Name: Een Cryoblessure model om myocardinfarct in de muis te bestuderen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-09-19T14:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 29 s
Description: Leer een cryoblessuremodel voor myocardinfarct in muizen om cardiale remodellering en herstel te bestuderen. Deze methode genereert uniforme infarctgroottes voor betrouwbare therapeutische evaluaties.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

We danken Christiane Pahrmann voor haar technische hulp. D.W. werd gesteund door de Stichting Max kade. T.D. ontving subsidies van de else Kröner Fondation (2012_EKES. 04) en de Deutsche Forschungsgemeinschaft (DE2133/2 -1 _. S. S. ontving onderzoekssubsidies van de Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG; SCHR992/3-1, SCHR992/4-1).

Dieren kregen humane zorg in overeenstemming met de gids voor de beginselen van laboratoriumdieren, bereid door het Institute of Laboratory Animal resources, en gepubliceerd door de National Institutes of Health. Alle dier protocollen werden goedgekeurd door de verantwoordelijke lokale overheid (de Universiteit van Californië-San Francisco (UCSF), het institutioneel Dierenzorg-en gebruiks Comité).
1. verzorging van dieren
<ol><li>Het verkrijgen van muizen op de leeftijd van 14 weken met een gewicht van ongeveer 27 g (bijvoorbeeld van het Instituut voor laboratoriumdieren). Opmerking: BALB/c muizen worden gebruikt voor dit artikel.</li>
	<li>Houd muizen onder conventionele omstandigheden in geventileerde kasten, voeden ze standaard muizen Chow en geautoclaveerd water ad libitum.</li>
</ol>2. voorbereiding van de muis
<ol><li>Gebruik een inductie kamer om de muis te verdoven met Isofluraan (3,5%).</li>
	<li>Verwijder het haar over de borst en nek met behulp van een haar trimmer.</li>
	<li>Plaats de muis in rugligging positie op een verwarmde pad en onderhoud anesthesie met een gelaatsmasker dat de mond en neus van de muis bedekt.</li>
	<li>Controleer op voldoende diepte van de anesthesie door het knijpen van de achterpoten en staart om te controleren of er geen reflexen.</li>
	<li>Injecteer subcutane buprenorfine (0,03 mg/kg) voor analgesie.</li>
	<li>Verdeel de achterpoten en de ledematen en fixeer hun positie met behulp van tape.</li>
	<li>Desinfecteer het geschoren gebied met Povidon jodium, gevolgd door schrobben met 80% ethanol. Herhaal deze stap twee keer.</li>
	<li>Gebruik een kleine schaar om een middellijn huid incisie te maken van het onderste derde deel van het borstbeen naar de kin.</li>
	<li>Gebruik gebogen Tang en scheid de spieren rond de nek zorgvuldig om de luchtpijp bloot te leggen.</li>
	<li>Gebruik een micro-schaar om een tracheotomie uit te voeren tussen de tweede en derde kraakbeen ringen.</li>
	<li>Stel de ventilator in op een ventilatie frequentie van 110/min met een getijden volume van 0,5 mL.</li>
	<li>Verwijder het gelaatsmasker en plaats een plastic canule (20 G), aangesloten op de ventilator, in de luchtpijp. Het dier ventileren. Opmerking: Zorg ervoor dat de ventilatie canule niet te diep is ingebracht door bilaterale Long ventilatie te bevestigen.</li>
	<li>Gebruik cauterie om de juiste spieren van de pectoralis los te maken van de borstbeen-oorsprong tussen de derde en de zevende ribben.</li>
	<li>Gebruik een schuine veer schaar om de vierde tot de zesde ribben zo dicht mogelijk bij het borstbeen te snijden.</li>
	<li>Cauteriseren de borst slagader, als bloeden zichtbaar is.</li>
	<li>Verlaag Isofluraan tot 2,5%.</li>
	<li>Ontleden onderliggende bindweefsel om een duidelijk beeld in de borstholte te verkrijgen.</li>
	<li>Gebruik botte tang om het hartzakje te openen en het hart bloot te leggen.</li>
	<li>Gebruik een mini Goldstein oprolmechanisme om de ribben te verspreiden en de borstholte open te houden.</li>
	<li>Til het hart uit de thoracische holte met een stompe staaf.</li>
	<li>Verlaag de spanning van het oprolmechanisme om het openen van de borstkas te verminderen en het hart niet terug te vallen.</li>
	<li>Precool de cryoprobe (3 mm diameter) voor 10 s.</li>
	<li>Breng de cryoprobe op de voorste linkerventrikel wand en Vries gedurende 10 s om een linker ventriculaire Cryo-blessure infarct te genereren. Let op: de cryoprobe kan op verschillende hart wanden worden aangebracht, afhankelijk van de wetenschappelijke vraag en behoefte.</li>
	<li>Irrigeren de cryoprobe met kamertemperatuur zoutoplossing om de sonde los te maken van de linker ventriculaire wand.</li>
	<li>Gebruik het oprolmechanisme om de borst opening te vergroten.</li>
	<li>Keer het hart voorzichtig terug naar de thoracische holte met een stompe staaf.</li>
	<li>Verwijder de oprolmechanisme en verbind de sternotomie met een enkele knoop met behulp van 6-0 hecht.</li>
	<li>Sluit de borstholte met behulp van 6-0 Running Suture. Gebruik een injectiespuit van 10 mL om de resterende lucht uit de borstkas te evacueren voordat u de knoop gaat binden.</li>
	<li>Pas de huid aan de caudal rand aan en hecht deze aan het punt van de tracheale opening met lopende hechtdraad (5-0).</li>
	<li>Stel Isofluraan in op 1,5% en wacht tot het dier spontaan ademt.</li>
	<li>Verwijder de tracheale katheter en breng het gelaatsmasker opnieuw op de dieren mond en neus om anesthesie te handhaven.</li>
	<li>Sluit de tracheale incisie met een 8-0 hecht.</li>
	<li>Herpositioneer de ventrale nekspieren terug naar hun positie om de luchtpijp te bedekken.</li>
	<li>Voltooi de huid hechting.</li>
	<li>Voeg metamizol toe aan het drinkwater (50 mg metamizol per 100 mL) voor pijn analgesie gedurende 3 dagen en bewaak het dier dagelijks. Opmerking: de observatieperiode voor dit model is 8 weken. Zorg ervoor dat u de richtlijnen van uw instelling met betrekking tot analgesie regime te volgen.</li>
</ol>

<ol><li>Writing Group. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heart+Disease+and+Stroke+Statistics-2016+Update%3A+A+Report+From+the+American+Heart+Association%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Heart Disease and Stroke Statistics-2016 Update: A Report From the American Heart Association.</a> Circulation. 133 (4), 38-360 (2016).</li>
<li>de Alencar Neto, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morphine%2C+Oxygen%2C+Nitrates%2C+and+Mortality+Reducing+Pharmacological+Treatment+for+Acute+Coronary+Syndrome%3A+An+Evidence-based+Review%5BTitle%5D)+AND+%22Cureus%22%5BJournal%5D)">Morphine, Oxygen, Nitrates, and Mortality Reducing Pharmacological Treatment for Acute Coronary Syndrome: An Evidence-based Review.</a> Cureus. 10 (1), 2114(2018).</li>
<li>Detry, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+pathophysiology+of+myocardial+ischaemia%5BTitle%5D)+AND+%22European+Heart+Journal%22%5BJournal%5D)">The pathophysiology of myocardial ischaemia.</a> European Heart Journal. 17, Suppl G 48-52 (1996).</li>
<li>Ertl, G., Frantz, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Healing+after+myocardial+infarction%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovascular+Research%22%5BJournal%5D)">Healing after myocardial infarction.</a> Cardiovascular Research. 66 (1), 22-32 (2005).</li>
<li>Jugdutt, B. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ventricular+remodeling+after+infarction+and+the+extracellular+collagen+matrix%3A+when+is+enough+enough%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Ventricular remodeling after infarction and the extracellular collagen matrix: when is enough enough.</a> Circulation. 108 (11), 1395-1403 (2003).</li>
<li>Velagaleti, R. S., Vasan, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heart+failure+in+the+twenty-first+century%3A+is+it+a+coronary+artery+disease+or+hypertension+problem%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiology+Clinics%22%5BJournal%5D)">Heart failure in the twenty-first century: is it a coronary artery disease or hypertension problem.</a> Cardiology Clinics. 25 (4), 487-495 (2007).</li>
<li>Benjamin, E. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heart+Disease+and+Stroke+Statistics-2017+Update%3A+A+Report+From+the+American+Heart+Association%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Heart Disease and Stroke Statistics-2017 Update: A Report From the American Heart Association.</a> Circulation. 135 (10), 146-603 (2017).</li>
<li>Morrissey, P. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+method+of+standardized+myocardial+infarction+in+aged+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology-Heart+and+Circulatory+Physiology%22%5BJournal%5D)">A novel method of standardized myocardial infarction in aged rabbits.</a> American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 312 (5), 959-967 (2017).</li>
<li>Degabriele, N. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Critical+appraisal+of+the+mouse+model+of+myocardial+infarction%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Physiology%22%5BJournal%5D)">Critical appraisal of the mouse model of myocardial infarction.</a> Experimental Physiology. 89 (4), 497-505 (2004).</li>
<li>Chen, J., Ceholski, D. K., Liang, L., Fish, K., Hajjar, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Variability+in+coronary+artery+anatomy+affects+consistency+of+cardiac+damage+after+myocardial+infarction+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology-Heart+and+Circulatory+Physiology%22%5BJournal%5D)">Variability in coronary artery anatomy affects consistency of cardiac damage after myocardial infarction in mice.</a> American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 313 (2), 275-282 (2017).</li>
<li>Reichert, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Murine+Left+Anterior+Descending+%28LAD%29+Coronary+Artery+Ligation%3A+An+Improved+and+Simplified+Model+for+Myocardial+Infarction%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments+%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">Murine Left Anterior Descending (LAD) Coronary Artery Ligation: An Improved and Simplified Model for Myocardial Infarction.</a> Journal of Visualized Experiments : JoVE. (122), e55353(2017).</li>
<li>Kim, S. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+murine+closed-chest+model+of+myocardial+ischemia+and+reperfusion%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments+%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">A murine closed-chest model of myocardial ischemia and reperfusion.</a> Journal of Visualized Experiments : JoVE. (65), e3896(2012).</li>
<li>Antonio, E. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Left+ventricle+radio-frequency+ablation+in+the+rat%3A+a+new+model+of+heart+failure+due+to+myocardial+infarction+homogeneous+in+size+and+low+in+mortality%5BTitle%5D)+AND+%22J+Card+Fail%22%5BJournal%5D)">Left ventricle radio-frequency ablation in the rat: a new model of heart failure due to myocardial infarction homogeneous in size and low in mortality.</a> J Card Fail. 15 (6), 540-548 (2009).</li>
<li>Ovsepyan, A. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modeling+myocardial+infarction+in+mice%3A+methodology%2C+monitoring%2C+pathomorphology%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Naturae%22%5BJournal%5D)">Modeling myocardial infarction in mice: methodology, monitoring, pathomorphology.</a> Acta Naturae. 3 (1), 107-115 (2011).</li>
<li>Ciulla, M. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Left+ventricular+remodeling+after+experimental+myocardial+cryoinjury+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Surgical+Research%22%5BJournal%5D)">Left ventricular remodeling after experimental myocardial cryoinjury in rats.</a> Journal of Surgical Research. 116 (1), 91-97 (2004).</li>
<li>Grisel, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+MRL+mouse+repairs+both+cryogenic+and+ischemic+myocardial+infarcts+with+scar%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovascular+Pathology%22%5BJournal%5D)">The MRL mouse repairs both cryogenic and ischemic myocardial infarcts with scar.</a> Cardiovascular Pathology. 17 (1), 14-22 (2008).</li>
<li>Duerr, G. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+myocardial+remodeling+between+cryoinfarction+and+reperfused+infarction+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomedicine+and+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Comparison of myocardial remodeling between cryoinfarction and reperfused infarction in mice.</a> Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2011, 961298(2011).</li>
<li>Ma, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intramyocardial+delivery+of+human+CD133%2B+cells+in+a+SCID+mouse+cryoinjury+model%3A+Bone+marrow+vs.+cord+blood-derived+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovascular+Research%22%5BJournal%5D)">Intramyocardial delivery of human CD133+ cells in a SCID mouse cryoinjury model: Bone marrow vs. cord blood-derived cells.</a> Cardiovascular Research. 71 (1), 158-169 (2006).</li>
<li>Takagawa, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myocardial+infarct+size+measurement+in+the+mouse+chronic+infarction+model%3A+comparison+of+area-+and+length-based+approaches%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Physiology+%281985%29%22%5BJournal%5D)">Myocardial infarct size measurement in the mouse chronic infarction model: comparison of area- and length-based approaches.</a> Journal of Applied Physiology (1985). 102 (6), 2104-2111 (2007).</li>
<li>van den Bos, E. J., Mees, B. M., de Waard, M. C., de Crom, R., Duncker, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+model+of+cryoinjury-induced+myocardial+infarction+in+the+mouse%3A+a+comparison+with+coronary+artery+ligation%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology-Heart+and+Circulatory+Physiology%22%5BJournal%5D)">A novel model of cryoinjury-induced myocardial infarction in the mouse: a comparison with coronary artery ligation.</a> American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 289 (3), 1291-1300 (2005).</li>
</ol>

De auteurs hebben niets te onthullen.

Dit artikel beschrijft een muis cryoblessure model om te onderzoeken ACS en verwante farmacologische en therapeutische opties.
De meest cruciale stap is de toepassing van de cryoprobe op het hartweefsel. De contact duur moet streng worden gecontroleerd om de optimale infarct grootte te verkrijgen en om reproduceerbare resultaten te garanderen. Langdurige koeling van het myocardium zal leiden tot oversized infarcten of ventriculaire perforatie. Verkorte koeltijd genereert daarentegen beperkte e...

Acuut coronair syndroom (ACS) is de belangrijkste doodsoorzaak in de westerse wereld1,2. Acute occlusie van de coronaire slagaders leidt tot activering van ischemische Cascade en necrose van het aangetaste hartweefsel3. Beschadigd myocardium wordt geleidelijk vervangen door niet-contracactiel littekenweefsel, die klinisch manifestz als hartfalen4,5. Ondanks de recente ontwikkelingen in de behandeling van ACS stijgt de prevalentie van ACS-en ACS-gerelateerde hartfalen en zijn therapeutische opties beperkt tot6,7. Daarom zijn het ontwikkelen van diermodellen om ACS en zijn complicaties te bestuderen van enorm belang.
Tot op heden is het meest gebruikte diermodel om ACS en ACS-geïnduceerde myocardiale remodellering te bestuderen de ligatie van de linker aflopende coronaire slagader (LAD). Ligatie van de jongen leidt tot acute ischemie van het myocardium, vergelijkbaar met menselijk myocard weefsel tijdens ACS.  Echter, inconsistente infarct maten blijven de Achilles hiel van LAD ligatie. Chirurgische variatie en anatomische variabiliteit van de jongen leiden tot inconsistente infarct maten en belemmeren de reproduceerbaarheid en replicabiliteit van deze procedure8,9,10. Daarnaast heeft LAD ligatie een hoge intra-en postoperatieve sterfte. Ondanks de recente inspanningen om de reproduceerbaarheid te verbeteren en de sterfte te verminderen11,12, zijn grote aantallen dieren nog steeds nodig om anti-herinrichting therapieën naar behoren te evalueren.
Alternatieve modellen van ACS zijn in de afgelopen jaren voorgesteld en bestudeerd, waaronder radiofrequentie13, thermische14 of cryogene verwondingen15,16,17,18. Huidige cryoblessure methoden passen een metalen staaf voorgekoeld in vloeibare stikstof om het hartweefsel van het onderwerp te beschadigen15,16. Deze procedure moet echter meerdere malen worden herhaald om een voldoende infarct grootte te genereren. Als gevolg van de hoge geleidbaarheid en lage warmtecapaciteit van de staaf in vergelijking met het weefsel, de sonde warmt snel, en het weefsel wordt gekoeld (en dus infarcted) heterogene. Om deze beperkingen te overwinnen, beschrijven we hierin een cryoinfarct model met behulp van een hand-held vloeibaar stikstoftoevoer systeem. Dit model is reproduceerbaar, gemakkelijk uit te voeren en kan snel en betrouwbaar worden vastgesteld. Een reproduceerbare Transmurale infarct laesie onafhankelijk van coronaire anatomie wordt gegenereerd, die uiteindelijk leidt tot hartfalen. Deze methode is vooral geschikt om het renovatieproces te bestuderen voor de evaluatie van nieuwe therapeutische farmacologische en weefsel-engineering gebaseerde strategieën.

<table><tbody><tr><td>10 ml Syringe</td><td>Thermo Scientific</td><td>03-377-23</td><td></td></tr><tr><td>5-0 prolene suture</td><td>Ethicon</td><td>EH7229H</td><td></td></tr><tr><td>6-0 prolene suture</td><td>Ethicon</td><td>8706H</td><td></td></tr><tr><td>8-0 Ethilon suture</td><td>Ethicon</td><td>2808G</td><td></td></tr><tr><td>Absorption Spears</td><td>Fine Science Tools</td><td>18105-01</td><td></td></tr><tr><td>BALB/c</td><td>The Jackson Laboratory</td><td>Stock number 000651</td><td></td></tr><tr><td>Bepanthen Eye and Nose ointment</td><td>Bayer</td><td>1578675</td><td>Oogzalf</td></tr><tr><td>Betadine Solution</td><td>Betadine Purdue Pharma</td><td>NDC:67618-152</td><td></td></tr><tr><td>Blunt Forceps</td><td>Fine Science Tools</td><td>18025-10</td><td></td></tr><tr><td>Buprenex</td><td>Reckitt Benckiser</td><td>NDC Codes:&nbsp;12496-0757-1, 12496-0757-5</td><td>Buprenorfine</td></tr><tr><td>Cryoprobe 3mm</td><td>Brymill Cryogenic Systems</td><td>Cry-AC-3 B-800</td><td></td></tr><tr><td>Ethanol 70%</td><td>Th. Geyer</td><td>2270</td><td></td></tr><tr><td>Forceps curved</td><td>S&amp;T</td><td>00284</td><td></td></tr><tr><td>Forceps fine</td><td>Fine Science Tools</td><td>11251-20</td><td></td></tr><tr><td>Forceps standard</td><td>Fine Science Tools</td><td>11023-10</td><td></td></tr><tr><td>Gross Anatomy Probe</td><td>Fine Science Tools</td><td>10088-15</td><td></td></tr><tr><td>Hair clipper</td><td>WAHL</td><td>8786-451A ARCO SE</td><td></td></tr><tr><td>High temperature cautery kit</td><td>Bovie</td><td>18010-00</td><td></td></tr><tr><td>ISOFLURANE</td><td>Henry Schein Animal Health</td><td>029405</td><td></td></tr><tr><td>IV Catheter 20G</td><td>B. Braun</td><td>603028</td><td></td></tr><tr><td>Mini-Goldstein Retractor</td><td>Fine Science Tools</td><td>17002-02</td><td></td></tr><tr><td>NaCl 0.9%</td><td>B.Braun</td><td>PZN 06063042&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp; Art. Nr.: 3570160</td><td>zoutoplossing</td></tr><tr><td>Needle holder</td><td>Fine Science Tools</td><td>12075-14</td><td></td></tr><tr><td>Needle Holder, Curved</td><td>Harvard Apparatus</td><td>72-0146</td><td></td></tr><tr><td>Novaminsulfon</td><td>Ratiopharm</td><td>PZN 03530402</td><td>Metamizol</td></tr><tr><td>Operating Board&nbsp;</td><td>Braintree Scientific</td><td>39OP</td><td></td></tr><tr><td>Replaceable Fine Tip</td><td>Bovie</td><td>H101</td><td></td></tr><tr><td>Scissors</td><td>Fine Science Tools</td><td>14028-10</td><td></td></tr><tr><td>Small Animal Ventilator</td><td>Kent Scientific</td><td>RV-01</td><td></td></tr><tr><td>Spring Scissors - Angled to Side</td><td>Fine Science Tools</td><td>15006-09</td><td></td></tr><tr><td>Surgical microscope</td><td>Leica&nbsp;</td><td>M651</td><td></td></tr><tr><td>Transpore Surgical Tape</td><td>3M</td><td>1527-1</td><td></td></tr><tr><td>Vannas Spring Scissors</td><td>Fine Science Tools</td><td>15400-12</td><td></td></tr><tr><td>Vaporizer&nbsp;</td><td>Kent Scientific</td><td>VetFlo-1205S</td><td></td></tr></tbody></table>

een cryoblessure model om myocardinfarct in de muis te bestuderen

A Cryoinjury Model to Study Myocardial Infarction in the Mouse

Het gebruik van diermodellen is essentieel voor het ontwikkelen van nieuwe therapeutische strategieën voor acuut coronair syndroom en de complicaties. In dit artikel demonstreren we een Murine cryoblessure infarct-model dat precieze infarct-grootten genereert met een hoge reproduceerbaarheid en replicabiliteit. In het kort, na intubatie en sternotomie van het dier, wordt het hart van de thorax opgeheven. De sonde van een handheld vloeibaar stikstoftoevoer systeem wordt aangebracht op de myocardiale wand om cryoletsel te induceren. Een verminderde ventriculaire functie en elektrische geleiding kan worden bewaakt met echocardiografie of optische mapping. Transmural myocardiale remodellering van het infarcten gebied wordt gekenmerkt door collageen afzetting en verlies van cardiomyocytes. In vergelijking met andere modellen (bijvoorbeeld LAD-ligatie), maakt dit model gebruik van een handheld vloeibaar stikstoftoevoer systeem om meer uniforme infarct groottes te genereren.

Het cryoblessure infarct model is geschikt om ACS en zijn complicaties te bestuderen. Lage sterftecijfers en efficiënt postchirurgisch herstel worden in dit model gezien. Cryoletsel veroorzaakte myocardiale beschadiging leidt tot een verminderde hartfunctie, elektrische ontkoppeling en Transmurale remodeling.
Echocardiografie kan worden gebruikt om de hartfunctie noninvasief in vivo te bewaken. In Cryo-gewonde harten, echocardiografie toont significant verminderd ejectiefractie en fractionele ...

Dit artikel demonstreert een model om cardiale remodellering te bestuderen na myocard cryoletsel bij muizen.

Een Cryoblessure model om myocardinfarct in de muis te bestuderen

The use of animal models is essential for developing new therapeutic strategies for acute coronary syndrome and its complications. In this article, we ...

Deze methode is betrouwbaar om de generatie van het hartinfarct te bestuderen en een uitstekend platform te gebruiken voor het onderzoeken van cardiale herstel na bijvoorbeeld stamceltransplantatie. Het belangrijkste voordeel van deze procedure is dat het kan worden gebruikt om uniforme infarctmaten te genereren op een snelle, gemakkelijke en reproduceerbare manier. Nieuwe experimentele interventies, zoals farmacologische, of het weefsel ontworpen strategieën, kunnen worden getest in dit model.En met succes testen dat opties verder kunnen worden bevestigd in grote diermodellen. Na bevestiging van een gebrek aan reactie op pijnreflex in een verdoofde 27 gram, 14 weken oude muis, gebruik een haartrimmer om de vacht van de borst en nek van het dier te verwijderen en de muis in een supine positie op een verwarmde pad te plaatsen. Plak de achter- en voorpoten in een gespreide adelaarspositie en gebruik sequentiële povidone-jodium en 80% ethanolscrubs om de blootgestelde huid te desinfecteren.Maak een middellijn huid incisie van het onderste derde deel van het borstbeen naar de kin, en gebruik gebogen tangen om zorgvuldig te scheiden van de spieren rond de nek om de luchtpijp bloot te st

a-cryoinjury-model-to-study-myocardial-infarction-in-the-mouse

Research

JoVE Journal

Medicine

Geneeskunde

Deze video laat zien hoe u een snelle en betrouwbare model te gebruiken om pathobiological en pathofysiologische processen van myocardischemie te bestuderen.

LAD-Ligatie: een muizenmodel van myocardinfarct

Tal van genetische manipulaties en / of intramyocardial injecties van genen, eiwitten, cellen en / of biomaterialen wordt toegevoegd aan de dimensie van de tijd in studies van de acute ischemie / reperfusie schade en chronische remodeling bij muizen. Deze video illustreert de microchirurgische procedures voor ischemie / reperfusie, permanent coronaire ligatie, en intramyocardial injectie studies.

Kransslagader Ligatie en Intramyocardial Injectie in een muizenmodel van Infarction

Chirurgisch trauma veroorzaakt een ontstekingsreactie. Cytokines en endogene liganden zijn bekend voor het moduleren van een myocard infarct grootte na ischemie en reperfusie. We presenteren een aangepaste gesloten kist model van muizen ischemie en reperfusie met behulp van gewichten opknoping om de effecten van thoracotomie te minimaliseren.

Een murine Closed-borst Model van myocardiale ischemie en reperfusie

We introduceren een chirurgische methode experimentele ischemie / reperfusie (I / R) letsel veroorzaken simuleren myocardiaal infarct (MI) in muismodellen die zorgt voor meer duidelijkheid in positionering van de ligatie van de LAD (LAD) om de reproduceerbaarheid te verhogen MI van experimenten in muizen.

Een muizenmodel van myocard ischemie-reperfusie schade door de eileiders van de LAD

Dit protocol beschrijft een zeer reproduceerbaar model van hartregeneratie door chirurgische inductie van een myocardinfarct in de linker ventrikel van muizen op postnatale dag 1. De methode omvat inductie van hypothermische anesthesie en ligatie van de linker voorste descendentie van de kransslagader.

Myocardinfarct bij pasgeboren muizen, een model van Cardiac Regeneration

Tijdens muis myocardischemie/reperfusie chirurgie, wordt de juiste plaatsing van de occluderende ligatuur meestal bevestigd door zichtbare waarneming van myocardbleken. Hierin wordt een methode van elektrocardiografisch bevestigen van ischemie en reperfusie, ter aanvulling van waargenomen myocardbleken, gedemonstreerd bij mannelijke C57Bl/6 muizen.

Bevestiging van de Myocardiale ischemie en reperfusie schade in Muizen met behulp van Surface Pad elektrocardiografie

Hierin beschrijven we een chirurgische ingreep die laat zien hoe u permanente ligatie van de linker-anterieure aflopende coronaire slagader bij muizen bereikt. Dit model is van groot belang om de pathofysiologie van myocardiaal infarct en de gelijktijdige biologische processen te onderzoeken.

Murine myocardinfarct model met behulp van permanente Ligatie van linker anterieure aflopende coronaire slagader

Onder adequate anesthesie werd het muizenhart geëxternaliseerd door de intercostale ruimte en werd een myocardinfarct met succes geïnduceerd door de linker voorste dalende slagader (LAD) af te binden met behulp van materialen die in de meeste laboratoria gemakkelijk verkrijgbaar zijn.

Een aangepaste eenvoudige methode voor het opwekken van een hartinfarct bij muizen

Hier beschrijven we een eenvoudige en reproduceerbare methode die myocardinfarct of myocardischemie-reperfusieletsel bij muizen kan induceren door precisieligatie van de linker voorste dalende kransslagader door middel van micromanipulatie.

Inductie van myocardinfarct en myocardischemie-reperfusieletsel bij muizen

Hier wordt een chirurgische procedure gepresenteerd voor permanente ligatie van de linker kransslagader bij muizen. Dit model kan worden gebruikt om de pathofysiologie en bijbehorende ontstekingsreactie na een hartinfarct te onderzoeken.

Ligatie van de linker kransslagader: een chirurgisch muizenmodel van myocardinfarct

Leer een cryoblessuremodel voor myocardinfarct in muizen om cardiale remodellering en herstel te bestuderen. Deze methode genereert uniforme infarctgroottes voor betrouwbare therapeutische evaluaties.

Een Cryoblessure model om myocardinfarct in de muis te bestuderen

Meer video's verkennen