20 oktober 2019
Dit protocol beschrijft een methode voor de isolatie van de muis oogbol met ooglid, oogoppervlak, voorste en posterieure segmenten in relatief intacte positie.
Ons lab richt zich op oculaire ontwikkeling en de ziekten. Dit protocol beschrijft een methode om de schedel en de orbitale botten achtereenvolgens te verwijderen van ontleed muishoofd. Het verlaten van oogleden, oogoppervlak, lens, en het netvlies allemaal samen in een stuk. Het protocol komt ten goede aan oogartsen die geïnteresseerd zijn in oculaire oppervlakte didactiek. Ik ben Dianlel Guo, om de techniek te vertellen met een waarschijnlijke strijd wanneer het proberen om de beschadiging van de oogbol te voorkomen, terwijl het ontleden van de gezichtsbeenderen. Het belangrijkste voordeel van deze dissectiekwestie is dat de integriteit van de ooglijke oppervlakte epitheelplaat goed bewaard blijft en de verschillende delen van het oculaire oppervlak kunnen worden onderzocht door histologie of immunostaining in één enkele sectie. Zorg ervoor dat alle kleine botten en puin af te snijden van de zachte weefsels. Reden, het zal littekensporen veroorzaken op weefsel sectie anders. Na het euthanaseren van de muis, gebruik een paar rechte schaar af te snijden van het hoofd en bisect het langs de sagittale middellijn begin bij de intraparietale bot rostrally aan de neus. Plaats elke helft van de doorgesneden hoofd in een schone petrischaal en gebruik een scherpe schaar om de kaak en tong af te snijden. Bevrijd de oogzenuw door het af te snijden van de hersenen voorafgaand aan de optische chiasm locatie. En verwijder alle hersenweefsels, inclusief de reukbol, die aan de schedelwand is bevestigd. Nu alle resterende weefsels zullen alle schedel en orbitale botten geassocieerd met de oogbol hebben. Was de resterende delen met PBS om bloed en haarresten schoon te maken. Pre-fix de weefsels door ze te plaatsen in een 50 milliliter buis met 4% paraformaldehyde en draaien ze op kamertemperatuur. Nadat het voorvoegsel is voltooid, snel wassen de ontleed hoofd in PBS drie keer om verder te elimineren de gebroken haren en fixatiemiddelen. Plaats het weefsel in een petrischaal van 10 centimeter en snijd de schedel in drie delen langs de vlakken aangegeven in figuur een van het tekstprotocol. De oogbol en de socket is verborgen in het middelste deel van de schedel onder ethmoïde, frontale en maxillaire botten. Gebruik twee paar van nummer vier rechte tangen af te pellen van de ethmoïde bot en volledig bloot de frontale en maxillaire botten. Verdeel vervolgens geografisch het schedeloppervlak in vier gebieden. Plaats de punt van gebogen tangen horizontaal in elk gebied om de maxillaire en frontale botten achtereenvolgens te verwijderen. Hierna worden de onderliggende traan- en kruikbeenderen blootgesteld. Verwijder de twee botten en de bijbehorende onderhuidse spieren en vetten rond de oogbol. Trim de oogbol met bijgevoegde oogleden en huid in een klein, vierkant gevormd blok om het weefselvolume te verminderen en het oriënteren van het weefsel bij het inbedden te vergemakkelijken. Plaats de oogbol en de bijbehorende weefsels terug in 4% paraformaldehyde en blijven fix 's nachts op 4
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit protocol richt zich op een methode voor het isoleren van de muisogbol waarbij het ooglid en het botoppervlak intact blijven, zodat de anatomie behouden blijft voor anatomische studies. De techniek is bijzonder nuttig voor oogartsen die geïnteresseerd zijn in het onderzoeken van botoppervlakken zonder delicate weefsels te beschadigen.
Het behouden van de integriteit van het epitheliale vel van het oogoppervlak maakt een parallelle evaluatie van de palpebrale conjunctiva, de bulbaire conjunctiva en het corneaal epitheel in ziektemodellen mogelijk. Deze aanpak ondersteunt mechanistische risicoreductie door een gelijktijdige beoordeling van pathogene veranderingen in onderling verbonden weefsels mogelijk te maken. Het verhoogt de voorspellende betrouwbaarheid in preklinische studies waarbij een intacte weefselarchitectuur vereist is voor histologische analyse en immunokleuring.
De methode kan worden geïntegreerd in workflows voor discovery biology door het mogelijk maken van de preparatie van intact weefsel voor histologische en immunokleuring-uitlezingen die hypothesetesten en de verduidelijking van signaalpaden ondersteunen.