2 +-gratis DPBS per putje en vertrekken vanuit een ongedekte positie gedurende 2 uur bij kamertemperatuur in een steriele kap.</li>
</ol>4. kelder membraan Matrix Coating voor 2D overdracht
Opmerking: Voer alle procedures in een steriele weefselkweek kap tenzij anders aangegeven. Kelder membraan matrijs coating 2 h vóór de overbrenging van 3D organoids aan de enkelgelaagde beginnen. Houd de kelder membraan matrix op ijs. Gecoate platen onmiddellijk worden gebruikt en kunnen niet worden opgeslagen voor een langere periode van tijd.
<ol><li>De kelder membraan matrix in een conische tube van 15 mL met een cel cultuur rang water verdunnen om een 1:10 verhouding. Verdun op ijs.</li>
	<li>Met behulp van een precisiepipet Voeg 100 µL van verdunde kelder membraan matrix aan elk putje van een standaard 12-well-plaat. Met behulp van een cel schraper, verdeel de verdunde kelder membraan matrix in de put voor een zelfs vacht.</li>
	<li>Incubeer bij 37 ° C gedurende 1 uur.</li>
	<li>Verwijder het resterende water met behulp van een precisiepipet en drogen bij kamertemperatuur gedurende 1 uur vóór de overbrenging van 3D organoids.</li>
</ol>5. overdracht van 3D m/hFGOs naar 2D maag epitheliale cel Monolayers
<ol><li>Na 3D muis of mens-afkomstige FGOs hebben zijn gekweekt voor 6-7 dagen, de overdracht van 3D organoids aan de 2D enkelgelaagde begint. Opmerking: Voor elk putje van een enkelgelaagde vereist het wordt aanbevolen om 300 intact organoids of afzonderlijke cellen afgeleid van 300 organoids te gebruiken. In een robuuste cultuur naar verwachting ongeveer 150 organoid per putje binnen een 12 goed cultuur plaat verkrijgen.</li>
	<li>Zorg ervoor dat de platen zijn gecoat vóór de overbrenging. Opmerking: De kelder membraan matrix gecoate platen hebben een doorzichtig gel laag, collageen gecoate platen zal hebben echter geen enkele duidelijke indicatie van de coating.</li>
	<li>Verjagen de zeepbel van de matrix 3D kelder membraan van de plaat door direct pipetteren 1 mL steriele Ca2 +/Mg2 +-gratis DBPS in het midden van de zeepbel.</li>
	<li>De kelder membraan matrix en organoid mengsel in cel cultuur reageerbuisjes met behulp van een precisiepipet, verzamelen. Verzamelen bij een verhouding van 2 kelder membraan matrix bubbels per buis. Centrifugeer gedurende 5 min op 40 x g- en 4 ° C.</li>
	<li>Met behulp van een vacuümsysteem, verwijder het supernatant en zoals veel kelder membraan matrix mogelijk. Resuspendeer in 4 mL Ca2 +/Mg2 +-gratis DBPS, verwijder het supernatant en 2 - 3 keer herhalen. Voor de hele organoid transfer protocol, gaat u verder met stap 5.10. Ga verder met stap 5.7 voor de eencellige schorsing protocol.</li>
	<li>Vooraf warm cell detachement oplossing tot 37 ° C en voeg 1 mL toe aan elke proefbuis. Meng zachtjes door het omkeren van buizen of pipetteren op en neer met een pipet. Incubeer gedurende 10 minuten bij 37 ° C.</li>
	<li>Voeg toe 2 mL Ca2 +/Mg2 +-gratis DBPS rechtstreeks naar elke proefbuis.</li>
	<li>Gebruik een 26 G naald en syringe het mengsel 2 - 3 keer. Visueel controleren voor afzonderlijke cellen. Syringe 1-2 vaker als er nog steeds organoids of clusters van cellen.</li>
	<li>Centrifugeer bij 40 x g gedurende 5 min bij 4 ° C. Resuspendeer de pellet in 2D FGO media (2D muis FGO groeimedium: geavanceerde Dulbecco gemodificeerde Eagle medium/F12 medium aangevuld met 2mM L-glutamine, 10 mM penicilline/streptomycine, 10% foetaal kalfsserum, 10 mM HEPES-Buffer, 1 x N2, 1 x B27, aangevuld met 10 nM gastrine, 50 ng/mL epidermale groeifactor, 1 µM TGF-β-remmer en 10 µM Y-27632 ROCK Inhibitor van de omwenteling. 2D menselijke FGO groeimedium: Geavanceerde Dulbecco van gemodificeerde Eagle medium/F12 medium aangevuld met 2mM L-glutamine, 1% penicilline/streptomycine, 10 mM HEPES-Buffer, 10% foetaal kalfsserum, 10 mM Nicotinamide, 1 x N2, 1 x B27, aangevuld met 50 mg/mL kanamycine, 50 ng/mL epidermale groei Factor, en 10 µM Y-27632 ROCK remmer, 1 µM TGF-β-remmer).</li>
	<li>Plaat de resuspensie op gecoate platen. Incubeer de platen bij 37 ° C. Vervang media elke 4 dagen of eerder als media omslaat naar geel. Enkelgelaagde vereist ongeveer 4 dagen naar formulier.</li>
</ol>6. Kras wond Assay met behulp van 2D maag epitheliale cel Monolayers
<ol><li>Met behulp van een scheermesje, krassen de enkelgelaagde wanneer de cultuur heeft bereikt 100% confluentie.</li>
	<li>Fix monolayers met 3,7% formaldehyde gedurende 15 minuten bij kamertemperatuur. Permeabilize met 0,5% niet-ionogene wasmiddel/PBS gedurende 20 minuten bij kamertemperatuur.</li>
	<li>Volgende blokkeren monolayers met 2% ezel serum gedurende 1 uur bij kamertemperatuur en incubeer met 1:1000 verdunning van H+, K+-ATPase primair antilichaam 's nachts bij 4 ° C, spoel met 0,1% niet-ionogene wasmiddel/PBS en incubeer met 1:100 verdunning voor donkey anti-muis 488 secundair antilichaam en 10μg/mL Hoechst celkernen vlek gedurende 1 uur bij kamertemperatuur.</li>
	<li>Vlek ter identificatie van de cellen van de oppervlakte slijm pit in 2D mens afkomstige maag enkelgelaagde culturen, cellen met 20 μg /mL van gaspeldoorn (UEAI) FITC-conjugaat. Afbeelding monolayers op een confocal microscoop.</li>
	<li>Neem beelden van wond elke paar h. kras zal opnieuw epithelialize tussen 24-48 h afhankelijk van de kwaliteit van de enkelgelaagde en variatie tussen patiënten.</li>
</ol>

<ol><li>Nagy, T. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Helicobacter+pylori+regulates+cellular+migration+and+apoptosis+by+activation+of+phosphatidylinositol+3-kinase+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22J+Infect+Dis%22%5BJournal%5D)">Helicobacter pylori regulates cellular migration and apoptosis by activation of phosphatidylinositol 3-kinase signaling.</a> J Infect Dis. 199 (5), 641-651 (2009).</li>
<li>Mnich, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+Helicobacter+pylori+on+the+healing+process+of+the+gastric+barrier%5BTitle%5D)+AND+%22World+J+Gastroenterol%22%5BJournal%5D)">Impact of Helicobacter pylori on the healing process of the gastric barrier.</a> World J Gastroenterol. 22 (33), 7536-7558 (2016).</li>
<li>Zhang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bm-TFF2%2C+a+toad+trefoil+factor%2C+promotes+cell+migration%2C+survival+and+wound+healing%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem+Biophys+Res+Commun%22%5BJournal%5D)">Bm-TFF2, a toad trefoil factor, promotes cell migration, survival and wound healing.</a> Biochem Biophys Res Commun. 398 (3), 559-564 (2010).</li>
<li>Crabtree, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+cytokines+in+pathogenesis+of+Helicobacter+pylori-induced+mucosal+damage%5BTitle%5D)+AND+%22Dig+Dis+Sci%22%5BJournal%5D)">Role of cytokines in pathogenesis of Helicobacter pylori-induced mucosal damage.</a> Dig Dis Sci. 43 (Supplement), 46S-53S (1998).</li>
<li>Riahi, R., Yang, Y., Zhang, D. D., Wong, P. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advances+in+wound-healing+assays+for+probing+collective+cell+migration%5BTitle%5D)+AND+%22J+Lab+Autom%22%5BJournal%5D)">Advances in wound-healing assays for probing collective cell migration.</a> J Lab Autom. 17 (1), 59-65 (2012).</li>
<li>Zhang, M., Li, H., Ma, H., Qin, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+microfluidic+strategy+for+cell+migration+assay+in+an+in+vitro+wound-healing+model%5BTitle%5D)+AND+%22Wound+Repair+Regen%22%5BJournal%5D)">A simple microfluidic strategy for cell migration assay in an in vitro wound-healing model.</a> Wound Repair Regen. 21 (6), 897-903 (2013).</li>
<li>Schlaermann, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+human+gastric+primary+cell+culture+system+for+modelling+Helicobacter+pylori+infection+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Gut%22%5BJournal%5D)">A novel human gastric primary cell culture system for modelling Helicobacter pylori infection in vitro.</a> Gut. 65 (2), 202-213 (2016).</li>
<li>Bertaux-Skeirik, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CD44+plays+a+functional+role+in+Helicobacter+pylori-induced+epithelial+cell+proliferation%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Pathog%22%5BJournal%5D)">CD44 plays a functional role in Helicobacter pylori-induced epithelial cell proliferation.</a> PLoS Pathog. 11 (2), e1004663(2015).</li>
<li>Tarnawski, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+and+molecular+mechanisms+of+gastrointestinal+ulcer+healing%5BTitle%5D)+AND+%22Dig+Dis+Sci%22%5BJournal%5D)">Cellular and molecular mechanisms of gastrointestinal ulcer healing.</a> Dig Dis Sci. 50 (Suppl 1), S24-S33 (2005).</li>
<li>Wright, N. A., Pike, C., Elia, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+a+novel+epidermal+growth+factor-secreting+cell+lineage+by+mucosal+ulceration+in+human+gastrointestinal+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Induction of a novel epidermal growth factor-secreting cell lineage by mucosal ulceration in human gastrointestinal stem cells.</a> Nature. 343, 82-85 (1990).</li>
<li>Wright, C. L., Riddell, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Histology+of+the+stomach+and+duodenum+in+Crohn%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Surg+Pathol%22%5BJournal%5D)">Histology of the stomach and duodenum in Crohn's disease.</a> Am J Surg Pathol. 22 (4), 383-390 (1998).</li>
<li>Engevik, A. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Development+of+Spasmolytic+Polypeptide%2FTFF2-Expressing+Metaplasia+%28SPEM%29+During+Gastric+Repair+Is+Absent+in+the+Aged+Stomach%5BTitle%5D)+AND+%22CMGH%22%5BJournal%5D)">The Development of Spasmolytic Polypeptide/TFF2-Expressing Metaplasia (SPEM) During Gastric Repair Is Absent in the Aged Stomach.</a> CMGH. , In Press (2016).</li>
<li>Bertaux-Skeirik, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CD44+variant+isoform+9+emerges+in+response+to+injury+and+contributes+to+the+regeneration+of+the+gastric+epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pathology%22%5BJournal%5D)">CD44 variant isoform 9 emerges in response to injury and contributes to the regeneration of the gastric epithelium.</a> Journal of Pathology. 242 (4), 463-475 (2017).</li>
<li>Nam, K. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mature+chief+cells+are+cryptic+progenitors+for+metaplasia+in+the+stomach%5BTitle%5D)+AND+%22Gastroenterology%22%5BJournal%5D)">Mature chief cells are cryptic progenitors for metaplasia in the stomach.</a> Gastroenterology. 139 (6), 2028-2037 (2010).</li>
</ol>

De auteurs hebben niets te onthullen.

Het huidige protocol detailleert de oprichting van mens - en muis-afgeleide maag epitheliale monolayers die kunnen worden gebruikt voor kras-wond testen. Het protocol is afhankelijk van het concept van de cel van de stam van de resident los van de primaire mens (of muis) weefsels en is een gewijzigd protocol voor het eerst gepubliceerd door Schlaermann et al.7. Wij hebben met name het protocol hier geoptimaliseerd om een heuvels en gepolariseerde maag epitheliale enkelgelaagde welke spree...

Het gebruik van nul-wond tests is een populaire methode voor het bestuderen van de reparatie en regeneratie1,2,3,4,5,6. De voorgestelde methodologie kan worden gebruikt om specifiek bestuderen maag regeneratie en Helicobacter pylori kolonisatie. In het verleden, maagkanker cellijnen zijn gebruikt als een middel om te studeren van Helicobacter pylori (H. pylori) infectie1,2 en tot onlangs maagkanker cellijnen zoals AGS cellen waren favoriet1 ,2,3,4. Een beperking van de celculturen maagkanker is hun falen om te recapituleren de cellulaire diversiteit van de maag epitheel. Als u wilt proberen om deze beperking, aangetoond dat zij dat hier is de oprichting en overdracht van primaire mens - en muis-afgeleide 3-dimensionale fundic maag organoids (FGOs) een maag epitheliale enkelgelaagde voor wond genezing testen op basis van een gewijzigde methode eerst beschreven door Schlaermann et al. 7 we aantonen dat maag epitheliale monolayers afgeleid van 3D maag FGOs geschoren of FGO-afgeleide enkele cellen behouden een gepolariseerde cellulaire samenstelling die nauw die de maag epitheel vertegenwoordigt in vivo. Gezien het feit dat de cellijnen van maagkanker doen niet aantonen dat de samenstelling van de cel die deze techniek wordt weergegeven, heeft het huidige protocol een voordeel ten opzichte van alternatieve kras-wond controlemethodes. Deze methodologie is geoptimaliseerd waarbij monolayers worden kunnen gevestigd uit hele organoids of uit een enkele celsuspensie van gedissocieerde organoids en vergulde met behulp van een kelder membraan matrix of collageen-coating. Het algemene doel van dit protocol is om dat een organoid afgeleid maag epitheliale enkelgelaagde culturen voor een nieuwe wond genezing assay.

<table><tbody><tr><td>Advanced Dulbecco's modified Eagle/F12 medium (basal media)</td><td>Life Technologies</td><td>12634-010</td><td></td></tr><tr><td>GlutaMAX (L-glutamine)</td><td>Life Technologies</td><td>25030-081</td><td></td></tr><tr><td>Penicillin/Streptomycin</td><td>Thermo Scientific</td><td>SV30010</td><td></td></tr><tr><td>Amphotericin B/Gentamicin</td><td>Thermo Scientific</td><td>R01510</td><td></td></tr><tr><td>Kanamycin</td><td>Thermo Fisher</td><td>RO1510</td><td></td></tr><tr><td>HEPES Buffer</td><td>Sigma Aldrich</td><td>H0887</td><td></td></tr><tr><td>n-Acetylcystine</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A9165</td><td></td></tr><tr><td>N2</td><td>Life Technologies</td><td>17502-048</td><td></td></tr><tr><td>B27</td><td>Life Technologies</td><td>12587-010</td><td></td></tr><tr><td>BMP Inhibitor (Noggin)</td><td>Pepro Tech</td><td>250-38</td><td></td></tr><tr><td>Gastrin</td><td>Tocris</td><td>3006</td><td></td></tr><tr><td>EGF</td><td>Pepro Tech</td><td>315-09</td><td></td></tr><tr><td>FGF10</td><td>Pepro Tech</td><td>100-26</td><td></td></tr><tr><td>Nicotinamide</td><td>Sigma Aldrich</td><td>N0636</td><td></td></tr><tr><td>Y-27632 ROCK Inhibitor</td><td>Sigma Aldrich</td><td>Y0503</td><td></td></tr><tr><td>TGF-&beta; Inhibitor</td><td>Tocris</td><td>2939</td><td></td></tr><tr><td>Ca2+/Mg2+ -free DPBS</td><td>Fisher</td><td>21-031CV</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco's modified Eagle Medium (DMEM)</td><td>Life Technologies</td><td>12634-010</td><td></td></tr><tr><td>Fetal Bovine Serum</td><td>FBS</td><td></td><td></td></tr><tr><td>OPTIMEM</td><td>Invitrogen</td><td></td><td></td></tr><tr><td>0.22&micro;M filter</td><td>Fisher</td><td>099-720-004</td><td></td></tr><tr><td>37 &deg;C Water Bath</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Collagenase Type 1</td><td>Worthington&nbsp;</td><td>LS004214</td><td></td></tr><tr><td>Bovine Serum Albumin</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A9418</td><td></td></tr><tr><td>Kimwipes (tissue paper)</td><td>Fischer Scientific</td><td>06-666C</td><td></td></tr><tr><td>125 mL round bottom flask</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1 in (25 mm) stir bar</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Rubber Septa</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sterile Gauze</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Stir Plate</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ring Stand</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ring Stand Clamps</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sterile petri dish</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>18 G needles of 1.5 in length</td><td>Thermo Fisher</td><td>305196</td><td></td></tr><tr><td>20 G spinal needles of 3.5 in length</td><td>Thermo Fisher</td><td>405182</td><td></td></tr><tr><td>12-well cell culture treated plate</td><td>Midwest Scientific</td><td>92012</td><td></td></tr><tr><td>Growth Factor Reduced, Phenol Red-free MatrigelTM (Basement membrane matrix)</td><td>Fisher</td><td>CB-40230C</td><td></td></tr><tr><td>Sterile Razor Blades</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Wide-tip tweezers</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Curved Hemostatic Forceps</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>200 &micro;L wide pipette tips</td><td>Thermo Fisher</td><td>02-707-134</td><td></td></tr><tr><td>5 mL cell culture test tubes</td><td>Fisher</td><td>14-956-3C</td><td></td></tr><tr><td>Oxygen Tank with rubber hosing</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1 g D-Sorbitol</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sucrose</td><td>Fisher</td><td>SS-500</td><td></td></tr><tr><td>Dissecting microscope</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dissecting Tray</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Rocking Table</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Rat Tail Collagen Type 1</td><td>Life Technologies</td><td>A10483-01</td><td></td></tr><tr><td>Cell culture grade glacial acetic acid</td><td>Fisher</td><td>A38-212</td><td></td></tr><tr><td>Cell culture grade water</td><td>Corning</td><td>25-055-CV</td><td></td></tr><tr><td>2-well chamber slide</td><td>Thermo Fisher</td><td>155380</td><td></td></tr><tr><td>12-well Transwell (polyester membrane inserts)</td><td>Corning</td><td>3460</td><td></td></tr><tr><td>Cell scraper</td><td>Corning</td><td>353086</td><td></td></tr><tr><td>Accutase (cell detachment solution)</td><td>Stemcell Technologies</td><td>7920</td><td></td></tr><tr><td>263/8 G syringe</td><td>Thermo Fisher</td><td>309625</td><td></td></tr><tr><td>Razor blade</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>L Cells</td><td>L cells, a Wnt3a producing cell line, were received as a gift from Dr. Hans Clevers (Hubrecht Institute for Developmental Biology and Stem Cell Research, Netherlands).&nbsp;&nbsp;</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>HEK-293T Rspondin secreting cells</td><td>A modified HEK-293T R-spondin secreting cell line was obtained from Dr. Jeff Whitsett (Section of Neonatology, Perinatal and Pulmonary Biology, Cincinnati Children's Hospital Medical Centre and The University of Cincinnati College of Medicine, Cincinnati, USA&nbsp;).&nbsp;&nbsp;</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>HK-ATPase Primary Antibody</td><td>Invitrogen</td><td>SC-374094</td><td></td></tr><tr><td>E-Cadherinn</td><td>SantaCruz</td><td>sc-59778</td><td></td></tr><tr><td>UEA1</td><td>Sigma Aldrich</td><td>L9006</td><td></td></tr><tr><td>Hoechst 33342</td><td>Thermo Fisher</td><td>H3570</td><td></td></tr><tr><td>Alexafluor 488 secondary antibody (Donkey anti-mouse 488 secondary antibody)</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>R37114</td><td></td></tr></tbody></table>

muis en mens-afkomstige primaire maag epitheliale enkelgelaagde cultuur voor de studie van regeneratie

Mouse- and Human-derived Primary Gastric Epithelial Monolayer Culture for the Study of Regeneration

In vitro studies van maag wond reparatie betekent meestal dat het gebruik van maagkanker cellijnen in een kras-wond assay van cellulaire proliferatie en migratie. Een belangrijke beperking van deze gehaltebepalingen, is echter hun homogene assortiment cellulaire soorten. Reparatie is een complex proces dat vraagt om de interactie van verschillende celtypes. Daarom, om te bestuderen van een cultuur verstoken van cellulaire subtypes, is een zorg die moet worden overwonnen als we gaan begrijpen van het herstelproces. Het model van de maag organoid kan dit probleem waarbij de heterogene collectie van celtypes aansluit bij die van de maag epitheel of andere inheemse weefsels in vivoverlichten. Aangetoond hier is een roman, in vitro kras-wond assay, afgeleid van de mens of de 3-dimensionale organoids muis, die vervolgens kunnen worden overgedragen aan een maag epitheliale enkelgelaagde als beide intact organoids of als een enkele celsuspensie van losgekoppeld organoids. Het doel van het protocol is om organoid afkomstige maag epitheliale monolayers die kunnen worden gebruikt in een roman kras-wond assay-systeem om te studeren maag regeneratie.

Organoids waren afgeleid van de corpus/lichaam van de mens of de fundus van de muis maag weefsels (figuur 1A). Na collagenase of EDTA vertering van mens - of muis-afgeleide maag weefsel respectievelijk zijn klieren ingebed in de kelder membraan matrix en gekweekte voor 6-7 dagen (figuur 1A). Figuur 1B toont de vorming van mens-afgeleide maag organoids (huFGOs) die vervolgens aan een maag epitheliale ...

Hier beschrijven we een protocol voor de vaststelling en het kweken van mens - en muis-afgeleide 3-dimensionale (3D) maag organoids, en de methode voor de overdracht van 3D organoids naar een 2-dimensionale enkelgelaagde. Het gebruik van de maag epitheliale enkelgelaagde als een roman kras-wond assay voor regeneratie studies wordt ook beschreven.

Muis en mens-afkomstige primaire maag epitheliale enkelgelaagde cultuur voor de studie van regeneratie

In vitro studies of gastric wound repair typically involves the use of gastric cancer cell lines in a scratch-wound assay of cellular proliferation and ...

Het algemene doel van dit cultuursysteem is om een primaire muis- of humaangebonden gastrische monolaag te genereren voor de studie van regeneratie in een wondgenezingstest. Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van belangrijke vragen in het gastrische veld, zoals het mechanisme van regeneratie van gastrische epitheliale cellen als reactie op verwonding. Het belangrijkste voordeel van deze techniek is ten eerste de studie van celmigratie en regeneratie in een wondgenezingstest, gegenereerd uit primaire muis- of humaangebonden gastrische cellen, en ten tweede de generatie van humaangebonden gastrische organoïden voor grootschalige experimenten.Hoewel deze methode inzicht kan geven in de regeneratie van het gastrische epitheel, kan deze ook worden toegepast op andere systemen, zoals helicobacter pylori-infectie en epitheel-immuuncelco-cultures. De procedure zal worden gedemonstreerd door Emma Teal, een afstudeerstudent uit mijn laboratorium. Om te beginnen, verzamel het voorbereide weefsel in een grote plastic container gevuld met calciummagnesiumvrij DPBS.Laat de plastic container op ijs staan tot gebruik. Vervolgens, met behulp van een pincet, was het weefsel krachtig in een steriele beker met 100 milliliter calciummagnesiumvrij DPBS gedurende ongeveer 30 seconden. Gebruik vervolgens een steriele gaas om de slijmlaag van het epitheel af te vegen.Gebruik vervolgens een groot pincet om de spierlaag van het weefsel stevig vast te houden, gebruik vervolgens grote gebogen hemostatische pincetten en schrap het epitheel met kracht. Bewaar het geschraapte epitheel in een steriele polystyreen petrischaal. Om de weefselvertering te optimaliseren, snijdt u het epitheliale weefsel in fragmenten.Was vervolgens het weefsel met calciummagnesiumvrij DPBS aangevuld met antibiotica. Was meerdere keren om het bloed te verwijderen. Gooi de was in een afvalbeker.Verzamel vervolgens de gewassen epitheliale fragmenten in een 125 milliliter glazen rondbodemfles met een 25 millimeter roerlat en voorverwarmd incubatiemedium. Nadat de weefselfragmenten zijn verzameld, verzegel de rondbodemfles met een septum. Gebruik vervolgens klemmen om de opstelling op een ringstatief vast te zetten.Breng vervolgens een 20 gauge spinale naald in het septum in. Verbind het septum met een zuurstoftank met rubberen slangen. Breng 10 tot 15 uitstroomnaalden in het septum in om ruptuur te voorkomen, zet de zuurstofuitlaat op laag.Calibreer vervolgens het waterbad op 37 graden Celsius op een roerplaat gedurende 30 tot 45 minuten. Zodra gecalibreerd, plaats de opstelling in het waterbad. Controleer na 15 minuten incubatie op gedissocieerde klieren.Na de gewenste incubatietijd, voeg 15 milliliter voorverwarmd DMEMF12 toe aan het incubatiemedium met behulp van een serologische pipet. Filter vervolgens het verkregen kliermengsel door een steriele gaas in vier 15 milliliter conische buisjes. Incubeer vervolgens het filtraat gedurende 15 minuten op ijs.Dit laat de klier zich op de bodem van het conische buisje bezinken. Gebruik een serologische pipet om 40 milliliter van het supernatant vanaf de bovenkant van de kliersuspensie weg te gooien. Herstel de resterende 10 milliliter van het gladmengsel in 10 milliliter DPBS aangevuld met antibiotica.Verdeel vervolgens het gehele mengsel in vijf milliliter celkweektestbuisjes. Centrifugeer de buisjes gedurende vijf minuten bij 65 keer G en vier graden Celsius. Verwijder na de centrifugatie voorzichtig het supernatant.Los het verkregen klierpellet op met basement membraanmatrix met behulp van een brede 200 microliter pipettip. Meng de suspensie tot het homogeen is. Plateer vervolgens de klieren in 15 microliters van de basement membraanmatrix met behulp van een breedgepunte pipet.Laat de basement membraanmatrix polymeriseren door 10 tot 15 minuten bij 37 graden Celsius te incuberen. Voeg vervolgens een milliliter hFGO-medium toe aan elke put als het in een 12-puts kweekplaatje wordt gekweekt. Kweek vervolgens de cellen bij 37 graden Celsius in een bevochtigde celkweekincubator.Ververs het medium elke 45 dagen. Na zes tot zeven dagen van 3D muis- of humaangebonden FGO-kweek, begin met het overbrengen van de 3D-organoïden naar de 2D-monolaag. Om dit te doen, voegt u een milliliter calciummagnesiumvrij DPBS toe aan het midden van de bubbel om de 3D-basement membraanbubbel van de plaat los te maken.Verzamel vervolgens de basement membraanmatrix en organoïdmengsel in de celkweekbuis. Centrifugeer vervolgens gedurende vijf minuten bij 40 keer G en vier graden Celsius. Gebruik na de centrifugatie een vacuümsysteem om het supernatant en zoveel mogelijk basement membraanmatrix te verwijderen.Los vervolgens het pellet op in vier milliliter calciummagnesiumvrij DPBS. Zorg ervoor dat u zoveel mogelijk van de basement matrix verwijdert na het oogsten van de organoïden ter voorbereiding van de monolaag. Voeg vervolgens een milliliter voorverwarmde celafvoeroplossing bij 37 graden Celsius toe aan elke testbuis.Meng vervolgens de inhoud van de buis door meerdere keren te keren. Incubeer ten slotte de buis gedurende 10 minuten bij 37 graden Celsius. Om een enkele celsuspensie te verkrijgen, voegt u de twee milliliter calciummagnesiumvrij DPBS direct toe aan elk van de testbuisjes.Gebruik vervolgens een 26 gauge naald om de suspensie twee tot drie keer te mengen. Na het mengen, centrifugeer de celsuspensie en los vervolgens het celpellet op in 2D FGO-medium. Om het hele organoïd te verkrijgen, plateer de celsuspensie op gecoate platen.Incubeer vervolgens de platen gedurende ongeveer vier dagen bij 37 graden Celsius. Ververs het medium als de kleur geel wordt. Zodra de kweek 100 procent confluentie bereikt, schraap de monolaag met een scheermesje.Fixeer vervolgens de monolagen met 3,7 procent paraformaldehyde bij kamertemperatuur gedurende 15 minuten. Permeabiliseer vervolgens de monolagen met Triton X-100 gedurende 20 minuten bij kamertemperatuur

mouse-human-derived-primary-gastric-epithelial-monolayer-culture-for

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie en Infectie

This video describes a method to isolate gastric epithelial cells from the human fundic tissue. The isolated epithelial cells can be used as an in vitro model to study their regulatory roles in gastric physiology and pathophysiology.

Gastric Fundic Glands Isolation: A Method to Isolate Fundic Glands from Human Stomach Tissue

This video demonstrates the culturing of Müller glial (MG) cells isolated from mouse retinas. Retinas are dissociated into a single-cell suspension using digestive enzymes. Cells are then grown in a medium with a growth factor that promotes MG cell proliferation and neuronal cell mortality. Dead neuronal cells are removed while passaging, and MG cells are grown for further analysis.

Establishing a M&#252;ller Glial Cell Culture Obtained from Mouse Retinas

Uit stamcellen afgeleide culturen bevatten een enorm potentieel om infectieziekten te modelleren. Hier wordt de kweek van muis en menselijke gastrische organoïden, afgeleid van volwassen stamcellen, beschreven. De organoïden worden gemicro-injecteerd met het gastrische pathogeen Helicobacter pylori.

Organoids als model voor Infectieziekten: cultuur van de mens en muizen Maag Organoids en Micro-injectie van Helicobacter pylori

Dit protocol beschrijft de isolatie en kweek van gemengde muis kleine darmcellen. Deze primaire kweken intestinale maken het onderzoek signaalroutes onderliggende darm peptidesecretie behulp van een aantal technieken.

Gemengde Primaire culturen van Muizen dunne darm Bestemd voor de Studie van Gut hormoon en live cell imaging van entero-Cells

Hier beschrijven we een driedimensionale cultuur-methode voor het analyseren van de morfologie van primaire borstkankercellen, alsmede over de studie van hun directe/indirecte interacties met monocyten en de resultaten zoals de aantasting van het collageen, immuun cel aanwerving, cel invasie, en bevordering van kanker-gerelateerde ontsteking.

Analyseren van de communicatie tussen monocyten en primaire borstkankercellen in een extracellulaire Matrix extraheren (ECME)-gebaseerde driedimensionaal systeem

We beschrijven stap-voor-stap instructies voor: 1) efficiënt ingenieur intestinale organoïden met behulp van magnetische nanodeeltjes voor Lenti-of retrovirale transductie, en, 2) het genereren van bevroren secties van engineered organoïden. Deze aanpak biedt een krachtig hulpmiddel om de genexpressie in organoïden efficiënt te veranderen voor onderzoek naar stroomafwaartse effecten.

Genetische manipulatie van primaire muis intestinale Organoïden met behulp van magnetische nanodeeltjes transductie virale vectoren voor bevroren snijden

In dit protocol beschrijven we hoe murine primaire epitheliale colon monolayers rechtstreeks uit intestinale crypten kunnen worden gegenereerd. We bieden experimentele benaderingen om samenvloeiende monolagen te genereren op doorlatende filters, confluente monolagen voor kraswondgenezing en biochemische studies, en schaarse en samenvloeiende monolagen voor immunofluorescentieanalyse.

Generatie van Murine Primaire Colon Epitheliale Monolayers uit Intestinal Crypts

Müller glia primaire culturen verkregen uit het netvlies van muizen vormen een zeer robuust en betrouwbaar hulpmiddel om de gliale omzetting in retinale voorlopercellen na microRNA-behandeling te bestuderen. Afzonderlijke moleculen of combinaties kunnen worden getest voordat ze vervolgens in vivo worden toegepast.

Primaire celculturen om het regeneratiepotentieel van Murine Müller Glia na microRNA-behandeling te bestuderen

Organoïden die afkomstig zijn van maagpatiënten worden steeds vaker gebruikt in onderzoek, maar formele protocollen voor het genereren van menselijke maagorganoïden uit eencellige digesten met gestandaardiseerde zaaidichtheid ontbreken. Dit protocol presenteert een gedetailleerde methode voor het betrouwbaar maken van maagorganoïden uit biopsieweefsel dat is verkregen tijdens de bovenste endoscopie.

Vaststelling en karakterisering van van patiënten afgeleide maagorganoïden uit biopsieën van goedaardig maaglichaam en antraal epitheel

M-cellen in een gespecialiseerde follikel geassocieerd epitheel die plaques van Peyer spelen een belangrijke rol voor de mucosale immunosurveillance in de darm-geassocieerd lymfoïd weefsel. Hier hebben we beschreven evaluatiemethode voor bacteriële transcytose door...

Toepassing van een muis geligateerd Peyer&#39;s Patch Intestinale Loop Assay om Bacteriële opname evalueren door M-cellen

Leer een primaire maagmonolaagcultuur opzetten van muis- en mensweefsel voor regeneratiestudies met wondgenezingsassays. Deze methode maakt grootschalig onderzoek naar epitheliale celmigratie mogelijk.

Muis en mens-afkomstige primaire maag epitheliale enkelgelaagde cultuur voor de studie van regeneratie

Meer video's verkennen