5 mei 2020
Dit protocol beschrijft een reproduceerbare benadering van gezichtszenuwchirurgie in het rattenmodel, inclusief beschrijvingen van verschillende induceerbare patronen van letsel.
Dit protocol kan wetenschappers helpen bij het bestuderen van resultaten na gezichtszenuwletsel en methoden om regeneratie over veel verschillende parameters te verbeteren. Het belangrijkste voordeel van deze techniek is dat de rat anatomie maakt gemakkelijke toegang tot de gezichtszenuw, en de grote schaal stelt ons in staat om alle relevante letselpatronen te bestuderen. De toepassingen van deze techniek breiden zich uit tot de revalidatie van de patiënten na gezichtszenuwletsel.
Als regeneratief potentieel biedt de rat een reproduceerbaar en beknopt experimenteel model. En deze methode kan inzicht geven in chirurgische en medische therapieën voor gezichtszenuwparese of verlamming. En het is te vertalen naar andere hoofd-halsmodellen of andere perifere zenuwen.
Opereren onder een microscoop met beide handen kan een uitdaging zijn. Ik adviseer het beoefenen van het gebruik van verrekijker versie onder de microscoop voor een poging tot een gezichtszenuw dissectie. Na bevestiging van een gebrek aan respons op teensnuifje, breng zalf aan op de ogen van de rat en scheer het chirurgische gebied.
Stel een methode voor de identificatie van ratten vast en plaats een rol gaas onder de nek. Desinfecteer de blootgestelde huid met drie afwisselende chloorhexidine en 70% ethanol scrubs en plaats de rat onder een stereomicroscoop. Manipuleer het ipsilaterale oor in een voorste achterste richting om de natuurlijke vouwen van de postauriculaire huid te bepalen.
Gebruik een nummer 15 mes om een incisie van twee tot drie millimeter in de postauriculaire vouw te maken. De planning en de plaatsing van de incisie zijn de meest kritieke stappen voor het waarborgen van een betrouwbare identificatie van de gezichtszenuw terwijl het minimaliseren van de wondgrootte. Ontleden botweg door de directe onderhuidse fascia en plaats een micro-Weitlaner oprolmechanisme om de blootstelling aan het weefsel te verbeteren.
Identificeer de voorste digastric spier als het reist in een inferieure-naar-superieure richting in de richting van de invoeging langs de schedelbasis. Verspreid zachtjes door de spierbuik langs de spierinvoegpositie om de pees van de voorste digazitrische buik te onthullen. De pees zal verschijnen als een filmachtig wit proces afkomstig van de spier met een stevige invoeging op de schedelbasis.
Na identificatie van de voorste digastric spier en zijn pees, pas de Weitlaner oprolmechanisme aan de spierbuik verder in te trekken. Het blootgestelde gebied is de driedimensionale ruimte waarin de hoofdstam van de gezichtszenuw ligt. Ontleden langs de zenuw in een inferieure richting distally van de uitgang van de stylomastoid foramen.
Om een crush letsel patroon induceren, gebruik glad-surfaced juwelier tang stevig te grijpen en comprimeren van de zenuw toe te passen constante en reproduceerbare druk gedurende 30 seconden om een passende crush letsel te garanderen. Voor een eenvoudige transsectie, pak de onmiddellijke epineurium bovenlyseren van de zenuw met fijngetande tangen, en gebruik scherpe microscissors om de zenuw netjes transect op het gewenste punt met een enkele snede. Voor een zenuwspleet model, gebruik verstelbare remklauwen om de gewenste zenuwsleerlengte in te stellen om vergelijkbare verwondingspatronen tussen dieren te garanderen en de zenuw te transecteren zoals net is aangetoond.
Nadat de experimentele verwonding is afgeleverd, irrigeer de wond met steriele zoutoplossing en droog het weefsel met steriel gaas. voor het sluiten van de huidincisie volgens institutionele richtlijnen. Hier wordt live beeldvorming van de hoofdstam van de gezichtszenuw met een crush-letsel van ongeveer twee tot drie millimeter distaal getoond aan het takpunt van de eerste PES in een volwassen transgene Thy1-GFP-rat.
Beoordeling van de geleidelijke terugkeer van fluorescentie bij één, twee, drie en vier weken na de verwonding kan worden gebruikt als marker voor het monitoren van zenuwregeneratie bij deze transgene dieren. Histomorfometrische analyse kan worden gebruikt om transversale beelden van de marginale mandibulaire verdeling waardoor kwantificering van de axonale diameter, hoeveelheid puin, zenuwvezel, percentage van de zenuw, en dichtheid metingen te verkrijgen. Het is belangrijk om de plaatsing van het oprolmechanisme vaak aan te passen als dat nodig is om ervoor te zorgen dat de relevante anatomische zenuwen zichtbaar zijn bij het identificeren van de gezichtszenuw.
Na deze procedure kunnen de relevante zenuwen en spieren worden geoogst voor immunohistochemische analyse om de mate van regeneratie ten opzichte van andere experimentele groepen te beoordelen. Na de ontwikkeling heeft deze techniek de weg vrijgemaakt voor onderzoekers bij het bestuderen van de functionele resultaten na gezichtszenuwletsel. Specifiek, hoe het fenomeen van synkinese effect.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit protocol beschrijft een reproduceerbare aanpak voor gezichtszenuwchirurgie in een ratmodel, met een specifieke focus op letselpatronen en regeneratieve resultaten. Het faciliteert onderzoek naar chirurgische technieken en medische therapieën voor de rehabilitatie van gezichtszenuwletsel.
Het model voor aangezichtszenuwwervelletsel bij ratten biedt een reproduceerbaar platform voor het evalueren van axonale regeneratie en inhibitie, wat de validatie van targets bij de ontwikkeling van neuroregeneratieve therapieën ondersteunt. De schaalbaarheid en anatomische toegankelijkheid maken een consistente beoordeling van letselpatronen en regeneratieve responsen mogelijk, wat het preklinische risicobeheer van neurotrofe of anti-inhibitoire kandidaten faciliteert. Dit model slaat een brug tussen fundamenteel onderzoek en translationeel onderzoek door kwantificeerbare histomorfometrische en functionele read-outs te bieden die relevant zijn voor strategieën voor het herstel van de menselijke aangezichtszenuw.
Het model integreert in discovery-workflows door targetvalidatie mogelijk te maken via gecontroleerde zenuwletsel, gevolgd door de ontwikkeling van assays voor compound-screening, en ondersteunt de preklinische evaluatie van regeneratieve therapieën via functionele en structurele uitkomstmaten.