Name: Beeldvorming van in situ interferon gamma productie in de muis milt na Listeria monocytogenes infectie (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-07-16T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 11 s
Description: Leer een confocale beeldvormingsmethode om interferon gamma-producerende cellen in situ te visualiseren in de muis milt na Listeria monocytogenes infectie. Deze techniek behoudt de weefselintegriteit en karakteriseert het immuunmicro-omgeving.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

We bedanken het personeel van het Kennedy Institute Imaging Facility voor technische assistentie bij Imaging. Dit werk werd gesteund door subsidies van de Kennedy Trust (naar A.G.), en de biotechnologie en biologische wetenschappen Research Council (BB/R015651/1 aan A.G.).

Alle experimenten met muizen waren in overeenstemming met de Britse wet op de wetenschappelijke procedures van 1986.
1. adoptie overdracht van antigene-specifieke CD8+ T-cellen in muizen
<ol><li>Isolaat ovalbumine (OVA)-specifieke CD8+ T-cellen (OTI) met een groene fluorescerende proteïne (OTI-GFP) of rood fluorescerende proteïne (OTI-RFP) uit lymfeklieren suspensie van T-cel receptor transgene muizen9,10 met een muis CD8+ T cell isolation Kit conform de fabricage instructies. Bereid de celsuspensie voor door lymfeklieren te slaan met behulp van een zuiger van de spuit, zoals eerder beschreven11.</li>
	<li>Breng OTI-GFP-of OTI-RFP-cellen (3 x 106 -cellen) over in C57BL/6 wilde muizen ontvangers met een intraveneuze injectie zoals beschreven door Cahalan, et al.12. Gebruik muizen die meestal 6 – 12 weken oud zijn. Opmerking: Deze stap is optioneel en alleen vereist voor het traceren van antigeen-specifieke CD8+ T cellen.</li>
</ol>2. Listeria monocytogenes infectie
<ol><li>Uit te breiden L. monocytogenes genetisch gemodificeerd tot Express OVA (LM-OVA)13 tot een exponentiële fase van de groei in Bouillon hart infusie bij 37 °c onder voorzichtige opwinding tot de OD600 bereikt 0,08 – 0.1, zoals eerder beschreven in referentie 14.</li>
	<li>Injecteer 100 μL (maximaal volume = 200 μL) van 0,1 – 0,5 LD50 LM-OVA verdund in fosfaat-gebufferde zoutoplossing (PBS) door middel van een intraveneuze injectie met een 29 G insulinespuit, in C57BL/6 wild type muizen ontvangers met OTI-GFP of OTI-RFP cellen, indien geïndiceerd. Opmerking: In onze handen komt 0,1 x LD50 LM-OVA overeen met 2 x 104 kolonie vormende eenheden (CFU). L. monocytogenes genetisch gemodificeerd om te Express OVA wordt gebruikt voor het activeren van de eerder overgedragen OTI CD8+ T cellen, maar andere stammen van L. monocytogenes kunnen worden gebruikt.</li>
</ol>3. behandeling met Brefeldin A (BFA) om de secretie van cytokine te blokkeren
<ol><li>Injecteer 250 μg BFA in 200 μL PBS intraperitoneaal 6 h vóór het opofferen van de muis met behulp van een insulinespuit van 29 G. Opmerking: Gelyofiliseerd BFA wordt voor het eerst geresuspendeerd in dimethylsulfoxide (DMSO) om de voorraad van 25 mg/mL concentratie te bereiden. De BFA wordt vervolgens in PBS bij kamertemperatuur (RT) verdund om kristallisatie voorafgaand aan de injectie te voorkomen. Remming van cytokine secretie induceert accumulatie van IFNγ in cellen. Dit is cruciaal voor de detectie van cytokine.</li>
</ol>4. de milt oogsten
<ol><li>Euthaniseer de muizen met behulp van de stijgende concentratie van CO2 gevolgd door cervicale dislocatie. Opmerking: Volg de richtlijnen van de lokale instelling voor humane euthanasie van muizen.</li>
	<li>Reinig de buik met 70% ethanol, maak een incisie met een schaar om een 1 – 2 cm door de huid te knippen op de linkerflank van de muis, waar de milt zich bevindt. Maak voorzichtig een incisie in het peritoneum om de milt bloot te leggen en neem het uit met een pincet. Oogst de milt, wees voorzichtig niet te knijpen met een tang of snijd het om te voorkomen dat de milt architectuur verstoren.</li>
</ol>5. fixatie van de milt met Paraformaldehyde (PFA)
<ol><li>Bereid de fixatieve oplossing door het mengen van 3,75 mL PBS en 3,75 mL 0,2 M L-lysine. Voeg 21 mg natrium m-periodate toe en meng goed. Voeg vervolgens 2,5 mL 4% PFA en 20 μL van 12 N NaOH toe. Opmerking: Gebruik de fixatieve oplossing op dezelfde dag en gooi het teveel weg. Niet bewaren. Deze fixatie stap is belangrijk als het monster fluorescerende eiwitten zoals GFP bevat. Gebruik geen PFA dat sporen van methanol bevat, omdat het fluorescerende eiwitten denatureert. Let op: PFA is giftig en moet met voorzichtigheid worden behandeld.</li>
	<li>Dompel de milt in de fixeer-en oplossing voor een minimum van 4 h, meestal 16 – 20 h bij 4 °C onder zachte opwinding.</li>
	<li>Gooi de fixatieve oplossing weg en voeg 5 mL PBS gedurende 5 minuten bij RT onder zachte opwinding.</li>
	<li>Vervang de PBS door 5 ml verse PBS Incubeer gedurende 1 uur bij 4 °c onder zachte opwinding.</li>
	<li>Vervang de PBS met 5 mL 30% sucrose, inbroed voor 12 – 24 uur. Opmerking: Deze methode helpt bij het handhaven van de weefsel morfologie. Na incubatie met de sacharoseoplossing moet het orgel aan de onderkant van de put zinken.</li>
</ol>6. invriezen en snijden
<ol><li>Zet droogijs in een grote recipiënt en plaats een kleinere recipiënt binnen met ongeveer 50 mL zuivere methanol en een paar stukjes droogijs.</li>
	<li>Droog de milt voorzichtig af op een pluisvrij doekje.</li>
	<li>Plaats de milt in een basis mal met een druppel van optimale snijtemperatuur (OCT) op de bodem. Wees voorzichtig om geen bubbels te produceren. Voeg een LGO toe over de milt.</li>
	<li>Met een tang, stort de basis mal op het oppervlak van de methanol en zorg ervoor dat deze de LGO niet aanraakt. het weefsel zo snel mogelijk invriezen om artefacten te minimaliseren.</li>
	<li>Wanneer het bevroren is, gaat u verder met snijden. Opmerking: Bevroren milt kan gedurende enkele maanden bij-80 °C worden gehouden.</li>
	<li>
Sectie het weefsel met behulp van een cryomicrotome.
	<ol>
<li>Stel de kamertemperatuur op de cryostaat in op-21 °C. Snijd secties van de gewenste dikte (meestal rond 10 μm). Dit protocol werkt met diktes tot 30 μm.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Verzamel secties op glas Microscoop dia's (Zie de tabel van de materialen) en Inspecteer visueel. Opmerking: Secties kunnen gedurende enkele maanden bij-80 °C worden bewaard.</li>
</ol>7. immunofluorescentie kleuring
<ol><li>Laat de sectie naar RT komen.</li>
	<li>Teken een cirkel met een vloeistof Blokker (bijv. PAP-pen) rond de weefsel sectie. Trek buiten de LGO of het zal niet vasthouden.</li>
	<li>Na het drogen, Hydrateer het monster door het plaatsen van PBS op de weefsel sectie gedurende 5 minuten. Opmerking: Het volume dat op de sectie wordt geplaatst, is afhankelijk van de grootte van de sectie. Meestal gebruiken we 100 – 300 μL. Laat de delen niet drogen zodra ze opnieuw gehydrateerd zijn.</li>
	<li>Spoel ten minste tweemaal met PBS om er zeker van te zijn dat de sectie goed aan de glijbaan wordt gehecht.</li>
	<li>
Voeg blokkerende oplossing toe aan de sectie om niet-specifieke binding van antilichamen te verkleinen.
	<ol>
<li>Bereid blokkerende oplossing als volgt: PBS met 0,1% Triton X100, 2% foetaal kalf serum (FCS), 2,5 μg/mL FC receptor blocker (anti-muis CD16/32). Voeg vervolgens 2 – 5% normaal serum toe van de soort van elk secundair antilichaam van het kleurings paneel. Opmerking: Als de antilichamen direct geconjugeerd/biotinyated zijn, voeg dan 5% normaal serum toe van de soorten van elk primair antilichaam. Als een primair antilichaam en een van de secundaire antilichamen afkomstig zijn van dezelfde soort (bijv. primair antilichaam dat in konijn en secundair konijn anti-rat wordt verhoogd), gebruik dan niet de normale serum soort omdat het het achtergrond signaal zal verhogen.</li>
		<li>Verwijder voorzichtig de PBS uit de sectie door aspiratie en voeg 100 μL van de blokkerende oplossing per monster sectie toe. Inincuberen in een natte kamer met een minimum van 1 uur bij RT.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Vlek met primaire antilichamen.
	<ol>
<li>Verdun de primaire antilichamen tegen de optimale concentratie in de blokkerende oplossing. De algemene uitgangspunt concentratie antilichamen is 5 μg/mL, maar het moet worden geoptimaliseerd voor elk antilichaam en weefsel. Opmerking: Als de antilichamen direct worden geconjugeerd, centrifugeer de antilichaammix op 17,135 x g (13,500 rpm) gedurende 15 minuten bij 4 °c voordat u deze gebruikt. Fluoroforen kunnen neerslaan. Deze stap zal de neerslag pellet en zo voorkomen dat niet-specifieke afzetting van de neergeprecipiteerde antilichamen op de glijbaan.</li>
		<li>Vervang de blokkerende oplossing door de primaire antilichaammix voor elk monster.</li>
		<li>Inincuberen gedurende 4 uur bij RT of 's nachts (OVN) bij 4 °C in een overdekte natte kamer.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Voer wassen uit.
	<ol>
<li>Bereid de Wasbuffer voor door 2% FCS toe te voegen aan PBS.</li>
		<li>Was 4 keer met wasbuffer: één snelle (zonder incubatie), één voor 10 min en twee gedurende 5 min. Voer vervolgens een laatste wasbeurt uit met PBS gedurende 5 minuten.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Kleuring met secundaire antilichamen.
	<ol>
<li>Verdun de secundaire antilichamen van belang bij de optimale concentratie in de blokkerende oplossing. Centrifugeer de mix, zoals beschreven voor de primaire antilichamen.</li>
		<li>Verwijder de uiteindelijke reinigingsoplossing. Voeg de secundaire antilichaammix bovenop de sectie toe en incuberen gedurende 1 – 4 uur bij RT in een overdekte natte kamer.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Was 4 keer met wasbuffer: één snelle (zonder incubatie), één voor 10 min en twee gedurende 5 min. Voer vervolgens een laatste wasbeurt uit met PBS gedurende 5 minuten.</li>
	<li>Verwijder de uiteindelijke reinigingsoplossing. Laat de PBS verdampen, maar doe de sectie niet te droog. Plaats een druppel van het afdekmedium bovenop het monster en leg het afdekglas er voorzichtig bovenop. Het afdekmedium moet de hele sectie herstellen. Laat het polymerase OVN bij RT beschermd tegen licht. Opmerking: Teken een cirkel rond de sectie aan de achterzijde van de dia voordat u het afdekmedium toepast. Zodra het afdekmedium is aangebracht, kan het weefsel moeilijk te zien zijn.</li>
	<li>Bewaar de glaasjes in het donker op 4 °C tot ze klaar zijn voorbeeld.</li>
</ol>8. beeldvorming en analyse
<ol><li>Voer Imaging van de kleuring uit met een confocale Microscoop. Opmerking: In dit protocol werd een omgekeerde spectrale laser scanning-microscoop gebruikt (Zie de tabel met materialen), samen met de doelstellingen 10X/na 0,40 of 60x/na 1,4 (voor analyse van cytokine sub-cellulaire lokalisatie). Golflengten van excitatie en emissie worden voor elke de en fluorescerende eiwitten in de materiaal tabelweergegeven.</li>
	<li>Voer analyses en kwantificering uit zoals vereist met beeldverwerkingssoftware (bijvoorbeeld Imaris of Fiji).</li>
</ol>

<ol><li>Iwasaki, A., Medzhitov, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Control+of+adaptive+immunity+by+the+innate+immune+system%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Immunology%22%5BJournal%5D)">Control of adaptive immunity by the innate immune system.</a> Nature Immunology. 16 (4), 343-353 (2015).</li>
<li>Harty, J. T., Bevan, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Specific+immunity+to+Listeria+monocytogenes+in+the+absence+of+IFN+gamma%5BTitle%5D)+AND+%22Immunity%22%5BJournal%5D)">Specific immunity to Listeria monocytogenes in the absence of IFN gamma.</a> Immunity. 3 (1), 109-117 (1995).</li>
<li>Kubota, K., Kadoya, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Innate+IFN-gamma-producing+cells+in+the+spleen+of+mice+early+after+Listeria+monocytogenes+infection%3A+importance+of+microenvironment+of+the+cells+involved+in+the+production+of+innate+IFN-gamma%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Immunology%22%5BJournal%5D)">Innate IFN-gamma-producing cells in the spleen of mice early after Listeria monocytogenes infection: importance of microenvironment of the cells involved in the production of innate IFN-gamma.</a> Frontiers in Immunology. 2 (26), (2011).</li>
<li>Dunn, P. L., North, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+gamma+interferon+production+by+natural+killer+cells+is+important+in+defense+against+murine+listeriosis%5BTitle%5D)+AND+%22Infection+and+Immunity%22%5BJournal%5D)">Early gamma interferon production by natural killer cells is important in defense against murine listeriosis.</a> Infection and Immunity. 59 (9), 2892-2900 (1991).</li>
<li>Krummel, M. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Paracrine+costimulation+of+IFN-gamma+signaling+by+integrins+modulates+CD8%2B+T+cell+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Paracrine costimulation of IFN-gamma signaling by integrins modulates CD8+ T cell differentiation.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 115 (45), 11585-11590 (2018).</li>
<li>Curtsinger, J. M., Agarwal, P., Lins, D. C., Mescher, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autocrine+IFN-gamma+promotes+naive+CD8%2B+T+cell+differentiation+and+synergizes+with+IFN-alpha+to+stimulate+strong+function%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Immunology%22%5BJournal%5D)">Autocrine IFN-gamma promotes naive CD8+ T cell differentiation and synergizes with IFN-alpha to stimulate strong function.</a> Journal of Immunology. 189 (2), 659-668 (2012).</li>
<li>Hosking, M. P., Flynn, C. T., Whitton, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antigen-specific+naive+CD8%2B%2B+T+cells+produce+a+single+pulse+of+IFN-gamma+in+vivo+within+hours+of+infection%2C+but+without+antiviral+effect%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Immunology%22%5BJournal%5D)">Antigen-specific naive CD8++ T cells produce a single pulse of IFN-gamma in vivo within hours of infection, but without antiviral effect.</a> Journal of Immunology. 193 (4), 1873-1885 (2014).</li>
<li>Croxford, A. L., Buch, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cytokine+reporter+mice+in+immunological+research%3A+perspectives+and+lessons+learned%5BTitle%5D)+AND+%22Immunology%22%5BJournal%5D)">Cytokine reporter mice in immunological research: perspectives and lessons learned.</a> Immunology. 132 (1), 1-8 (2011).</li>
<li>Gerard, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Secondary+T+cell-T+cell+synaptic+interactions+drive+the+differentiation+of+protective+CD8%2B%2B+T+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Immunology%22%5BJournal%5D)">Secondary T cell-T cell synaptic interactions drive the differentiation of protective CD8++ T cells.</a> Nature Immunology. 14 (4), 356-363 (2013).</li>
<li>Engelhardt, J. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Marginating+dendritic+cells+of+the+tumor+microenvironment+cross-present+tumor+antigens+and+stably+engage+tumor-specific+T+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Cell%22%5BJournal%5D)">Marginating dendritic cells of the tumor microenvironment cross-present tumor antigens and stably engage tumor-specific T cells.</a> Cancer Cell. 21 (3), 402-417 (2012).</li>
<li>Matheu, M. P., Cahalan, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+CD4%2B+T+cells+from+mouse+lymph+nodes+using+Miltenyi+MACS+purification%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Isolation of CD4+ T cells from mouse lymph nodes using Miltenyi MACS purification.</a> Journal of Visualized Experiments. (9), 409(2007).</li>
<li>Matheu, M. P., Parker, I., Cahalan, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissection+and+2-photon+imaging+of+peripheral+lymph+nodes+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Dissection and 2-photon imaging of peripheral lymph nodes in mice.</a> Journal of Visualized Experiments. (7), 265(2007).</li>
<li>Pope, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organ-specific+regulation+of+the+CD8%2B+T+cell+response+to+Listeria+monocytogenes+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Immunology%22%5BJournal%5D)">Organ-specific regulation of the CD8+ T cell response to Listeria monocytogenes infection.</a> Journal of Immunology. 166 (5), 3402-3409 (2001).</li>
<li>Jones, G. S., D'Orazio, S. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Listeria+monocytogenes%3A+cultivation+and+laboratory+maintenance%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Protocols+in+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Listeria monocytogenes: cultivation and laboratory maintenance.</a> Current Protocols in Microbiology. 31, 1-7 (2013).</li>
<li>Kang, S. J., Liang, H. E., Reizis, B., Locksley, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+hierarchical+clustering+and+activation+of+innate+immune+cells+by+dendritic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Immunity%22%5BJournal%5D)">Regulation of hierarchical clustering and activation of innate immune cells by dendritic cells.</a> Immunity. 29 (5), 819-833 (2008).</li>
<li>Chang, S. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+early+gamma+interferon+%28IFN-gamma%29+expression+during+murine+listeriosis%3A+identification+of+NK1.1%2B+CD11c%2B+cells+as+the+primary+IFN-gamma-expressing+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Infection+and+Immunity%22%5BJournal%5D)">Characterization of early gamma interferon (IFN-gamma) expression during murine listeriosis: identification of NK1.1+ CD11c+ cells as the primary IFN-gamma-expressing cells.</a> Infection and Immunity. 75 (3), 1167-1176 (2007).</li>
<li>Mollenhauer, H. H., Morre, D. J., Rowe, L. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alteration+of+intracellular+traffic+by+monensin%3B+mechanism%2C+specificity+and+relationship+to+toxicity%5BTitle%5D)+AND+%22Biochimica+et+Biophysica+Acta%22%5BJournal%5D)">Alteration of intracellular traffic by monensin; mechanism, specificity and relationship to toxicity.</a> Biochimica et Biophysica Acta. 1031 (2), 225-246 (1990).</li>
<li>Helms, J. B., Rothman, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inhibition+by+brefeldin+A+of+a+Golgi+membrane+enzyme+that+catalyses+exchange+of+guanine+nucleotide+bound+to+ARF%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Inhibition by brefeldin A of a Golgi membrane enzyme that catalyses exchange of guanine nucleotide bound to ARF.</a> Nature. 360 (6402), 352-354 (1992).</li>
<li>Schuerwegh, A. J., Stevens, W. J., Bridts, C. H., De Clerck, L. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+monensin+and+brefeldin+A+for+flow+cytometric+determination+of+interleukin-1+beta%2C+interleukin-6%2C+and+tumor+necrosis+factor-alpha+in+monocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Cytometry%22%5BJournal%5D)">Evaluation of monensin and brefeldin A for flow cytometric determination of interleukin-1 beta, interleukin-6, and tumor necrosis factor-alpha in monocytes.</a> Cytometry. 46 (3), 172-176 (2001).</li>
<li>Nylander, S., Kalies, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Brefeldin+A%2C+but+not+monensin%2C+completely+blocks+CD69+expression+on+mouse+lymphocytes%3A+efficacy+of+inhibitors+of+protein+secretion+in+protocols+for+intracellular+cytokine+staining+by+flow+cytometry%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Immunology+Methods%22%5BJournal%5D)">Brefeldin A, but not monensin, completely blocks CD69 expression on mouse lymphocytes: efficacy of inhibitors of protein secretion in protocols for intracellular cytokine staining by flow cytometry.</a> Journal of Immunology Methods. 224 (1-2), 69-76 (1999).</li>
</ol>

De auteurs hebben niets te onthullen.

In dit manuscript presenteren we een methode om de IFNγ-productie in de milt te visualiseren na een infectie van L. monocytogenes bij muizen. Dit protocol is eenvoudig en kan worden aangepast aan andere weefsels en cytokine triggers, maar de volgende aspecten moeten worden overwogen. Cellen vaak snel afscheiden van de cytokines die ze produceren, en cytokines worden snel opgepikt door naburige cellen. Het is als zodanig moeilijk om cytokines in situ te detecteren. Een veelgebruikte methode om de cytokine productie snel opnieuw te initiëren, is de cellen ex vivo opnieuw te stimuleren, gevolgd door cytokine detectie in de media door enzym-gebonden immunosorptie test. In deze context gaat alle informatie over de ruimtelijke lokalisatie van de cytokine-producerende cellen verloren. Bovendien weerspiegelt de productie van cytokine na herstimulatie niet noodzakelijkerwijs of cytokines daadwerkelijk worden geproduceerd en uitgescheiden in vivo, maar geeft het de capaciteit van een bepaalde celpopulatie aan om cytokines te produceren. Daarom zullen beide methoden verschillende informatie bieden en moet men overwegen welke informatie het meest waardevol is voor hun experiment.
Om intracellulaire cytokines te detecteren, gebruikt onze methode een intracellulaire eiwit transport remmer om cytokines in cellen te vangen en signaaldetectie te verhogen. Echter, het is belangrijk op te merken dat deze remmers van invloed zijn op het normale transport van eiwitten uit het endotheel reticulum (re) naar het Golgi-apparaat en naar de secretoire blaasje die hun vrijlating aantasten, wat toxiciteit kan veroorzaken. Als gevolg daarvan, BFA, of een andere remmer, moet worden gebruikt voor een korte periode van tijd, meestal niet meer dan een paar uur. Vandaar, het is belangrijk om de juiste balans tussen de dosis van de remmer en de tijd van de behandeling te vinden om het niveau van cytokines gevangen in de cel te optimaliseren zonder ernstige cytotoxische effecten veroorzaken. Deze variabelen kunnen verschillen tussen cytokinen en de toedieningsweg voor de BFA. In ons infectie model werd de BFA intraperitoneaal toegediend om een snelle systemische dispersie te bieden, maar het kan ook intraveneus worden geleverd.
De meest gebruikte intracellulaire eiwit transport remmers zijn BFA, hier gebruikt, en monensin (MN). Deze remmers worden vaak gebruikt om te accumuleren en te studeren cytokine productie, maar ze hebben kleine verschillen in hun mechanismen van actie. MN remt het transport van eiwitten binnen het Golgi-apparaat en verzamelt dus eiwitten in de Golgi17 terwijl BFA coatomer-eiwit complex-I Recruitment voorkomt, remming van de retrograde beweging van eiwitten naar het endoplasmisch reticulum (er) en daarmee het bevorderen van accumulatie van cytokines in de ER18. Als zodanig, het kiezen van de beste intracellulaire eiwit transport inhibitor zal afhangen van verschillende factoren, zoals de cytokine worden gedetecteerd. Bijvoorbeeld, het is aangetoond in lipopolysaccharide-geïnduceerde intracellulaire kleuring van monocyten dat BFA is efficiënter voor het meten van de cytokines IL-1β, IL-6 en TNF dan MN19.
Dit protocol omvat de visualisatie van de cytokine in situ door confocale microscopie en daarom zijn er slechts een beperkt aantal markers dan kan worden gebruikt om de cytokine-producerende cellen en hun micro-omgeving te bestuderen. Het is ook noodzakelijk om te bedenken dat eiwit transport remmers zoals BFA of MN de normale expressie van verschillende eiwitten verstoren en daarom het gebruik ervan bij het bestuderen van de gelijktijdige uitdrukking van bepaalde activerings celoppervlak markeringen moet worden benaderd Zorgvuldig. Bijvoorbeeld, BFA maar niet MN blokkeert de uitdrukking van CD69 in lymfklier lymfocyten20. Ondanks deze beperking, confocale beeldvorming maakt subcellulaire lokalisatie van cytokines, evenals de richting van de cytokine secretie binnen de cel. De gegevens die met dit protocol worden gegenereerd, suggereren dat NK-cellen de neiging hebben om IFN-y in een diffuus patroon af te scheiden terwijl CD8+ t-cellen de IFNγ-secretie lijken te richten op andere CD8+ t-cellen die in directe interactie met hen zijn5.
Tot slot, dit protocol is geschikt voor het visualiseren van een verscheidenheid van cytokines in situ en identificeren van de productiecellen en hun micro-omgeving na vele triggers zoals infectie of auto-immuniteit. De verkregen informatie is instrumentaal om te begrijpen het belang van de in vivo ruimtelijke orkestratie van verschillende celtypen en de cytokine die zij produceren, noodzakelijk voor een efficiënte immuunrespons.

Het indelen van een efficiënte immuunrespons tegen een pathogeen vereist een complexe integratie van signalen die worden weergegeven door een verscheidenheid aan immuuncellen die vaak worden verspreid onder het organisme. Om te communiceren, deze cellen produceren kleine oplosbare eiwitten met meerdere biologische functies die fungeren als immunomodulatoren met de naam cytokines. Cytokines controle cel werving, activering en proliferatie en daarom staat bekend als belangrijke spelers in de bevordering van immuunresponsen1. Effectieve immuunresponsen vereisen cytokines om te worden vrijgelaten in een zeer georganiseerd spatiotemporele patroon dat specifieke cellen verbindt om specifieke signalen te induceren. Daarom is het cruciaal om de productie van cytokine en de signalering ervan in situ te bestuderen, rekening houdend met de micro-omgeving waarin cytokines worden geproduceerd.
Listeria monocytogenes (L. monocytogenes) is een gram-positieve intracellulaire bacterie die wordt gebruikt als een prime-model om immuunresponsen te bestuderen op intracellulaire pathogenen bij muizen. Een cytokine, IFN gamma (IFNγ) wordt snel geproduceerd, binnen 24 h na L. monocytogenes infectie. Het is noodzakelijk voor de klaring van pathogenen, omdat muizen die zijn uitgeschakeld voor IFNγ zeer gevoelig zijn voor L. monocytogenes infectie2. IFNγ is pleiotrope en geproduceerd door meerdere cellen na infectie3. Hoewel IFNγ geproduceerd door Natural Killer (NK) cellen vereist is voor directe anti-bacteriële activiteit4, is aangetoond dat ifnγ uit andere bronnen andere functies heeft. Sterker nog, wij en anderen hebben onlangs geconstateerd dat ifnγ geproduceerd door CD8 + T-cellen een specifieke functie heeft in het direct reguleren van T-celdifferentiatie5,6,7. Als zodanig, begrijpen welke cellen produceren IFNγ (en in welke micro-omgeving) is cruciaal voor het ontleden van de functie.
De meest voorkomende techniek om de productie van cytokine te bestuderen, is gebaseerd op intracellulaire cytokine kleuring geanalyseerd door flow cytometrie. Deze methode maakt gelijktijdige detectie van meerdere cytokines in combinatie met celoppervlak markeringen binnen een enkel monster mogelijk, wat een uiterst nuttig hulpmiddel biedt om cytokine productie te bestuderen. Echter, met behulp van de bovengenoemde techniek impliceert het verliezen van ruimtelijke informatie. Daarnaast vertrouwt cytokine detectie vaak op in vitro re-stimulatie om cytokine detectie mogelijk te maken. Als zodanig, de capaciteit van een bepaalde cel om een cytokine te produceren wordt geanalyseerd, en het niet noodzakelijkerwijs correleren met werkelijke cytokine secretie in situ. Andere methoden gebruiken reporter muizen waarvoor fluorescerende eiwit expressie correleert met cytokine transcriptie en maakt visualisatie mogelijk op één cel niveau8. Hoewel deze methode cytokine-transcriptie in situ kan volgen, zijn er een beperkt aantal cytokine-reporter muizen beschikbaar. Bovendien kunnen transcriptie, vertaling en secretie soms ontkoppeld worden, en fluorescerende eiwitten hebben een verschillende halfwaardetijd dan de cytokine die ze rapporteren, waardoor deze methode soms niet voldoende is voor in situ cytokine visualisatie.
Hier beschrijven we een methode om in situ cytokine productie te visualiseren door confocale microscopie bij een enkele celresolutie. Deze techniek maakt de visualisatie van de cellulaire bron en de omringende niche in het weefsel mogelijk. Dit protocol beschrijft specifiek de visualisatie van de IFNγ-productie in de milt van L. monocytogenes geïnfecteerde muizen, die zich hier richten op ifnγ-productie door NK-cellen en antigeen-specifieke CD8+ T-cellen. Echter, het kan worden uitgebreid en aangepast aan de karakterisering van een cytokine productie in de context van andere situaties waar cytokines worden geproduceerd, zoals infectie, ontsteking of auto-immuunziekten, zolang de beoogde cytokine kan worden bewaard in cellen door intracellulaire eiwit transport remmer.

<table><tbody><tr><td>Brefeldin A</td><td>Cambridge bioscience</td><td>CAY11861</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehyde</td><td>Agar scientific</td><td>R1018</td><td></td></tr><tr><td>L-Lysin dihydrochloride</td><td>Sigma lifescience</td><td>L5751</td><td></td></tr><tr><td>Sodium meta-periodate</td><td>Thermo Scientific</td><td>20504</td><td></td></tr><tr><td>D(+)-saccharose</td><td>VWR Chemicals</td><td>27480.294</td><td></td></tr><tr><td>Precision wipes paper Kimtech science</td><td>Kimberly-Clark Professional</td><td>75512</td><td></td></tr><tr><td>O.C.T. compound, mounting medium for cryotomy</td><td>VWR Chemicals</td><td>361603E</td><td></td></tr><tr><td>Fc block, purified anti-mouse CD16/32, clone 93</td><td>Biolegend</td><td>101302</td><td>Antibody clone and Concentration used: 2.5 mg/ml</td></tr><tr><td>Microscope slides - Superfrost Plus</td><td>VWR Chemicals</td><td>631-0108</td><td></td></tr><tr><td>anti-CD169 - AF647</td><td>Biolegend</td><td>142407</td><td>Antibody clone and Concentration used: clone 3D6.112 1.6 mg/ml Excitation wavelength: 650 Emission wavelength: 65</td></tr><tr><td>anti-F4/80 - APC</td><td>Biolegend</td><td>123115</td><td>Antibody clone and Concentration used: clone BM8 2.5 mg/ml Excitation wavelength: 650 Emission wavelength: 660</td></tr><tr><td>anti-B220 - PB</td><td>Biolegend</td><td>103230</td><td>Antibody clone and Concentration used: clone RA3-6B2 1.6 mg/mL Excitation wavelength: 410 Emission wavelength: 455</td></tr><tr><td>anti-IFNg - biotin</td><td>Biolegend</td><td>505804</td><td>Antibody clone and Concentration used: clone XMG1.2 5 mg/mL</td></tr><tr><td>anti-IFNg - BV421</td><td>Biolegend</td><td>505829</td><td>Antibody clone and Concentration used: clone XMG1.2 5 mg/mL Excitation wavelength: 405 Emission wavelength: 436</td></tr><tr><td>anti-Nkp46/NCRI</td><td>R&amp;D Systems</td><td>AF2225</td><td>Antibody clone and Concentration used: goat 2.5 mg/mL</td></tr><tr><td>anti-goat IgG-FITC</td><td>Novusbio</td><td>NPp 1-74814</td><td>Antibody clone and Concentration used: 1 mg/mL Excitation wavelength: 490 Emission wavelength: 525</td></tr><tr><td>Streptavidin - PE</td><td>Biolegend</td><td>405203</td><td>Antibody clone and Concentration used: 2.5 mg/mL Excitation wavelength: 565 Emission wavelength: 578</td></tr><tr><td>Streptavidin - FITC</td><td>Biolegend</td><td>405201</td><td>Antibody clone and Concentration used: 2.5 mg/mlL Excitation wavelength: 490 Emission wavelength: 525</td></tr><tr><td>Fluoromount G</td><td>SouthernBiotech</td><td>0100-01</td><td></td></tr><tr><td>Cover glasses 22 mm x 40 mm</td><td>Menzel-Glazer</td><td>12352128</td><td></td></tr><tr><td>Liquid blocker super PAP PEN mini</td><td>Axxora</td><td>CAC-DAI-PAP-S-M</td><td></td></tr><tr><td>Imaris - Microscopy Image Analysis Software</td><td>Bitplane</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Confocal microscope - Olympus FV1200 Laser scanning microscope</td><td>Olympus</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cryostat - CM 1900 UV</td><td>Leica</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Base mould disposable</td><td>Fisher Scientific UK Ltd</td><td>11670990</td><td></td></tr><tr><td>PBS 1x</td><td>Life Technologies Ltd</td><td>20012068</td><td></td></tr><tr><td>BHI Broth</td><td>VWR Brand</td><td>303415ZA</td><td></td></tr><tr><td>GFP</td><td></td><td></td><td> Excitation wavelength: 484 Emission wavelength: 507</td></tr><tr><td>RFP</td><td></td><td></td><td> Excitation wavelength: 558 Emission wavelength: 583</td></tr><tr><td>Insulin syringe, with needle, 29 G</td><td>VWR International</td><td>BDAM324824</td><td></td></tr><tr><td>C57BL/6 wild type mice</td><td>Charles River</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

beeldvorming van in situ interferon gamma productie in de muis milt na listeria monocytogenes infectie

Imaging of In Situ Interferon Gamma Production in the Mouse Spleen following Listeria monocytogenes Infection

Cytokines zijn kleine eiwitten uitgescheiden door cellen, bemiddel celcelcommunicatie die cruciaal zijn voor effectieve immuunresponsen. Een kenmerk van cytokines is hun pleiotropisme, omdat ze worden geproduceerd door en kunnen invloed hebben op een veelheid van celtypen. Als zodanig is het belangrijk om niet alleen te begrijpen welke cellen cytokines produceren, maar ook in welke omgeving zij dit doen, om specifiekere therapieën te definiëren. Hier beschrijven we een methode om de productie van cytokine in situ te visualiseren na bacteriële infectie. Deze techniek is gebaseerd op beeldvormende cytokine-producerende cellen in hun eigen omgeving door confocale microscopie. Om dit te doen, weefsel secties zijn gekleurd voor markers van meerdere celtypen samen met een cytokine vlek. Sleutel tot deze methode, cytokine secretie wordt direct geblokkeerd in vivo voor het oogsten van het weefsel van belang, waardoor detectie van de cytokine die zich in de producerende cellen verzameld. De voordelen van deze methode zijn meervoudig. Ten eerste wordt de micro-omgeving waarin cytokines worden geproduceerd bewaard, wat uiteindelijk kan informeren over de signalen die nodig zijn voor de productie van cytokine en de cellen die door deze cytokines worden beïnvloed. Bovendien geeft deze methode een indicatie van de locatie van de productie van cytokine in vivo, omdat deze niet afhankelijk is van kunstmatige in-vitro herstimulatie van de producerende cellen. Het is echter niet mogelijk om gelijktijdig cytokine downstream signalering te analyseren in cellen die de cytokine ontvangen. Evenzo komen de waargenomen cytokine signalen alleen overeen met het tijdvenster waarin de cytokine secretie werd geblokkeerd. Hoewel we de visualisatie beschrijven van het cytokine interferon (IFN) gamma in de milt na muis infectie door de intracellulaire bacteriën Listeria monocytogenes, kan deze methode mogelijk worden aangepast aan de visualisatie van elke cytokine in de meeste organen.

IFNγ geproduceerd binnen de eerste 24 h na een infectie met Listeria monocytogenes is van cruciaal belang om de verspreiding van dit pathogeen te beheersen. Met dit protocol kunnen we niet alleen visualiseren welke cellen IFNγ produceren, maar ook of ze zich in een specifieke micro omgeving bevinden. Om ons te helpen de architectuur van de milt te afbakenen, hebben we gelabelde cellen bekend om een bepaalde locatie binnen de milt. De marker F4/80 labels alle macrofagen en markeert de rode pulp. De marker B220 Labels B cellen en markeert B celfollikels rond de T Cell zone. De marker CD169 labels marginale zone macrofagen, rond de witte pulp (Figuur 1). De meeste OTI cellen, of ze nu IFNγ of niet uitdrukken, zijn aanwezig in de witte pulp en als zodanig zijn alle afbeeldingen die van de witte pulp, tenzij aangegeven.
Een kritieke stap in dit protocol is het gebruik van BFA voor de remming van de secretie van cytokine. De detectie van IFNγ door NK-cellen was inderdaad sterk aangetast wanneer muizen niet werden behandeld met BFA (Figuur 2). Met behulp van ons protocol, we konden vinden dat ten minste twee celtypen produceren ifnγ 24 h na infectie — NK cellen en antigeen-specifieke CD8+ T cellen (Figuur 3) — vergelijkbaar met wat eerder is gevonden door flow flowcytometrieonderzoeken3.
In situ beeldvorming van IFNγ producerende cellen bleek dat de productie van IFNγ niet verspreid over de milt, maar geconcentreerd in discrete gebieden (Figuur 4). Inderdaad, we vonden dat T cellen werden geactiveerd door de milt (gemarkeerd door T-cel clustering), en dit niet noodzakelijkerwijs correleren met IFNγ productie. Een waarschijnlijke verklaring is dat de ifnγ-productie beperkt is tot de locatie van de geïnfecteerde cellen15,16en T-cel activering — vertegenwoordigd door clustering — kan worden ondersteund door beide geïnfecteerde (ifnγ-positief) en niet-geïnfecteerde (ifnγ negatieve) antigeen-cellen presenteren. Andere vlekken zullen nodig zijn om de exacte locatie te lokaliseren en een indicatie te krijgen van het mechanisme dat de IFNγ-productie beperkt tot dit gebied en de relatie met antigeen overdracht. Interessant genoeg vonden we dat geactiveerde, geclusterde, antigeen-specifieke T-cellen zich in de witte pulp van de milt bevinden, maar ze produceren alleen IFNγ in regio's waar NK-cellen met hen samenkomen (Figuur 5). Als zodanig, de aanwezigheid van NK-cellen afbakenen een specifieke micro-omgeving in de witte pulp, waarin geclusterde T-cellen produceren IFNγ in tegenstelling tot geclusterde T-cellen in het andere deel van de witte pulp. Dit suggereert dat de activering van de T-cel niet volstaat om de productie van IFNγ op dit tijdstip te dicteren.
Een andere interessante functie gemarkeerd door ons protocol is de verschillende sub-cellulaire lokalisatie van IFNγ in NK versus CD8+ T cellen5. Zoals getoond in Figuur 6, terwijl de ifnγ-LOKALISATIE in NK-cellen wordt verspreid in de cytosol, REKRUTEREN CD8+ T-cellen vaak ifnγ naar een andere T-cel.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59819/59819fig01.jpg"> Figuur 1: markeringen die de milt-architectuur markeren. Muizen werden geïnfecteerd met 2 x 104 CFU LM-OVA en inslapen 24 h post infectie. De spleen werd explanted en verwerkt zoals beschreven in het protocol. A) de secties werden gekleurd voor NK-cellen (anti-NCR1 gevolgd door anti-geit IgG-FITC; groen), OTI-RFP-cellen (rood) en macrofagen (anti-F4/80-APC; magenta). RP = rode pulp; WP = witte pulp. Schaalbalk = 200 μm. (b) secties werden gekleurd voor B-cellen (anti-B220-Pacific Blue; Blauw), OTI-GFP-cellen (in rood weergegeven GFP-signaal) en macrofagen in de marginale zone (anti-CD169-Alexa647; magenta). RP = rode pulp; BF = B cel follikel; TZ = T celzone. Schaalbalk = 50 μm. Dit is een representatief beeld van 3 onafhankelijke experimenten (N = 4). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59819/59819fig01large.jpg" target="_blank">Klik hier om een grotere versie van dit cijfer te bekijken.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59819/59819fig02.jpg"> Figuur 2: BFA-behandeling zorgt voor de detectie van intracellulaire IFNγ in situ. De nγ-productie is beperkt tot specifieke gebieden in de sple-muizen werden geïnfecteerd met 2 x 104 CFU LM-OVA en behandeld met BFA (a) of onbehandeld (B) na 18 uur. muizen werden geëuseerd 24 h post infectie. De spleen werd explanted en verwerkt zoals beschreven in het protocol. Secties werden gekleurd voor NK-cellen (anti-NCR1 gevolgd door anti-geit IgG-FITC; groen), OTI-RFP cellen (rood) en IFNγ (anti-IFNγ-BV421; cyaan). Schaalbalk = 5 μm. Dit is een representatieve afbeelding van de NK-cel-rijke gebieden van 3 onafhankelijke experimenten (N = 3). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59819/59819fig02large.jpg" target="_blank">Klik hier om een grotere versie van dit cijfer te bekijken.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59819/59819fig03.jpg"> Figuur 3: IFNγ producerende cellen in de milt. Muizen werden geïnfecteerd met 2 x 104 CFU LM-OVA wanneer geïndiceerd en behandeld met BFA na 18 h. muizen werden geëuseerd 24 h post infectie. De spleen werd explanted en verwerkt zoals beschreven in het protocol. Secties werden gekleurd voor NK-cellen (anti-NCR1 gevolgd door anti-geit IgG-FITC; groen), OTI-RFP cellen (rood) en IFNγ (anti-IFNγ-BV421; cyaan). A) representatief beeld van een milt van een niet-geïnfecteerde naïeve muis om aan te tonen dat er geen IFNγ-niet-specifieke kleuring is. Witte lijnen afbakenen de witte pulp. WP = witte pulp; RP = rode pulp. B) representatief beeld van de witte pulp van de milt van een met LM-OVA besmette muis, waarbij de invasie van NK-cellen aan de witte pulp en de productie van IFNγ door NK-cellen, OTI-cellen en niet-gelabelde cellen wordt weergegeven. Afbeeldingen zijn representatief voor 4 onafhankelijke experimenten (N = 4). Schaal staven = 70 μm (A); en 20 μm (B). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59819/59819fig03large.jpg" target="_blank">Klik hier om een grotere versie van dit cijfer te bekijken.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59819/59819fig04.jpg"> Figuur 4: IFNγ-productie is beperkt tot specifieke gebieden in de milt na LM-OVA-infectie. Muizen werden geïnfecteerd met 2 x 104 CFU LM-OVA en behandeld met BFA na 18 h. muizen werden geëuseerd 24 h post infectie. De spleen werd explanted en verwerkt zoals beschreven in het protocol. Alle secties waren gekleurd voor B-cellen (B220-Pacific Blue AB, Blue) en IFNγ (anti-IFNγ-Biotine gevolgd door streptavidin-PE; cyaan). OTI-GFP-cellen (GFP-signaal in rood weergegeven). Cyaan lijnen komen overeen met gebieden met een hoge IFNγ-productie. Dit zijn representatieve beelden van 4 onafhankelijke experimenten (N = 4). A) de secties werden gekleurd voor marginale zone macrofagen (anti-CD169-Alexa 647, magenta). Schaalbalk = 50 μm.B) de secties werden voor alle macrofagen gekleurd (F4/80). Schaalbalk = 100 μm. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59819/59819fig04large.jpg" target="_blank">Klik hier om een grotere versie van dit cijfer te bekijken.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59819/59819fig05.jpg"> Figuur 5: IFNγ-productie door GEACTIVEERDE OTI-cellen vindt plaats in een specifieke micro-omgeving. Muizen werden geïnfecteerd met 2 x 104 CFU LM-OVA en behandeld met BFA na 18 h. muizen werden geëuseerd 24 h post infectie. Milt werden explanted en verwerkt zoals beschreven in het protocol. Secties werden gekleurd voor NK-cellen (anti-NCR1 gevolgd door anti-geit IgG-FITC; groen), OTI-RFP cellen (rood) en IFNγ (anti-IFNγ-BV421; cyaan). Groene en rode lijnen markeren respectievelijk NK-en OTI-celzones. Witte pijl geeft voorbeelden aan van T-celclusters die geen IFNγ produceren. Groene pijlen voorbeelden van T-celclusters die IFNγ produceren. Schaalbalk = 100 μm. Dit is een representatief beeld van vier onafhankelijke experimenten (N = 4). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59819/59819fig05large.jpg" target="_blank">Klik hier om een grotere versie van dit cijfer te bekijken.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59819/59819fig06.jpg"> Figuur 6: subcellulaire lokalisatie van IFNγ in NK-cellen en T-cellen. Muizen werden geïnfecteerd met 2 x 104 CFU LM-OVA en behandeld met BFA na 18 h. muizen werden geëuseerd 24 h post infectie. De spleen werd explanted en verwerkt zoals beschreven in het protocol. Alle secties waren gekleurd voor IFNγ (anti-IFNγ-BV421; cyaan). Witte lijnen afbakenen celranden en witte pijlen toont directionaliteit van secretie. Dit is een representatief beeld van twee onafhankelijke experimenten (N = 5). (A)-OTI-RFP-cellen worden in het rood weergegeven. Schaalbalk = 5 μm. (B) secties werden gekleurd voor NK-cellen (anti-NCR1 gevolgd door anti-geit IgG-FITC; groen. Schaalbalk = 2 μm. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59819/59819fig06large.jpg" target="_blank">Klik hier om een grotere versie van dit cijfer te bekijken.</a>

Hier beschrijven we een eenvoudige confocale beeldvormings methode om de in-situ lokalisatie van cellen die het cytokine interferon gamma in Murine secundaire lymfoïde organen afscheidende te visualiseren. Dit protocol kan worden uitgebreid voor de visualisatie van andere cytokines in diverse weefsels.

Beeldvorming van in situ interferon gamma productie in de muis milt na Listeria monocytogenes infectie

Cytokines are small proteins secreted by cells, mediating cell-cell communications that are crucial for effective immune responses. One characteristic of ...

Dit protocol is belangrijk omdat het ons in staat stelt om de micro-omgeving te visualiseren waar cellen een bepaalde cytokine produceren, hier, interferon gamma. Het is toegegeven dat het bereik van de actie van cytokines is beperkt omdat weefsels zijn zo complex. Het is belangrijk om de cellen die interferon gammaproducerende cellen omringen te karakteriseren om te bepalen welke cellen het zullen opnemen.Het belangrijkste voordeel van de techniek is dat het niet de micro-omgeving aanwezig in het weefsel van belang verstoort. Bovendien, omdat we cellen niet kunstmatig opnieuw intewijzen om ze te dwingen interferon gamma te produceren, geeft het ons een betere karakterisering van de vraag of cellen daadwerkelijk actief interferon gamma in situ produceren. Dit protocol kan mogelijk worden aangepast aan andere organen en voor de visualisatie van andere cytokinen.De meeste stappen in dit protocol zijn eenvoudig, maar de behandeling van het weefsel, bevriezing en sectie, moet worden uitgevoerd met zorg om de integriteit van het weefsel te behouden. Om te beginnen, breng 300 microliters van LM gekweekte genetisch gemodificeerde naar uitgedrukte OVA naar een bouillon hartinfusie bij 37 graden Celsius in een kolf. Plaats de kolf op een shaker voor zachte agitatie om LM te laten groeien tot een exponentiële fase totdat de OD600 0,08 tot 0,1 bereikt.Na het verdunnen van de LM OVA-cultuur in PBS tot een concentratie van 0,1 keer dodelijke dosis, gebruikt 50% een 29-gauge insulinespuit om 100 microliters intraveneus te injecteren in C57 zwarte 6 wild type muizen ontvangers met OT1 GFP- of OT1 RFP-cellen. Om cytokineafscheiding 6 uur voor muisoffer te blokkeren, injecteer 250 microgram BFA en 200 microliters pbs intraperitoneally met de 29-gauge insulinespuit. Na euthanasie van muizen met behulp van kooldioxide en de daaropvolgende cervicale dislocatie, reinigen van de buik met 70%ethanol.Op de linkerflank van de muis waar de milt zich bevindt, snijd door de huid met een schaar om een incisie van een tot twee centimeter te maken. Maak vervolgens voorzichtig een incisie in het buikvlies om de milt bloot te leggen en het eruit te halen met een pincet. Wees voorzichtig niet te knijpen met tangen of snijd het om te voorkomen dat het verstoren van de milt architectuur.Bereid nu de fixatieve oplossing voor door 3,75 milliliter PBS en 3,75 milliliter 0,2 molaire L-lysine te mengen. Voeg 21 milligram natrium m-periodaat toe en meng goed. Voeg vervolgens 2,5 milliliter van 4%PFA en 20 microliter van 12 normale natriumhydroxide toe.Snijd de milt in drie delen. Dompel de milt onder in het fixatief in een zes-put plaat en vast te stellen voor een minimum van vier uur. Een typische fixatieperiode is 16 tot 20 uur bij vier graden Celsius bij zachte agitatie.Daarna gooi je de fixatieve oplossing weg en voeg je vijf milliliter PBS gedurende vijf minuten toe bij kamertemperatuur onder zachte agitatie. Vervang vervolgens de PBS door vijf milliliter van 30% sacharose en incubaat gedurende 12 tot 24 uur om de weefselmorfologie te behouden. Het orgel zinkt aan de onderkant van de plaat.Om het monster te bevriezen, zet droogijs in een grote recipiënt en plaats een kleinere recipiënt binnen met ongeveer 50 milliliter zuivere methanol en een paar stukken droogijs. Droog de milt voorzichtig op een pluisvrij doekje. Druppel een druppel OCT verbinding aan de onderkant van de basis mal en plaats de milt in de mal.Wees voorzichtig om geen bubbels te produceren. Voeg ongeveer een milliliter LGO over de milt. Met tangen, deponeren de basis mal op het oppervlak van de methanol in het droogijs bad, ervoor te zorgen dat de methanol niet de OCT raken.De OCT zal dikker worden en wit worden wanneer deze wordt ingevroren. Vergeet niet om het weefsel zo snel mogelijk te bevriezen om artefacten te minimaliseren. Op een cryo-microtome, ingesteld op de temperatuur van min 20 graden Celsius.Doorsnede het weefsel tot de gewenste dikte, ongeveer 10 micrometer. Gebruik een borstel om secties te verzamelen op glazen microscoop dia's en visueel te inspecteren. Laat de secties op kamertemperatuur komen.Teken een cirkel met vloeibare blokker, bijvoorbeeld een PAP-pen, rond het weefselgedeelte buiten de OCT. Zodra het weefsel is gedroogd, rehydrateren het monster door druipen 100 microliter PBS op het weefsel sectie gedurende vijf minuten. Verwijder vervolgens de PBS uit de sectie door aspiratie en voeg 100 microliter blokkeringsoplossing per monstersectie toe.Incubeer in een overdekte natte kamer voor een minimum van een uur bij kamertemperatuur. Om te bevlekken met primaire antilichamen, vervang de blokkeringsoplossing door de bereide primaire antilichaammix voor elk monster. Vier uur lang incuberen bij kamertemperatuur of 's nachts bij vier graden Celsius in een overdekte natte kamer voordat u het volgens het manuscript wast.Verdun nu de secundaire antilichamen van belang tot een optimale concentratie, meestal 2,5 microgram per milliliter, in de blokkerende oplossing. Haal de uiteindelijke wasoplossing uit de sectie en voeg het bereide secundaire antilichaammengsel bovenop de sectie en broed gedurende één tot vier uur bij kamertemperatuur in een overdekte natte kamer. Na het wassen met wasbuffer volgens het manuscript, verwijder de wasoplossing en voer een laatste was met PBS uit.Aspirate de fosfaat-gebufferde zoutoplossing en laat de resterende PBS te verdampen zonder dat de sectie volledig uitdroogt. Teken een cirkel rond de sectie aan de achterkant van de dia. Plaats vervolgens een druppel van het montagemedium bovenop het monster, zorg ervoor dat het medium het hele gedeelte bedekt en plaats er voorzichtig een afdekglas op.Laat het monster 's nachts polymerase bij kamertemperatuur in het donker. Plaats 's ochtends de glijbaan onder een omgekeerde spectrale laserscanmicroscoop. Pas de doelstelling aan op 10x NA 0,40 of 60x NA 1.4 voor analyse van cytokine subcellulaire lokalisatie.In dit protocol worden cellen die interferon gamma produceren gevisualiseerd en gelokaliseerd. De marker F4/80 labelt alle macrofagen en markeert de rode pulp. De marker B220 labelt B-cellen en markeert B-celzakjes rond de T-celzone.De marker CD169 labelt marginale zone macrofagen rond de witte pulp. 24 uur na infectie wordt interferon gamma geproduceerd door meerdere cellen, waaronder geactiveerde antigeenspecifieke OT1 CD8 T-cellen en NK-cellen. Zonder het gebruik van BFA om cytokineafscheiding te remmen, was de detectie van interferon gamma door NK-cellen sterk aangetast.B-cellen, marginale zone macrofagen, en alle macrofagen werden vastgehouden om de locatie van interferon gamma producerende cellen af te bakenen na LM OVA-infectie. Interessant is dat geclusterde antigeenspecifieke T-cellen werden gevonden in de witte pulp van de milt, maar ze produceren interferon gamma alleen in regio's waar NK cellen naast elkaar zaten. Verschillende subcellulaire lokalisatie van interferon gamma en NK versus CD8 positieve T-cellen werd getoond.Terwijl interferon gamma lokalisatie in NK cellen werd verspreid in de cytosol, CD8 positieve T-cellen vaak aangeworven interferon gamma naar een andere T-cel. De injectie van brefeldin A is cruciaal om de cytokine in situ te detecteren. Cellen vaak snel afscheiden en nemen de cytokines en we moeten cytokine afscheiding te remmen accumuleren in cellen.Deze methode is een detectie tool die de cytokine producerende cellen in hun eigen omgeving plaatst. Door de samenstelling van deze omgeving te ontcijferen, kunnen we ons richten op de juiste cellen of immuunbemiddelaars die op deze locatie aanwezig zijn en die kunnen beïnvloeden of beïnvloed worden door interferon gamma. Er is een groeiend begrip dat de precieze lokalisatie van een cel in een weefsel cruciaal is voor zijn functie.Ons protocol stelt ons in staat om de lokalisatie van de cytokine producerende cellen te identificeren en daardoor zijn functie verder te karakteriseren.

imaging-situ-interferon-gamma-production-mouse-spleen-following

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie en Infectie

Listeria monocytogenes is een modelorganisme voor het bestuderen van immuunreacties en de genetische gevoeligheid voor bacteriën intracellulaire bij muizen. Deze methode stelt je in staat om bacteriële lading te meten en single-cell suspensies van de lever en de milt van de muizen voor het genereren van FACS-analyse van veranderingen in het immuunsysteem van cellen als gevolg van Listeria-infectie te bepalen.

Het meten van bacteriën en immuunresponsen bij muizen geïnfecteerd met Listeria monocytogenes</em

We tonen de methode voor het uitvoeren van intravitale microscopie van de milt met behulp van GFP transgene malariaparasieten en de kwantificering van de parasiet de mobiliteit en de bloedstroom binnen dit orgaan.

Intravitale Microscopie van de milt: Kwantitatieve Analyse van Parasite Mobiliteit en Blood Flow

Gebruik makend van luciferase en in vivo imaging-systemen (IVIS) als een roman middel om ziekte-eindpunten identificeren voordat klinische ontwikkelingen voordoen. IVIS heeft ons toegestaan ​​om te visualiseren in real time de invasie van encefalitisch virussen over meerdere dagen, met een meer accurate ziekte model voor toekomstige studie. Het is ook toegestaan ​​om het potentieel beschermende kenmerken van antivirale middelen en vaccins sneller identificeren dan op dit moment gebruikte...

In vivo Imaging Systems (IVIS) Detectie van een neuro-invasieve encefalitisch Virus

Source: Ahn, J. J., et al. Experimental Infection with Listeria monocytogenes as a Model for Studying Host Interferon-γ Responses. J. Vis. Exp. (2016)The video demonstrates bacterial load measurement in spleen and liver tissues isolated from mice infected with an intracellular bacterial pathogen. Bacteria, accumulated within tissue-resident phagocytes during systemic infection, are released using detergent-based lysis and mechanical disruption. Serial dilutions of the homogenates are plated on...

Quantification of Bacterial Load in Mouse Spleen and Liver After Systemic Infection

Source: Ahn, J. J., et al., Experimental Infection with Listeria monocytogenes as a Model for Studying Host Interferon-γ Responses. J. Vis. Exp. (2016)This video demonstrates the preparation of mouse splenocyte cultures from Listeria monocytogenes-infected mice for downstream cytokine analysis. It includes ex vivo bacteria-derived antigen stimulation and sample processing to study T cell responses.

In Vitro Stimulation of Mouse Splenocytes with Heat-Killed Listeria monocytogenes

This video demonstrates an imaging method to visualize in situ interferon-gamma (IFN-γ) secretion in the mouse spleen. Following bacterial infection and the induction of IFN-γ accumulation inside T cells and natural killer cells, the spleen is harvested from the mouse. Upon obtaining tissue sections, immunostaining is performed to visualize IFN-γ inside the cells.

Assay for the Identification of Interferon-Gamma Secretion in Murine Lymphoid Organs

Dit protocol beschrijft het enten van C57BL / 6J muizen met de EGD stam van Listeria monocytogenes (L. monocytogenes) en interferon-γ (IFN-γ) responsen door natuurlijke killer (NK) cellen, natuurlijke killercellen (NKT) cellen te meten, en adaptieve T-lymfocyten na de infectie. Dit protocol beschrijft ook hoe om te overleven onderzoek bij muizen na infectie met een aangepaste LD 50 dosis van de ziekteverwekker.

Experimentele infectie met<em&gt; Listeria monocytogenes</em&gt; Als een model voor de studie Host Interferon-γ Responses

We beschrijven beide tests in vitro en in vivo infectie die kunnen worden gebruikt voor het analyseren van de activiteiten van host-encoding factoren.

Met behulp van een bacteriële ziekteverwekker sonde voor Cellulair en Organismic niveau Host Reacties

We beschrijven een methode om GFP-gelabeld γδ IELs met behulp van intravital Imaging van muizen dunne darm te visualiseren door omgekeerde spinnen schijf confocale microscopie. Deze techniek maakt het bijhouden van levende cellen in het slijmvlies voor maximaal 4 uur en kan worden gebruikt om een verscheidenheid van intestinale immuun-epitheel interacties te onderzoeken.

Intravital beeldvorming van epitheliale lymfocyten in muizen dunne darm

Dit artikel beschrijft de procedure voor het bereiden van een fluorescentie-gemerkte versie van bacteriofaag lambda, infectie...

Na Cell-lot in<em&gt; E. coli</em&gt; Na Infectie door Phage Lambda

Leer een confocale beeldvormingsmethode om interferon gamma-producerende cellen in situ te visualiseren in de muis milt na Listeria monocytogenes infectie. Deze techniek behoudt de weefselintegriteit en karakteriseert het immuunmicro-omgeving.

Beeldvorming van in situ interferon gamma productie in de muis milt na Listeria monocytogenes infectie

Meer video's verkennen