12 februari 2019
Hier presenteren we een protocol voor de bereiding van menselijke precisie-cut-Long agarose gevulde segmenten van patiënten weefsel gereseceerd die geschikt zijn voor het genereren van 3D Long weefselcultures naar model menselijke longziekten in de biologische en biomedische studies.
Deze methode maakt onderzoek van levend menselijk weefsel in zijn natuurlijke 3D-structuur en samenstelling voor de vertaling van belangrijke laboratoriumbevindingen naar potentiële therapieën mogelijk. Deze techniek maakt het specifiek mogelijk de generatie van weefselculturen uit chirurgisch gereseceerd of geëxplanteerd menselijk longweefsel voor de visualisatie van individuele overleden patiënt longweefsel monsters. Ziektevrij longweefsel kan worden gebruikt als 3D-weefselculturen om longziekten ex vivo te modelleren, waardoor vroege pathomechanismen in een hoge spatiotemporale resolutie kunnen worden geanalyseerd.
Begin met het plaatsen van de resected long monster in 15 milliliter van teeltmedium in een steriele 15 centimeter cultuur schotel en steriele metalen lade bedekt met tissue papier, en vul een 30 milliliter spuit met 42 graden Celsius laag smeltpunt agarose. Verwijder de obturator van een perifere veneuze katheter en bevestig de katheter aan de 30 milliliter spuit. Identificeer een bronchus met een diameter van 0,5 tot 3 millimeter in het ventilerende weefsel in een intact deel van het weefsel en steek de canula zo veel mogelijk in bronchus.
Gebruik tangen om de bronchiole wand rond de canula te comprimeren, idealiter vastklemmen elke aangrenzende longslagader op hetzelfde moment, om de bronchus rond de canula te verzegelen en gebruik een chirurgische klem om andere extra luchtwegen occlude, om agarose lekkage te voorkomen. Gebruik vervolgens de tangen om het longweefsel uit de kweekschotel te tillen en gebruik de spuit om de agarose handmatig door de canula te brengen, niet sneller dan 0,3 milliliter per seconde. Wanneer het longweefsel volledig wordt gevuld zonder het weefsel te overpompen, moet u de canula onmiddellijk verwijderen en de bronchus klemmen.
Dompel het weefsel in kweekmedium op vier graden Celsius gedurende 30 minuten om agarose verharding te vergemakkelijken, en herhaal de agarose vulprocedure voor eventuele extra bronchiole openingen. Bewaar vervolgens de met agarose gevulde longweefselsecties in vier graden Celsius medium tot het snijden. Voor precisie gesneden long snijden, identificeren van de stevig agarose gevulde regio's binnen het longweefsel, die niet instorten wanneer zachtjes gedrukt met een pincet tegen de bodem van de cel cultuur schotel.
Accijns een 1 tot 1,5 kubieke centimeter blok van stevig gevulde regio met een kant nog steeds bedekt met pleura, en gebruik cyanoacrylaat lijm om het meervoud kant van elk weefsel blok hechten aan de vibratome houder. Snijd de hele weg door het lange weefselblok, totdat slechts twee tot drie milometers weefsel zonder licentie worden achtergelaten. Met behulp van tangen om elke 500 micrometer sectie over te brengen in een put van een twaalf-put plaat met teeltmedium, zoals ze worden verkregen.
Wanneer al het weefsel is geneusd, breng de monsters van elke put in individuele tien centimeter cultuur schotels en plaats een vier millimeter biopsie puncher orthogonaal aan het bovenste oppervlak van de precisie-gesneden long slice. Dan, het verplaatsen van de puncher in de klok mee en tegen de klok in rotaties, verkrijgen weefsel stoten van het longmonster. Het plaatsen van elke punch in verse cel cultuur medium in individuele putten van een 96-put plaat als ze worden verkregen.
Wanneer alle weefselstoten zijn verkregen, plaatst u de plaat maximaal vijf dagen in de couveuse van de celkweek. Immunolabeling van fibronectine in celkernen met immunofluorescentie in menselijke 3D-longweefselculturen maakt beeldvorming van de bewaarde alveolaire structuur ex vivo mogelijk. Behandeling van de menselijke precisie gesneden long slice stoten met een profibrotische cytokine cocktail voor 48 uur resulteert in fibrose-achtige veranderingen in de menselijke long 3-D weefsel culturen, met inbegrip van de significante inductie van de fibrose relevante extracellulaire matrix componenten, collageen Type One, en fibronectin genen.
Bovendien, eiwitniveaus van de mesenchymale marker vimentine zijn geregeld in drie van de vier patiënten na de behandeling van 3-D longweefsel cultuur stoten. Na deze procedure kunnen andere methoden zoals RNA-analyse door kwantitatieve real-time PCR, of eiwitanalyse door westerse blotting, worden uitgevoerd om respectievelijk gen- en eiwitexpressie in het weefsel te evalueren. Na de ontwikkeling maakte deze techniek de weg vrij voor onderzoeken op het gebied van experimentele longologie, om longbiologie uit te zetten en toxicologische en farmacologische studies uit te voeren in menselijke weefselmonsters.
Vergeet niet dat levend menselijk weefsel potentieel besmettelijk is en dat voorzorgsmaatregelen zoals het gebruik van persoonlijke beschermingsmiddelen en de juiste weefselopslag, transport en afvalverwerking altijd moeten worden genomen tijdens het uitvoeren van deze procedure
Dit artikel presenteert een protocol voor het bereiden van met agarose gevulde, precisie-gesneden menselijke longplakjes uit geresecteerd patiëntweefsel. Deze plakjes zijn geschikt voor het genereren van 3D-longweefselculturen om menselijke longziekten te modelleren in biologische en biomedische studies.
Menselijke 3D-longweefselkweken, afgeleid van precisie-gesneden longplakjes, bieden een fysiologisch relevant ex vivo model voor het bestuderen van ziektemanisemen en medicijnresponsen in de natuurlijke menselijke weefselarchitectuur. Deze benadering ondersteunt doelwitvalidatie en mechanische risicovermindering door directe beoordeling van de effecten van verbindingen in zieke of peritumorale longmonsters van individuele patiënten mogelijk te maken. Het model vergroot het voorspellend vertrouwen bij preklinische evaluatie door cellulaire diversiteit, de samenstelling van de extracellulaire matrix en biomechanische eigenschappen te behouden die cruciaal zijn voor translationele relevantie.
De methode past binnen het ontdekkingscontinuüm, van vroege toetsing van hypotesen over targets via lead-identificatie tot preklinische validatie, waardoor iteratieve verfijning op basis van reacties in menselijk weefsel mogelijk is.