January 28th, 2020
Allelopathie heeft aangetoond belofte als een nuttige aanvullende onkruidbestrijding strategie in bijsnijden systemen. Om het allelopathische potentieel van een gewenst plantmonster te bepalen, wordt een trapstapscreeningsmethode geboden.
De trap-stap systeem stelt ons in staat om te identificeren of een plant is allelopathisch of niet, waardoor de concurrentie tussen en tussen planten. Bovendien kan het ook de allelochemicals identificeren die betrokken zijn of geassocieerd zijn met allelopathie. Deze methode is efficiënt in tijd, ruimte en resources.
Bovendien u deze test of methode aanpassen aan andere studies waarvoor een andere donor of acceptor soort nodig is. Een uitdaging in allelopathisch onderzoek is het isoleren van allelopathie. Als planten niet concurreren om hulpbronnen en onkruid nog steeds wordt onderdrukt, dan moet het te wijten zijn aan chemische productie.
Analyse van de oplossing maakt het mogelijk om de werkelijke verbinding of verbindingen die door de planten worden geproduceerd, te identificeren. Deze verbindingen kunnen worden gebruikt als potentiële bioherbiciden. In de kas is de strijd van uitgroei en schimmel een uitdaging.
Door het gebruik van gedestilleerd water, ondoorzichtige materialen, en autoclaving het zand, uitwassen in de tanks en buizen kunnen worden onderdrukt. Snijd hout in de juiste maten en hoeveelheden zoals vermeld in het tekstprotocol. Voor het hoogste niveau, staan een 2,44 meter boord over twee 0,91 meter stukken aan elk uiteinde van de rand en boor twee schroeven verticaal in elk van de 0,91 stukken.
Schroef nog een stuk van 0,91 meter op 1,22 meter van elk uiteinde voor ondersteuning. Plaats dan een 2,44 meter plank over de achterkant van de 0,91 meter staat en schroef op zijn plaats voor ondersteuning. Herhaal deze stappen voor de volgende bank niveau met de 0,76 meter stukken en dan weer voor de volgende bank met de 0,61 meter stukken naar beneden naar de zesde bank op 0,15 meter.
Voor de banken drie tot en met zes is geen draagbord van 2,44 meter nodig. Lijn banken in dalende hoogte volgorde met de overhangende lip naar de achterkant het aanraken van de bank boven het waardoor een kloof tussen de niveaus. Lijn een 0,91 centimeter bord op elk van de onderste randen van de banken langs de grond en schroef de banken op zijn plaats.
Schroef drie hoek beugels op de voorkant naar de uiteinden en het midden van de hoogste bank. Schroef een 2,54 centimeter bij 5,08 centimeter bij 20,32 centimeter houten stuk over de beugels 2,54 centimeter van de basis van de bank. De laatste stand heeft zes banken met elk drie verticale steunen, één aan elk uiteinde en één in het midden.
Op de bodem van elke soda fles, boor een klein gaatje net groot genoeg om een 0,35 centimeter binnendiameter, 0,64 centimeter buitendiameter, 5,08 centimeter lange plastic PVC buis insluiten. Na het inbrengen van de buis, smeer een laag siliconen waterdichte kit rond de rand van het gat om eventuele lekken te voorkomen. Laat het volledig drogen.
Bereid de plastic gerechten die worden gebruikt om de potten met buizen op dezelfde manier vast te houden. Voor één kolom zijn vier gerechten nodig. Boor een klein gaatje in de bovenzijde van de bus.
Nadat de voorraden zijn bereid en gedroogd, plaats de soda fles op de hoogste bank, zodat de PVC-buis hangt over de rand met uitzicht op de trap. Net onder de soda fles op de volgende bank, plaats een plastic schotel met zijn buis opknoping over de rand van de bank. Herhaal deze stap voor de volgende twee banken.
Plaats de bus op de onderste bank met het gat naar de achterkant. Sluit de bus met de schotel erboven door de buis van de schotel door het gat in de achterkant van de bus te rijgen. Smeer waterdichte kit rond de rand van de bus waar de buis loopt door om lekken te voorkomen.
Plaats een 21 watt 1.000 liter per uur dompelbare elektrische pomp in de onderste bus. Sluit een 1,07 meter lang, 1,27 centimeter ID, 1,59 centimeter OD PVC buis aan op het mondstuk van de elektrische pomp. String de buis door de kloof tussen de banken en over de achterkant van de soda fles aan de bovenkant van het systeem.
Sluit de pomp aan op een digitale timer en stel de timerinstelling indien nodig in. Voer de beplanting uit zoals beschreven in het tekstprotocol. Plaats vier potten van een toetreding van donorplanten in de vier gerechten van kolom een, een pot per rij.
Kolom één bestaat slechts uit donorinstallaties. Plaats twee potten van dezelfde toetreding van donorplanten in de gerechten van kolom twee op de eerste en derde rij van de kolom. Plaats twee potten ontvanger planten in de gerechten van kolom twee op de tweede en vierde rij in de kolom.
Twee kolommen, de eerste bestaande uit alleen donorplanten en de tweede afwisselende donoren en ontvangers, maken één behandeling. Herhaal deze stappen voor elke behandeling van de toetreding van donorplanten. Elke replicatie vereist een kolom van de ontvanger plant monsters om te dienen als een controle voor een replicatie.
Behandelingen werden drie keer gerepliceerd in een gerandomiseerd compleet blokontwerp. Vul op de dag na de behandeling de opvangtank aan de onderkant van elke kolom met een Hoagland-oplossing met halve sterkte in gedestilleerd water van ongeveer 1.500 milliliter. Stel de timers in om naar wens te draaien in de automatische uit-instelling.
Bedek de opvangtanks met zwart plastic om lichtblootstelling en verdamping te beperken. Vul de tanks om de twee dagen met 500 milliliter Hoagland-oplossing om het systeem constant te laten stromen. Houd de kastemperaturen op 28 graden Celsius overdag en 24 graden Celsius 's nachts respectievelijk met een 16 tot acht uur durende split en vochtigheid op 53%Meet en neem de hoogten van elke plant in de trap-stap systeem op dag na de behandeling een door het plaatsen van een liniaal aan de basis van elke plant en het observeren van de hoogste blad staan.
Ga verder met het verzamelen en analyseren van gegevens zoals beschreven in het tekstprotocol. Twee inleidende screenings met behulp van deze methode werden uitgevoerd op negen wieden rijst toetredingen en vijf gecultiveerde rijstlijnen. Hoogtemetingen die dag na behandeling werden geregistreerd, werden gebruikt om het hoogtereductiepercentage van het boerenerfgras te berekenen.
Vijf onkruid rijst toetredingen weergegeven meer significante boerenerf gras hoogte vermindering dan rondo, de allelopathische rijst standaard. Onkruid rijst toetredingen B8, S97, B14, S33 verminderd boerenerf gras hoogte met 25 tot 30%Weedy rijst toetreding B81 tentoongesteld de meest aanzienlijke boerenerf gras hoogte vermindering met 74%, dat was bijna drie keer zoveel als de standaard allelopathische rijst rondo. Biomassa reductie procent van de gegevens verzameld op dag na behandeling 21 weergegeven een bereik in boerenerf gras biomassa reductie procent van 0 tot 86%Onder de onkruid rijst toetredingen die boerenerf gras hoogte het meest verminderd, S33 verminderde boerenerf gras biomassa het meest op ongeveer 84%in vergelijking met rondo op 60%Het is belangrijk dat er geen lekken in het hele systeem als dit zal verstoren de stroom en variatie in de resultaten veroorzaken.
Het kweken van de planten in een hydrocultuur systeem zou een alternatieve en effectieve methode om verbindingen geproduceerd door de plant te identificeren en gescreend op allelopathische activiteit. Deze techniek effende de weg in het begrijpen van welke genen allelopathische productie in deze goed presterende onkruidrijstbiotypes controleren. Het is cruciaal om handschoenen, veiligheidsbril en geschikt schoeisel te gebruiken tijdens het gebruik van elektrisch gereedschap.
Zorg er bovendien voor dat het gebied goed geventileerd is bij het spuiten van tanks.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Deze studie onderzoekt het potentieel van allelopathie als aanvullende onkruidbestrijdingsstrategie in teeltsystemen met behulp van een trapscreeningsmethode. De methode heeft als doel allelopathieke planten en de verbindingen die verband houden met allelopathie te identificeren, terwijl bronconcurrentie wordt beperkt.
Quantitative assessment of allelopathic potential in weedy rice using the stair-step assay enables precise isolation of chemical suppression effects, independent of resource competition. This approach strengthens predictive confidence in identifying bioactive plant-derived compounds for weed management, supporting early-stage target validation and mechanistic de-risking in ag-biotech pipelines. The method's reproducibility and scalability position it as a reusable screening platform for allelopathic trait discovery and translational research.
The stair-step assay integrates into the discovery-to-preclinical continuum by enabling hypothesis-driven screening, quantitative measurement, and mechanistic validation of allelopathic traits in donor plants.