Name: Gestandaardiseerde hemorragische shock inductie geleid door cerebrale Oximetrie en uitgebreide hemodynamische controle bij varkens (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-05-21T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 51 s
Description: Leer een gestandaardiseerd varkensmodel voor hemorragische shock met cerebrale oximetrie en PiCCO-hemodynamische monitoring. Deze methode maakt realistische simulatie van klinische circulatoire insufficientie en evaluatie van therapeutische interventies mogelijk.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

De auteurs willen Dagmar Dirvonskis bedanken voor haar uitstekende technische ondersteuning.

De experimenten in dit protocol werden goedgekeurd door het Comité voor de dierenverzorging van de staat en de instellingen (Landesuntersuchungsamt Rheinland-Pfalz, Koblenz, Duitsland; Voorzitter: Dr. Silvia eisch-Wolf; referentienummer: 23 177-07/G 14-1-084; 02.02.2015). de experimenten werden uitgevoerd in overeenstemming met de Animal Research Reporting van in vivo experimenten (aankomen) richtlijnen. De studie werd gepland en uitgevoerd tussen november 2015 en maart 2016. Na uitgebreid literatuuronderzoek werd het Pig-model gekozen als een goed opgezet model voor hemorragische schok. Zeven geanesthetiseerde mannelijke varkens (Sus scrofa domestica) met een gemiddeld gewicht van 28 ± 2 kg en een leeftijd van 2-3 maanden waren opgenomen in het protocol. De dieren werden verzorgd door een lokale kweker die werd aanbevolen door de staat en institutionele Dierenzorg Commissie. De dieren werden zo lang mogelijk in hun bekende omgeving gehouden om stress te minimaliseren. Voedsel, maar niet water werd ontkend 6 h voordat het experiment werd gepland, om het risico van aspiratie te verminderen. De representatieve tijdsduur wordt weergegeven in Figuur 1.
1. anesthesie, intubatie en mechanische ventilatie
<ol><li>Sedate varkens met een gecombineerde injectie van ketamine (4 mg · kg-1) en azaperone (8 mg · kg-1) in de nek of de bilspier met een naald voor intramusculaire injectie (1,2 mm). Zorg ervoor dat de dieren stabiel blijven totdat de sedatie is ingesteld. Let op: Handschoenen zijn absoluut noodzakelijk bij het hanteren van dieren.</li>
	<li>Transport van de verdoofde dieren naar het laboratorium. Opmerking: De dieren vallen diep in slaap en niet wakker tijdens normale behandeling, zoals wanneer ze in de TRANSPORTKOOI worden gehesen. In deze setting was de transporttijd ongeveer 20 minuten met een speciale busje voor dierentransport.</li>
	<li>Bewaak de perifere zuurstofverzadiging (SpO2) met een sensor die direct na aankomst aan de staart of het oor van het varken wordt geknipt.</li>
	<li>Desinfecteer de huid met kleurloze desinfectie tinctuur en wacht 3 minuten alvorens een perifere ader katheter (1,2 mm) in een oorader te plaatsen. Vervolgens, induceren van anesthesie door een intraveneuze injectie van fentanyl (4 μg · kg-1) en propofol (3 mg · kg-1).</li>
	<li>Wanneer alle reflexen afwezig zijn en spontane ademhaling vervalt, plaats de varkens dan in rugligging op een brancard en bevestig ze met verbanden. Opmerking: Adequate niveaus van anesthesie moeten worden bevestigd door een ervaren onderzoeker door de afwezigheid van een ooglidreflex en andere reacties op externe stimuli.</li>
	<li>Start onmiddellijk niet-invasieve ventilatie met een hond ventilatie masker (maat 2). Gebruik de volgende ventilatie parameters: Inspiratoire zuurstof fractie (FiO2) = 1,0; ademhalingsfrequentie = 14-16 min-1; piek Inspiratoire druk < 20 cm H2o, positieve eind expiratoire druk (Peep) = 5 cm h2o.</li>
	<li>Handhaaf anesthesie via een continue infusie van fentanyl (0,1-0,2 μg · kg-1· h-1) en propofol (8-12 mg · kg-1· h-1) en start een infusie van gebalanceerde elektrolytoplossing (5 ml · kg-1· h-1).</li>
	<li>Endotracheale intubatie vergemakkelijken door toepassing van een spierverslapper (atracurium 0,5 mg · kg-1).</li>
	<li>Bevestig de luchtweg via intubatie met een gemeenschappelijke endotracheale buis (ID 6-7) en een introducer. Gebruik een veelgebruikte Laryngoscoop met een Macintosh-Blade (maat 4). Twee personen vergemakkelijken de procedure.
	<ol>
<li>Persoon 1: Bevestig de tong buiten met een stukje weefsel en open de snuit met de andere hand.</li>
		<li>Persoon 2: Voer een laryngoscopie uit.</li>
		<li>Persoon 2: wanneer de epiglottis in beeld komt, verplaats de Laryngoscoop ventraal. Til de epiglottis op en zorg ervoor dat de stembanden zichtbaar zijn. Opmerking: Als de epiglottis niet dorsally beweegt, plakt het aan de zachte Palatijn en kan worden gemobiliseerd door de punt van de buis. Als alternatief kan een blad met een andere grootte (3 of 5) of type (Miller Blade) worden gebruikt.</li>
	</ol></li>
	<li>Beweeg de buis voorzichtig door de stembanden. Opmerking: Het smalste punt van de luchtpijp is niet op het niveau van de stembanden maar subglottisch. Als buis inbrengen niet mogelijk is, probeer dan de buis te roteren of een kleinere buis te gebruiken.</li>
	<li>Trek de introducer uit de buis, gebruik een spuit van 10 mL om de manchet te blokkeren met 10 mL lucht en bedien de manchet druk met een manchet Manager (30 cm H2O).</li>
	<li>Mechanische ventilatie starten nadat de buis is aangesloten op een ventilator (PEEP = 5 cm H2O; getijden volume = 8 ml · kg-1; FiO2 = 0,4; inspiratie-tot-verval ratio = 1:2; ademhalingsfrequentie = variabel om een einde-Tidal CO2 van &Lt; 6 kPa) te bereiken. Opmerking: Vermijd fluctuatie van de CO2 om respiratoire effecten op de cerebrale perfusie te minimaliseren.</li>
	<li>Zorg ervoor dat de buis positie correct is door regelmatige en periodieke uitademing van CO2 via capnografie, en controleer de dubbelzijdige ventilatie door auscultatie. Opmerking: Als de buis verkeerd wordt geplaatst, vormt de lucht inflatie in de maag snel een zichtbare buiging in de buikwand, zelfs voordat de capnografie is geïnstalleerd. In dit geval is vervanging van de buis en het inbrengen van een maagsonde absoluut noodzakelijk.</li>
	<li>Met twee personen, plaats een maagsonde in de maag om reflux en braken te voorkomen.
	<ol>
<li>Persoon 1: Bevestig de tong buiten met een stukje weefsel en open de snuit met de andere hand.</li>
		<li>Persoon 2: Voer een laryngoscopie van het varkens strottenhoofd uit.</li>
		<li>Persoon 2: Visualiseer de slokdarm.</li>
		<li>Persoon 2: Duw de maagsonde in de slokdarm met een paar Magill Tang totdat de maag vloeistof wordt afgevoerd. Opmerking: Soms is visualisatie niet eenvoudig. In dit geval, verplaats de Laryngoscoop schrapen naar de buis en duw het ventraal om de slokdarm te openen. Tijdens de procedure wordt het dier lichaam bedekt met dekens om hypothermie te voorkomen. Als de lichaamstemperatuur van het dier afneemt, gebruik dan een verwarmingssysteem om de temperatuur op een fysiologisch niveau te stabiliseren (Zie de tabel met materialen). De lichaamstemperatuur wordt op het scherm van de PiCCO weergegeven.</li>
	</ol></li>
</ol>2. instrumentatie
<ol><li>Gebruik verbanden om de achterpoten terug te trekken en de plooien in het dijbeen gebied glad te maken voor het katheterisatie.</li>
	<li>Bereid de volgende materialen voor: een 5 mL spuit, 1 10 mL spuit, 1 50 mL spuit, een Seldinger naald, introducer omhulsels (2 mm, 2,7 mm, 2,7 mm), geleidings draden voor de omhulsels, een centrale veneuze katheter met drie poorten (2,3 mm, 30 cm) met geleidedraad, en een PiCCO katheter (1,67 mm, 20 cm).</li>
	<li>Desinfecteer het inguinale gebied met gekleurde desinfectie, wacht 2 minuten en veeg de desinfectie af met een steriel weefsel. Herhaal deze procedure 3x. Verwijder na de derde keer de desinfectie niet.</li>
	<li>Vul alle katheters met zoutoplossingen.</li>
	<li>Breng ultrasone gel aan op de ultrasone sonde. Bedek het inguinale gebied met een steriel, fenestrated draperen en scan de juiste femorale vaten met echografie. Gebruik de Doppler-techniek om onderscheid te maken tussen de slagader en de ader18.</li>
	<li>Helder rood pulserende bloed bevestigt de gestreefd naaldpositie. Koppel de spuit los en steek de geleidingsdraad in de rechter femur slagader.</li>
	<li>Visualiseer de lengteas van de rechter femorale ader en plaats de Seldinger naald onder permanente aspiratie met de 5 mL spuit.</li>
	<li>Aspirate donkerrood nonpulserende veneuze bloed.</li>
	<li>Visualiseer de rechter femorale slagader axiaal en schakel over naar een longitudinale weergave van de slagader door de sonde 90 ° te draaien.</li>
	<li>
Prik de rechter femur slagader onder echografie visualisatie met de Seldinger naald onder permanente aspiratie met de 5 mL spuit. Opmerking: de echografie-geleide Seldinger techniek wordt geassocieerd met significant lager bloedverlies, weefsel trauma en tijdverbruik dan andere methoden van vasculaire toegang19,20.<ol>
<li>Als de juiste positie van de naald in de verschillende vaten voor bepaalde niet kan worden vastgesteld, neem dan de bloed sondes en analyseer het bloedgas gehalte met een bloedgasanalysator (Zie de tabel met materialen). Een hoog zuurstofgehalte is een goed teken van arteriële bloed, en een laag zuurstofgehalte is een teken van veneuze bloed.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Plaats de geleidingsdraad voor de centrale veneuze katheter in de rechter femorale ader na het loskoppelen van de spuit en het intrekken van de Seldinger naald.</li>
	<li>Visualiseer beide juiste vaten met echografie om de juiste draad positie te regelen.</li>
	<li>Duw de arteriële introducer schede (2 mm) over de geleidingsdraad in de juiste slagader en bevestig de positie met bloed aspiratie.</li>
	<li>Gebruik de Seldinger techniek om de centrale veneuze lijn in de rechter femorale ader te positioneren. Aspireren alle poorten en spoel ze met zoutoplossing.</li>
	<li>Voer dezelfde procedure uit op de linker inguinale kant om de andere introducer omhulsels in de Seldinger techniek in de linker femorale slagader (2,7 mm) en femorale ader (2,7 mm) in te voegen.</li>
	<li>Verbind de juiste arteriële introducer schede en de centrale veneuze katheter met twee transducer systemen voor de meting van invasieve hemodynamiek, en plaats beide transducers op het hart niveau om de juiste waarden te krijgen.</li>
	<li>Schakel de drieweg-stopkranen van beide transducers open naar de atmosfeer om de systemen te kalibreren tot 0 zoals voorgeschreven in de bedieningshandleiding. Opmerking: Het is absoluut noodzakelijk om luchtbellen en bloed vlekken in de systemen te voorkomen om plausibele waarden te genereren.</li>
	<li>Schakel alle infusies voor het onderhouden van anesthesie van de perifere ader naar de centrale veneuze lijn.</li>
	<li>Neem baselinewaarden (hemodynamiek, Spirometrie, NIRS (zie rubriek 4) en PiCCO (zie rubriek 3) na 15 minuten herstel.</li>
	<li>Start een hemorragische schok (zie rubriek 5).</li>
</ol>3. PiCCO meting
Opmerking: Voor de PiCCO apparatuur, zie de tabel van de materialen.
<ol><li>Plaats de PiCCO-katheter in de juiste arteriële introducer schede. Opmerking: In de klinische geneeskunde worden Picco-katheters direct geplaatst door de Seldinger-techniek. Echter, plaatsing via een introducer schede is ook haalbaar.</li>
	<li>Verbind de katheter met de arteriële draad van het PiCCO-systeem en de arteriële transducer direct met de PiCCO-poort. Vervolgens, opnieuw kalibreren zoals beschreven in stap 2,17.</li>
	<li>Verbind de veneuze meeteenheid van het PiCCO systeem met de linker veneuze introducer schede. Opmerking: Het is noodzakelijk om de veneuze en arteriële voelers op enige afstand van elkaar te verbinden. Anders zal de meting worden verstoord, omdat de toepassing van koude zoutoplossing in het veneuze systeem de arteriële meting beïnvloedt. Voor meer informatie over PiCCO, zie Mayer en Suttner21.</li>
	<li>Schakel het PiCCO-systeem in en bevestig dat een nieuwe patiënt wordt gemeten.</li>
	<li>Voer de grootte en het gewicht van het dier in en schakel de categorie naar volwassenen.</li>
	<li>Voer de protocolnaam en-ID in en voer Exitin.</li>
	<li>Stel het injectievolume in op 10 mL. Opmerking: Het volume van de gekozen injectie oplossing kan worden gevarieerd. Een hoger volume maakt de gemeten waarden meer geldig. Kies een klein volume om hemodilution-effecten te voorkomen door herhaalde toepassing.</li>
	<li>Voer de centrale veneuze druk in.</li>
	<li>Open de drie-weg kraantje naar de atmosfeer, klik op nul voor systeemkalibratie en klik op Exit.</li>
	<li>Kalibreer de continue cardiale uitgangs meting zoals hierna beschreven en klik op TD (thermodilution). Bereid fysiologische zoutoplossing met een temperatuur van 4 °C in een 10 mL spuit en klik op Start.</li>
	<li>Injecteer snel en gestaag 10 mL van de koude zoutoplossing in de veneuze meeteenheid en wacht tot de meting is voltooid en het systeem een herhaling vraagt.</li>
	<li>Herhaal deze procedure totdat drie metingen zijn voltooid.</li>
	<li>Laat het systeem het gemiddelde van alle parameters berekenen en klik op Exit.</li>
	<li>Start na volledige kalibratie onmiddellijk de meting. Voor het monitoren van shock inductie, focus op de PiCCO-afgeleide parameter cardiale index.</li>
</ol>4. cerebrale regionale oxygenatie verzadiging
Opmerking: Voor de apparatuur voor het bewaken van de cerebrale regionale oxygenatie, zie de tabel van de materialen.
<ol><li>Scheer het voorhoofd van het varken met een wegwerp scheermes en water en plak twee zelf-aanhandige sensoren (Zie de tabel met materialen) voor NIRS op het voorhoofd van het varken.</li>
	<li>Sluit de voorversterker aan op de monitor en verbind de sensorkabel connectoren met kleurcodering op de voorversterker.</li>
	<li>Sluit het voorversterker vergrendelingsmechanisme en bevestig de sensoren aan de sensor kabels. Opmerking: Om real-time gegevens op te nemen, moet een USB-flashstation worden aangesloten op de NIRS-monitor.</li>
	<li>Schakel de monitor in, klik op nieuwe patiënt, voer de naam van de studie in en klik op gereed.</li>
	<li>Controleer het binnenkomende signaal. Wanneer het signaal stabiel is, klikt u op baseline menu en klikt u op basis lijnen instellen. Als de basislijn al is ingevoerd, bevestigt u de nieuwe basislijn door op Ja te klikken en op gebeurtenis markeringte klikken.</li>
	<li>Kies de gebeurtenis met de pijltjestoetsen op het toetsenbord en met de volgende gebeurtenis; Selecteer de gebeurtenis 3 inductie en druk op Selecteer gebeurtenis. Opmerking: Indien nadere informatie nodig is, raadpleegt u de gebruiksaanwijzing van het NIRS-systeem22.</li>
</ol>5. hemorragische shock inductie
<ol><li>Verbind de linker introducer schede met een boom-weg stopcock. Sluit één poort van de drie-weg kraantje met een 50 ml spuit en één met een lege infusie fles. Opmerking: Als alternatief kan het teruggetrokken bloed worden opgevangen in citrated zakken voor latere auto transfusie. Dit is een groot voordeel van gecontroleerde bloed terugtrekking.</li>
	<li>Meet en Documenteer de exacte hemodynamische parameters en bereken 40% van de cardiale index en de gemiddelde arteriële druk als hemodynamische doelen. Stel de gebeurtenis 93 bloedverlies in het NIRS-systeem zoals beschreven in stap 4,6. Opmerking: Hemorragische shock wordt bereikt als de cardiale index en de gemiddelde arteriële druk daalt tot onder 40% van de baselinewaarde. Een aanzienlijke cerebrale regionale oxygenatie verzadiging (crSO2) daling van 20% heeft de voorkeur om micro circulatoire stoornissen te verbeelden. Het gemiddelde bloedverlies om dit te bereiken ligt binnen een bereik van 25-35 mL · kg-1.</li>
	<li>Aspirate 50 mL bloed in de spuit en schakel de drieweg-stopcock. Duw het bloed in de lege fles.</li>
	<li>Noteer het verwijderde bloed volume.</li>
	<li>Monitor de arteriële bloeddruk, de cardiale index, en de crSO2 nauw. Herhaal de bloed opname totdat de doel-bloeddruk en cardiale index worden bereikt (na 20-30 min).</li>
	<li>Stel de gebeurtenis 97 hypotensie in de NIRS apparaat zoals beschreven in stap 4,6. Opmerking: Trek het bloed niet te snel, want dit draagt het risico van onmiddellijke cardio-bloedsomloop falen. Na het afronden van de shock inductie procedure kunnen de dieren worden gebruikt voor verschillende therapeutische ingrepen.</li>
</ol>6. einde van het experiment en euthanasie
<ol><li>Injecteer 0,5 mg fentanyl in de centrale veneuze lijn en wacht 5 minuten.</li>
	<li>Injecteer 200 mg Propofol in de centrale veneuze lijn en euthaniseer het dier met 40 mmol kaliumchloride.</li>
</ol>

Het NIRS-apparaat werd onvoorwaardelijk verstrekt door Medtronic PLC, USA, voor experimentele onderzoeksdoeleinden. Alexander Ziebart, Andreas Garcia-Bardon en Erik K. Hartmann ontvingen instructeur honorarium voor artsen opleidingen van Medtronic PLC. Geen van de auteurs doet verslag van financiële of andere belangenconflicten.

Het protocol beschrijft een methode van inducerende hemorragische shock via gecontroleerde arteriële bloeding bij varkens die wordt geleid door systemische hemodynamiek, evenals door cerebrale microcirculatoire stoornis. Schok condities werden bereikt door een berekende bloed opname van 25-35 mL kg-1 en bevestigd door de genoemde samenstelling van vervangende parameters die duiden op aanzienlijke cardio-circulatoire insufficiëntie. Indien onbehandeld, deze procedure was dodelijk binnen 2 h in 66% van de dieren...

Massale bloedverlies is een van de belangrijkste oorzaken van letsel-gerelateerde sterfgevallen1,2,3. Het verlies van de bloedsomloop vloeistof en zuurstof dragers leidt tot hemodynamische mislukking en ernstige zuurstof ondervoeding en kan leiden tot onomkeerbaar orgaan falen en overlijden. Het prioriteitsniveau van shock wordt beïnvloed door extra factoren zoals hypothermie, coagulopathie en acidose4. Met name de hersenen, maar ook de nieren gebrek aan compensatie capaciteit als gevolg van hoge zuurstofbehoefte en de incapaciteit van adequate anaerobe energieopwekking5,6. Voor therapeutische doeleinden is snelle en onmiddellijke actie van cruciaal belang. In de klinische praktijk is vloeistof reanimatie met een gebalanceerde elektrolytoplossing de eerste optie voor behandeling, gevolgd door de toediening van rode bloedcel concentraten en vers bevroren plasma. Trombocyten concentraten, catecholamines, en de optimalisering van de coagulatie en de zuur-base status ondersteunen de therapie om normale fysiologische omstandigheden na aanhoudende trauma te herwinnen. Dit concept richt zich op het herstel van de hemodynamiek en de macro circulatie. Verschillende studies, echter, tonen aan dat de microcirculatoire perfusie niet gelijktijdig met de macro circulatie herstelt. Vooral, cerebrale perfusie blijft aangetast en verdere zuurstof ondervoeding kan voorkomen7,8.
Het gebruik van diermodellen stelt wetenschappers in staat om nieuwe of experimentele strategieën te ontwikkelen. De vergelijkbare anatomie, homologie, en fysiologie van varkens en mensen maken conclusies over specifieke pathologische factoren mogelijk. Beide soorten hebben een soortgelijk metabolisch systeem en reageren op farmacologische behandelingen. Dit is een groot voordeel in vergelijking met kleine diermodellen waarbij verschillen in bloed volume, hemodynamiek en algemene fysiologie het bijna onmogelijk maken om een klinisch scenario9na te bootsen. Bovendien kunnen geautoriseerde medische apparatuur en verbruiksartikelen gemakkelijk worden gebruikt in varkens modellen. Bovendien is het gemakkelijk mogelijk om varkens te krijgen van commerciële leveranciers, die een hoge diversiteit aan genetica en fenotypes mogelijk maakt en kostenreducerende10is. Het model van bloed terugtrekking via het vat cannulatie is heel gebruikelijk11,12,13,14,15.
In deze studie, we breiden het concept van hemorrhagische shock inductie via arteriële bloed terugtrekking met een exacte titratie van hemodynamische falen en cerebrale oxygenatie stoornis. Hemorragische shock wordt bereikt als de cardiale index en de gemiddelde arteriële druk daalt onder 40% van de baselinewaarde, waarvan is aangetoond dat het een aanzienlijke verslechtering van de cerebrale regionale oxygenatie verzadiging8. Pulse contour cardiale output (PiCCO) meting wordt gebruikt voor continue hemodynamische monitoring. Ten eerste moet het systeem worden gekalibreerd door transpulmonaire thermodilution, waarmee de berekening van de cardiale index van het extravasculaire Long watergehalte en het mondiale eind diastolische volume mogelijk wordt. Vervolgens wordt de continue cardiale index berekend door puls contour analyse en biedt ook dynamische voorladen parameters zoals pulsdruk en beroerte volume variatie.
Deze techniek is goed vastgesteld in klinische en experimentele instellingen. Near-Infrared spectroscopie (NIRS) is een klinisch en experimenteel vastgestelde methode om veranderingen in cerebrale zuurstoftoevoer in real-time te monitoren. Zelf-aanhankende sensoren zijn bevestigd aan de linker en rechter voorhoofd en bereken de cerebrale oxygenatie niet-invasief in de cerebrale frontale cortex. Twee golflengten van infraroodlicht (700 en 900 nm) worden uitgezonden en gedetecteerd door de sensoren na te zijn gereflecteerd uit het cortex-weefsel. Om het cerebrale zuurstofgehalte te beoordelen, worden bijdragen van arteriële en veneuze bloed berekend in 1:3 relaties en bijgewerkt in 5 s intervallen. De gevoeligheid in diepte van 1-4 cm is exponentieel afneemt en wordt beïnvloed door het gepenetreerde weefsel (bijv. huid en botten), hoewel de schedel doorschijnend is tot infraroodlicht. De techniek vergemakkelijkt snelle therapeutische acties om patiënten te voorkomen van ongunstige uitkomsten zoals Delirium of hypoxische hersenletsel en dient als de doelparameter in geval van verminderde cardiale output16,17. De combinatie van beide technieken tijdens experimentele schok zorgt voor een exacte titratie van de macro circulatie, evenals cerebrale microcirculatoire stoornis, om dit levensbedreigende voorval te bestuderen.

<table><tbody><tr><td>3-way-stopcock blue</td><td>Becton Dickinson Infusion Therapy AB Helsingborg, Sweden</td><td>394602</td><td>Drug administration</td></tr><tr><td>3-way-stopcock red</td><td>Becton Dickinson Infusion Therapy AB Helsingborg, Sweden</td><td>394605</td><td>Drug administration/Shock induction</td></tr><tr><td>Atracurium</td><td>Hikma Pharma GmbH, Martinsried</td><td>AM03AC04*</td><td>Anesthesia</td></tr><tr><td>Canula 20 G</td><td>Becton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, Spain</td><td>301300</td><td>Vascular access</td></tr><tr><td>Datex Ohmeda S5</td><td>GE Healthcare Finland Oy, Helsinki, Finland</td><td>-</td><td>Hemodynamic monitor</td></tr><tr><td>Desinfection&nbsp;</td><td>Sch&uuml;lke &amp; Mayr GmbH, Germany</td><td>104802</td><td>Desinfection&nbsp;</td></tr><tr><td>Heidelberger Verl&auml;ngerung 75CM</td><td>Fresenius Kabi Deutschland GmbH</td><td>2873112 &nbsp;</td><td>Drug administration/Shock induction</td></tr><tr><td>INVOS 5100C Cerebral</td><td>Medtronic PLC, USA</td><td>-</td><td>Monitore for cerebral regional oxygenation&nbsp;</td></tr><tr><td>INVOS Cerebral/Somatic Oximetry Adult Sensors</td><td>Medtronic PLC, USA</td><td>20884521211152</td><td>Monitoring of the cerebral regional oxygenation&nbsp;</td></tr><tr><td>Endotracheal tube</td><td>Teleflex Medical Sdn. Bhd, Malaysia</td><td>112482</td><td>Intubation</td></tr><tr><td>Endotracheal tube introducer</td><td>&nbsp; Wirutec GmbH, Sulzbach, Germany</td><td>5033062</td><td>Intubation</td></tr><tr><td>Engstr&ouml;m Carestation</td><td>GE Heathcare, Madison USA</td><td>-</td><td>Ventilator</td></tr><tr><td>Fentanyl</td><td>Janssen-Cilag GmbH, Neuss</td><td>AA0014*</td><td>Anesthesia</td></tr><tr><td>Gloves</td><td>Paul Hartmann, Heidenheim, Germany</td><td>9422131</td><td>Self-protection</td></tr><tr><td>Incetomat-line 150 cm</td><td>Fresenius, Kabi GmbH, Bad Homburg, Germany</td><td>9004112</td><td>Drug administration</td></tr><tr><td>Ketamine</td><td>Hameln Pharmaceuticals GmbH, Zofingen, Schweiz</td><td>AN01AX03*</td><td>Sedation</td></tr><tr><td>Laryngoscope</td><td>Teleflex Medical Sdn. Bhd, Malaysia</td><td>671067-000020</td><td>Intubation</td></tr><tr><td>Logical pressure monitoring system</td><td>Smith- Medical GmbH,&nbsp; Minneapolis, USA</td><td>MX9606</td><td>Hemodynamic monitor</td></tr><tr><td>Logicath 7 Fr 3-lumen 30 cm</td><td>Smith- Medical GmbH,&nbsp; Minneapolis, USA</td><td>MXA233x30x70-E</td><td>Vascular access/Drug administration</td></tr><tr><td>Masimo Radical 7</td><td>Masimo Corporation, Irvine, USA</td><td>-</td><td>Hemodynamic monitor</td></tr><tr><td>Mask for ventilating dogs</td><td>Henry Schein, Melville, USA</td><td>730-246</td><td>Ventilation</td></tr><tr><td>Original Perfusor syringe 50 mL Luer Lock</td><td>B.Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany</td><td>8728810F</td><td>Drug administration</td></tr><tr><td>PICCO Thermodilution. F5/20CM EW&nbsp;</td><td>MAQUET Cardiovascular GmbH, Rastatt, Germany</td><td>PV2015L20-A &nbsp;</td><td>Hemodynamic monitor</td></tr><tr><td>Percutaneous sheath introducer set 8,5 und 9 Fr, 10 cm with integral haemostasis valve/sideport</td><td>Arrow international inc., Reading, USA</td><td>AK-07903</td><td>Vascular access/Shock induction</td></tr><tr><td>Perfusor FM Braun</td><td>B.Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany</td><td>8713820</td><td>Drug administration</td></tr><tr><td>Potassium chloride</td><td>Fresenius, Kabi GmbH, Bad Homburg, Germany</td><td>6178549</td><td>Euthanasia</td></tr><tr><td>Propofol 2%</td><td>Fresenius, Kabi GmbH, Bad Homburg, Germany</td><td>&nbsp; AN01AX10*</td><td>Anesthesia</td></tr><tr><td>&nbsp;Pulse Contour Cardiac Output (PiCCO2)&nbsp;</td><td>Pulsion Medical Systems, Feldkirchen, Germany</td><td>-</td><td>Hemodynamic monitor</td></tr><tr><td>Sonosite Micromaxx Ultrasoundsystem</td><td>Fujifilm, Sonosite Bothell, Bothell, USA&nbsp;</td><td>-</td><td>Vascular access</td></tr><tr><td>Stainless Macintosh Size 4</td><td>Teleflex Medical Sdn. Bhd, Perak,&nbsp; Malaysia</td><td>670000</td><td>Intubation</td></tr><tr><td>Sterofundin</td><td>B.Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany</td><td>AB05BB01*</td><td>balanced electrolyte infusion</td></tr><tr><td>Stresnil 40 mg/mL&nbsp;&nbsp;</td><td>Lilly Germany GmbH, Wiesbaden, Germany</td><td>QN05AD90</td><td>Sedation</td></tr><tr><td>Syringe 10 mL</td><td>Becton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, Spain</td><td>309110</td><td>Drug administration</td></tr><tr><td>Syringe 2 mL</td><td>Becton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, Spain</td><td>300928</td><td>Drug administration</td></tr><tr><td>Syringe 20 mL</td><td>Becton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, Spain</td><td>300296</td><td>Drug administration</td></tr><tr><td>Syringe 5 mL</td><td>Becton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, Spain</td><td>309050</td><td>Drug administration</td></tr><tr><td>Venous catheter 22 G</td><td>B.Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany</td><td>4269110S-01</td><td>Vascular access</td></tr><tr><td>*ATC:&nbsp; Anatomical Therapeutic Chemical / Defined Daily Dose Classification&nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

gestandaardiseerde hemorragische shock inductie geleid door cerebrale oximetrie en uitgebreide hemodynamische controle bij varkens

Standardized Hemorrhagic Shock Induction Guided by Cerebral Oximetry and Extended Hemodynamic Monitoring in Pigs

Hemorragische shock behoort tot de belangrijkste redenen voor ernstige letsel-gerelateerde dood. Het verlies van circulatoire volume en zuurstofdragers kan leiden tot een onvoldoende zuurstoftoevoer en onomkeerbaar orgaan falen. De hersenen oefent slechts beperkte compensatie capaciteiten uit en is met name een hoog risico op ernstige hypoxische schade. Dit artikel demonstreert de reproduceerbare inductie van levensbedreigende hemorragische Shock in een varkens model door middel van berekende bloed terugtrekking. We titreren shock inductie geleid door near-infraroodspectroscopie en uitgebreide hemodynamische monitoring om systemische bloedsomloop falen, evenals cerebrale microcirculatoire zuurstofdepletie weer te geven. In vergelijking met soortgelijke modellen die zich voornamelijk richten op vooraf gedefinieerde verwijderings volumes voor Shock inductie, wijst deze aanpak op een titratie door middel van het resulterende falen van de macro-en microcirculatie.

Na het starten van de schok inductie kan een korte tijd van compensatie worden geregistreerd. Met voortdurende bloed verwijdering, de bovengenoemde cardio-circulatoire decompensation, zoals gecontroleerd door een significante afname van crso2, de cardiale index, de intrathoracale Blood volume index en de Global end-diastolische volume index (Figuur 2 , Figuur 3en Figuur 4). Bovendien, sign...

Hemorragische shock is een ernstige complicatie bij ernstig gewonde patiënten, wat leidt tot levensbedreigende zuurstof ondervoeding. We presenteren een gestandaardiseerde methode voor het induceren van hemorragische shock via bloed terugtrekking bij varkens die wordt geleid door hemodynamiek en microcirculatoire cerebrale oxygenatie.

Gestandaardiseerde hemorragische shock inductie geleid door cerebrale Oximetrie en uitgebreide hemodynamische controle bij varkens

Hemorrhagic shock ranks among the main reasons for severe injury-related death. The loss of circulatory volume and oxygen carriers can lead to an ...

Dit gestandaardiseerde model van hemorragische schokinductie geleid door cerebrale oxymetrie en externe hemodynamische monitoring kan worden gebruikt om een realistisch klinisch scenario te simuleren. Het belangrijkste voordeel van dit model is het eenvoudige en zeer flexibele ontwerp, waardoor verschillende niveaus van cardiocelulatory impairment gemakkelijk kunnen worden geselecteerd. Deze technieken maakt de evaluatie van verschillende therapie concepten van hemorragische shock zoals vloeistof reanimatie, stolling, en catecholamine therapie.Deze techniek geeft inzicht in de verschillende pathofysiologische aspecten van hemorragische shock en hemodynamische effecten op cerebrale regionale oxygenatie, zoals beoordeeld door nabij-infrarood spectroscopie. Visualisatie van hemorragische schok kan van cruciaal belang zijn omdat de compensatiemechanismen van de dieren hemodynamische instabiliteit gedurende langere tijd kunnen verhullen. Breng voordat u begint met het bedekken van het inguinale gebied ultrasone gel aan op de ultrasone sonde en bedek het inguinaal van een verdoofd ongeveer 28 kilogram twee tot drie maanden oud varken met een steriel fenestrated laken.Scan de juiste dijbeenvaten met echografie met behulp van de dopplertechniek om onderscheid te maken tussen de slagader en de ader. Visualiseer de lengteas van de rechter dijbeenslagader en doorboort de rechter dijbeenslagader onder echografie met een Seldinger naald onder permanente aspiratie met een vijf milliliter spuit. Helder rood, pulserend bloed bevestigt de juiste positionering van de gewenste naaldpositie.Nadat u de spuit hebt loskoppeld, plaatst u de geleidedraad en trekt u de Seldinger-naald in. Visualiseer de rechter dijbeenader voordat u de sonde 90 graden draait om over te schakelen naar een longitudinale weergave van de ader. Vervolgens prik de rechter dijbeenader onder echografie met de Seldinger naald onder permanente aspiratie met de vijf milliliter spuit.Een hoog zuurstofgehalte is indicatief voor arteriële bloed en een laag zuurstofgehalte is een teken van veneuze bloed. Nadat u de spuit hebt losgekoppeld, plaatst u de geleidedraad en trekt u de Seldinger-naald in. Visualiseer beide rechtervaten onder echografie om de juiste draadpositie te regelen en duw een twee millimeter slagaderlijke inbouw over de geleidedraad in de rechter slagader en de centrale veneuze lijn in de rechter dijbeenader.Spoel vervolgens alle poorten aan en spoel de poorten door met een zoutoplossing. Voor een impulscontour cardiale output, of PiCCO-meting, steek de PiCCO katheter in de juiste arterial introducer schede en sluit de katheter met de arteriële draad van het PiCCO-systeem en de arteriële transducer rechtstreeks aan de PiCCO-poort. Sluit vervolgens de veneuze meeteenheid van het PiCCO-systeem aan op de juiste veneuze inbreederschede.Schakel de drieweg stopcocks van beide transducers open voor de atmosfeer om de systemen te kalibreren tot nul, volgens de instructies van de fabrikant. Schakel het PiCCO-systeem in en bevestig dat er een nieuwe patiënt wordt gemeten. Om de continue hartoutputmeting te kalibreren, klikt u op TD voor thermoverdunning en belast u vier graden Celsius fysiologische zoutoplossing in een spuit van 10 milliliter.Klik op start en injecteer snel en gestaag 10 milliliter van de koude zoutoplossing in de veneuze meeteenheid. Wacht dan tot de meting is voltooid en het systeem vraagt een herhaling voordat u de procedure nog twee keer herhaalt. Voor cerebrale regionale oxygenatie monitoring, eerste stok twee zelfaanhangende in de buurt van infrarood spectroscopie sensoren op het voorhoofd van het varken en sluit de voorversterker op de monitor en de kleur gecodeerde sensor kabelconnectoren aan de voorversterker.Sluit het voorversterkervergrendelingsmechanisme en bevestig de sensoren aan de sensorkabels. Na het inschakelen van de monitor, klik op nieuwe patiënt, voer de studienaam, en klik gedaan. Controleer het binnenkomende signaal.Wanneer het signaal stabiel is, klikt u op het basislijnmenu en stelt u basislijnen in. Als de basislijn al is ingevoerd, klikt u op ja en gebeurtenismarkering om de nieuwe basislijn te bevestigen. Gebruik vervolgens de pijlknoppen op het toetsenbord onder de volgende gebeurtenis om de drie inductiegebeurtenis te selecteren, gevolgd door de geselecteerde gebeurtenis.Voor hemorragische schokinductie, sluit de linker arteriële introducer schede met een drie weg stopcock en rust een poort van de drie weg stopcock met een 50 milliliter spuit en een met een lege infuus fles. Meet en documenteer de exacte hemodynamische parameters en bereken 40% van de hartindex en gemiddelde arteriële druk als hemodynamische doelen. Selecteer de 93 bloedverliesgebeurtenis in het nabij-infrarood spectroscopiesysteem en zuig 50 milliliter bloed in de spuit.Schakel de boom manier stopcock en duw het bloed in de lege fles. Let op het verwijderde bloedvolume en controleer de arteriële bloeddruk, hartindex en de cerebrale regionale oxygenatieverzadiging op de voet. Selecteer vervolgens de gebeurtenis 97 hypotensie.Het gebruik van hemorragische shock heeft uitdagende kritische aspecten en moet met de nodige voorzichtigheid worden uitgevoerd, omdat hemodynamische instabiliteit kan leiden tot plotselinge dood. Met voortdurende bloedverwijdering, cardio bloedsomloop decompensatie zoals gecontroleerd door een aanzienlijke daling van de cerebrale regionale zuurstofverzadiging, cardiale index, intrathoracale bloedvolume index en wereldwijde einde diastolische volume-index optreden. Bovendien zijn significante tachycardie en een afname van de arteriële bloeddruk veel voorkomende manifestaties van hemorragische shock.De stoke volume variatie neemt aanzienlijk toe, terwijl extravasculaire longwater gehalte en systemische vasculaire weerstand zijn meestal onaangetast. Na het beëindigen van de bloedonttrekking blijven de hemodynamische waarden en cerebrale regionale oxygenatieverzadiging meestal op een kritisch laag niveau. Het hemoglobinegehalte en de hematocriet nemen niet direct af tijdens hemorragische schokinductie, maar lactaatniveaus stijgen en de centrale veneuze zuurstofverzadiging neemt af.Hemorragische shock is een ernstige complicatie bij ernstig gewonde patiënten die kunnen leiden tot levensbedreigende zuurstof onder aanvoer. Een snelle en effectieve therapie is nodig om ernstige orgaanschade te voorkomen. Deze procedure kan worden uitgebreid hemodynamische therapie concept zoals vloeistof reanimatie of catecholamine toediening.Verschillende methoden onderzoeken voor het optimaliseren van de behandeling. Dit nieuwe model maakt de weg vrij voor de evaluatie van nieuwe therapieconcepten van hemorragische shock omdat het een realistisch scenario simuleert dat vergelijkbaar is met klinische noodsituaties. Werken met menselijk en dierlijk bloed kan gevaarlijk zijn.Draag altijd handschoenen, een gezichtsmasker en een veiligheidsbril om besmetting met infectieziekten te voorkomen.

standardized-hemorrhagic-shock-induction-guided-cerebral-oximetry

Research

JoVE Journal

Medicine

Geneeskunde

Hypoxisch-ischemische encefalopathie na perinatale asfyxie kan worden bestudeerd met behulp van diermodellen. We tonen de procedures die nodig zijn voor het opzetten van een biggenmodel van neonatale hypoxisch-ischemische encefalopathie.

Een Knorretje Model van Neonatale hypoxisch-ischemische encefalopathie

Presenteren we een protocol voor het creëren van rechts ventriculaire dysfunctie in het model van een varken door inducerende ARDS. We tonen invasieve monitoring van links en rechts ventriculaire cardiale output met behulp van stroom sondes rond de aorta en de longslagader, evenals de metingen van de bloeddruk in de aorta en de longslagader.

Invasieve hemodynamische Monitoring van aorta en pulmonaire slagader hemodynamica in een grote diermodel van ARDS

Hier presenteren we een protocol aan te tonen een hemorragische schok model in varkens die gebruikmaakt van de aorta occlusie als brug naar de definitieve zorg in trauma. Dit model heeft toepassing in het testen van een breed scala van chirurgische en farmacologische therapeutische strategieën.

Volledige en gedeeltelijke aorta occlusie voor de behandeling van hemorragische schok in varkens

De microcirculatie van het ruggenmerg speelt een cruciale rol bij dwarslaesie. De meeste methoden laten geen real-time beoordeling van de microcirculatie van het ruggenmerg toe, wat essentieel is voor de ontwikkeling van microcirculatiegerichte therapieën. Hier stellen we een protocol voor met behulp van Laser-Doppler-Flow Needle-sondes in een groot diermodel van ischemie / reperfusie.

Real-time beoordeling van ruggenmergmicroperfusie in een varkensmodel van ischemie / reperfusie

Hier wordt een protocol gepresenteerd om renale oxygenatie in het medulla en niet-invasieve urine zuurstof partiële druk te meten in een hemorragisch shock varkensmodel om urine zuurstof partiële druk vast te stellen als een vroege indicator van acute nierschade (AKI) en een nieuw reanimatie-eindpunt.

Niet-invasieve en invasieve renale hypoxiemonitoring in een varkensmodel van hemorragische shock

Dit artikel is bedoeld om onderzoekers een gedetailleerde en toegankelijke gids te bieden voor het opzetten van een model van hemorragische shock bij baby's.

Beschrijving van een varkensbabymodel van volumegecontroleerde hemorragische shock

We bieden een protocol voor een experimenteel endotoxemisch shockmodel bij varkens door infusie van lipopolysaccharide.

Lipopolysaccharide-infusie als een endotoxemisch shockmodel bij varkens

Hemorragische shock doodt elk jaar wereldwijd 1,9 miljoen mensen. Kleine dieren worden vaak gebruikt als hemorragische shockmodellen, maar worden geassocieerd met problemen op het gebied van standaardisatie, reproduceerbaarheid en klinische significantie, waardoor hun relevantie wordt beperkt. Dit artikel beschrijft de ontwikkeling van een nieuw klinisch relevant hemorragisch shockmodel bij ratten.

Ontwikkeling van een klinisch relevant hemorragisch shockmodel bij ratten

Het Hemorragische Shock model is een betrouwbare en reproduceerbare bron vergemakkelijken van de identificatie en het begrip van signaalcascades geassocieerd met ontsteking en eindorgaanschade na een trauma. Dit artikel geeft een stap-voor-stap beschrijving van chirurgische en mechanische aspecten die samenhangen met de hemorragische Shock experimentele procedure in muizen.

Vaste Volume of vaste druk: een muizenmodel van hemorragische shock

Cerebrale perfusie controle is aangetoond dat de nauwkeurigheid van ischemische beroerte modellen te verbeteren. Technische moeilijkheden beperken vaak het gebruik van dit essentieel instrument voor cerebrovasculaire onderzoek. In deze video wordt een geoptimaliseerd systeem getoond op een of meerdere locaties hemodynamische bewaking verkrijgen tijdens intraluminale middelste cerebrale slagader occlusie in ratten.

Geoptimaliseerde Systeem voor cerebrale perfusie Monitoring in het Rat Stroke Model van intraluminale midden cerebrale slagader occlusie

Leer een gestandaardiseerd varkensmodel voor hemorragische shock met cerebrale oximetrie en PiCCO-hemodynamische monitoring. Deze methode maakt realistische simulatie van klinische circulatoire insufficientie en evaluatie van therapeutische interventies mogelijk.

Gestandaardiseerde hemorragische shock inductie geleid door cerebrale Oximetrie en uitgebreide hemodynamische controle bij varkens (Video) | JoVE Journal

Gestandaardiseerde hemorragische shock inductie geleid door cerebrale Oximetrie en uitgebreide hemodynamische controle bij varkens

Meer video's verkennen