26 november 2018
Deze methode kan decellularization voor een complexe solide orgel met behulp van een eenvoudig protocol gebaseerd op osmotische schok en perfusie van Ionische detergent met minimale orgel matrix verstoring. Het bestaat uit een roman decellularization-techniek voor menselijke harten binnen een hydrofoor etui met real-time bewaking van flow dynamics en cellulaire puin uitstroom.
Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van belangrijke vragen over het genereren van gevasculariseerde steigers, die echt de heilige graal van het weefsel engineering veld. Het belangrijkste voordeel van deze techniek is dat een onder druk gestelde zak in een omgekeerde oriëntatie de decellularisatie van niet-transplanteerbare menselijke organen verbetert en ons dat op een steriele manier over een geschikt tijdsbestek laat doen. Om het hart voor te bereiden op decellularisatie, voert u eerst een interne inspectie uit op mogelijke defecten.
Als er een septumdefect aanwezig is, corrigeer dan het defect met de juiste hechtingen. Vervolgens ligate de superieure en inferieure vena cavas met 2-0 zijde hechting. Hecht de rechter atriumwand met 5-0 PROLENE en ontleed de aorta uit de buurt van de belangrijkste longslagader voor de volgende cannulation.
Plaats de connectoren, afhankelijk van de diameter van het vat, in de aorta en de longslagader en zet de connectoren vast met 2-0 zijden hechtingen. Met behulp van een van de longaderopeningen, steek een buizenlijn door het linkeratrium naar de linkerventrikel, en sluit een infuuslijn aan op de connector in de aorta en een uitstroomlijn naar de connector in de longslagader. Plaats het voorbereide hart in een polyester zakje in de omgekeerde oriëntatie en plaats het zakje in een perfusiecontainer.
Sluit elk van de lijnen aan op de respectievelijke poorten in de rubberen stop, afhankelijk van de diameter van de container, en steek de stop in het deksel van de perfusiecontainer om het polyester zakje te verzegelen. Vervolgens, doorsnede PBS via de infusiepoort van de rubberstop om de uitstroom van de longslagader en van de lijn ingevoegd in de linker ventrikel te controleren, met behulp van deze stroom om het orgaan van eventuele resterende sporen van bloed in de vasculatuur schoon te maken. Wanneer het hart klaar is, plaats de geassembleerde bioreactor in een rechte oriëntatie, en sluit de infusielijn, druk-hoofd lijn, longslagader-uitstroom lijn, en bioreactor drainerende lijn naar de rubberen dop oppervlak poorten op de top van de perfusie bioreactor.
Dan, decellulariseren het hart voor vier uur met hypertonische oplossing, twee uur met hypotonische oplossing, 120 uur met natrium dodecylsulfaat, of SDS, en een laatste wasbeurt met 120 liter PBS, allemaal onder constante 120 millimeter kwikdruk zoals gemeten bij de aortawortel. Voeg tijdens de laatste 10 liter van de PBS-was 500 milliliter steriele 2,1%perazijnzuuroplossing toe die met 10 normale natriumhydroxide aan de perfusieoplossing wordt geneutraliseerd om het steiger te steriliseren. Typisch, de stroomsnelheid in de aorta tijdens het decellularisatieproces geleidelijk afneemt als de perfusie oplossing verandert van hypertoniek naar hypotonische.
Daarentegen neemt de stroomsnelheid toe wanneer de perfusieoplossing wordt gewijzigd van een hypotonische oplossing naar SDS, waarna de infusiestroom schommelingen aantoont. De uitstroom van de longslagader toont een vergelijkbare trend met de hyper- en hypotonische oplossingen. De uitstroom tijdens de SDS-perfusie vertoont echter een algehele daling.
De coronaire perfusie efficiëntie neemt ook af na verloop van tijd als de verschillende reagentia worden geperfundeerd door de vasculatuur. Als de uitstroom perfusate uit de longslagader en linker ventrikel tegelijkertijd worden verzameld, kan hun puin inhoud worden vergeleken door spectroscopie. De troebelheid van het effluent van beide vaten neemt in de loop van de tijd af tijdens de perfusies, hoewel de troebelheid van de longslagader een abruptere kleurverandering vertoont in vergelijking met die van de linkerventrikel tijdens de eerste perfusieperiode.
Evaluatie van de correlatie tussen de uitstroom troebelheid en het celpuin door een bicinchoninic zuur eiwittest uit zes gedecellulariseerde menselijke harten onthult een lineaire correlatie tussen de eiwitconcentratie en de effluent troebelheid. Tijdens het proberen van deze procedure, is het belangrijk om de stroomsnelheid te controleren en om het perfusate periodiek te verzamelen om daadwerkelijk het perfusieproces te controleren. Na deze procedure kunnen andere technieken zoals mechanische evaluatie of steriliteitstests worden gebruikt om de getrouwheid van het schavot en het potentiële gebruik ervan voor recellularisatie te evalueren om een functioneel hartweefsel te genereren.
Na de ontwikkeling maakte deze techniek de weg vrij voor onderzoekers in de regeneratieve geneeskunde en weefseltechniek om de generatie van hele gevasculariseerde organen te verkennen en het vaste orgaantransplantatieveld letterlijk te veranderen. Vergeet niet dat het werken met menselijke organen en weefsels en chemicaliën zoals SDS zeer gevaarlijk kan zijn, en draag altijd passende persoonlijke beschermingsmiddelen bij het uitvoeren van deze procedure.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Deze methode maakt de decellularisatie van complexe solide organen mogelijk, specifiek menselijke harten, met behulp van een eenvoudig protocol dat verstoring van de organmatrix minimaliseert. De techniek maakt gebruik van een onder druk gezette pouch voor real-time monitoring van de stroomdynamiek en de uitstroom van cellulair debris.
Decellularisatie van complete menselijke harten met behulp van een onder druk gezette zak in omgekeerde oriëntatie maakt de generatie van gevasculariseerde scaffolds voor cardiac tissue engineering mogelijk, wat voldoet aan de kritieke behoefte aan transplanteerbare organen. Deze methode ondersteunt voorspellende risicobeperking door de architectuur van de extracellulaire matrix te behouden en realtime monitoring van de perfusiedynamiek mogelijk te maken, wat inzicht geeft in de kwaliteit van de scaffold en het potentieel voor recellularisatie. Hiermee wordt de techniek gepositioneerd als een fundamentele capaciteit voor het bevorderen van de ontwikkeling van bio-artificiële harten en het verminderen van de afhankelijkheid van donororganen.
De methode integreert in het ontdekkingscontinuüm van targetvalidatie via lead-identificatie tot preklinische evaluatie door het bieden van een platform met een menselijk afgeleide gevasculariseerde scaffold.