Name: Voorbereiding van Drosophila larvale monsters van gaschromatografie-massaspectrometrie (GC-MS)-gebaseerd metabolomica (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-06-06T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 21 s
Description: Leer hoe je Drosophila-larven voorbereidt voor GC-MS-gebaseerde metabolomica. Dit protocol meet meer dan 100 metabolieten gevoelig en reproduceerbaar voor metabool onderzoek.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dankzij de leden van de Indiana University Massa Spectroscopy faciliteit en de Universiteit van Utah metabolomica Core faciliteit voor hulp bij het optimaliseren van dit protocol. J.M.T. wordt ondersteund door de National Institute of General Medical Sciences van de National Institutes of Health onder Award nummer R35GM119557.

1. de eicelpunctie
<ol><li>Volwassen mannetjes en vrouwtjes van de Maagd van de gewenste genotypen verzamelen. Individueel leeftijd deze dieren in een flesje van voedsel met standaard Bloomington media voor 3-5 dagen.</li>
	<li>De juiste verparingen door 50 Maagd vrouwtjes en mannetjes 25 overbrengen naar een nieuwe voedsel-flacon opgericht. Opmerking: Een minimum van zes onafhankelijke verparingen moet worden opgezet voor elk genotype. Slechts één monster wordt geïncasseerd via elke paring (dat wil zeggen, zes monsters verzameld uit zes onafhankelijke verparingen).</li>
	<li>
Melasse ei leggen van caps voor te bereiden.
	<ol>
<li>Meng 115 mL van melasse en 29 g agar met 700 mL H2O in een erlenmeyer van 2 L.</li>
		<li>Kook de melasse agar mengsel op een hete plaat.</li>
		<li>Koel af tot 70 ° C.</li>
		<li>Voeg 25 mL zure mix (20 mL 85% fosforzuur en propionzuur 209 mL in 1 L H2O; Winkel in een bruine fles) en 10 mL 10% p-hydroxy-benzoëzuur acid methylester in 95% ethanol.</li>
		<li>Giet de melasse agar in zowel het deksel en het onderste gedeelte van een 35 x 10 mm2 weefselkweek schotel. Opmerking: Voordat het gieten melasse agar platen, zorg ervoor dat de deksels en/of de basis van de plaat 35 x 10 mm2 snuggly in de mond van een Drosophila voorraad fles past (beschreven in stap 1.6). Afhankelijk van het merk van platen gebruikt, mogelijk de base niet bruikbaar zijn.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Maken van verse gist plakken door het toevoegen van gedestilleerd water tot actieve droge gist (5 g gist/7 mL water) tot het mengsel wordt een pasta die gemakkelijk kan worden verspreid op een harde ondergrond (dat wil zeggen, de consistentie van pindakaas).</li>
	<li>Verspreiden van ongeveer 1,5 g gist plakken op het oppervlak van een GLB melasse ei leggen.</li>
	<li>Poke vier luchtgaten in de tegenover elkaar gelegen zijden van een plastic 6 oz. Drosophila voorraad fles met behulp van een naald 22 G.</li>
	<li>De nieuwe erop vliegen van de voedsel-flacon overboeken naar cultuur flessen. Opmerking: Vliegen kunnen worden overgedragen door hetzij met behulp van CO2 , als een tijdelijke verdoving of door de top van de flacon in de mond van de fles en scherp te tikken op de bodem van de fles tegen een benchtop.</li>
	<li>Plaats snel een melasse ei leggen van dop met gist plakken op het oppervlak in de mond van een voorraad fles van Drosophila . Laboratorium tape gebruiken om het leggen van eieren GLB in plaats veilig te stellen. Opmerking: Als vliegen narcose voorafgaand aan de overdracht, de fles moet worden gelegd horizontaal op de benchtop totdat alle vliegen zijn hersteld. Eenmaal vliegen volledig mobiel zijn, plaatst u de fles in een broedmachine met de dop van de ei-leggen van de melasse aan de onderkant van de cultuur.</li>
	<li>Vervang de melasse ei leggen van GLB ten minste eenmaal per dag gedurende de eerste twee dagen door het omkeren van de voorraad fles, onttrekken de bodem van de fles tegen de benchtop verwijderen van het oude ei GLB en onmiddellijk het plaatsen van een nieuwe ei cap in de monding van de fles. Gooi de oude ei leggen van dop. Opmerking: Deze stap zorgt u ervoor dat vrouwtjes hun eieren niet houden en zorgt voor de collectie van gesynchroniseerde populaties.</li>
	<li>Plaats een nieuwe ei leggen van cap in de voorraad fles na dag 3, vervangen na 2U, en gooi deze weg. Verwijder en vervang het tweede ei leggen van GLB na vier uur. Label onderin deze ei-leggen cap met de datum, tijd en genotype. Opmerking: De eitjes verzameld tijdens dit 4 uur venster zal worden gebruikt voor analyse. Deze synchronisatie stap is cruciaal voor het analyseren van specifieke ontwikkelingsstadia. Eieren kunnen op deze manier worden verzameld voor meerdere dagen.</li>
	<li>De ei-leggen caps invoegen met een 60 x 15 mm2 Petri plaat en zet in een incubator bij de gewenste temperatuur en vochtigheid.</li>
	<li>Inspecteer de doppen ei leggen elke dag voor problemen met honger, bevolkingsdichtheid of besmetting. Opmerking: Larven moeten toegang hebben tot voldoende voedsel te zorgen voor continue ontwikkeling. Indien nodig, kan verse gist plakken worden verspreid op alle ei leggen van caps die zal worden gebruikt in het experiment. Bovendien, als de larvale bevolkingsdichtheid te hoog is, begint larven te dwalen uit de cultuur-plaat. Deze monsters moeten niet worden gebruikt voor metabolomic analyse, omdat de hoge bevolkingsdichtheid en de tussenliggende periodes van verhongering ervaren terwijl zwerven leiden inconsistente gegevens tot zal. Een dichtheid van ~ 80 – 100 midden tweede instar larven (L2) per plaat of 40 – 50 middelste derde instar larven (L3) per plaat wordt aanbevolen. Monsters die zichtbaar verontreinigd zijn met bacteriën of schimmels moeten worden weggegooid.</li>
</ol>2. de larvale Sample collectie
<ol><li>De larven van de leeftijd tot het gewenste werkgebied. Als het verzamelen van L3 larven, synchroniseren monsters op de L2-L3 molt. Opnieuw synchroniseren gebeurt vaak met behulp van een eerder beschreven methode die gebruikmaakt van de voorste spiracles als een ontwikkelingstoxiciteit mijlpaal15. U kunt ook kunnen midden-L3 larven worden gesynchroniseerd met behulp van een sgs3 verslaggever gene16. Opmerking: In dit verband vinden wij medio-L2 larven (~ 60 h na het leggen van eieren) zijn bij uitstek geschikt voor de meeste analyses omdat larvale ontwikkeling in dit stadium nog relatief synchroon is, zorgvuldig verzamelde monsters hebben voldoende voedsel te ontwikkelen deze timepoint, en de aantal dieren per monster is beheersbaar (zie hieronder). Een extra synchronisatie stap is nodig voor L3 larven omdat de talrijke ecdysone pulsen die tijdens de ontwikkeling van de L3 optreden dramatische effecten op metabolisme hebben en artefacten in niet-gesynchroniseerde populaties genereert.</li>
	<li>Gebruik een ontleden naald voorzichtig opheffen de gist pasta uit de agar. Plaats de gist op een nieuwe melasse agar cap. Opmerking: De meeste larven eten op het raakvlak tussen de melasse agar en de gist plakken.</li>
	<li>Gebruik een klein penseel voor het verzamelen van de larven van de nieuw blootgestelde oppervlak van de agar melasse. Plaats de larven in een centrifugebuis 1,5 mL op ijs. Opmerking: De juiste steekproefomvang voor elke ontwikkelings fase zijn als volgt: 50 eerste instar larven (L1); 25 mid-L2 larven; 20 vroege L3 larven; 15 medio-L3 of laat L3 larven.</li>
	<li>Wassen en bevriezen van monsters (stappen 2.3 via 2.8) in kleine batches (vier tot zes monsters) terwijl het verzamelen van een grote steekproef set. Monsters moeten worden bevroren, binnen 20 min van larven in de buizen te plaatsen. Opmerking: We raden Eppendorf 1,5 mL Flex buizen omdat andere buizen met de overdracht van het monster bij stap 3 interfereren kunnen. Monsters moeten worden genomen in microfuge buizen. Verzamelen geen monsters in de buizen van de parel in stap 3.1 beschreven. Keramische kralen behouden de oplossing voor het wassen van NaCl, die resulteert in onjuiste massa metingen en introduceert verontreinigingen in het monster.</li>
	<li>Voeg 1 mL ijskoud 0.9% NaCl in de buis, sluit het deksel, en verticaal spiegelen de buis te grondig te wassen van de larven.</li>
	<li>Plaats de buis terug op ijs voor ~ 30 s. Gedurende deze tijd, larven zal zinken naar de bodem van de buis, maar gist in suspensie blijft. Zodra alle larven hebben een losse pellet gevormd, verwijderen de NaCl-oplossing met behulp van een precisiepipet 1 mL.</li>
	<li>Herhaal stap 2.4 en 2.5 tweemaal, of totdat de laatste wasbeurt oplossing is duidelijk. Opmerking: Extra wassen stappen kunnen nodig zijn als de verzamelde monster een bovenmatige hoeveelheid gist bevat.</li>
	<li>Centrifugeer de monsters bij 2.000 × g gedurende 1 minuut bij 4 ° C.</li>
	<li>Verwijder alle resterende oplossing met behulp van een precisiepipet 200 µL.</li>
	<li>Onmiddellijk bevriezen het monster in vloeibare stikstof. Opmerking: Het protocol kan worden onderbroken bij deze stap. Monsters kunnen worden opgeslagen voor maximaal 3 maanden bij-80 ° C.</li>
</ol>3. overdracht van monsters naar kraal buizen
<ol><li>Elke larvale monster moet worden overgebracht uit de 1,5 mL microfuge buis naar een 2 mL screwcap buizen met 1.4 mm keramische kralen. Ter voorbereiding van deze stap van de overdracht, kunt een markering voor ethanol-proof label van de kant van de kraal tube van een 2 mL screwcap (markeringen op het deksel zal worden vernietigd tijdens stap 4.4).</li>
	<li>Tarra de massa van de gelabelde kraal buis met behulp van een analytische balans staat voor het nauwkeurig meten van 0, 01 milligram.</li>
	<li>Als larvale monsters werden bewaard bij-80 ° C, plaatst u monster buizen in vloeibare stikstof voorafgaand aan de overdracht.</li>
	<li>Lange pincet gebruiken om het monsterbuisje 1,5 mL van de vloeibare stikstof dewar.</li>
	<li>Dragen nitril handschoenen, grijpen de bevroren buis, omkeren en scherp pond het deksel van de buis tegen de benchtop te verjagen van de bevroren pellet. Giet onmiddellijk de pellet in een vooraf getarreerde 2 mL screwcap kraal buis. Als de pellet mislukt te verjagen, vloeibare stikstof op de buis terugkomen en herhaalt. Opmerking: Larvale pellets zal niet verjagen uit alle microfuge buizen. Als met behulp van een buis dan aanbevolen, bepalen als larvale pellets kunnen worden verdreven vóór het verzamelen van monsters voor analyse.</li>
	<li>Meet snel de totale massa van de larvale pellet en kraal buis. Onmiddellijk plaats het monsterbuisje in vloeibare stikstof. De larvale pellet massa worden gebruikt voor het normaliseren van de gegevens van de metabolomic. Opmerking: Het protocol kan worden onderbroken bij deze stap. Monsters kunnen worden opgeslagen voor maximaal 3 maanden bij-80 ° C.</li>
</ol>4. monster extractie
<ol><li>Plaats het monster buizen in een koeler-20 ° C-benchtop.</li>
	<li>Voeg 0.8 mL prechilled (-20 ° C) 90% methanol met 2 µg/mL succinic-d4 zuur in elke buis. Terug het monster naar de-20 ° C-benchtop koeler. Opmerking: Het succinic-d4-zuur fungeert als een interne standaard. Gebruik alleen HPLC grade H2O en methanol. Aangezien methanol en andere organische oplosmiddelen zijn volatiel en moeilijk te nauwkeurig meten met behulp van lucht verplaatsing pipetten, raden we positieve-verplaatsing pipetten voor deze stap en alle volgende stappen.</li>
	<li>Een negatieve controle instellen door toevoeging van 0,8 mL prechilled (-20 ° C) 90% methanol met 2 µg/mL succinic-d4 zuur in een lege kraal buis.</li>
	<li>Meng monsters voor 30 seconden op 6.45 m/s met behulp van een kraal molen homogenizer gelegen in een kamer van 4 ° C temperatuur controle. Opmerking: Niet snel en volledig Meng de larvale pellet is een gemeenschappelijke bron van variabiliteit in metabolomica analyse. Alleen gebruik maken van homogeniseerders die vernietigen bevroren larvale weefsels binnen 30 kunnen s.</li>
	<li>Terug de gehomogeniseerde monsters buizen naar de-20 ° C-benchtop koeler en hen in een vriezer van-20 ° C gedurende ten minste 1 uur uit te broeden.</li>
	<li>Centrifugeer de buizen met 20.000 × g of maximum snelheid gedurende 5 minuten bij 4 ° C om te verwijderen van de daaruit voortvloeiende neerslag.</li>
	<li>Breng 600 µL van de bovendrijvende substantie in een nieuwe 1,5 mL microcentrifuge buis. De neerslag niet storen. Als de overhaaste pellet wordt verdreven terwijl het supernatant pipetteren, alle supernatant terug te keren naar de buis en herhaalt u stap 4.6.</li>
	<li>Plaats de buizen van het monster in een vacuüm centrifuge. Zorg ervoor dat alle buizen open zijn voor het afdichten van de centrifuge. Drogen van de monsters bij kamertemperatuur totdat alle oplosmiddel wordt verwijderd (deze stap duurt meestal ~ 16 h om te voltooien). Opmerking: Indien nodig, het protocol kan worden onderbroken bij deze stap. Gedroogde monster kan worden achtergelaten bij-80 ° C.</li>
</ol>5. chemische bewerking
<ol><li>Als de gedroogde monsters werden opgeslagen bij-80 ° C, plaats ongeopend monster buizen in een vacuüm centrifuge en drogen voor 30 min. Deze stap moet worden uitgevoerd vóór het openen van het monsterbuisje. Opmerking: Deze stap verwijdert de condensatie die op de buitenkant van de microfuge buis verzamelt wanneer verwijderd uit de diepvries. Dit gedeelte van het protocol is uiterst gevoelig voor H2O en extra voorzorgsmaatregelen moet worden getroffen om alle reagentia zo droog mogelijk te houden.</li>
	<li>
Bereid een oplossing van 40 mg/mL methoxylamine hydrochloride (MOX) in watervrij pyridine. Gebruik alleen watervrij pyridine. MOX en pyridine opslaan in een exsiccator en dagelijks de MOX-oplossing te bereiden. Let op: MOX en pyridine zijn giftig. Bereid deze oplossing in de zuurkast.<ol>
<li>Gebruik een warmte-pistool te drogen een spuit van 1 mL glas.</li>
		<li>Steek de naald van de spuit in de fles van watervrij pyridine. 1 mL van pyridine verwijderen en toevoegen aan een microfuge buis dat 40 mg MOX.</li>
		<li>Spoel de fles van watervrij pyridine met argon. Sluit de fles en terugkeren naar de exsiccator.</li>
		<li>Los de MOX in de pyridine door de buis in een thermische mixer bij 35 ° C gedurende 10 minuten bij 600 omwentelingen per minuut aan het broeden.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Voeg 40 µL van 40 mg/mL MOX in watervrij pyridine oplossing aan het gedroogde monster.</li>
	<li>Vortex voor 10 s en kort centrifuge (10.000 x g gedurende 20 s).</li>
	<li>Incubeer bij 30 ° C gedurende 1 uur bij 600 omwentelingen per minuut in een thermische mixer.</li>
	<li>Centrifugeer bij 20.000 × g of maximumsnelheid voor 5 min om de kwestie van het deeltje.</li>
	<li>Pipetteer 25 µL van de bovendrijvende substantie in een flacon autosampler met een 250 µL gedeactiveerd inzetglas microvolume.</li>
	<li>Voeg 40 µL van N- methyl -N- trimethylsilyltrifluoracetamide (MSTFA) met 1% industrie. Let op: De MSTFA is toxisch. Voer deze stap in de zuurkast. Opmerking: Indien beschikbaar, deze stap kan worden uitgevoerd door een autosampler Gerstel.</li>
	<li>Plaats een cap op de flacon autosampler en verzegelen met een krimptang gereedschap.</li>
	<li>Incubeer het monster bij 37 ° C gedurende 1 uur met schudden (250 rpm).</li>
	<li>Bereiden een fatty acid methyl ester (FAMES) standaardoplossing als eerder desceribed3. Voeg 3 µL van FAMES aan de autosampler flacon met behulp van een robot autosampler vóór injectie. Opmerking: FAMEs worden gebruikt om de retentie timeshift kalibreren en controleren van de prestaties van het instrument. Als geen robotic autosampler beschikbaar is, kunnen FAMEs tijdens stap 5,8 worden toegevoegd.</li>
</ol>6. GC-MS detectie
Opmerking: In de meeste gevallen zal de gebruiker deze stap uitvoeren met de hulp van een faciliteit voor de kern van massaspectrometrie. Dit protocol is ontworpen om te worden gebruikt met een 30 m, GC kolom met een voorkolom van 5 m.
<ol><li>Randomize de volgorde van de steekproef.</li>
	<li>
Bereiden de GC-MS.
	<ol>
<li>Stel het debiet voor helium carrier gas aan 1 mL/min.</li>
		<li>De inlaattemperatuur ingesteld op 250 ° C.</li>
		<li>Programma GC te voeren de volgende temperatuurverloop tijdens:<ol>
<li>Aanvankelijke temperatuur tot 95 ° C met een greep van 1 min.</li>
			<li>Verhoog de temperatuur tot 110 ° C met de snelheid van 40 ° C/min met een greep van 2 min.</li>
			<li>Verhogen tot 250 ° C van 5° C/min. helling.</li>
			<li>Verhogen tot 330 ° C debiet van 25 ° C/min met een laatste greep van 4 min.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Oplosmiddel vertraging ingesteld op 3,5 min. Opmerking: De tijd kan worden gewijzigd volgens de GC-MS-systeem. Het doel van deze stap is om te voorkomen dat MSTFA en MOX beschadigen van de detector.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Injecteren 1 µL van het derivatized monster in de GC-MS (split ratio van 10:1). Opmerking: Injecteren 2 µL van monster als de intensiteit van de pieken te laag. De volgorde van de injectie van de monsters moet worden gerandomiseerde.</li>
	<li>Functioneren van de massaspectrometer in volledige scanmodus via een massale bereik van 50 tot 500 m/z.</li>
</ol>7. de gegevensanalyse
<ol><li>Metabolomic gegevens met behulp van ofwel een gerichte of irrelevante aanpak te analyseren. Gerichte analyse is gericht op het meten van de overvloed aan een gedefinieerde set van metabolieten, zoals de lactaat metingen die wij hieronder beschrijven. Irrelevante analyse gebruikt daarentegen een onbevooroordeelde benadering te identificeren van een metabole functie die is aanzienlijk gewijzigd tussen twee sets van de steekproef. Opmerking: Onze lab voornamelijk maakt gebruik van de gratis programma's MetAlign17 en19 18,MetaboAnalyst voor data-analyse. Aangezien een adequate beschrijving van zowel de kwaliteitscontrole, normalisatie en gegevensverwerking stappen buiten het bestek van dit manuscript, verwijzen we de gebruiker meer gedetailleerde protocollen die zijn gewijd aan gegevensverwerking20,21, 22. Bovendien, kan een stroomschema met een beschrijving van de stappen die nodig zijn voor deze analyse worden gevonden elders8.</li>
</ol>

<ol><li>Owusu-Ansah, E., Perrimon, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modeling+metabolic+homeostasis+and+nutrient+sensing+in+Drosophila%3A+implications+for+aging+and+metabolic+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Disease+Models+%26+Mechanisms%22%5BJournal%5D)">Modeling metabolic homeostasis and nutrient sensing in Drosophila: implications for aging and metabolic diseases.</a> Disease Models & Mechanisms. 7 (3), 343-350 (2014).</li>
<li>Sieber, M. H., Spradling, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+metabolic+states+in+development+and+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Opinion+in+Genetics+%26+Development%22%5BJournal%5D)">The role of metabolic states in development and disease.</a> Current Opinion in Genetics & Development. 45, 58-68 (2017).</li>
<li>Tennessen, J. M., Barry, W. E., Cox, J., Thummel, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+for+studying+metabolism+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Methods for studying metabolism in Drosophila.</a> Methods. 68 (1), 105-115 (2014).</li>
<li>Li, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drosophila+larvae+synthesize+the+putative+oncometabolite+L-2-hydroxyglutarate+during+normal+developmental+growth%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Drosophila larvae synthesize the putative oncometabolite L-2-hydroxyglutarate during normal developmental growth.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 114 (6), 1353-1358 (2017).</li>
<li>Tennessen, J. M., Baker, K. D., Lam, G., Evans, J., Thummel, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Drosophila+Estrogen-Related+Receptor+Directs+a+Metabolic+Switch+that+Supports+Developmental+Growth%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Metabolism%22%5BJournal%5D)">The Drosophila Estrogen-Related Receptor Directs a Metabolic Switch that Supports Developmental Growth.</a> Cell Metabolism. 13 (2), 139-148 (2011).</li>
<li>Nicholson, J. K., Lindon, J. C., Holmes, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metabonomics%27%3A+understanding+the+metabolic+responses+of+living+systems+to+pathophysiological+stimuli+via+multivariate+statistical+analysis+of+biological+NMR+spectroscopic+data%5BTitle%5D)+AND+%22Xenobiotica%22%5BJournal%5D)">Metabonomics': understanding the metabolic responses of living systems to pathophysiological stimuli via multivariate statistical analysis of biological NMR spectroscopic data.</a> Xenobiotica. 29 (11), 1181-1189 (1999).</li>
<li>Fiehn, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metabolomics+-+the+link+between+genotypes+and+phenotypes%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Metabolomics - the link between genotypes and phenotypes.</a> Plant Molecular Biology. 48 (1-2), 155-171 (2002).</li>
<li>Cox, J. E., Thummel, C. S., Tennessen, J. M. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/28684601">Metabolomic Studies in Drosophila.</a> Genetics. 206 (3), 1169-1185 (2017).</li>
<li>Lenz, E. M., Wilson, I. D. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17269702">Analytical strategies in metabonomics.</a> Journal of Proteome Research. 6 (2), 443-458 (2007).</li>
<li>Pasikanti, K. K., Ho, P. C., Chan, E. C. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gas+chromatography%2Fmass+spectrometry+in+metabolic+profiling+of+biological+fluids%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Chromatography+B-Analytical+Technologies+in+the+Biomedical+and+Life+Sciences%22%5BJournal%5D)">Gas chromatography/mass spectrometry in metabolic profiling of biological fluids.</a> Journal of Chromatography B-Analytical Technologies in the Biomedical and Life Sciences. 871 (2), 202-211 (2008).</li>
<li>Want, E. J., Nordstrom, A., Morita, H., Siuzdak, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((From+exogenous+to+endogenous%3A+The+inevitable+imprint+of+mass+spectrometry+in+metabolomics%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Proteome+Research%22%5BJournal%5D)">From exogenous to endogenous: The inevitable imprint of mass spectrometry in metabolomics.</a> Journal of Proteome Research. 6 (2), 459-468 (2007).</li>
<li>Garcia, A., Barbas, C. <a target="_blank" href="https://link.springer.com/book/10.1007%2F978-1-61737-985-7">Metabolic Profiling: Methods and Protocols Vol. 708 Methods in Molecular Biology</a>. Metz, T. O. , Humana Press Inc. Totowa, Nj. 191-204 (2011).</li>
<li>Chan, E. C. Y., Pasikanti, K. K., Nicholson, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Global+urinary+metabolic+profiling+procedures+using+gas+chromatography-mass+spectrometry%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Global urinary metabolic profiling procedures using gas chromatography-mass spectrometry.</a> Nature Protocols. 6 (10), 1483-1499 (2011).</li>
<li>Dunn, W. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Procedures+for+large-scale+metabolic+profiling+of+serum+and+plasma+using+gas+chromatography+and+liquid+chromatography+coupled+to+mass+spectrometry%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Procedures for large-scale metabolic profiling of serum and plasma using gas chromatography and liquid chromatography coupled to mass spectrometry.</a> Nature Protocols. 6 (7), 1060-1083 (2011).</li>
<li>Ashburner, M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aAshburner%2C+M+%22Drosophila%3A+A+Laboratory+Manual%22">Drosophila: A Laboratory Manual</a>. , Cold Spring Harbor Laboratory Press. 171-178 (1989).</li>
<li>Biyasheva, A., Do, T. V., Lu, Y., Vaskova, M., Andres, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glue+secretion+in+the+Drosophila+salivary+gland%3A+a+model+for+steroid-regulated+exocytosis%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Biology%22%5BJournal%5D)">Glue secretion in the Drosophila salivary gland: a model for steroid-regulated exocytosis.</a> Developmental Biology. 231 (1), 234-251 (2001).</li>
<li>Lommen, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MetAlign%3A+Interface-driven%2C+versatile+metabolomics+tool+for+hyphenated+full-scan+mass+spectrometry+data+preprocessing%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">MetAlign: Interface-driven, versatile metabolomics tool for hyphenated full-scan mass spectrometry data preprocessing.</a> Analytical Chemistry. 81 (8), 3079-3086 (2009).</li>
<li>Xia, J., Wishart, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Using+MetaboAnalyst+3.0+for+comprehensive+metabolomics+data+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Protocols+in+Bioinformatics%22%5BJournal%5D)">Using MetaboAnalyst 3.0 for comprehensive metabolomics data analysis.</a> Current Protocols in Bioinformatics. 55, (2016).</li>
<li>Xia, J., Sinelnikov, I. V., Han, B., Wishart, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MetaboAnalyst+3.0-making+metabolomics+more+meaningful%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Research%22%5BJournal%5D)">MetaboAnalyst 3.0-making metabolomics more meaningful.</a> Nucleic Acids Research. 43 (W1), W251-W257 (2015).</li>
<li>Lommen, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Data+%28pre-%29processing+of+nominal+and+accurate+mass+LC-MS+or+GC-MS+data+using+MetAlign%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Data (pre-)processing of nominal and accurate mass LC-MS or GC-MS data using MetAlign.</a> Methods in Molecular Biology. 860, 229-253 (2012).</li>
<li>Xia, J., Wishart, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Using+MetaboAnalyst+3.0+for+comprehensive+metabolomics+data+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Protocols+in+Bioinformatics%22%5BJournal%5D)">Using MetaboAnalyst 3.0 for comprehensive metabolomics data analysis.</a> Current Protocols in Bioinformatics. 55, (2016).</li>
<li>Xia, J., Wishart, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Web-based+inference+of+biological+patterns%2C+functions+and+pathways+from+metabolomic+data+using+MetaboAnalyst%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Web-based inference of biological patterns, functions and pathways from metabolomic data using MetaboAnalyst.</a> Nature Protocols. 6 (6), 743-760 (2011).</li>
<li>Li, H., Tennessen, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+for+studying+the+metabolic+basis+of+Drosophila+development%5BTitle%5D)+AND+%22Wiley+Interdisciplinary+Reviews+Developmental+Biology%22%5BJournal%5D)">Methods for studying the metabolic basis of Drosophila development.</a> Wiley Interdisciplinary Reviews Developmental Biology. 6 (5), (2017).</li>
</ol>

De auteurs hebben niets te onthullen.

Metabolomica biedt een ongeëvenaarde mogelijkheid om enquête de metabole reacties waaruit intermediaire metabolisme. De gevoeligheid van deze technologie, maakt gegevens echter gevoelig voor genetische achtergrond, developmental signalen, en een scala aan milieu benadrukt, met inbegrip van de temperatuur, de vochtigheid, de bevolkingsdichtheid en de beschikbaarheid van nutriënten. Dus, een hoge kwaliteit en reproduceerbare metabolomica analyse vereist dat de monsters worden genomen in sterk gecontroleerde omstandigheden....

De fruitvlieg Drosophila melanogaster heeft ontpopt als een ideaal systeem voor het bestuderen van het moleculaire mechanisme dat tussenliggende metabolisme reguleren. Niet alleen zijn de meeste stofwisselingsroutes bewaard tussen Drosophila en de mens, maar ook belangrijke nutriënten sensoren en groeiregulatoren, zoals insuline, Tor en myc, zijn actief in de vliegen1,2. Dientengevolge, kan Drosophila worden gebruikt om te verkennen de metabole basis van ziekten bij de mens variërend van diabetes en obesitas tot neurodegeneratie en kanker. In dit verband biedt Drosophila larvale ontwikkeling het ideale kader om te bestuderen van een metabole programma genoemd aërobe glycolyse, of het Warburg effect. Net zoals veel tumoren aërobe glycolyse gebruiken biomassa genereren uit koolhydraten, dus activeren hiervoor Drosophila larven aërobe glycolyse ter bevordering van de ontwikkelingstoxiciteit groei3,4,5. Deze overeenkomsten tussen larvale en tumor metabolisme Drosophila vast te stellen als een belangrijke model om te begrijpen hoe aërobe glycolyse is gereglementeerde in vivo.
Ondanks het feit dat de vlieg heeft ontpopt als een populair model voor het bestuderen van de stofwisseling, vertrouwen meeste Drosophila studies op methoden die zijn ontworpen voor het meten van individuele metabolieten3, zoals trehalose, triglyceriden of ATP. Aangezien een specifiek protocol vereist is voor het meten van elk metaboliet, zijn assay gebaseerde studies arbeidsintensief, duur en bevooroordeeld naar deze verbindingen die kunnen worden gemeten met behulp van commerciële kits. Een oplossing voor deze beperkingen is gebleken uit het veld van metabolomica, waarmee een meer efficiënte en onpartijdige middel van het bestuderen van Drosophila metabolisme. In tegenstelling tot een kwantitatieve analyse gebaseerde studie, kan een analyse van één metabolomic tegelijk meten van honderden kleine molecuul metabolieten en bieden een grondig inzicht in een organisme van metabole status6,7. Deze techniek heeft het toepassingsgebied van Drosophila metabole studies aanzienlijk uitgebreid en vertegenwoordigt de toekomst van deze opkomende veld8.
Metabolomic onderzoeken worden hoofdzakelijk uitgevoerd met behulp van drie technologieën: (i) nucleaire magnetische resonantie (NMR), (ii) de vloeibare chromatografie-massaspectrometrie (LC-MS), en (iii) verlenging van het gaschromatografie-massaspectrometrie (GC-MS)9. Elke benadering biedt verschillende voordelen en nadelen, en alle van deze technologieën zijn gebruikt om succesvol studeren Drosophila metabolisme. Aangezien het onderzoek uitgevoerd in ons lab is gericht op kleine, polar metabolieten, we gebruiken voornamelijk een op basis van GC-MS methode. GC-MS biedt de gebruiker met een aantal voordelen, waaronder hoge reproduceerbaarheid, de resolutie van de piek, de gevoeligheid, en de beschikbaarheid van een standaard elektron effect (EI) spectrale bibliotheek, die het mogelijk voor de snelle identificatie van maakt metabole ontdekt functies10,11. De bereiding van de monsters voor de GC-MS, echter, is enigszins complex en vereist een zorgvuldige aandacht voor detail. Monsters worden verzameld, gewassen, gewogen, en bevroren op een wijze die snel metabole reacties lest. Bovendien, het vliegen karkas is resistent tegen standaard homogenisering protocollen en vereist een kraal molen om optimale metaboliet extractie. Tot slot moeten monsters geanalyseerd door GC-MS chemische bewerking vóór detectie12ondergaan. Terwijl eerder gepubliceerde methoden elk van deze stappen3,13,14 beschrijven, is nog steeds een visuele protocol dat zou de beginnende gebruiker reproducibly het genereren van hoge kwaliteit gegevens nodig. Hier laten we zien hoe Drosophila larvale monsters om voor te bereiden op basis van GC-MS metabolomica analyse. Dit protocol kan de gebruiker reproducibly veel van de kleine polar metabolieten, waaruit de centrale koolstof metabolisme te meten.

<table><tbody><tr><td>Unsulfured blackstrap molasses</td><td>Good Food, INC</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Drosophila Agar Type II</td><td>Genesee Scientific</td><td>66-103</td><td></td></tr><tr><td>Pyridine</td><td>EMD Millipore</td><td>PX2012-7</td><td></td></tr><tr><td>Methoxyamine hydrocholoride (MOX)</td><td>MP Biomedicals, LLC</td><td>155405</td><td></td></tr><tr><td>MSTFA with 1% trimethylchlorosilane</td><td>Sigma</td><td>69478</td><td></td></tr><tr><td>Fleischmann&rsquo;s Active dry yeast</td><td>AB Mauri Food Inc</td><td>2192</td><td></td></tr><tr><td>6oz Drosophila stock bottle</td><td>Genesee Scientific</td><td>32-130</td><td></td></tr><tr><td>Soft tissue homogenizing mix (2 mL tubes)&nbsp;</td><td>Omni International</td><td>SKU:19-627</td><td></td></tr><tr><td>Vial insert, 250 &micro;L deactivated glass with polymer feet</td><td>Agilent</td><td>5181-8872</td><td></td></tr><tr><td>Succinic acid-2,2,3,3-d4</td><td>Sigma</td><td>293075</td><td></td></tr><tr><td>SpeedVac</td><td>Thermo&nbsp;</td><td>SC210A</td><td></td></tr><tr><td>o-Phosphoric acid</td><td>Fisher Scientific</td><td>A242-1</td><td></td></tr><tr><td>Propionic acid</td><td>Sigma</td><td>P5561</td><td></td></tr><tr><td>p-Hydroxy benzoic acid methyl ester</td><td>Genesee Scientific</td><td>20-258</td><td></td></tr><tr><td>Bead Ruptor</td><td>Omni International</td><td>SKU:19-040E</td><td></td></tr><tr><td>ThermoMixer F1.5</td><td>Eppendorf</td><td>5384000012</td><td></td></tr><tr><td>MultiTherm Shaker with a 24 X 12 mm block</td><td>Benchmark Scientific</td><td>H5000</td><td></td></tr><tr><td>Methanol</td><td>Sigma</td><td>34860</td><td></td></tr><tr><td>1.5 mL centrifuge tube</td><td>Eppendorf</td><td>22364111</td><td></td></tr><tr><td>Falcon 35 X 10 mm tissue culture dish</td><td>Corning Incorporated</td><td>353001</td><td></td></tr><tr><td>GC column</td><td>Phenomex</td><td>ZB-5MSi</td><td></td></tr></tbody></table>

voorbereiding van drosophila larvale monsters van gaschromatografie-massaspectrometrie (gc-ms)-gebaseerd metabolomica

Preparation of Drosophila Larval Samples for Gas Chromatography-Mass Spectrometry (GC-MS)-based Metabolomics

Recente ontwikkelingen op het gebied van metabolomica hebben de fruitvlieg Drosophila melanogaster opgericht als een krachtige genetisch model voor het bestuderen van dierlijke metabolisme. Door het combineren van de enorme serie van Drosophila genetische hulpmiddelen met de mogelijkheid om grote zwaden van intermediaire metabolisme enquête, kan een aanpak metabolomica complexe interacties tussen voeding, genotype, levensgeschiedenis evenementen en milieu signalen onthullen. Bovendien, kunnen metabolomica studies ontdekken nieuwe enzymatische mechanismen en voorheen onbekende verbindingen tussen schijnbaar ongelijksoortige stofwisselingsroutes ontdekken. Teneinde meer wijdverbreide gebruik van deze technologie onder de Drosophila Gemeenschap, hier voorzien wij een gedetailleerd protocol waarin wordt beschreven hoe voor te bereiden Drosophila larvale monsters gaschromatografie-massaspectrometrie (GC-MS)- op basis van metabolomic analyse. Onze protocol bevat beschrijvingen van larvale sample collectie, metaboliet extractie, chemische bewerking en GC-MS-analyse. Succesvolle afronding van dit protocol kunnen gebruikers voor het meten van de relatieve overvloed van kleine polar metabolieten, waaronder suikers, aminozuren en organische zuren die betrokken zijn in de glycolyse en de fietsen van het TCA.

Lactaat dehydrogenase (dLDH) mutanten, die geen dLDH activiteit4en genetisch-matched controles werden als medio-L2 larven verzameld en verwerkt volgens protocol hierboven beschreven. In vergelijking met de besturingselementen, vertonen mutant larven belangrijke veranderingen in lactaat en pyruvaat L-2-hydroxyglutarate4. Spectra werden verkregen met een Agilent GC6890-5973i MS-systeem. Een voorbeeld van de GC-MS-spectra genereren met...

Dit protocol wordt beschreven hoe voor te bereiden Drosophila larven op basis van GC-MS metabolomic analyse.

Voorbereiding van Drosophila larvale monsters van gaschromatografie-massaspectrometrie (GC-MS)-gebaseerd metabolomica

Recent advances in the field of metabolomics have established the fruit fly Drosophila melanogaster as a powerful genetic model for studying animal ...

Deze methode kan belangrijke vragen beantwoorden op het gebied van metabolisme, zoals hoe het oncometabolite L2-hydroxyglutaraat wordt gesynthetiseerd in gezonde cellen. Het grote voordeel van deze techniek is dat het de gebruiker in staat stelt om direct meer dan 100 metabolieten op een gevoelige en reproduceerbare manier te meten. Over het algemeen zullen personen die nieuw zijn met deze methode worstelen omdat het protocol efficiënte monsterverwerking vereist en uiterst gevoelig is voor waterdamp.Om het protocol te starten, voegt u een milliliter ijskoud 0,9% natriumchloride toe aan een 1,5-milliliter buis met eerder bereide larven. Sluit het deksel, draai de buis verticaal om de larven grondig te wassen en plaats de buis gedurende 30 seconden op ijs. De larven zullen naar de bodem van de buis zinken, maar de gist zal in suspensie blijven.Zodra alle larven een losse pellet hebben gevormd, verwijdert u de natriumchlorideoplossing met behulp van een 1-milliliter pipette. Centrifugeer de monsters gedurende één minuut bij 2.000 g bij vier graden Celsius. Verwijder alle resterende oplossing met behulp van een 200-microliter pipette en bevries het monster onmiddellijk in vloeibare stikstof.Gebruik een ethanolbestendige marker om de zijkant van een schroefdop met twee milliliter perlenbuis te labelen. Tare vervolgens de massa van de gelabelde perlenbuis met een analytische weegschaal die nauwkeurig 0,01 milligram kan meten. Gebruik lange pincetten om de 1,5-milliliter monsterbuis uit de vloeibare stikstofdewar te verwijderen.Trag nitrilhandschoenen aan, grijp de bevroren buis, draai deze om en sla het buisdeksel krachtig tegen het laboratoriumblad om de bevroren pellet los te maken. Giet de pellet onmiddellijk in een vooraf getared schroefdop met twee milliliter perlenbuis. Het monster moet snel worden verwerkt om ervoor te zorgen dat endogene metabolische routes niet opnieuw worden geactiveerd.Meet snel de gecombineerde massa van de larvale pellet en perlenbuis. Plaats de monsterbuis onmiddellijk in vloeibare stikstof. Plaats de monsterbuizen in een tafelbladkoeler met negenentwintig graden Celsius.Voeg 0,8 milliliter voorgekoelde 90% methanol toe dat twee microgram per milliliter succinic-D4 zuur bevat in elke buis. Breng de monsters terug naar de negenentwintig graden Celsius tafelbladkoeler. Stel een negatieve controle in door 0,8 milliliter voorgekoelde 90% methanol toe te voegen dat twee microgram per milliliter succinic-D4 zuur bevat in een lege perlenbuis.Homogeniseer vervolgens de monsters gedurende 30 seconden bij 6,45 meter per seconde met behulp van een perlenmolenhomogenisator in een temperatuurregelruimte van vier graden Celsius. Breng de gehomogeniseerde monsters terug naar de negenentwintig graden Celsius tafelbladkoeler en breng de koeler vervolgens gedurende ten minste één uur in een negenentwintig graden Celsius vriezer. Na incubatie centrifugeert u de buizen bij 20.000 g gedurende vijf minuten bij vier graden Celsius om het resulterende neerslag te verwijderen.Breng 600 microliter van het supernatant over in een nieuwe 1,5-milliliter microcentrifugebuis en roer het neerslag niet. Open alle monsterbuizen en plaats ze in een vacuümcentrifuge. Droog de monsters op kamertemperatuur tot alle oplosmiddel is verwijderd.Als de gedroogde monsters bij negenenvijftig graden Celsius zijn opgeslagen, plaatst u ongeopende monsterbuizen in een vacuümcentrifuge en droogt u ze gedurende 30 minuten. Bereid een oplossing van 40 milligram per milliliter methoxylaminehydrochloride, of MOX, in watervrij pyridine. Bewaar de MOX en pyridine in een droogkast.Gebruik vervolgens een warmtepistool om een glazen spuit van één milliliter gedurende ongeveer vijf seconden te drogen. Steek de naald van de spuit in de fles met watervrij pyridine. Verwijder één milliliter pyridine en voeg het toe aan een microfugebuis met 40 milligram MOX.Dit gedeelte van het protocol is uiterst gevoelig voor water. Alle reagentia moeten voor gebruik in een droogkast worden bewaard. Bovendien moet de gebruiker ervoor zorgen dat het monster minimale blootstelling aan atmosferische waterdamp heeft.Spoel vervolgens de fles met watervrij pyridine met argon. Sluit de fles en breng hem terug naar de droogkast. Los de MOX op in pyridine door de buis gedurende 10 minuten bij 600 omwentelingen per minuut in een thermische mixer bij 35 graden Celsius te incuberen.Voeg vervolgens 40 microliter van 40 milligram per milliliter MOX in een watervrije pyridineoplossing toe aan het gedroogde monster. Vortex het monster gedurende 10 seconden en centrifugeer het kort. Incubeer vervolgens het monster in een thermische mixer.Centrifugeer het monster gedurende vijf minuten bij 20.000 g of maximale snelheid om de deeltjesstof te verwijderen. Breng 25 microliter van het supernatant over in een autosamplerbuis met een 250-microliter gedeactiveerde glazen microvolume-inzet. Voeg 40 microliter MSTFA toe dat 1% TMCS bevat.Plaats een dop op de autosamplerbuis en verzegel de buis met behulp van een krimpgereedschap. Incubeer het monster gedurende één uur bij 37 graden Celsius met schudden bij 250 omwentelingen per minuut. Voeg tenslotte drie microliter van eerder bereide vetzuurmethylesterstandaard, of FAMES, oplossing toe aan de autosamplerbuis met behulp van een robotische autosampler onmiddellijk voor injectie.Gaschromatografie-massaspectrometrie van lactate dehydrogenase mutantlarven vertoont significante veranderingen in lactaat, pyruvaat en L2-hydroxyglutaraat in vergelijking met controlelarven. De GC-MS-spectra die met het protocol zijn gegenereerd, laten veel zichtbare kenmerken en een opvallende piek voor trehalose zien, die normaal gesproken de grootste piek in een larvele monster vertegenwoordigt. Principecomponentenanalyse, of PCA, laat duidelijk zien dat de knockout en wild-type groepen van elkaar worden gescheiden en dat er geen uitzondering in een van beide groepen is.Tijdens het uitvoeren van deze procedure is het belangrijk om de monsters voorafgaand aan homogenisatie bevroren te houden en

preparation-drosophila-larval-samples-for-gas-chromatography-mass

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Ontwikkelingsbiologie

Stabiel isotopische profilering door middel van gaschromatografie massaspectrometrische analyse van intermediaire metabole flux wordt beschreven in de...

Stabiele Isotopen Profilering van Intermediair metabole flux in het ontwikkelen en volwassen stadium Caenorhabditis elegans</em

We beschrijven hier de procedures voor de extractie en zuivering van mRNA en metabolieten...

Zuivering van Afschriften en metabolieten van<em&gt; Drosophila</em&gt; Hoofden

Mitochondria spelen een centrale rol in de regulatie van metabolisme en homeostase. Subtiele veranderingen in mitochondriaal metabolisme die de fysiologie van organismen beïnvloeden, kunnen moeilijk te detecteren zijn in metabolomics-studies van hele organismen. Hier beschrijven we een isolatiemethode die de detectie van subtiele metabolische verschuivingen in Drosophila melanogaster verbetert.

Voorbereiding van mitochondriaal verrijkte fracties voor Metabole analyse in<em&gt; Drosophila</em

Het doel van dit protocol is om een ​​eenvoudige en goedkope aanpak te geven voor het verzamelen van Drosophila embryo's op middelgrote schaal (0,5-1 g) en het bereiden van eiwit extracten die kunnen worden toegepast in stroomafwaartse proteomische toepassingen, zoals affiniteitszuivering-massaspectrometrie (AP-MS ).

Middelgrote voorbereiding van<em&gt; Drosophila</em&gt; Embryo Extracten voor Proteomische Experimenten

Minderjarige werknemers van de mier soorten Colobopsis explodens worden ontleed om te isoleren van de inhoud van de wasachtige opgeslagen in hun hypertrophied mandibulaire klier reservoirs voor latere oplosmiddel-extractie en analyse met gaschromatografie-massaspectrometrie. De aantekening en de identificatie van vluchtige bestanddelen met behulp van de open-source software MetaboliteDetector wordt ook beschreven.

Isolatie van de mandibulaire klier Reservoir inhoud van Borneose ' exploderende mieren (Formicidae) voor Volatilome analyse door GC-MS en MetaboliteDetector

Dit protocol beschrijft een methode voor de grootschalige teelt van Caenorhabditis elegans op solide media. Als alternatief voor vloeibare cultuur kunnen dit protocol verkrijgen van parameters voor verschillende schalen onder plaat gebaseerde teelt. Dit verhoogt de vergelijkbaarheid van de resultaten door het weglaten van de morfologische en metabole verschillen tussen vloeibare en vaste mediacultuur.

Plaat gebaseerde grootschalige teelt van Caenorhabditis elegans: bereiding van de monsters voor de studie van de metabole veranderingen bij Diabetes

Dit protocol beschrijft een interne doorvoer voor aanvullende analytische en omics technieken, culminerend in een volledig gekoppeld karakterisering van natuurlijke organische stof en microbiële proteomics in verschillende ecosystemen. Deze aanpak maakt robuuste vergelijkingen voor het identificeren van de metabolische banen en het transformaties die belangrijk zijn voor het beschrijven van de gasproductie van broeikasgassen en het voorspellen van reacties op veranderingen in het milieu.

Single-doorvoer complementaire High-resolution analytische technieken voor het karakteriseren van complexe natuurlijke organische stof mengsels

In dit protocol presenteren we een geoptimaliseerde workflow, die een efficiënte en snelle monstervoorbereiding van veel monsters combineert. Daarnaast bieden we een stapsgewijze handleiding om analytische variaties te verminderen voor high-throughput evaluatie van metabole GWAS-studies.

Grootschalige multi-omics Genome-wide Association Studies (Mo-GWAS): richtlijnen voor monstervoorbereiding en normalisatie

Het doel van dit protocol is om gedetailleerde richtlijnen te geven over de juiste monstervoorbereiding voor lipide- en metabolietanalyse in kleine weefsels, zoals de Drosophila-hersenen , met behulp van matrixondersteunde laserdesorptie / ionisatie (MALDI) massaspectrometrie beeldvorming.

Monstervoorbereiding voor snelle lipidenanalyse in drosophila-hersenen met behulp van matrixondersteunde laserdesorptie / ionisatie massaspectrometrie beeldvorming

Hier presenteren we een protocol voor het isoleren gonadale weefsel van larvale zebravis, die onderzoeken zebravis geslachtsdifferentiatie en het onderhoud vergemakkelijkt.

Dissectie van larvale zebravis Gonadale Tissue

Leer hoe je Drosophila-larven voorbereidt voor GC-MS-gebaseerde metabolomica. Dit protocol meet meer dan 100 metabolieten gevoelig en reproduceerbaar voor metabool onderzoek.

Voorbereiding van Drosophila larvale monsters van gaschromatografie-massaspectrometrie (GC-MS)-gebaseerd metabolomica

Meer video's verkennen