Name: Één molecuul fluorescentie In Situ hybridisatie (smFISH) analyse in Budding vegetatieve groei van gist en meiose (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-05-25T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 28 s
Description: Leer smFISH-analyse voor RNA-detectie in Saccharomyces cerevisiae tijdens vegetatieve groei en meiose. Deze methode onthult cel-tot-cel variabiliteit in genexpressie en subcellulaire RNA-lokalisatie.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Wij danken Anne Dodson en Stephanie Heinrich voor advies over hoe te optimaliseren het protocol smFISH, Xavier Darzacq voor hulp bij de analyse platform, Haiyan Huang voor suggesties over de statistische analyse. Dit werk werd gesteund door middelen uit de maart van dubbeltjes (5-FY15-99), Pew Charitable Trusts (00027344), Damon Runyon Cancer Research Foundation (35-15) en Glenn Foundation naar EÜ en NSF Graduate Research Fellowship Grant Nee. DGE-1106400 naar JC.

Opmerking: Alle de buffers en de media die worden gebruikt in dit protocol zijn vermeld in tabel 1. De leveranciersinformatie voor de reagentia wordt weergegeven in de Tabel van materialen.
1/dag 1-2:
Opmerking: Voor vegetatieve cultuur, groeien cellen tot een OD-600 voor 0.4 tot 0.6 in een aangewezen middel. Voor Meiotische cultuur, induceren cellen ondergaan meiose met behulp van een voorkeursmethode (meestal kweken in een OD600 van 1,85).
1. proef fixatie en spijsvertering
<ol><li>Een totaal van ~3.5 OD600 van cellen in 3% formaldehyde vast te stellen.<ol>
<li>Voeg 5.52 mL cultuur tot 480 µL van 37% formaldehyde in 15 mL conische buisjes voor vegetatieve cultuur.</li>
		<li>Meiotische cultuur, voegt toe 1840 µL van cultuur aan 160 µL van 37% formaldehyde in 2 mL microcentrifuge buizen. ~ 5 keer omkeren te mengen. Let op: Formaldehyde is giftig. Verwerken en gooi institutionele reglementeringen.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Buizen op de trommel van een roller bij kamertemperatuur gedurende 20 minuten plaats. Meiotische monsters, na vaststelling bij kamertemperatuur gedurende 20 minuten, blijven 's nachts vaststelling op 4 ˚C, roteren. Opmerking: De overnachting fixatie verhoogt de reproduceerbaarheid en de kwaliteit van de gegevens van de smFISH verkregen voor Meiotische monsters. Fixatie tijd moet worden geoptimaliseerd.</li>
	<li>Terwijl de monsters zijn vaststelling, ontdooi 200 mM Vanadyl Ribonucleoside complexen (VRC) op 65 ˚C voor minstens 10 min.</li>
	<li>Spijsvertering master mix in een tube van 15 mL bereiden: Meng voor 1 monster, 425 µL van Buffer B met 40 µL van 200 mM VRC (opgewarmd tot 65 ˚C); voor 5 monsters, meng 2125 µL van Buffer B met 200 µL van 200 mM VRC (opgewarmd tot 65 ˚C). Vortex ~ 5 s tot volledig resuspendeer de VRC alvorens toe te voegen aan de master mix, die licht bruin groen na toevoeging van de VRC verschijnen zal. Opmerking: Toevoeging van VRC tijdens de spijsvertering verbetert de consistentie van de resultaten van de smFISH, mogelijk door remming van de verontreiniging van de nuclease geïntroduceerd door het mengsel van zymolyase, die uit ruwe extract is gezuiverd. Het bedrag van de VRC nodig bij deze stap moet worden geoptimaliseerd.</li>
	<li>Centrifugeer voor vegetatieve monsters, de buizen bij ~ 1057 x g gedurende 3 minuten. Centrifugeer bij 21.000 x g voor 1,5 min. Decant of gecombineerd de bovendrijvende vloeistof met formaldehyde afval voor Meiotische monsters (na overnachting fixatie). Opmerking: Alle centrifugeren stappen worden uitgevoerd bij kamertemperatuur.</li>
	<li>Resuspendeer de cellen in 1,5 mL koude Buffer B door pipetteren op en neer of door het omkeren van de buizen en flicking te mengen. Vegetatieve monsters overbrengen in 2 mL tubes na resuspensie.</li>
	<li>Centrifugeer bij 21.000 x g gedurende 1,5 min. verwijderen het grootste deel van de vloeistof door vacuüm aspiratie of pipetteren, ~ 100 µL achterlatend.</li>
	<li>Resuspendeer de cellen in 1,5 mL koude Buffer B.</li>
	<li>Centrifugeer bij 21.000 x g gedurende 1,5 min. verwijderen het grootste deel van de vloeistof door vacuüm aspiratie of pipetteren, ~ 100 µL achterlatend.</li>
	<li>Resuspendeer de cellen in 1,5 mL koude Buffer B. Centrifuge op 21.000 x g voor 1,5 min. Aspirate de vloeistof volledig door vacuüm of pipetteren.</li>
	<li>Resuspendeer de cellen in 425 µL van master mix van de spijsvertering, en kort vortex aan resuspendeer. Voeg 5 µL van 100T 10 mg/mL zymolyase aan elke buis. Opmerking: Vortex de zymolyase telkens voordat toe te voegen aan de buizen. Voeg zymolyase aan elke buis individueel, in plaats van toe te voegen aan de master mix. Beide stappen helpen spijsvertering consistentie tussen buizen gewoon omdat zymolyase snel precipitaten.</li>
	<li>Vortex 2-3 s te mengen. Plaats de buizen op de trommel van een roller en verteren op 30 ˚C voor 15-30 min. Voor vegetatieve cellen en Meiotische beginfase, duurt meestal ~ 15 min, en voor Meiotische profase en Meiotische divisies, meestal duurt ~ 30 min. Opmerking: Controleer op de Microscoop elke 5 min na 15 min, en stoppen van de spijsvertering, waneer ~ 80% van de cellen niet-transparante en niet-refractieve. Vanaf dit punt op cellen zijn erg kwetsbaar. Voorzichtig behandelen van cellen en Vermijd het gebruik van vacuüm aspiratie of vortexing.
</li>
	<li>Centrifugeer de buizen bij ~ 376 x g gedurende 3 min. verwijderen de vloeistof volledig door pipetteren.</li>
	<li>Zachtjes resuspendeer cellen met 1 mL Buffer B door pipetteren op en neer 1 - 2 keer te mengen.</li>
	<li>Centrifugeer de buizen bij ~ 376 x g gedurende 3 min. verwijderen Buffer B vloeistof door pipetteren. Zachtjes resuspendeer de cellen in 1 mL 70% ethanol (verdund met water RNase-gratis).</li>
	<li>Incubeer bij kamertemperatuur gedurende 3,5-4 uur.</li>
</ol>2. hybridisatie
<ol><li>Breng formamide op kamertemperatuur (voor 50 mL aliquot, duurt ~ 30 min in waterbad). Opmerking: Open de formamide fles niet totdat de fles kamertemperatuur tot Voorkom oxidatie van formamide. Let op: Formamide is giftig. Verwerken en gooi institutionele reglementeringen.</li>
	<li>10% formamide was buffer in een conische buis 15 mL voor te bereiden.</li>
	<li>Centrifugeer de buizen bij ~ 376 x g gedurende 3 min. 500 verwijderen µL van 70% ethanol door pipetteren. Pipet zachtjes op en neer naar resuspendeer de resterende cellen en vervolgens de cellen aan lage wrijvingscoëfficiënt buizen. Opmerking: Met behulp van lage wrijvingscoëfficiënt buizen sterk vermindert cel verlies tijdens alle vervolgwasbeurten kunt.</li>
	<li>Centrifugeer de buizen weer bij ~ 376 x g gedurende 3 min. verwijderen alle de ethanol door pipetteren.</li>
	<li>Voeg 1 mL 10% formamide was buffer, en zachtjes Pipetteer op en neer 2 - 3 keer tot resuspendeer de cellen.</li>
	<li>De cellen om te zitten bij kamertemperatuur gedurende ~ 20 minuten bij de voorbereiding van de kruising oplossing toestaan. Meng 50 µL van hybridisatie Buffer (kamer gebruikstemperatuur), 5 µL van 200 mM VRC (opgewarmd tot 65 ˚C) en 1 µL van elke sonde (200 nM def.) voor 1 monster. Meng 250 µL van hybridisatie Buffer (kamer gebruikstemperatuur), 25 µL van 200 mM VRC (opgewarmd tot 65 ˚C) en 5 µL van elke sonde (200 nM def.) voor 5 monsters.<ol>
<li>Ontdooi hybridisatie Buffer (bevroren bij-20 ˚C) tot kamertemperatuur alvorens de buis om te voorkomen dat formamide oxidatie te openen.</li>
		<li>Na het toevoegen van de 200 mM VRC, vortex voor 5-10 s voordat u toevoegt de sondes, die zijn ontworpen commercieel gekocht en gereconstitueerd volgens de aanwijzingen van de fabrikant.</li>
		<li>Als twee sondes mede bebroede zijn, voeg 1 µL van de 1:10 verdunning van de sonde #1 voorraad, evenals 1 µL van de 1:10 verdunning van de sonde #2 voorraad, om een uiteindelijke verdunning van ~ 1:500 voor beide sonde. De concentratie die nodig zijn voor de beste signal-to-noise verhouding moet worden geoptimaliseerd (zie discussie voor details).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Centrifugeer de monsters bij ~ 376 x g gedurende 3 min. verwijderen het supernatant in gevaarlijke afvalstoffen door pipetteren.</li>
	<li>Voeg ten minste 50 µL van hybridisatie oplossing aan elke buis. Flick de buizen te mengen.</li>
	<li>Incubeer bij 30 ˚C op de trommel van een roller gedurende ten minste 16 uur in het donker.</li>
</ol>2/dag 3
3. wassen en beeldvorming
<ol><li>Breng formamide op kamertemperatuur.</li>
	<li>10% formamide was buffer (FWB) in een conische buis 15 mL voor te bereiden.</li>
	<li>Verwijder de buizen uit de trommel roller en plaats hen in een folie bedekte vak te beschermen tegen licht.</li>
	<li>Centrifugeer de monsters bij ~ 376 x g gedurende 3 min. verwijderen het supernatant in gevaarlijke afvalstoffen door pipetteren.</li>
	<li>Resuspendeer in 1 mL 10% FWB door zachtjes op en neer pipetteren 2 - 3 keer.</li>
	<li>Incubeer bij 30 ˚C gedurende 30 min. (niet draaien) in het vak folie bedekte.</li>
	<li>De monsters bij ~ 376 x g centrifugeren voor 3 min. Verwijder het supernatant op gevaarlijke afvalstoffen door pipetteren en laat ~ 50 µL.</li>
	<li>Ondertussen bereiden DAPI/FWB in een conische buis 15 mL: voor 1 monster 1000 µL van 10% formamide was buffer te mengen met 1 µL van 5 mg/mL DAPI. Voor 10 monsters, meng 10 mL 10% formamide was buffer met 10 µL van 5 mg/mL DAPI. Resuspendeer in 1 mL DAPI/FWB door zachtjes op en neer pipetteren 2 - 3 keer.</li>
	<li>Incubeer bij 30 ˚C gedurende 30 min. (niet draaien) in het vak folie bedekte.</li>
	<li>Ontdooi anti-bleekmiddel reagentia op ijs.</li>
	<li>Centrifugeer de monsters bij ~ 376 x g gedurende 3 min. verwijderen het supernatant volledig door pipetteren. Indien nodig, Centrifugeer nogmaals om alle van de bovendrijvende substantie te verwijderen.</li>
	<li>Voor monsters die zijn niet onmiddellijk beeld, resuspendeer de pellet in 50 µL van GLOX Buffer zonder enzymen. Pipetteer omhoog en omlaag 3 - 4 keer te mengen.<ol>
<li>Houd alle unimaged monsters in het vak folie bedekte op 4 ˚C totdat u op afbeelding. Als u klaar bent om het imago, centrifugeren van de monsters bij ~ 376 x g gedurende 2 min en verwijder het supernatant volledig door pipetteren. Resuspendeer in GLOX met enzymen zoals hieronder.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Voeg voor monsters meteen het image wordt gemaakt, 15-20 µL van GLOX buffer met enzymen. Pipet zachtjes op en neer te mengen. Opmerking: Het volume toegevoegd kan variëren afhankelijk van de grootte van de cel-pellet. Wij adviseren de pellet in 15 µL van GLOX buffer met enzymen resuspending en controleren van de celdichtheid op Microscoop. Als cellen zijn ook dichte (cellen samendoen bovenop elkaar), voegt u extra GLOX buffer met enzymen. Als cellen ook schaars zijn, centrifugeren van het monster en verwijdert ~ 5 µL van buffer.</li>
	<li>Pipetteer 5 µL op een dekglaasje aan (18 mm x 18 mm, nr. 1), en leg het dekglaasje aan op een dia.</li>
	<li>Zet een laboratorium veeg op de top van de dia waar het dekglaasje aan is geplaatst. Druk zachtjes op op het laboratorium veeg om dia (moet zien vloeibare vandaan uit alle vier randen van het dekglaasje aan).</li>
	<li>De dia overzetten naar de Microscoop kamer in een vak vallende aluminiumfolie.</li>
	<li>Beeld met behulp van een breed-gebied fluorescentie Microscoop met hoge vergroting (60-100 X) en hoog numerieke diafragma. Opmerking: Het verzamelen van het maximale aantal fotonen uitgestoten door de smFISH-sondes, confocal microscopen zijn niet aanbevolen, omdat ze de hoeveelheid licht moeten worden verzameld aanzienlijk kunnen beperken. Hier, de gegevens werden verzameld op een microscoop voorzien van een 100 X, 1.4 nb doelstelling, met behulp van filters CY5 (EX632/22, EM679/34) beeld op 1.3 s, 100% T; TRITC (EX542/27, EM597/45), 1.3 s, 100% T; en DAPI (EX390/18/EG, EM435/48), 0.05-0.1 s, 32-50% T. Een heldere-veld referentiebeeld moet ook worden verworven. Verwerven van de segmenten van de 15-25 met een stap grootte van 0,1-0,2 µm, van volledig onder de focus van het gezichtsveld volledig hierboven, om ervoor te zorgen dat alle de RNA-plekken worden verantwoord.</li>
</ol>4. de beeldanalyse
<ol><li>Het analyseren van de gegevens van de smFISH met gepubliceerde smFISH analysetools zoals vis-quant17 en StarSearch2, of met op maat gemaakte programma's, afhankelijk van de exacte vereisten van het experiment. Opmerking: Een goede analyse pijpleiding moet toestaan de gebruikers om te bepalen van een drempel te scheiden van de ware RNA plekken van de achtergrond, en output van statistieken zoals de X, Y en Z (optioneel) coördinaten en de intensiteit van elke vlek, het aantal plekken in elke cel , en eventueel passend parameters als een manier om het uitfilteren van valse detecties.</li>
</ol>

<ol><li>Femino, A. M., Fay, F. S., Fogarty, K., Singer, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualization+of+single+RNA+transcripts+in+situ%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Visualization of single RNA transcripts in situ.</a> Science. 280 (5363), 585-590 (1998).</li>
<li>Raj, A., van den Bogaard, P., Rifkin, S. A., van Oudenaarden, A., Tyagi, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+individual+mRNA+molecules+using+multiple+singly+labeled+probes%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Imaging individual mRNA molecules using multiple singly labeled probes.</a> Nat Methods. 5 (10), 877-879 (2008).</li>
<li>Rahman, S., Zenklusen, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-molecule+resolution+fluorescent+in+situ+hybridization+%28smFISH%29+in+the+yeast+S.+cerevisiae%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Single-molecule resolution fluorescent in situ hybridization (smFISH) in the yeast S. cerevisiae.</a> Methods Mol Biol. 1042, 33-46 (2013).</li>
<li>Gaspar, I., Ephrussi, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Strength+in+numbers%3A+quantitative+single-molecule+RNA+detection+assays%5BTitle%5D)+AND+%22Wiley+Interdiscip+Rev+Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Strength in numbers: quantitative single-molecule RNA detection assays.</a> Wiley Interdiscip Rev Dev Biol. 4 (2), 135-150 (2015).</li>
<li>Vargas, D. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-molecule+imaging+of+transcriptionally+coupled+and+uncoupled+splicing%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Single-molecule imaging of transcriptionally coupled and uncoupled splicing.</a> Cell. 147 (5), 1054-1065 (2011).</li>
<li>Waks, Z., Klein, A. M., Silver, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-to-cell+variability+of+alternative+RNA+splicing%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Syst+Biol%22%5BJournal%5D)">Cell-to-cell variability of alternative RNA splicing.</a> Mol Syst Biol. 7, 506(2011).</li>
<li>Zenklusen, D., Larson, D. R., Singer, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-RNA+counting+reveals+alternative+modes+of+gene+expression+in+yeast%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Struct+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Single-RNA counting reveals alternative modes of gene expression in yeast.</a> Nat Struct Mol Biol. 15 (12), 1263-1271 (2008).</li>
<li>Raj, A., Peskin, C. S., Tranchina, D., Vargas, D. Y., Tyagi, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stochastic+mRNA+synthesis+in+mammalian+cells%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Biol%22%5BJournal%5D)">Stochastic mRNA synthesis in mammalian cells.</a> PLoS Biol. 4 (10), e309(2006).</li>
<li>Senecal, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcription+factors+modulate+c-Fos+transcriptional+bursts%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Rep%22%5BJournal%5D)">Transcription factors modulate c-Fos transcriptional bursts.</a> Cell Rep. 8 (1), 75-83 (2014).</li>
<li>Levesque, M. J., Ginart, P., Wei, Y., Raj, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualizing+SNVs+to+quantify+allele-specific+expression+in+single+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Visualizing SNVs to quantify allele-specific expression in single cells.</a> Nat Methods. 10 (9), 865-867 (2013).</li>
<li>Hansen, C. H., van Oudenaarden, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Allele-specific+detection+of+single+mRNA+molecules+in+situ%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Allele-specific detection of single mRNA molecules in situ.</a> Nat Methods. 10 (9), 869-871 (2013).</li>
<li>Ginart, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualizing+allele-specific+expression+in+single+cells+reveals+epigenetic+mosaicism+in+an+H19+loss-of-imprinting+mutant%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+Dev%22%5BJournal%5D)">Visualizing allele-specific expression in single cells reveals epigenetic mosaicism in an H19 loss-of-imprinting mutant.</a> Genes Dev. 30 (5), 567-578 (2016).</li>
<li>Long, R. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mating+type+switching+in+yeast+controlled+by+asymmetric+localization+of+ASH1+mRNA%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Mating type switching in yeast controlled by asymmetric localization of ASH1 mRNA.</a> Science. 277 (5324), 383-387 (1997).</li>
<li>Park, H. Y., Trcek, T., Wells, A. L., Chao, J. A., Singer, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+unbiased+analysis+method+to+quantify+mRNA+localization+reveals+its+correlation+with+cell+motility%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Rep%22%5BJournal%5D)">An unbiased analysis method to quantify mRNA localization reveals its correlation with cell motility.</a> Cell Rep. 1 (2), 179-184 (2012).</li>
<li>Jourdren, L., Delaveau, T., Marquenet, E., Jacq, C., Garcia, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CORSEN%2C+a+new+software+dedicated+to+microscope-based+3D+distance+measurements%3A+mRNA-mitochondria+distance%2C+from+single-cell+to+population+analyses%5BTitle%5D)+AND+%22RNA%22%5BJournal%5D)">CORSEN, a new software dedicated to microscope-based 3D distance measurements: mRNA-mitochondria distance, from single-cell to population analyses.</a> RNA. 16 (7), 1301-1307 (2010).</li>
<li>Chen, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Kinetochore+inactivation+by+expression+of+a+repressive+mRNA%5BTitle%5D)+AND+%22eLife%22%5BJournal%5D)">Kinetochore inactivation by expression of a repressive mRNA.</a> eLife. 6, e27417(2017).</li>
<li>Mueller, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FISH-quant%3A+automatic+counting+of+transcripts+in+3D+FISH+images%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">FISH-quant: automatic counting of transcripts in 3D FISH images.</a> Nat Methods. 10 (4), 277-278 (2013).</li>
<li>Brar, G. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-resolution+view+of+the+yeast+meiotic+program+revealed+by+ribosome+profiling%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">High-resolution view of the yeast meiotic program revealed by ribosome profiling.</a> Science. 335 (6068), 552-557 (2012).</li>
<li>Carlile, T. M., Amon, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Meiosis+I+is+established+through+division-specific+translational+control+of+a+cyclin%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Meiosis I is established through division-specific translational control of a cyclin.</a> Cell. 133 (2), 280-291 (2008).</li>
<li>Benjamin, K. R., Zhang, C., Shokat, K. M., Herskowitz, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Control+of+landmark+events+in+meiosis+by+the+CDK+Cdc28+and+the+meiosis-specific+kinase+Ime2%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+Dev%22%5BJournal%5D)">Control of landmark events in meiosis by the CDK Cdc28 and the meiosis-specific kinase Ime2.</a> Genes Dev. 17 (12), 1524-1539 (2003).</li>
<li>Dodson, A. E., Rine, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heritable+capture+of+heterochromatin+dynamics+in+Saccharomyces+cerevisiae%5BTitle%5D)+AND+%22eLife%22%5BJournal%5D)">Heritable capture of heterochromatin dynamics in Saccharomyces cerevisiae.</a> eLife. 4, e05007(2015).</li>
<li>Trcek, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-mRNA+counting+using+fluorescent+in+situ+hybridization+in+budding+yeast%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Single-mRNA counting using fluorescent in situ hybridization in budding yeast.</a> Nat Protoc. 7 (2), 408-419 (2012).</li>
<li>Youk, H., Raj, A., van Oudenaarden, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+single+mRNA+molecules+in+yeast%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Enzymol%22%5BJournal%5D)">Imaging single mRNA molecules in yeast.</a> Methods Enzymol. 470, 429-446 (2010).</li>
</ol>

De auteurs hebben geen conflict van belang om te vermelden.

Het hier gepresenteerde protocol is afgeleid van andere gepubliceerde smFISH protocollen2,3,21,22,23, en specifiek voor de gist stam achtergrond SK1 is geoptimaliseerd. De geoptimaliseerde parameters opgenomen het celaantal, fixatie duur centrifugeren snelheid en duur, spijsvertering duur, spijsvertering buffer, sonde concentratie en kruising buffer. Andere parameters zoals temperatuur hybridisatie en duur waren niet geoptimaliseerd. In deze sectie delen we een paar notities die zou helpen bij het aanpassen van dit protocol geen gist stam achtergrond en de voorwaarden van de groei van belang.
De celwand van ontluikende gist is een belangrijke uitdaging tegen het verkrijgen van hoge kwaliteit smFISH beelden in de ontluikende gist omdat de celwand sonde penetratie voorkomt. Onvolledige vertering van de celwand door zymolyase leidt tot inefficiënte kruising van de sondes en de hoge cel-naar-cel variabiliteit in signaal. Echter kan overmatige spijsvertering cellen te kwetsbaar maken, wat leidt tot aanzienlijke verlies tijdens de stappen wassen cel en cel barsten tijdens het prepareren van objectglaasjes voor imaging. Optimaliseren van de duur van de spijsvertering is dus cruciaal. Het is raadzaam om een pilot smFISH experiment uitvoeren door hetzelfde monster voor verschillende hoeveelheden tijd verteren. In ons geval, we de beste smFISH gegevens als we de spijsvertering gestopt toen ~ 80% van de cellen niet-refractieve werd verkregen. Meestal voor de dezelfde voorwaarde voor groei, kunnen verschillende genetische gemuteerde stammen met soortgelijke timing worden verteerd. De duur van de spijsvertering verschilt echter in vergelijking tussen verschillende groei-omstandigheden en de verschillende stadia van meiose in ontluikende gist. Nadat de timing is vastgesteld, is de kwaliteit van smFISH reproduceerbaar. Opmerking kan dat voor gemuteerde stammen met defecte celwand synthese en/of samenstelling, spijsvertering kan worden afgerond in minder dan 15 min. gebruik van verschillende batches instellen van zymolyase ook enigszins veranderen van de timing van de spijsvertering.
Optimale sonde concentratie is die nodig zijn om een hoge signaal-/ ruisverhouding. We ontworpen en onze smFISH sondes commercieel gekocht. Goede sondes (vaak 20-mers) moet een percentage van GC variërend van 35% naar 45%, met een minimale ruimte van 2 basenparen tussen sondes, en lage Kruisallergie. We gebruikten een sonde web gebaseerde ontwerper van de fabrikant voor het genereren van een lijst van sondes, en als er waren genoeg sondes om uit te kiezen, zouden we de BLAST-algoritme in de Saccharomyces Genome Database gebruiken om te elimineren van de sondes met meer dan 17 basenparen overlapt met andere genomic regio's. We kozen de meer photostable fluorescerende kleurstof (CAL Fluor 590) voor de sonde set die anneals naar de unieke regio van NDC80luti (CF 590), omdat in deze set, het aantal sondes die voldaan aan alle bovengenoemde criteria (20 sondes) lager dan was de minimum aantal aanbevolen door de fabrikant (~ 25 sondes). Na bereiding van de oplossing van de sonde na instructies van de fabrikant, maakte we een 1:10 verdunning van de stockoplossing en opgeslagen van de verdunde oplossing in 5-µL aliquots bij-20 ˚C. Elk aliquot werd slechts één keer gebruikt. Voor optimalisatie, moet een seriële verdunningen van de 1:10 verdunde oplossing en test welke concentratie de beste signaal-/ ruisverhouding levert. Het is raadzaam om het maken van een verdunningsreeks van 1:250, 1:500, 1:1000 en 1:2000 uit de oorspronkelijke voorraad. In ons geval, een 1:500 verdunningsfactor geresulteerd in de beste signaal-ruisverhouding, voor zowel de CF 590 en Q 670 sonde sets.
Optimale fixatie tijd is ook essentieel voor succesvolle smFISH in ontluikende gist. We vinden dat nachtelijke fixatie op 4 ˚C, in plaats van vaststelling bij kamertemperatuur gedurende 20 minuten, aanzienlijk verbeterd de consistentie en kwaliteit van de resultaten van de smFISH voor Meiotische monsters. Hoewel we niet hoe 's nachts fixatie kan van invloed zijn vegetatieve monsters getest hebben, fixatie bij kamertemperatuur goed gewerkt voor deze groei-voorwaarde. Dus, voor het optimaliseren van het protocol van de smFISH voor nieuwe stammen of groei voorwaarden, raden we beginnen met korte fixatie tijd bij kamertemperatuur en steeds meer fixatie als hoge variabiliteit van signaal wordt aangetroffen.
Vergeleken met andere gepubliceerde protocollen3,22,23, onze protocol gebruikt de RNase remmer VRC tijdens de spijsvertering en een hogere concentratie van VRC tijdens hybridisatie. Toevoeging van VRC in deze twee stappen verbeterd de consistentie van de resultaten van de smFISH, eventueel door beter behoud van de molecules van RNA tegen nuclease activiteit, die kan worden ingevoerd door de mix van de zymolyase (het enzym wordt gezuiverd van grove extracten en RNase kan bevatten verontreinigingen). Dus raden we het bedrag van de VRC zoals vermeld in onze protocol of zelfs hogere concentraties van VRC voor optimalisatie.
Een aanzienlijk deel van de cellen kan worden verloren tijdens de stappen wassen in Buffer B zowel de formamide was buffer. Verklein cel verlies en kon men de centrifugeren-snelheid te verhogen. In ons geval wast met een hoge snelheid (21.000 x g) aan onze stalen pellet tijdens de Buffer B aanzienlijk verminderd cel verlies. Cellen worden echter zeer kwetsbaar na zymolyase de spijsvertering, dus snelheid van centrifugeren wordt aangeraden niet te wijzigen. In plaats daarvan raden we u de lage wrijvingscoëfficiënt buizen van wetenschappelijke USA, die enorm helpen de cellen tijdens de wast in de formamide was buffer pellet. Ons protocol kan over het algemeen consequent een monolayer van cellen dicht genoeg voor efficiënte imaging genereren. Meestal 7 gezichtsveld moet opleveren > 130 cellen geschikt voor kwantificering.
Tot slot is het belangrijk om te bepalen van de optimale parameters voor en de uitgangen van de beeldanalyse nodig. U wilt opsporen smFISH vlekken, gepubliceerde analyse programma's algemeen filteren van de raw beelden met Gaussiaans kernel te verwijderen van de achtergrond signaal, en vragen de gebruikers om te bepalen van de signaal-/ ruisverhouding te gebruiken voor elke set afbeeldingen2,17. Helaas is er momenteel niet één standaard waaraan de juiste parameters worden bepaald, en dus het aantal empirische testen van deze verschillende instellingen is noodzakelijk. Als u wilt instellen van de parameters die nodig zijn voor elk van deze stappen, moet een iteratief input van verschillende sets van parameters en controleren hoe goed de resultaten verkregen uit elke verzameling overeenkomt met dat van handmatig tellen in een paar representatieve cellen. Zodra een set parameters wordt gevonden, kan het worden gebruikt voor de meeste van de beelden verkregen ondanks verschillende groei omstandigheden en genetische achtergronden.
Daarnaast kan een testen als maximale intensiteit projectie van de beelden van de smFISH kan worden uitgevoerd vóór kwantificering22. Deze stap vereenvoudigt de plek detectie algoritme en vermindert het imaging tijd, maar ten koste van wat potentieel nuttige informatie over individuele plekken, zoals hun subcellular localisatie. In ons geval was het aantal mRNA-moleculen die geproduceerd door de NDC80 -gen laag genoeg dat de plekken goed na deze verwerking (niet ongebruikelijk gescheiden waren voor afschriften in ontluikende3,,7 gist). In gevallen waar colocalization analyse is van cruciaal belang, moet de pijpleiding analyse om te bepalen van de locatie van elke plek van de smFISH in elk kanaal om te beoordelen van de colocalization. Afhankelijk van de specifieke vragen wordt gevraagd, andere informatie zoals de intensiteit van elke vlek wellicht ook moet worden geëxtraheerd vanaf de pijpleiding voor verdere analyse. Optimaliseren van de sleutel stappen in het protocol en de afbeelding analyse pijpleiding is cruciaal bij het verkrijgen van hoge kwaliteit van de smFISH gegevens te onderzoeken van de kwestie van belang.

Dynamische regulering van de genexpressie rijdt de ontwikkeling van een organisme, evenals haar reactie op de milieudruk, infectie en veranderingen in het metabolisme. Studies die zich op transcriptionele verordening richten is afhankelijk van technologieën die meten van RNA overvloed. Een dergelijke methode, genoemd enkel molecuul fluorescentie in situ hybridisatie (smFISH), wordt gebruikt voor de detectie van individuele molecules van RNA in afzonderlijke cellen1,2. Met deze methode kunt meting van de variabiliteit van de cel-naar-cel in genexpressie en de bepaling van intracellulaire RNA lokalisatie.
In de meest gebruikte smFISH techniek vereist detectie van een individuele RNA-molecuul meerdere korte DNA sondes (vaak ~ 48 20-mer sondes) die zijn complementair aan de doelgroep RNA en zijn geconjugeerd met de dezelfde fluorescerende kleurstof. Binding van één fluorescente sonde resulteert in een zwak signaal, maar het signaal van het ensemble van alle de sondes is robuust. Deze functie verbetert sterk de signal-to-noise verhouding omdat hoewel één sonde uit doelsoort zijn bindend vertonen kan, zo'n signaal naar verwachting zeer zwak in vergelijking met die van de target RNA molecuul3. Binnen fout van detectie, kan het aantal molecules van RNA worden geteld en vergeleken over verschillende groei-omstandigheden en onder verschillende mutanten.
Sinds de eerste ontwikkeling ervan, is smFISH aangepast om te bestuderen van de verschillende aspecten van gen expressie4, zoals transcriptie rek1,2,5,6, transcriptionele barsten7 splicing , 8 , 9, intracellulaire allèlique expressie10,11,12, en RNA lokalisatie13,14,15. Onlangs, wij hebben gebruikte deze methode om te studeren van de expressie van twee transcript isoforms van hetzelfde gen, waarin de korte transcript-isovorm (NDC80ORF) heeft haar gehele reeks gedeeld met de lange isovorm (NDC80luti )16. Om de twee mRNA isoforms uniek te identificeren, we gebruikten twee sets van de sonde: één set is specifiek voor de unieke reeks NDC80luti, en de andere reeks, geconjugeerd met een ander fluorescente kleurstof, bindt aan de gemeenschappelijke regio van de twee isoforms. De NDC80luti RNA wordt geïdentificeerd als een colocalized plek met beide TL signalen, overwegende dat de NDC80ORF RNA is enerzijds dat slechts het signaal van de gemeenschappelijke set van de sonde bevat. Sinds het nummer van de NDC80ORF afschriften wordt berekend door een "aftrekken" methode, hoge efficiëntie van de kruising van de sonde en een hoge signaal-/ ruisverhouding zijn nodig om vol vertrouwen smFISH plekken identificeren en verminderen fout vermeerdering.
Dit witboek beschrijft een geoptimaliseerde protocol voor het uitvoeren van smFISH in de ontluikende gist Saccharomyces cerevisiae. In dit protocol het celaantal, fixatie tijd, vertering, spijsvertering buffer, sonde concentratie en tijd hybridisatie buffer die wordt gebruikt voor de smFISH-experimenten werden geoptimaliseerd voor de SK1 stam achtergrond van S. cerevisiae ondergaan vegetatieve groei of meiose. We constateren echter ook in dit manuscript: (1) de methode om te controleren de kwaliteit van smFISH gegevens na Beeldacquisitie, en (2) de stappen in het protocol dat moet u mogelijk aanvullende optimalisatie voor verschillende stam achtergronden en groei-omstandigheden.

<table><tbody><tr><td>BSA, RNase-vrij (50 mg/mL)</td><td>Ambion</td><td>AM2616</td><td>Bewaar bij -20 &deg;C.</td></tr><tr><td>Catalase</td><td>Sigma</td><td>C3515</td><td>Bewaar korte termijn bij 4 &deg;C. Voren voor gebruik.</td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Sigma</td><td>D9564</td><td>Bewaar bij -20 &deg;C na reconstitutie in water. Bescherm tegen licht.</td></tr><tr><td>50% Dextran Sulfaat</td><td>Milli Pore</td><td>S4030</td><td>Bewaar bij kamertemperatuur. Zeer stroperige vloeistof. Met geduld hanteren.</td></tr><tr><td>E. coli tRNA</td><td>Sigma</td><td>R4251</td><td>Bewaar bij -20 &deg;C in aliquoten na reconstitutie in water.</td></tr><tr><td>Ethanol (100%, 200 proof)</td><td>diverse</td><td></td><td>Ontvlambaar.</td></tr><tr><td>37% Formaldehyde</td><td>Fisher</td><td>F79-500</td><td>Bewaar bij kamertemperatuur. Toxisch. Gebruik en verwijder met voorzichtigheid.</td></tr><tr><td>Formamide</td><td>Ambion</td><td>AM9342</td><td>Bewaar bij 4 &deg;C. Open nadat de temperatuur is geëquilibreerd naar kamertemperatuur om oxidatie te voorkomen. Toxisch. Gebruik en verwijder met voorzichtigheid.&nbsp;</td></tr><tr><td>Glucose</td><td>diverse</td><td></td><td>Bewaar bij 4 &deg;C na oplossen in nuclease-vrij water.</td></tr><tr><td>Glucose oxidase</td><td>Sigma</td><td>G2133</td><td>Bewaar bij -20 &deg;C in aliquoten na reconstitutie in 50 mM NaOAc, pH 5.</td></tr><tr><td>Nuclease-vrij water</td><td>Ambion</td><td>AM9932</td><td>Bewaar bij kamertemperatuur.</td></tr><tr><td>Kaliumfosfaat (monobasisch en dibasisch)</td><td>diverse</td><td></td><td>Bewaar bij kamertemperatuur.</td></tr><tr><td>Probe bibliotheek, verdund in TE, pH 8,0&nbsp;</td><td>Biosearch Technologies</td><td></td><td>Bewaar bij -20 &deg;C in aliquoten (5 &micro;L) na reconstitutie in TE pH 8,0, volgens de instructies van de fabrikant. Bescherm tegen licht.&nbsp;</td></tr><tr><td>Sorbitol</td><td>diverse</td><td></td><td>Bewaar bij kamertemperatuur.</td></tr><tr><td>20X SSC</td><td>Ambion</td><td>AM9763</td><td>Bewaar bij kamertemperatuur.</td></tr><tr><td>TE, pH 8,0</td><td>Ambion</td><td>AM9849</td><td>Bewaar bij kamertemperatuur.</td></tr><tr><td>1 M Tris, pH 8,0</td><td>Ambion</td><td>AM9856</td><td>Bewaar bij kamertemperatuur.</td></tr><tr><td>Trolox</td><td>Sigma</td><td>238813</td><td>Bewaar bij -20 &deg;C in aliquoten.</td></tr><tr><td>200 mM Vanadyl ribonucleoside complex (VRC)</td><td>NEB</td><td>S1402S</td><td>Bewaar bij -20 &deg;C in aliquoten na reconstitutie, volgens de instructies van de fabrikant.</td></tr><tr><td>Zymolyase 100T</td><td>MP Biomedicals</td><td>08320932</td><td>Bewaar bij -20 &deg;C in aliquoten na reconstitutie in water.</td></tr><tr><td>Buisjes met lage adhesie</td><td>USA Scientific</td><td>1415-2600</td><td>Bewaar bij kamertemperatuur.</td></tr></tbody></table>

Één molecuul fluorescentie in situ hybridisatie (smfish) analyse in budding vegetatieve groei van gist en meiose

Single Molecule Fluorescence In Situ Hybridization (smFISH) Analysis in Budding Yeast Vegetative Growth and Meiosis

Enkel molecuul fluorescentie in situ hybridisatie (smFISH) is een krachtige techniek om te studeren van genexpressie in afzonderlijke cellen vanwege zijn vermogen op te sporen en het tellen van afzonderlijke molecules van RNA. Aanvulling op diepe sequencing gebaseerde methoden, smFISH biedt informatie over de cel-naar-cel variatie in afschrift overvloed en de subcellular localisatie van een bepaalde RNA. Onlangs hebben we gebruikt smFISH om te bestuderen van de uitdrukking van het gen NDC80 tijdens de meiose in ontluikende gist, in welke twee transcript isoforms bestaan en de isovorm van de korte transcript heeft haar gehele reeks gedeeld met de lange isovorm. U vol vertrouwen kunt identificeren elke transcript isovorm, we bekende smFISH protocollen geoptimaliseerd en behaalde hoge consistentie en kwaliteit van de gegevens van de smFISH voor de ontluikende opgedane monsters gist meiose. Hier beschrijven we dit geoptimaliseerd protocol, de criteria die we gebruiken om te bepalen of de hoge kwaliteit van de gegevens van de smFISH is verkregen, en enkele tips voor de uitvoering van dit protocol in andere giststammen en groei-omstandigheden.

Dit enkel molecuul fluorescentie in situ hybridisatie protocol is geoptimaliseerd voor het kwantificeren van het aantal molecules van RNA in ontluikende gist tijdens de vegetatieve groei en meiose.

Één molecuul fluorescentie In Situ hybridisatie (smFISH) analyse in Budding vegetatieve groei van gist en meiose

Single molecule fluorescence in situ hybridization (smFISH) is a powerful technique to study gene expression in single cells due to its ability to detect ...

Het algemene doel van deze geoptimaliseerde enkele molecuul RNA in situ hybridisatie, of smFISH, is om individuele RNA-moleculen per cel te detecteren en te kwantificeren tijdens de vegetatieve groei en meiose van knopgisten. Deze methode onthult cel-tot-cel variabiliteit in genexpressie op subcellulaire RNA-lokalisatie en is daarom een krachtige techniek om genregulatie te bestuderen. Afgezien van de unieke informatie die kan worden onthuld door smFISH, is het belangrijkste voordeel van de techniek dat deze, eenmaal geoptimaliseerd, robuust en zeer reproduceerbaar is.Een meiotische cultuur zal worden gebruikt voor de demonstratie van dit protocol. Om de cultuur in 3% formaldehyde te fixeren, voegt u 1840 microliters van de cultuur toe aan 160 microliters van 37% formaldehyde in een twee milliliter microcentrifugebuisje. Draai ongeveer vijf keer om te mengen.Plaats de buis op een roltrommel op kamertemperatuur gedurende 20 minuten. Na 20 minuten, ga door met fixeren bij vier graden Celsius met rotatie overnacht. Op de volgende dag, bereid de vertering voor door eerst 200 millimolair vanadyl ribonucleoside complexen, of VRC, te ontdooien bij 65 graden Celsius gedurende ten minste 10 minuten.Om de verteringsmastermix voor te bereiden, pipet eerste 2125 microliters buffer B in een 15 milliliter buis. Vervolgens vortex de warme VRC gedurende vijf seconden om het volledig te resuspenderen en voeg 200 microliters van VRC toe aan de 15 milliliter buis. De mix zou licht bruin groen van kleur moeten zijn.Centrifugeer de meiotische steekproef bij 21.000 x g gedurende anderhalve minuut bij kamertemperatuur. Aspireer de supernatant voorzichtig, plaats de vacuümtip aan de andere kant van de pellet om verstoring van de pellet te voorkomen. Resuspendeer de cellen in anderhalve milliliter koude buffer B door op en neer te pipetten om te mengen.Centrifugeer bij 21.000 x g gedurende anderhalve minuut. Verwijder de bulk van de vloeistof door vacuüm aspiratie, waarbij ongeveer 100 microliters achterblijft. Resuspendeer de cellen in anderhalve milliliter koude buffer B. Centrifugeer de steekproeven, verwijder de vloeistof en resuspendeer de cellen opnieuw in anderhalve milliliter koude buffer B.Centrifugeer bij 21.000 x g gedurende anderhalve minuut. Aspireer de vloeistof volledig door op en neer te pipetten. Resuspendeer de cellen in 425 microliters verteringsmastermix en vortex kort.Voeg vijf microliters zymolyase toe aan de buis en vortex gedurende twee tot drie seconden om te mengen. Plaats de buis op een roltrommel en verteer bij 30 graden Celsius gedurende 15 tot 30 minuten. Na 15 minuten, controleer de cellen door middel van microscopie elke vijf minuten en stop de vertering wanneer ongeveer 80% van de cellen niet-transparant en niet-brekingskrachtig lijkt.Centrifugeer de buis bij 376 x g gedurende drie minuten. Verwijder de supernatant volledig. Resuspendeer de cellen voorzichtig met een milliliter buffer B door een tot twee keer op en neer te pipetten om te mengen.Centrifugeer de buis en verwijder de buffer. Resuspendeer de cellen voorzichtig in een milliliter 70% ethanol en incubeer bij kamertemperatuur gedurende drie en een half tot vier uur. Om de hybridisatieprocedure te beginnen, centrifugeer de buis met cellen bij 376 x g gedurende drie minuten.Verwijder 500 microliters van de 70% ethanol uit de buis. Pipet voorzichtig op en neer om de resterende cellen te resuspenderen en breng de cellen over naar een laag adhesieve buis. Het overbrengen van het monster naar een laag adhesieve buis is cruciaal om overtollige celverliezen tijdens de daaropvolgende formamide wasbeurten te voorkomen.Centrifugeer de laag adhesieve buis en verwijder alle ethanol. Voeg een milliliter 10% formamide wasbuffer toe aan de buis en pipet voorzichtig twee tot drie keer op en neer om de cellen te resuspenderen. Laat de cellen ongeveer 20 minuten bij kamertemperatuur staan terwijl de hybridisatieoplossingen worden voorbereid, zoals beschreven in het tekstprotocol.Centrifugeer het monster en verwijder de supernatant in gevaarlijk afval. Voeg ten minste 50 microliters van elke hybridisatieoplossing toe aan de buis en flikker de buis om te mengen. Incubeer bij 30 graden Celsius op een roltrommel gedurende ten minste 16 uur in het donker.Wanneer de hybridisatie voltooid is, plaats de buis met cellen in een met folie bedekte doos om te beschermen tegen licht. Centrifugeer het monster bij 376 x g gedurende drie minuten. Verwijder de supernatant in gevaarlijk afval door te pipetten.Resuspendeer het monster in een milliliter 10% formamide wasbuffer door voorzichtig twee tot drie keer op en neer te pipetten. Plaats de buis met cellen terug in een met folie bedekte doos om te beschermen tegen licht en incubeer bij 30 graden Celsius gedurende 30 minuten. Na 30 minuten, centrifugeer het monster.Verwijder de supernatant tot gevaarlijk afval door te pipetten, waarbij ongeveer 50 microliters overblijft. Resuspendeer het monster in een milliliter DAPI oplossing door voorzichtig twee tot drie keer op en neer te pipetten. Plaats de buis met cellen opnieuw in de met folie bedekte doos en incubeer bij 30 graden Celsius gedurende 30 minuten.Centrifugeer het monster en verwijder de supernatant volledig door te pipetten. Voor monsters die niet onmiddellijk worden beeldvormd, resuspendeer het pellet in 50 microliters GLOX buffer zonder enzymen. Pipet drie tot vier keer op en neer om te mengen.Bewaar in de met folie bedekte doos bij vier graden Celsius tot u klaar bent om te beeldvormen. Voor monsters die onmiddellijk worden beeldvormd, voeg 15 tot 20 microliters GLOX buffer met enzymen toe. Pipet vijf microliters op een dekglas en plaats het dekglas op een dia.Plaats een laboratoriumdoekje bovenop de dia waar het dekglas is geplaatst. Druk voorzichtig op het doekje om de dia vast te zetten. Plaats de dia in een doos bedekt met aluminiumfolie voor overdracht naar de microscoopruimte.Dit protocol werd gebruikt om de expressie

single-molecule-fluorescence-situ-hybridization-smfish-analysis

Research

JoVE Journal

Genetics

Genetica

Een snelle techniek voor de visualisatie van de groeiende geïmmobiliseerde gistcellen, hier toegepast op de TL-verslaggevers bij de stille paring loci HML en...

Een snelle techniek voor de visualisatie van Live Geïmmobiliseerd gistcellen

Kwantitatieve Live Cell Fluorescentie-microscopie analyse van Fission Yeast

Dit protocol beschrijft een experimentele procedure voor het uitvoeren...

Visualisatie en analyse van mRNA moleculen met behulp van fluorescentie<em&gt; In Situ</em&gt; Hybridisatie in<em&gt; Saccharomyces cerevisiae</em

We bieden een reproduceerbare basismethode voor de langetermijnmicroscopie van de seksuele levenscyclus van splijtingsgist. Met kleine aanpassingen zoals beschreven, stelt het gepresenteerde protocol onderzoekers in staat zich te concentreren op verschillende stappen van het reproductieproces.

Microscopie van Fission Yeast Sexual Lifecycle

Dit manuscript beschrijft een methode voor het labelen van individuele boodschapper-RNA (mRNA) afschriften met fluorescently-geëtiketteerden DNA sondes, voor gebruik in single-molecuul fluorescentie in situ hybridisatie (smFISH) proeven in E. coli. smFISH is een visualisatie methode waarmee de simultane detectie-, lokalisatie- en kwantificering van afzonderlijke mRNA moleculen in vaste afzonderlijke cellen.

Methode voor het labelen van afschriften in individuele Escherichia coli cellen voor Single-molecuul fluorescentie In Situ hybridisatie experimenten

Dit manuscript presenteert een gedetailleerde methode voor het genereren van X-chromosoom arm sondes en presterende fluorescentie in situ hybridisatie (FISH) te onderzoeken van de Braziliaanse deelstaat zus chromatide cohesie in prometaphase en metafase ik gearresteerd  Drosophila eicellen. Dit protocol is geschikt om te bepalen of cohesie Meiotische arm intact of verstoord in verschillende genotypen is.

Met behulp van fluorescentie In Situ hybridisatie (FISH) te controleren van de toestand van Arm cohesie in Prometaphase en metafase ik Drosophila eicellen

Hier presenteren we live-celbeeldvorming die een niet-toxische microscopie methode is die onderzoekers in staat stelt om eiwit gedrag en nucleaire dynamiek in levende splijting gistcellen te bestuderen tijdens mitose en meiosis.

Onderzoek van de kern dynamiek van de mitotische en Meiotische splijtstof gist door fluorescentie-Live-cel microscopie

Dit protocol beschrijft een toepassing van fluorescentie met één molecuul in situ hybridisatie (smFISH) om de in vivo kinetiek van mRNA-synthese en -afbraak te meten.

Indringende mRNA Kinetics in ruimte en tijd in Escherichia coli met behulp van Two-Color Single-Molecule Fluorescentie in Situ Hybridisatie

Single molecule RNA fluorescentie in situ hybridisatie (smFISH) is een methode om niveaus en lokalisatie van specifieke RNA's op het niveau van één cel nauwkeurig te kwantificeren. Hier rapporteren we onze gevalideerde laboratoriumprotocollen voor natte-bench verwerking, beeldvorming en beeldanalyse voor eencellige kwantificering van specifieke RNA's.

Single cell analyse van transcriptioneel actieve allelen door single molecule FISH

Time-lapse microscopie is een waardevol hulpmiddel voor het bestuderen van meiose in ontluikende gist. Dit protocol beschrijft een methode die celcyclussynchronisatie, time-lapse-microscopie en voorwaardelijke uitputting van een doeleiwit combineert om aan te tonen hoe de functie van een specifiek eiwit tijdens meiotische chromosoomsegregatie kan worden bestudeerd.

Gebruik van time-lapse microscopie en stadiumspecifieke nucleaire uitputting van eiwitten om meiose in S. cerevisiae te bestuderen

Dit protocol beschrijft twee methoden voor het stoppen van de gistcelcyclus en optionele afgifte, en gaat dieper in op het gebruik van fluorescentiemicroscopie om celcyclusafhankelijke processen in S. cerevisiae te bestuderen.

Manipulatie en analyse van celcyclusafhankelijke processen in ontluikende gist

Leer smFISH-analyse voor RNA-detectie in Saccharomyces cerevisiae tijdens vegetatieve groei en meiose. Deze methode onthult cel-tot-cel variabiliteit in genexpressie en subcellulaire RNA-lokalisatie.

Één molecuul fluorescentie In Situ hybridisatie (smFISH) analyse in Budding vegetatieve groei van gist en meiose

Meer video's verkennen