Name: Varkens als een Module van de opleiding voor hoofd en nek microvasculaire wederopbouw (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-09-29T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 43 s
Description: Leer microvasculaire reconstructie van hoofd en nek met een varkensmodel voor chirurgische training. Deze methode ontwikkelt essentiële vaardigheden bij beginnende chirurgen door realistische anatomische oefeningen.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit werk werd gefinancierd en gesteund door de fundamentele wetenschap Research Program via de nationale onderzoek Stichting van Korea (NRF) gefinancierd door het ministerie van wetenschap, ICT en toekomst Planning (2015R1C1A1A01051907). Dit werk werd ook ondersteund door de fundamentele wetenschap Research Program via de nationale onderzoek Stichting van Korea (NRF) gefinancierd door het ministerie van wetenschap, ICT & toekomst Planning (NRF-2016M3A9E9941746).

Deze studie werd geleid en goedgekeurd door het departement van laboratorium dier middelen, Yonsei biomedische Research Institute, Yonsei University College of Medicine, geaccrediteerd door de vereniging voor de beoordeling en de accreditatie van Laboratory Animal Care International. Deze studie volgde de richtsnoeren voor de zorg en het gebruik van proefdieren van het Instituut van laboratorium dier middelen Commissie op biowetenschappen National Research Council. Alle varkens werden acclimated gedurende één week vóór de bewerking.
1. voorbereiding
<ol><li>Houd de varkens zonder voedsel voor meer dan 12 h voor narcose met gratis toegang tot water. Opmerking: Zes vrouwelijke Yorkshire varkens werden gebruikt met een gewicht van 25 – 30 kg per stuk.</li>
	<li>Gebruik een 16 Gauge naald van 1 cm lengte te injecteren intramuscularly alfaxan (1 mg/kg), xylazine (2 mg/kg) en azaperone (2 mg/kg) achter en onder het oor tot inleiding van de anesthesie.</li>
	<li>Scheren de anterior middellijn van de nek en de buikwand van het varken met behulp van een chirurgische hair removal scheerapparaat.</li>
	<li>Veilig een intraveneuze (IV) route door de centrale of marginale oor ader aan de posterieure zijde van de oorschelp met een naald van 22-G. Injecteren Ketorolac (1 mg/kg) via een IV-lijn.</li>
	<li>Vervolgens spuiten intramuscularly zoals beschreven in 1.2 atropine (0,04 mg/kg). Injecteren intramuscularly zoals beschreven in 1.2 cefazolin (30 mg/kg).</li>
	<li>Zet het varken liggen in een liggende positie boven de tafel van de operatiekamer.</li>
	<li>Laat het varken naar adem 2 L van zuurstof met 5% van Isofluraan door varkens verdoving maskeren spontaan.</li>
	<li>De stembanden via de mond met behulp van een Laryngoscoop bloot en spuiten ze met twee soezen van 2% lidocaïne actueel oplossing om te voorkomen dat intubatie-geïnduceerde laryngospasm.</li>
	<li>Intubate met een 6.5 mm buis, opblazen van de buis manchet met 3-5 mL lucht met behulp van een injectiespuit zonder naald eraan verbonden zijn. Opmerking: Capnometry om ervoor te zorgen dat de tracheale buis, die een deel van de verdoving machine uitmaakt, in de juiste positie is en er CO2 terug naar de machine als indicatie van goede oxygenatie is uitvoeren</li>
	<li>Het handhaven van de narcose na de intubatie met 2% Isofluraan.</li>
	<li>Gebruik maken van de dierenarts zalf op pig's ogen en sluit deze met een oog cover patch.</li>
</ol>2. procedure: Ontvangst Site
<ol><li>Desinfecteer de nek en de buikwand met de scrub jodium gebaseerde oplossing 1%.</li>
	<li>Start een verticale middellijn incisie in de voorste hals met behulp van blade No. 23 tot het borstbeen.</li>
	<li>Ontleden van de spieren van de riem en lateraal met Kelly weefsel schaar en Lahey oprolmechanisme intrekken.</li>
	<li>De luchtpijp van de eerste ring aan de inlaat van de thoracale bloot.</li>
	<li>Vervolgens, bloot de gemeenschappelijke halsslagader en de interne halsslagader voor de anastomose.</li>
	<li>Het maken van een venster in het tweede of derde tracheale kraakbeen, ~ 1 cm breed met mes nr. 11.</li>
	<li>Kijk voor de Endotracheale tube via de trachea defect gemaakt, en zorg ervoor dat de beluchting door de buis wordt voortgezet met behulp van de ventilator zonder een lek.</li>
</ol>3. procedure: Klep Site
Opmerking: De superieure epigastrische artery perforator (SEAP) klep oogst kan worden uitgevoerd, volgens de methode beschreven door Frederic Bodin7.
<ol><li>Het ontwerp van een flap aan de bovenbuik door een chirurgische viltstift (figuur 1A).</li>
	<li>Maak een elliptische huid incisie 4 x 3 cm met behulp van een scalpel No. 23 naar de voorste schede van de buikwand aan de mediale zijde van de getrokken flap (figuur 1B).</li>
	<li>Verheffen (peel) de klep van de musculus rectus abdominis schede op zoek naar de perforators gaat de klep van de huid terwijl de fascia door de allis.</li>
	<li>De intramusculaire dissectie uitvoeren en volg de perforators voor de superieure epigastrische vaartuigen (figuur 1B)</li>
	<li>Nu het uitvoeren van de laterale huid incisie op de ontworpen klep (figuur 1A) met behulp van een scalpel No. 23 (Figuur 1 c)</li>
	<li>Klem de superieure epigastrische vaartuigen en de venae comitantes met de hemostat superiorly en gebruik van Kelly weefsel schaar te knippen onder de hemostat en afbinden van het vaartuig boven de hemostat door de 3-0 hechtdraad. Vervolgens opstijgen naar de hemostat.</li>
</ol>4. anastomosis en sluiting
<ol><li>Zet op een chirurgische loep.</li>
	<li>Klem de halsslagader slagader met behulp van twee hemostats met 1-2 cm afstand tussen hen.</li>
	<li>Gebruik micro-schaar te knippen tussen de halsslagader en de superieure onderdeel koppelen door dubbele hechtdraad verzekeren geen lekt.</li>
	<li>Gebruik de dubbele klem zonder het frame tussen de halsslagader en de klep slagader.</li>
	<li>Anastomosis start met 10-0 hechtdraad eenvoudige volledige dikte geïnterpreteerd.</li>
	<li>Plaats de eerste twee verblijf hechtingen ongeveer 120 graden uit elkaar op het schip de omtrek dan tussen plaats 2-3 steken.</li>
	<li>Laat de klem. Als er doen bloed lekt de soortgelijke hechtdraad op de druipende site.</li>
	<li>Kijk voor de veneuze terug stroom van venae comitantes.</li>
	<li>Anastomosis zoals beschreven in stap 4.1 tot 4,7 voor de interne halsslagader en de venae comitantes (Figuur 1 d) uitvoeren.</li>
	<li>Gebruik een spuit breinaalden 18 naar de huid zodat de levensvatbaarheid van de klep door het zien van een druppel bloed prikken.</li>
	<li>Sluit de tracheale venster en flap met de fascia van de spier van de SEAP met 3-0 hechtdraad hechtdraad.</li>
	<li>Exteriorize en suture van een peddel van de huid van de SEAP klep aan de cervicale middellijn huid incisie (figuur 2A).</li>
	<li>Sluit de buikhuid incisie (figuur 2B).</li>
</ol>5. post-operatieve zorg
<ol><li>Het varken terug in de vatbaar positie krijgen.</li>
	<li>Stop de Isofluraan en spenen van het varken van de ventilator.</li>
	<li>Laat het varken te herstellen in de dierlijke kooi en nauw zodat haar vlotte herstel van de procedure te volgen.</li>
	<li>Kijk voor de klep op de site van de wederopbouw na genezing (figuur 2C).</li>
	<li>Kijk op de site van de donor in het dier na genezing (figuur 2D).</li>
	<li>Ringer's lactaat debiet van 150 mL/h start tot volledig herstel en 0.3 mg buprenorfine voor analgesie beheren.</li>
	<li>Na de extubation, het varken nauwlettend volgen totdat het voldoende bewustzijn te handhaven positie en ademhaling heeft herwonnen en is in staat om te drinken spontaan.</li>
	<li>Houd de na chirurgie varkens gescheiden plaats van geen bediende dieren.</li>
	<li>Start intramusculaire amoxicilline-clavulanate (14 mg/kg) voor 1 week.</li>
	<li>Start intramusculaire Meloxicam (0,2 mg/kg) voor 1 week.</li>
</ol>6. euthanasie
<ol><li>Start anesthesie voor het varken door het injecteren van propofol via i.v. (5-10 mL) en het onderhouden met Isofluraan 5%.</li>
	<li>Intubate van het varken zoals beschreven op stap (1.1, 1.2, 1.6-1.10).</li>
	<li>De hartstilstand veroorzaken door intraveneuze injectie van 40 mmol KCl.</li>
</ol>

<ol><li>Chen, C. L., Zenga, J., Roland, L. T., Pipkorn, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Complications+of+double+free+flap+and+free+flap+combined+with+locoregional+flap+in+head+and+neck+reconstruction%3A+A+systematic+review%5BTitle%5D)+AND+%22Head+%26+Neck+journal+of+the+Science+and+Specialties+of+the+Head+and+Neck%22%5BJournal%5D)">Complications of double free flap and free flap combined with locoregional flap in head and neck reconstruction: A systematic review.</a> Head & Neck journal of the Science and Specialties of the Head and Neck. 40 (3), 632-646 (2018).</li>
<li>Smith, R. K., Wykes, J., Martin, D. T., Niles, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Perforator+variability+in+the+anterolateral+thigh+free+flap%3A+a+systematic+review%5BTitle%5D)+AND+%22Surgical+and+Radiologic+Anatomy%22%5BJournal%5D)">Perforator variability in the anterolateral thigh free flap: a systematic review.</a> Surgical and Radiologic Anatomy. 39 (7), 779-789 (2017).</li>
<li>Bauer, F., Koerdt, S., Hölzle, F., Mitchell, D. A., Wolff, K. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Eight+free+flaps+in+24+hours%3A+a+training+concept+for+postgraduate+teaching+of+how+to+raise+microvascular+free+flaps%5BTitle%5D)+AND+%22British+Journal+of+Oral+and+Maxillofacial%22%5BJournal%5D)">Eight free flaps in 24 hours: a training concept for postgraduate teaching of how to raise microvascular free flaps.</a> British Journal of Oral and Maxillofacial. 54 (1), 35-39 (2016).</li>
<li>Schoeff, S., Hernandez, B., Robinson, D. J., Jameson, M. J., Shonka, D. C. Jr <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microvascular+Anastomosis+Simulation+Using+a+Chicken+Thigh+Model%3A+Interval+Versus+Massed+Training%5BTitle%5D)+AND+%22The+Laryngoscope%22%5BJournal%5D)">Microvascular Anastomosis Simulation Using a Chicken Thigh Model: Interval Versus Massed Training.</a> The Laryngoscope. 127 (11), 2490-2494 (2017).</li>
<li>Bodin, F., Diana, M., Koutsomanis, A., Robert, E., Marescaux, J., Bruant-Rodier, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Porcine+model+for+free-flap+breast+reconstruction+training%5BTitle%5D)+AND+%22Plastic+and+Reconstructive+Surgery+Journal%22%5BJournal%5D)">Porcine model for free-flap breast reconstruction training.</a> Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 68 (10), 1402-1409 (2015).</li>
<li>Rodriguez, J. R., Yañez, R., Cifuentes, I., Varas, J., Dagnino, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microsurgery+Workout%3A+A+Novel+Simulation+Training+Curriculum+Based+on+Nonliving+Models%5BTitle%5D)+AND+%22Plastic+and+Reconstructive+Surgery+Journal%22%5BJournal%5D)">Microsurgery Workout: A Novel Simulation Training Curriculum Based on Nonliving Models.</a> Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 138 (4), 739e-747e (2016).</li>
<li>Carey, J. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simulation+of+plastic+surgery+and+microvascular+procedures+using+perfused+fresh+human+cadavers%5BTitle%5D)+AND+%22Plastic+and+Reconstructive+Surgery+journal%22%5BJournal%5D)">Simulation of plastic surgery and microvascular procedures using perfused fresh human cadavers.</a> Plastic and Reconstructive Surgery journal. 67 (2), e42-e48 (2014).</li>
<li>Chan, W., Niranjan, N., Ramakrishnan, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structured+assessment+of+microsurgery+skills+in+the+clinical+setting%5BTitle%5D)+AND+%22Plastic+and+Reconstructive+Surgery+Journal%22%5BJournal%5D)">Structured assessment of microsurgery skills in the clinical setting.</a> Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 63 (8), 1329-1334 (2010).</li>
<li>Matsumura, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+newly+designed+training+tool+for+microvascular+anastomosis+techniques%3A+Microvascular+Practice+Card%5BTitle%5D)+AND+%22Surgical+Neurology+Journal%22%5BJournal%5D)">A newly designed training tool for microvascular anastomosis techniques: Microvascular Practice Card.</a> Surgical Neurology Journal. 71 (5), 616-620 (2010).</li>
<li>Kim, W. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tracheal+reconstruction+with+a+free+vascularized+myofascial+flap%3A+preclinical+investigation+in+a+porcine+model+to+human+clinical+application%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Tracheal reconstruction with a free vascularized myofascial flap: preclinical investigation in a porcine model to human clinical application.</a> Scientific Reports. 7 (1), 10022(2017).</li>
</ol>

De auteurs hebben niets te onthullen.

Significante morbiditeit en defecten kunnen optreden in hoofd en nek maligniteit patiënten tijdens chirurgische beheer. Microvasculaire gratis weefsel overdracht is essentieel voor de wederopbouw in de meeste gevallen geworden. De levensvatbaarheid van de klep is een kritieke kwestie, die van standvastigheid, nauwkeurige afhandeling van de stam, tactiele gevoel, visueel-ruimtelijke vermogen en uitstekende operationele kasstroom uit de chirurg8. Om deze vaardigheden te ontwikkelen, moet een uitgebr...

Wederopbouw na chirurgie voor het hoofd en de nek kwaadaardige ziekten is een ingewikkelde procedure geassocieerd met significante morbiditeit. Microvasculaire gratis-flap reconstructie is goed opgezet als de standaard benadering van wederopbouw voor meer dan 20 jaar1,-2,3. Gratis-flap overdracht speelt een belangrijke rol in de verbetering van het beheer van het hoofd en de nek bij kankerpatiënten en in post-traumatische verwondingen waardoor het verleggen van grenzen van chirurgische excisie van ziekte dan vorige technieken, wat resulteert in grotere patiënt kwaliteit van leven en langer overleven tarieven1,2,3. De verschillende kleppen voor wederopbouw opnemen rotatie, enten en gratis kleppen.
De rol van vrije kleppen in het hoofd en de nek wederopbouw is uitgebreid. Het is de moeilijkste klep te werken, bekwaam en delicate behandeling vereisen. Klep mislukking is een catastrofale gebeurtenis, met significante morbiditeit4,5. Dus is aanzienlijke trainingstijd nodig voor het ontwikkelen van de precisie die nodig zijn voor de succesvolle chirurgische resultaten3,4,5,6,7,8, 9. De steile het leren kromme die is gekoppeld aan een dergelijke operatie kan beïnvloeden het resultaat voor patiënten en behandeling beheer3,4,5,6,7, van invloed zijn op 8,9. Om de trainingstijd en het leren kromme voor nieuwe chirurgen, een model van de opleiding is nodig dat de Nabootsers van de menselijke biologie en biedt soortgelijk chirurgische veld voorwaarden8.
Het doel van deze studie is om te laten zien van de zichtbaarheid van Porcine als een goede opleiding module voor het hoofd en de nek microvasculaire wederopbouw die lijkt op de menselijke geval met verbeterde vaardigheden in de actieve mode.
Deze studie onderzocht het gebruik van een varkens model voor opleiding nieuwe collega's in het hoofd en de nek microvasculaire wederopbouw voor gratis-flap overdracht te bieden een kosteneffectieve en minder stressvol aanvulling op betrouwbare wijze aan de opleiding klinische veld met soortgelijke functies voor gratis-flap procedures. Varkens hebben gebruikt voor vele studies en als het onderwijzen van modellen voor verschillende chirurgische reconstructies, bijvoorbeeld borstreconstructie; 5 echter varkens zijn nooit gebruikt voor hoofd en nek wederopbouw behalve in onze studie voor tracheale wederopbouw als gevolg van de trachea stenose10.
Het idee werd gestart na Frederic Bodin7, die beschrijven de soortgelijke klep voor borstreconstructie. Het belangrijkste voordeel voor de studie over de andere module van microvasculaire opleiding is de actieve livening module met een echte direct resultaat van de procedure.

<table><tbody><tr><td>Pigs XP Bio, Seoul, South Korea</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Surgical Hair Removal shaver</td><td>3M</td><td></td><td></td></tr><tr><td>22 gage catheter</td><td>B.BRAUN</td><td></td><td></td></tr><tr><td>syring with needle size 18</td><td>Jung Rim Medical</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Intramuscular alfaxan</td><td>Careside</td><td></td><td>10ml/VAL</td></tr><tr><td>Intramuscularxylazine</td><td>Bayer</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Intramuscular azaperone</td><td>Sigma-aldrich</td><td></td><td>34223</td></tr><tr><td>Intramuscular atropine</td><td>Daewon</td><td></td><td>0.5mg/A</td></tr><tr><td>Intramuscular cefazolin</td><td>Yuhan</td><td></td><td>1g</td></tr><tr><td>intravenous Ketorolac</td><td>Hana Pharm</td><td></td><td>30mg</td></tr><tr><td>Swine ansthesia mask</td><td>DRE</td><td></td><td>1392</td></tr><tr><td>endotracheal cuff tube 6.5 mm</td><td>SMITH medical</td><td></td><td>100/150/065</td></tr><tr><td>ansthesia Machine</td><td>Dr&auml;ger</td><td></td><td>PRIMUS IE</td></tr><tr><td>2% lidocaine topical solution</td><td>Taejoon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>vet ointment</td><td>Pfizer</td><td></td><td>terramycin <img alt="Misc" src="/files/ftp_upload/58104/58104misc1.jpg"/></td></tr><tr><td>eye cover patch</td><td>Innomed</td><td></td><td>S-universal010S</td></tr><tr><td>betadine solution 1%.</td><td>Korea Pharma</td><td></td><td></td></tr><tr><td>gauze 4*4</td><td>First Medical</td><td></td><td>22*30CM 320S</td></tr><tr><td>blade No. 23</td><td>Paragon</td><td></td><td>23</td></tr><tr><td>lahey retractor</td><td>V.Mueller</td><td></td><td>SU3960</td></tr><tr><td>kelly tissue scissors</td><td>SOLCO</td><td></td><td>05-1990</td></tr><tr><td>blade No. 11</td><td>Paragon</td><td></td><td>11</td></tr><tr><td>surgical marking pen</td><td>Aspen Surgical</td><td></td><td>Regular #2750</td></tr><tr><td>allis</td><td>V.Mueller</td><td></td><td>SU4055</td></tr><tr><td>tie suture</td><td>Covidein</td><td></td><td>non-needle</td></tr><tr><td>3.5&times; surgical loupe</td><td>zeiss</td><td></td><td>eyemag smart</td></tr><tr><td>double clamp without frame</td><td>V.Mueller</td><td></td><td>CH7155</td></tr><tr><td>microscissors</td><td>AESCULAP</td><td></td><td>FD038R</td></tr><tr><td>Ringer's lactate</td><td>Daehan</td><td></td><td>500ml/1bag</td></tr><tr><td>amoxicillin&ndash;clavulanate</td><td>Ilsung</td><td></td><td>0.6g/V</td></tr><tr><td>Meloxicam</td><td>Samil</td><td></td><td>7.5mg</td></tr><tr><td>propofol</td><td>Dong Kook</td><td></td><td>120mg/V</td></tr><tr><td>intravenous KCl solution</td><td>Daehan</td><td></td><td>20ml/50P</td></tr><tr><td>mosquito curved</td><td>SOLCO</td><td></td><td>013-0111</td></tr><tr><td>mosquito straight</td><td>SOLCO</td><td></td><td>05-1050</td></tr><tr><td>ethilone 10-0 suture</td><td>ethicone</td><td></td><td>10/0W1756</td></tr><tr><td>Vicryl 3-0.</td><td>ethicone</td><td></td><td>3/0W9890</td></tr><tr><td>buprenorphine</td><td>Hanlim</td><td></td><td>0.3mg</td></tr></tbody></table>

varkens als een module van de opleiding voor hoofd en nek microvasculaire wederopbouw

Porcine As a Training Module for Head and Neck Microvascular Reconstruction

Levende modellen die vergelijkbaar zijn met chirurgische omstandigheden van de mens zijn nodig voor opleiding gratis-flap oogsten en anastomose. Dierlijke modellen voor opleidingsdoeleinden zijn jarenlang in veel chirurgische velden beschikbaar geweest. We gebruikten het vrouwtje (omdat ze gemakkelijk te hanteren voor de procedure) Yorkshire varkens voor de wederopbouw van hoofd en nek door de diep inferieur epigastrische artery perforator of de superieure epigastrische artery perforator flap te oogsten. De site van de wapendrager (nek huid defect of tracheale muur defect) werd bereid via de dissectie van de gemeenschappelijke halsslagader en de interne halsslagader, in welke 3.5 × loupe vergroting werd gebruikt voor wapendrager zoals we op gevallen van de mens in het echte leven gebruiken. Deze procedure toont een nieuwe trainingsmethode met behulp van een betrouwbare leren model en biedt een gedetailleerde anatomie in een levende scenario. We gericht op het moment van ischemie, oogsten, vaartuig anastomose, en het ontwerpen van de flap aan de defect-site. Dit model verbetert weefsel behandeling en met het gebruik van de juiste instrumenten kan vele malen worden herhaald zodat de chirurg volledig vertrouwen is voordat de operatie op de mens.

Wij de procedure uitgevoerd op zes varkens: cervicale huid defect wederopbouw op twee varkens, tracheale wederopbouw op twee varkens en gratis klep testen vasculaire anastomosis apparaat in twee varkens. De varkens werden gecontroleerd voor 3 maanden en er was geen klinische teken van neurologische tekort.
De gemiddelde tijd voor ischemie was 50 min (bereik, 35-80 min); de tijd gedaald als de procedure werd herhaald. De gemiddel...

Hier presenteren we een protocol voor het gebruik van de varken superieure epigastrische artery perforator flap als een lesmodule voor hoofd en nek microvasculaire wederopbouw.

Varkens als een Module van de opleiding voor hoofd en nek microvasculaire wederopbouw

Live models that resemble surgical conditions of humans are needed for training free-flap harvesting and anastomosis. Animal models for training purposes ...

Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van belangrijke vragen over het opzetten van een life training module voor microvasculaire hoofd-en nekreconstructie. Het belangrijkste voordeel van deze techniek is dat het vergemakkelijkt een de froment van microvasculaire reconstructieve chirurgie vaardigheden voor beginnende chirurgen. Begin met het gebruik van een laryngoscoop om de stembanden bloot te stellen door de mond van een 25 tot 30 gram vrouwelijke Yorkshire varken en spuiten de koorden met twee pufjes van 2%lidocaïne actuele oplossing om intubatie-geïnduceerde laryngospasme te voorkomen.Intuberen met een buis van 6,5 millimeter. En gebruik een spuit om de koker op te blazen met drie tot vijf milliliter lucht. Nadat u ervoor hebt gezorgd dat de tracheale buis zich in de juiste positie bevindt, past u zalf toe op de ogen van het dier.En bescherm de ogen met een omslaglap. Gebruik vervolgens een scruboplossing op basis van 1% jodium om de nek en buikwand te desinfecteren. En gebruik een nummer 23 mes om een verticale middellijn voorste nek incisie te maken aan het borstbeen.Ontleed de bandspieren. En gebruik Kelly weefsel schaar en een Lahey oprolmechanisme terug te trekken van de spieren lateraal om de luchtpijp bloot van de eerste ring aan de thoracale inlaat. Stel de gemeenschappelijke halsslagader in de interne halsader voor de anastomose bloot en gebruik een nummer 11-blad om een venster van één centimeter te creëren in het tweede of derde kraakbeen.Zoek vervolgens naar de endotracheale buis door het tracheale defect en bevestig de aanwezigheid van continue beerting door de buis. Voor het uitvoeren van een superieure epigastrische slagader perforator flap oogst, gebruik maken van een chirurgische markering pen om een flap op de bovenbuik te ontwerpen en gebruik maken van een nummer 23 scalpel om een vier bij drie centimeter elliptische huid incisie te creëren door de voorste schede van de buikwand aan de mediale kant van de flap. Terwijl het houden van de fascia door de Allis, verheffen de flap van de rectus abdominis spierschede om de perforators naar de huid flap te lokaliseren.Stomp ontleed het blootgestelde spierweefsel. En volg de perforators naar de superieure epigastrische vaten. Gebruik een nummer 23 scalpel om een laterale huid incisie in de flap te maken.En klem de superieure epigastrische vaten en venae comitantes superieur met een hemostaat. Gebruik vervolgens de Kelly weefselschaar om boven de hemostaat te snijden en het vat onder de hemostaat te kruisen met een drie-oh hechting om verwijdering van de hemostaat mogelijk te maken. Voor anastomose van het vat gebruik maken van een chirurgische loep om de halsslagader klem met twee hemmostats een tot twee centimeter uit elkaar.Gebruik microscissors te snijden tussen de hemmostats. En bind het superieure deel van het vat met een dubbele hechting om lekkage te voorkomen. Met behulp van de dubbele klem zonder het frame tussen de halsslagader en flap slagaders, gebruik maken van een 10-oh eenvoudige volledige dikte geïnterpreteerd hechting om de eerste twee verblijf hechtingen ongeveer 120 graden uit elkaar rond de omtrek van het vat en twee tot drie hechtingen tussen het verblijf hechtingen.Laat de klem los en controleer op lekkage. Als er geen terugstroom van de venijn comitantes, maak een andere anastomose voor de interne halsader en de venae comitantes zoals net aangetoond. Met behulp van een spuit uitgerust met een 18-meter naald, prik de huid om de levensvatbaarheid van de flap te bevestigen.Als er een druppel bloed verschijnt, gebruik dan een drie-oh hechting om het tracheale venster te sluiten met de spierfasator van de superieure epigastrische slagader perforator flap. Vervolgens exterioriseren en hechten een huidpaneel van de flap aan de cervicale middellijn huid incisie en sluit de buikhuid incisie. Breng het varken aan het einde van de procedure terug naar de gevoelige positie en laat het dier herstellen zonder andere dieren.Lever Ringer lactaat op een 150 milliliter per uur tarief totdat het dier volledig is hersteld, en het toedienen van 0,3 milligram buprenorfine voor analgesie. Wanneer het dier ligfiets begint intramusculaire amoxicilline clavulanate en meloxicam voor een week, het controleren van de donor site en de klep op de reconstructie site dagelijks voor genezing progressie. In deze representatieve studies was de gemiddelde ischemietijd 50 minuten met de proceduretijd die vermindert aangezien het model werd herhaald.De gemiddelde oogsttijd van de zes varkens was 55 minuten en er werd geen morbiditeit waargenomen op de donorlocatie in deze module. De gemiddelde pedicle grootte van de flappen was 10 centimeter, vergelijkbaar met die waargenomen in het menselijk hoofd en de nek. De gemiddelde slagader diameter was 4,4 millimeter en de gemiddelde ijdele diameter was 5,75 millimeter, beide groter dan het menselijk gemiddelde van twee millimeter voor beide schepen, terwijl nog steeds in staat om menselijke anatomie te simuleren.De huid peddel grootte varieerde van 25 tot 40 centimeter in het kwadraat zonder een significant effect op de flap mislukking. Tijdens een poging tot deze procedure is het belangrijk om te onthouden om de perforators zorgvuldig te benaderen en om een goede veneuze terugstroom te garanderen. Na de ontwikkeling van deze techniek maakte de weg vrij voor onderzoekers op het gebied van trachea reconstructie om het gebruik van fascia voor luchtpijp defecten te verkennen, en voor het bepalen van een geschikte veilige klep grootte zonder instorten van de luchtwegen.Vergeet niet dat het uitvoeren van een luchtpijp reconstructie kan zeer gevaarlijk zijn en dat voorzorgsmaatregelen, zoals ervoor te zorgen dat de luchtwegen is octrooi en intact moet altijd worden genomen tijdens het uitvoeren van deze procedure.

porcine-as-training-module-for-head-neck-microvascular

Research

JoVE Journal

Medicine

Geneeskunde

Hier beschrijven we hoe je een kleine microchirurgische praktijkopstelling kunt inrichten en een eenvoudige en goedkope methode voor de training van microchirurgie met niet-levende diermodellen.

Stap voor Stap: Microchirurgische trainingsmethode het combineren van twee niet-levende dierlijke modellen

Momenteel is de enige vorm van gevacuoliseerd samengestelde allotransplantation afhankelijk van lange-termijn-immuunsuppressie, moeilijk te ondersteunen voor niet-leven-kritieke indicaties. We presenteren een nieuwe varkens tibiale VCA model dat kan worden gebruikt voor het bestuderen van bot VCA en voorbeelden van het gebruik van chirurgische angiogenese om bot levensvatbaarheid zonder de behoefte van langdurig immuun-modulatie.

Chirurgische angiogenese in varkens tibiale Allotransplantation: een nieuwe groot dier bot gevacuoliseerd composiet Allotransplantation Model

Deze studie is gericht op het ontwikkelen van een standaardprotocol van intra-operatieve neuraal controle van schildklier chirurgie in een varkens model. Hier presenteren we een protocol om aan te tonen van de narcose, om te vergelijken verschillende soorten elektroden, en te onderzoeken het elektrofysiologische kenmerken van de normale en gewonden terugkerende laryngeal zenuwen.

Intra-operatieve neuraal controle van schildklier chirurgie in een varkens Model

Het huidige protocol beschrijft het porcine fascio-cutane flap model en het potentiële gebruik ervan in gevasculariseerd samengesteld weefselonderzoek.

Een betrouwbaar porcine fascio-cutaan flapmodel voor gevasculariseerde composiet allografts bio-engineering studies

In dit protocol werd nieuwe varkensaderbypass-enting uitgevoerd via een kleine incisie in de linkerborstwand zonder cardiopulmonale bypass. Er werd een postoperatief pathologisch onderzoek gedaan, dat intimale verdikking aantoonde.

Vaststelling en evaluatie van een model voor varkensaderziekte

Dit protocol beschrijft het uitvoeren van een craniectomie met behulp van een pneumatische boor met hoge snelheid op een 3 maanden oud Deens Landras-varken. De toegang wordt gemaakt door het voorhoofdsbeen en onthult de ventrale dura mater en de onderliggende hersenhelften. Deze procedure geeft toegang tot een groot deel van de varkenshersenen.

Toegang tot het varkensbrein via high-speed pneumatische boorcraniectomie

Deze studie presenteert een varkensmodel voor het evalueren van transplantaten met een kleine diameter in dijbeenslagaders. Het model bootst de menselijke vasculaire dynamiek na en beoordeelt uitgebreid de doorgankelijkheid van het transplantaat, de hemodynamica en de vasculaire remodellering. Het biedt een waardevol platform voor het testen van vasculaire transplantaten en het monitoren ervan met Doppler-echografie en angiografie.

Implantatie van een femurvasculair transplantaat in een varkensmodel om vasculaire transplantaten met een kleine diameter te testen

We presenteren een reproduceerbaar muismodel van heterotopische vascularisatie allotransplantatie van achterpoot tot hals. Dit supermicrochirurgisch protocol, waarbij 0,3-0,5 mm vatenanastomosen worden gebruikt, integreert nylonfilamentgeleiding en veneuze manchetten. Het biedt een betrouwbaar platform voor translationele studies naar tolerantie, ischemie-reperfusieschade en immunologische mechanismen bij vasculariseerde samengestelde allotransplantatie.

Heterotopische achterpoot-naar-nek transplantatie bij de muis: een supermicrochirurgisch model van vasculariseerde composietallotransplantatie

Er bestaan verschillende methoden voor het introduceren van ototoxische middelen in de slakken van diermodellen. Hier wordt een chirurgisch protocol gepresenteerd voor het toedienen van ototoxische middelen in de ronde venster nis. De procedure is betrouwbaar, creëert gerichte intra-cochleaire laesies en voorkomt mechanische schade aan de microarchitectuur. Onderzoek naar zelfherstel/regeneratie van de cochlea is mogelijk.

De muis Round-window aanpak voor Ototoxische Agent Levering: een snelle en betrouwbare techniek voor het induceren van Cochlear celdegeneratie

Het doel van dit artikel is voor het beschrijven van de methodologie van uitsluitend Endoscopische dode foetussen middenoor dissectie. Bovendien streven wij naar een uitvoerige gids voor Endoscopische middenoor anatomie.

Middenoor anatomie door Transcanal Endoscopische oor chirurgie te ontdekken: een handleiding dissectie

Leer microvasculaire reconstructie van hoofd en nek met een varkensmodel voor chirurgische training. Deze methode ontwikkelt essentiële vaardigheden bij beginnende chirurgen door realistische anatomische oefeningen.

Varkens als een Module van de opleiding voor hoofd en nek microvasculaire wederopbouw

Meer video's verkennen