25 januari 2019
Dictyostelium-discoideum is een populair model-organisme te bestuderen van complexe cellulaire processen zoals cel migratie, endocytose en ontwikkeling. Het nut van het organisme is afhankelijk van de haalbaarheid van genetische manipulatie. Hier presenteren we methoden om te transfect Dictyostelium discoideum cellen die bestaande van kweken cellen in vloeibare media beperkingen.
De waarde van dit protocol is dat het bijna elke stam van dictyostelium discoideum toestaat om door moleculaire genetica worden gemanipuleerd, ongeacht of die spanning axenically in vloeibaar middel of niet zal groeien. Het andere voordeel van deze techniek is dat het snel en eenvoudig is. Transponeren naar transfect cellen met een exochromosomale plasmid voordat u begint te dictyosteliums mengen.
De resultaten kunnen al twee dagen na de transfectie worden gevalideerd met behulp van microscopie. Het is ongebruikelijk om te werken met dictyosteliumcellen en bacteriën suspensie. Visualisatie zal helpen om onderzoekers een idee te geven hoe de verschillende stappen van de protocollen worden uitgevoerd.
Het aantonen van de procedure met mij zal Soudabeh Imanikia, een postdoc uit mijn lab. Om te beginnen, bereid 1000 milliliter sorensen buffer werkoplossing met magnesiumchloride en calciumchloride volgens het tekstprotocol. Gebruik hierna een enkele kolonie K-aerogenes om een liter LB-medium in te enten.
Laat de bacteriën 's nachts groeien op 37 graden Celsius met schudden. Draai de cellen naar beneden in twee 500 milliliter centrifugebuizen om de cellen te oogsten. Dan, was de bacteriën een keer met 500 milliliter buffer.
Resuspend de pellet in 20 milliliter buffer. Gebruik een fotometer om de optische dichtheid van het monster te controleren en verdun het monster met buffer totdat de optische dichtheid ongeveer 100 is. Bereid hierna de H40-elektroporatiebuffer volgens het tekstprotocol voor.
Grow K aerogenes om een SM-medium 's nachts samen te brengen bij kamertemperatuur. Voeg 400 microliter bacteriële suspensie toe aan een SM agar plaat en verdeel het gelijkmatig. Neem vervolgens een steriele lus en inenting met dictyosteliumcellen en verspreid de cellen aan de ene rand van de plaat.
Broed de plaat twee dagen lang op 22 graden Celsius, om ervoor te zorgen dat de groeizones groot genoeg zijn voor transfectie. Voeg 10 milliliter K aerogene suspensie toe aan een met weefselkweek behandeld petrischaaltje van 10 centimeter. Gebruik vervolgens een 10 microliter wegwerpinentingslus om cellen uit de groeizones van de kweekplaat te schrapen.
Breng de cellen over naar een buis van 1,5 milliliter, met ijskoude H40-buffer. Draai de cellen twee seconden bij 10000 keer zwaartekracht. Gooi vervolgens de supernatant weg en zet de cellen opnieuw op in de H40-buffer.
Voeg vervolgens 100 microliter van de cellen toe aan een buis met één tot twee microgram DNA. Pipet op en neer om het cel-DNA-mengsel te mengen en over te brengen naar een voorgekoelde elektroporatie cuvette. Voeg niet meer dan twee microgram DNA toe.
Een hogere DNA-concentratie is giftig voor de cellen en vermindert de efficiëntie. Breng na elektroporatie de cellen onmiddellijk over op een voorbereide petrischaal van 10 centimeter en laat de cellen vijf uur herstellen. Om een transfectant te selecteren voor een knock-out, knock-in, of een handeling vijf knock-in, los de cellen van de Petri schotel door pipettervloeistof over het oppervlak.
Stel vervolgens drie verdunningen van het selectieve agens in volgens het tekstprotocol. Verdeel ten slotte 150 microliter van de bereide verdunningen in elke put van 96-well flat-bottom weefselkweekplaten. In dit protocol werd een dubbel verslaggever extrachromosomale plasmide systeem aangetoond.
32 uur na de transfectie, de meerderheid van de cellen uitgedrukt zowel fluorescerende gelabelde fusie-eiwitten. Een act vijf M cherry knock-in en een NC4 werd ook geprobeerd. Twee banden werden verkregen na het uitvoeren van de samenvatting op een agarose gel.
De 4127 base pair band bevat de gewenste constructie. Het gezuiverde DNA werd gebruikt voor de transfectie van NC4 cellen. Twee klonen van de NC4 transfectie werden geanalyseerd via PCR en beide toonden de voorspelde bandpatronen.
Zuidelijke vlek werd vervolgens gebruikt om de resultaten van de PCR te valideren. De NC4 groeide sneller op bacteriële gazons dan Ax2 cellen. Na vier uur konden meer NC4-cellen onder de agarose kruipen dan Ax2-cellen.
De NC4 cellen waren sneller en vertoonden een sterkere chemotactische respons op foliumzuur dan de Ax2 cellen. Gebruik altijd cellen van vers ingestelde SM-platen. Gebruik nooit cellen ouder dan vier dagen, anders zal de efficiëntie dalen.
Vers geïsoleerde, nonextenic, witte HAP stammen worden vaak gebruikt om vragen over een ruching of sociaal gedrag van dictyosteliums te beantwoorden. Onze maakt het mogelijk om moleculaire genetica toe te passen via die isolaten.
Dit artikel presenteert een protocol voor het transfecteren van Dictyostelium discoideum-cellen, waardoor genetische manipulatie mogelijk is ongeacht de groeicondities van de stam. De methode is efficiënt en eenvoudig, wat een snelle validatie van de resultaten mogelijk maakt.
Dit protocol maakt genetische manipulatie mogelijk van wild-type Dictyostelium-stammen die op bacteriën groeien, waardoor de beperkingen van axenisch-geadapteerde stammen met verstoorde Ras-signalering worden overwonnen. Het biedt een schaalbare, snelle methode voor targetvalidatie in een ziekterellevant modelsysteem, wat mechanistische risicoreductie in de vroege ontdekkingsfase ondersteunt. Deze aanpak breidt de moleculaire genetica uit naar milieuisoleerde stammen, waardoor de translationele continuïteit en het voorspellende vertrouwen in fenotypische screeningsworkflows worden verbeterd.
De methode past binnen de fasen van vroege ontdekking tot identificatie van leads door genetisch hanteerbare modellen te bieden voor pathway-interrogatie en fenotypische screening.