22 mei 2018
Dit protocol wordt beschreven hoe voor te bereiden Aβ oligomeren van een synthetische peptide in vitro en relatieve hoeveelheid Aβ oligomeren evalueren door een stip bevlekken analyse.
Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van belangrijke vragen op het gebied van neurofarmacologie. Het belangrijkste voordeel van deze techniek is dat het eenvoudig, betrouwbaar en reproduceerbaar is om beta-amyloïde oligomeer te vormen. We tonen aan dat deze methode cruciaal is omdat de stappen voor het bereiden van beta-oligomeer moeilijk te leren zijn.
Stel eerst de concentratie van de A-bèta-monomeroplossing in op 0,25 milligram per milliliter door 900 microliters tweevoudig gedistilleerd water toe te voegen aan de buis. Vervolgens de monomeroplossing blijven verdampen met stikstofgas van hoge zuiverheid tot het volume ongeveer 850 microliters bereikt met een concentratie van ongeveer 0,29 milligram per milliliter. De aanwezigheid van HR5P beïnvloedt de vorming van A-bèta-oligomeer.
Daarom is het verdampen zo veel mogelijk een kritische stap in deze procedure. Gebruik vervolgens tweevoudig gedistilleerd water om de curcumin-voorraadoplossing te verdunnen om een werkoplossing van 0,2 en twee micromolar voor te bereiden. Behoud een verhouding van één-op-één en meng de A-bèta-oplossing met curcumin om de uiteindelijke concentratie van curcumin op 0,1 en één micromolar te bereiken.
Laat vervolgens de oplossing op een magnetische agitator staan. Bevestig een plastic verdeelbox aan de magnetische agitator. Plaats twee magnetische roerstaven in de twee hoeken van de box en plaats de buizen met de monsters in het midden van de box.
Schakel de box 48 uur lang door op kamertemperatuur met 60 omwentelingen per minuut en centrifugeer vervolgens de buis bij 18.000 keer G gedurende 15 minuten bij vier graden Celsius. Na centrifugatie wordt de supernatant verzameld. Voor dotbloting-analyse neemt u een nitrocellulosemembraan en snijdt deze in stroken van een centimeter breed, plaats vervolgens twee microliter van het monster gelijkmatig op de stroken een en twee met elk punt op 0,5 centimeter intervallen.
Wanneer het monster op het membraan wordt gespoten, is het noodzakelijk om gelijkmatig te verspreiden en de verschillende druppels te regelen, zodat de verschillende monsters niet aan elkaar zijn verbonden. Incubeer vervolgens de stroken gedurende vijf minuten op kamertemperatuur om de druppels te laten drogen. Na vijf minuten incuberen de stroken met 5% bovien serumalbumine gedurende 30 minuten op kamertemperatuur.
Nadat de incubatie is voltooid, spoelt u de stroken gedurende vijf minuten met TBST-buffer. Zuig de buffer af nadat de was is voltooid en incubeer vervolgens strip één met anti-oligomeerantilichaam A11 en strip twee met anti-A-bèta-antilichaam 6E10-oplossing gedurende een uur. Na een uur wast u de stroken met TBST gedurende vijf minuten ieder drie keer, zuig vervolgens de buffer af en incubeer de stroken met secundaire antilichaamoplossing gedurende 40 minuten.
Na de incubatie van het secundaire antilichaam wast u de stroken opnieuw met TBST gedurende vijf minuten ieder drie keer. Voeg vervolgens ongeveer 300 microliter gemengde ECL-vloeistof toe aan het oppervlak van de vochtige stroken en stel de stroken bloot in een automatisch chemiluminescentie-beeldvormingssysteem. TEM-studies tonen de afwezigheid van zichtbare aggregaten in de HFIP-opgeloste A-bèta-monomeroplossing, maar na 48 uur incubatie vormen dezelfde monomeren oligomeren, die voornamelijk bolvormige aggregaten zijn met een diameter van 10 tot 80 nanometer.
Bij het onderwerpen van de A-bèta-monomer- en oligomeerrijke monsters aan dotbloting-analyse, toont dit de aanwezigheid van A11-positieve A-bèta-oligomeren in A-bèta-oligomeerrijke monsters. Interessant is dat A-bèta 6E10-positieve A-bèta-peptiden aanwezig zijn in zowel de A-bèta-monomer- als oligomeerrijke monsters. Vervolgens wordt ook een semi-kwantitatieve analyse uitgevoerd om de specifieke antilichaam-positieve A-bèta-monomer- en oligomeerrijke monsters uit te drukken als een percentage van de controle.
A11-positieve A-bèta-peptiden zijn significant hoger in A-bèta-oligomeerrijke monsters in vergelijking met de monomeren. Integendeel, A-bèta 6E10-positief A-bèta-peptide is aanwezig in zowel de monomer- als oligomeerrijke monsters. In feite worden A-bèta-oligomeren ook geco-incubeerd met curcumin en A-bèta-oligomeerremmende stof.
Curcumine leidt tot een significante vermindering van de relatieve hoeveelheid A11-positieve A-bèta-oligomeren met verminderde A11-kleuring in de curcumin-geco-incubeerde A-bèta-oligomeermonsters. Verschillende concentraties curcumin hebben echter geen invloed op het aantal A-bèta-peptiden in de 6E10-positieve monomer- en oligomeerrijke monsters in vergelijking met A11-positieve monsters. Eenmaal beheerst, kan deze techniek in enkele uren worden uitgevoerd als deze correct wordt uitgevoerd.
Na de ontwikkeling ervan, heeft deze techniek de weg gebaand voor onderzoekers om kandidaten voor geneesmiddelen voor neurodegeneratieve aandoeningen zoals de ziekte van Alzheimer te verkennen. Na het bekijken van deze video, zou u een goed begrip moeten hebben van hoe u A-bèta-oligomeer kunt bereiden en de hoeveelheid ervan kunt evalueren.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit protocol beschrijft de preparatie van Aβ-oligomeren uit een synthetisch peptide in vitro en de evaluatie van de relatieve hoeveelheden middels dot blot-analyse. Deze methode is eenvoudig, betrouwbaar en reproduceerbaar, waardoor deze essentieel is voor neurofarmacologisch onderzoek.
Betrouwbare preparatie en kwantificering van A11-positieve β-amyloïde oligomeren zijn cruciaal voor de validatie van targets in vroege stadia van neurodegeneratie en voor het screenen van inhibitoren in onderzoek naar de ziekte van Alzheimer. Dit protocol maakt de reproduceerbare generatie en semi-kwantitatieve beoordeling van toxische oligomere species mogelijk, wat bijdraagt aan de voorspellende betrouwbaarheid bij het testen van therapeutische hypothesen. De methode richt zich direct op een sleutelmoment voor mechanische risicoreductie en portfolio-triage in neurofarmacologische R&D.
Dit protocol bevindt zich op het snijvlak van vroege ontdekking en lead-identificatie, waardoor robuuste hypothesetoetsing en assay-ontwikkeling voor portfolio's gericht op neurodegeneratieve ziekten mogelijk worden.