20 oktober 2018
Hier presenteren we een protocol dat beschrijft de fabricage van rekbare, dual channel, orgel chip microfluidic cel cultuur apparaten voor Recapitulerend orgel-niveau functionaliteit in vitro.
Het algemene doel van dit protocol is om de fabricage van orgaan gechipte microfluïde apparaten voor het samenvatten van orgaanniveau functionaliteit in vitro te beschrijven. Dit protocol beschrijft een manier om orgaan gechipte apparaten te fabriceren recapituleren orgaanniveau functie in vitro. De func, de apparaten, zoals deze, zijn eigenlijk vervaardigd met behulp van 3D-geprinte mallen uit een zacht silicium rubber.
Dit rubber stelt ons in staat om deze apparaten daadwerkelijk te doordringen met mechanische signalen die ons in staat stellen om het weefsel te strekken als je zou krijgen in laten we zeggen een long of een darm. We voegen ook overvloed toe, die de bloedstroom en de stroom van andere lichaamsvloeistoffen in orgaansystemen nabootst. Deze apparaten stellen ons in staat om de complexe fysiologie die in vivo gebeurt te recreëren en te proberen te begrijpen.
Maar doe dit in vitro. Dus in wezen experimenteren we op mensen, maar niet op mensen. Het is dus een zeer effectieve manier om de kloof tussen dierstudies te overbruggen, die altijd worden gedaan in de preklinische ontwikkeling van therapieën, en dan vóór menselijke studies, die klinische proeven worden genoemd, waar een veel groter risico is voor de mens, voor de menselijke veiligheid.
Deze apparaten helpen de kloof te overbruggen en stellen ons in staat om nieuwe therapieën te ontwikkelen en de basisbiologie te begrijpen die daadwerkelijk gebeurt in complexe systemen zoals de mens. Top kanaal voorbereiding. Veeg de glanzende kant van elk polyurethaanstuk af met ethanol en clean room doekjes.
Plaats glanzende kant van de polyurethaan over de open kant van de mal op zijn plaats schimmel. Plaats de mal en polyurethaan assemblages in de mal, getextureerde kant tegen het einde van de mal. Blijf dit doen totdat alle mallen zijn geplaatst in de mal.
Draai de mal aan door de handgreep met een moersleutel te draaien, totdat de afstand 25 millimeter breed is. Maak een boot van aluminiumfolie rond de mal op zijn plaats jig. Giet PDMS in elke mal is goed tot vol.
Zodra de hele mal is gevuld, plaats de mal in het vacuüm desiccator. Na een uur, verwijderen uit desiccator. En plaats in 60 graden Celsius oven voor ten minste vier uur.
Demonteren van de mal met behulp van een moersleutel. Verwijder de polyurethaanstrips uit elke mal. En weggooien.
Zorgvuldig demold PDMS onderdelen uit hun mallen en leg ze functie kant omhoog. Line-up van het blad van de tegel schraper aan het einde tab inkeping. En snijd elk uiteinde weg om de bovenste componenten te cingulate.
Bewaar afgewerkte onderdelen in vierkante petrischaaltjes. Bewaar onderdelen in positieve drukkasten bij kamertemperatuur. Onderste kanaal voorbereiding.
Giet 10,5 gram PDMS in de mal. Het luchtpistool kan zeer voorzichtig worden gebruikt om de PDMS over de ruimte te bewegen. Plaats mallen in vacuüm desiccator.
Na een uur, verplaats de mallen naar een niveau 60 graden Celsius oven. Plaats schimmel op tafel in een laminaire stroomkap. Maak de PDMS los van de rand van de mal.
Grip een hoek en voorzichtig schil terug de PDMS van het oppervlak van de mal. Wanneer volledig verwijderd, omkeren en lag op het werkoppervlak, zodat kanaal functies worden face-up. Snijd langs buitenranden met tegelsnijder.
Met platte peddel tangen, lay-parts functie kant op tape om vuil te verwijderen. Verwijder een deel uit de verpakkingstape. Sleep het losse uiteinde van het onderdeel over de dia.
Het losse uiteinde zal laminaat met het glas. Cover functies met Scotch tape. Bewaar onderdelen in positieve drukkasten bij kamertemperatuur.
PDMS membraanvoorbereiding. Controleer of de wafers vrij zijn van PDMS op de achterkant. Plaats elke membraanwafer in de aangewezen sleuven.
Gebruik de één mL-spuit om 09 mL PDMS op het midden van elke membraanwaferpostarray te plaatsen. Laat de PDMS minimaal vijf minuten zitten. Laat PDMS zich verspreiden over de post van het membraanwafer.
Ga niet door naar de volgende stap totdat ten minste 75% van de postarray is bedekt met PDMS. Plasma behandelt de polycarbonaatstrip met behulp van de in het protocol beschreven voorwaarden. Verwijder polycarbonaat plaat uit de plasmamachine en gebruik schaar om de polycarbonaat platen te snijden in 45 millimeter bij 45 millimeter vierkanten.
Leg de plasma behandelde kant van de polycarbonaatvierkanten op de PDMS, gecentreerd op het membraanwafer. Plaats PDMS spacer op het midden van het polycarbonaatvierkant. Plaats dan precut getextureerde polycarbonaat.
Insert trays, zodat lade drie is in de rug, lade twee is in het midden, en lade een is in de voorkant. Lade een heeft een inkeping voor uitlijning. Open de uitgangsdrukklep en open heel langzaam de inputdrukklep.
Dit is zodat de vier kilogram kracht geleidelijk wordt toegepast op elk membraan wafer, in tegenstelling tot direct die de wafers kan breken. Draai de AMF-schakelaar om de uithardingscyclus te starten. Sluit vervolgens de inputdrukklep en open de uitgangsdrukkleppen om de druk van de luchtcilinders los te laten.
Verwijder de trays en breng ze naar de laminaire stroomkap. Pel voorzichtig het getextureerde polycarbonaat af. Verwijder de PDMS-afstandsruimte voorzichtig.
Inspecteer het PDMS-membraan op gebieden met door gaten. Gebruik een markering om de omtrek van het doorspoelgebied te traceren. Merk ook eventuele gaten of defecten op de membranen.
Dit is een voorbeeld van een ongemarkeerd en gemarkeerd membraan. Met behulp van wafer handling pincet, los wafers van de lade. Verwijder elk membraan uit de wafer en plaats op petrischaal.
Het PDMS membraan wordt vanaf de wafer gedemold en zal worden gebonden aan de polycarbonaat backing. Bewaar onderdelen in positieve drukkasten bij kamertemperatuur. Topassemblage en voorbereiding.
Met behulp van mat afgewerkte Scotch tape, reinig de PDMS membranen evenals de binnenkant van de petrischaal om puin te verwijderen. Tape grondig de functie kant van elke hoge kanaal top om puin te verwijderen. Plaats topjes in petrischaaltje met PDMS membraan.
Houd er rekening mee dat sommige membranen een of twee bovenste delen kunnen nemen. De belangrijkste kanalen van elk topdeel moeten binnen het gemarkeerde gebied binnen het membraan passen. Laad de petrischaaltjes in het plasma.
Plasma behandelen membraan en top volgens het geschreven protocol. Zodra de hechtingscyclus is voltooid, verwijder de afwas en leg de geactiveerde bovenste delen op het membraan. Plaats in 60 graden Celsius oven voor ten minste twee uur.
Met behulp van een scalpel, traceer rond de omtrek van de gebonden top om het te scheiden van de polycarbonaat drager. Zodra het onderdeel is getraceerd, schil de top van het polycarbonaat. Het PDMS-membraan dat aan de bovenkant is gebonden, moet ook van de drager afpellen.
Verwijder met behulp van een pincet het membraan uit de poorten die toegang hebben tot het onderste kanaal. Laat geen delen van het membraan achter die de toegangspoort bedekken. Verwijder bovendien vuil of stof met een pincet.
Chipassemblage. Functie side up, plasma te behandelen top assemblages met bodems. Onder een omgekeerde microscoop, lijn de bovenste montage met de onderste helft.
Plaats in 60 graden Celsius oven voor ten minste twee uur. Resultaten. Het hier gepresenteerde protocol beschrijft de schaalbare fabricage van PDMS-orgaanchips. Deze apparaten maken de cultuur van twee verschillende overvloedige weefseltypes op een elastisch poreus membraan mogelijk.
De PDMS kanalen worden gegoten met behulp van 3D-geprinte mallen, die prototyping van nieuwe ontwerpen versnelt. Top kanalen zijn gegoten in mallen onder compressie tegen een compatibele polyurethaan pakking om componenten te produceren met gegoten poorten. Terwijl onderste kanaal componenten worden gegoten in trays en behandeld op microscoop dia backing.
Deze fabricagebenadering combineert multischaalpatronen van de onderdelen in één stap, wat tijd bespaart, reproduceerbaarheid en traceerbaarheid verbetert en vuil dat wordt gegenereerd door poortponzen en meerdere snijstappen vermindert. De poreuze membranen zijn van cruciaal belang voor de functie van de orgelchip, en de fabricagebenadering op basis van het gieten tegen patroon siliciumwafers resulteert in membranen van consistente dikte en oppervlakteafwerking. Handling via polycarbonaat dragers zorgt voor een grotere batch productie en opslag.
De geassembleerde orgelchip bestaat uit twee overegelzenders in een optisch transparante verpakking. In het overlappende gebied, een poreus PDMS membraan maakt weefsel-weefsel interactie van metabolieten, eiwitten, therapeutica, pathogenen, en cellen te recapituleren orgaan chip functie, terwijl twee parallelle kanalen aan weerszijden worden gebruikt om mechanische stam, met behulp van cyclische vacuüm actuatie. De porositeit van het PDMS membraan bio-medisch ondersteunt de flux van metabolieten, groeifactoren, en zelfs cellen tussen de vasculatuur en orgaan parenchyma.
De schijnbare doorlaatbaarheid van het membraan werd bepaald met behulp van de di-concentratie in de uitlaatkanalen met en zonder Caco-2 darmcellen. De darmchipcellagen vormen een aanzienlijk verhoogde barrière voor doorlaatbaarheid. De orgelchip kan worden bediend met behulp van de parallelle vacuümkanalen om kwantitatief en reproduceerbaar cyclische belasting van stammen toe te passen op het membraan, en dus de gekweekte weefsels.
Deze cyclische stam in combinatie met media-overfusie ondersteunt cellulaire differentiatie om in vivo orgaanfysiologie beter na te bootsen, zoals de vorming van villi in de darmchip. Met behulp van het protocol hier beschreven, moet je nu in staat zijn om een rekbare PDMS orgel chip fabriceren.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit protocol beschrijft de fabricage van rekbare, tweekanalige organ-on-a-chip microfluïdische celkweekapparaten. Deze apparaten zijn ontworpen om functionaliteit op organniveau in vitro te reproduceren door fysiologische omstandigheden na te bootsen.
De Human Organ-on-a-Chip-technologie pakt een kritiek knelpunt in de geneesmiddelenontwikkeling aan door mens-relevante in vitro-modellen te bieden die klinische resultaten beter voorspellen dan dierstudies. Dit schaalbare fabricageprotocol maakt de reproduceerbare productie mogelijk van rekbare, duaal-kanaal microfluïdische apparaten voor het mechanistische risico-onderzoek van therapeutische kandidaten. Door fysiologie en mechanische prikkels op organniveau na te bootsen, ondersteunt de technologie de validatie van targets en het voorspellende vertrouwen in vroege discovery-pipelines.
De fabricagemethode integreert in vroege ontdekkingsworkflows door snelle prototyping van orgaanspecifieke chips mogelijk te maken voor hypothesetoetsing en evaluatie van lead-verbindingen.