16 juli 2020
De bloed-hersenbarrière (BBB) kan tijdelijk worden verstoord met microbubble-gemedieerde gerichte echografie (FUS). Hier beschrijven we een stapsgewijs protocol voor BBB-opening met hoge doorvoer in vivo met behulp van een modulair FUS-systeem dat toegankelijk is voor niet-echografie-experts.
Hoogwaardige gliomen zoals diffuus intrinsiek pontine glioom zijn zeer invasieve tumoren met een hoge mortaliteit. Ondanks jaren van uitgebreid onderzoek, is de bloed-hersenbarrière een belangrijk aspect omdat chemotherapie niet effectief de hersenen kan bereiken. Gelukkig is gefocuste echografie in staat om de bloed-hersenbarrière tijdelijk en lokaal te openen voor effectieve behandelingen.
We ontwikkelden een klein en kosteneffectief neuro-genavigeerd gefocust echografiesysteem voor onderbreking van de bloed-hersenbarrière. Dit systeem is gebouwd met commercieel verkrijgbare componenten en met een hoge mate van automatisering, het maakt preklinische geneesmiddelevaluatiestudies mogelijk. Precisiegeneeskunde wordt gedefinieerd als het juiste medicijn in de juiste dosis voor de juiste patiënt op het juiste moment.
Om dit te bereiken, moeten veel vooraf geselecteerde geneesmiddelen worden gescreend. Ons compacte hoge-doorvoer gefocuste echografiesysteem voor onderbreking van de bloed-hersenbarrière stelt ons in staat om precies dat te doen. De procedure zal worden gedemonstreerd door Rianne Haumann en Elvin t Hart, twee promovendi uit mijn onderzoeksgroep.
De workflow voor beeldgestuurde stereotactische neuro-navigatie gefocuste echografie omvat interventionele beeldvorming en akoestische koppeling voor sonoporatie op het echografieplatform. Daarna kan follow-up beeldvorming worden uitgevoerd. Selecteer een geschikte transducer op basis van de vereisten van het ontworpen experiment.
Plaats het in een 3D-geprinte kegel gevuld met ontgast water en sluit deze aan de onderkant af met een akoestisch transparante Mylar-membraan. Verbind de transducer met een functiegenerator en een vermogensversterker. Monteer de transducer op een gemotoriseerde lineaire stelling voor automatische verticale positionering en verbind deze met de vermogensversterker.
Gebruik een afneembaar stereotactisch platform dat temperatuurgeregelde verwarming, bijt- en oorbeugels, anesthesie en multi-modale fiducial markers omvat. Bevestig het platform aan de 2D-lineaire stelling. Voordat het FUS-systeem kan worden gebruikt, moet u het kalibreren en het focuspunt van de transducer bepalen.
Het focuspunt komt overeen met de verticale positie van het dier op het stereotactische platform. Acclimatiseer het dier gedurende ten minste één week na aankomst in de faciliteit en weeg het regelmatig. Op de dag van het experiment, dient u buprenorfine toe via een subcutane injectie 30 minuten voorafgaand aan de FUS-behandeling.
Na het anesthetiseren van de muis, breng oogzalf aan om droge ogen te voorkomen. Verwijder indien nodig het haar op de bovenkant van het hoofd van het dier met een scheermes en ontharingscreme. Was de huid met water om eventuele resten te verwijderen.
Voor experimenten met BLI-tumormodellen, injecteer 150 microliter D-luciferine intraperitoneaal met een 29 gauge insulinespuit. Voor het toedienen van microbubbels voor het openen van de BBB, plaats een 26 tot 30 gauge staartvenenkaver en spoel de ader door met een kleine hoeveelheid heparine-oplossing. Bevestig de katheter met weefselliniaal om losraken te voorkomen.
Als de katheterisatie succesvol is, vul de katheter met de heparine-oplossing om bloedstolling te voorkomen. Plaats het dier op het temperatuurgeregelde stereotactische platform om hypothermie te voorkomen. Bevestig de kop van het dier met behulp van een bijtbalk en oorbeugels en plak de staart en katheter op het platform.
Bevestig het lichaam van de muis met een riem. Plaats het stereotactische platform met de gemonteerde muis in de beeldvormingsmodaliteit en neem beelden van het dier. Bepaal of het dier correct op het platform is geplaatst.
Markeer de positie van het dier met behulp van de multi-modale fiducial markers in combinatie met de beeldverwerkingspijplijn volgens het focuspunt van de transducer. Bepaal het doelgebied door een hersencontour over de verkregen röntgenfoto te plaatsen of door BLI-beelden te gebruiken om het centrum van de tumor te bepalen. Voordat u de transducer positioneert, beschermt u de neusgaten en mond van het dier met tape om te voorkomen dat ultrasoundgel de ademhaling verstoort.
Breng ultrasoundgel aan op de kop van de muis voor goede geluidsgeleiding. Neem microbubbelcavitatie op met de naaldhydrofoon, die in de directe omgeving van het occipitale bot is geplaatst. Op basis van de kalibratiewaarden, leidt u de transducer naar de juiste positie boven het dier.
Pas vooraf geconfigureerde instellingen toe op alle aangesloten apparaten om het hersengebied van belang aan te sturen. Nadat de transducer in de juiste positie is geplaatst, lost u de microbubbels op en activeert u ze zoals beschreven door de fabrikant. Vóór het injecteren van microbubbels, spoelt u de staartvenenkaver met fysiologische zoutoplossing om de toegang tot de staartvene te bevestigen.
Start de insonicatie-traject en injecteer tegelijkertijd de microbubbels. Tegelijkertijd zal de naaldhydrofoon microbubbelcavitatie in real-time detecteren en verifiëren. Indien gewenst, dient u na sonoporatie een intravasculair contrastmiddel of geneesmiddel toe.
Bewaak het dier tot een vooraf bepaald tijdstip. Akoestische druk met een mechanische index van 0,4 in combinatie met microbubbels bleek een zeer gevoelige en betrouwbare methode voor stabiele cavitatiedetectie in vergelijking met geen detectie van subharmonische golven wanneer er geen microbubbels werden geïnjecteerd of de observatie van inertiële cavitatie wanneer een MI van 0,6 werd toegepast. Terwijl akoestische druk met een MI tot 0,6 geen macroscopisch schade veroorzaakte, werd microscopisch schade histologisch aangetoond bij een MI van 0,6.
Een drukamplitude met een MI van 0,8 resulteerde in een macroscopische hersenbloeding van grotere vaten en wijdverbreide weefselliyse met extravasatie van erytrocyten. Intraveneuze Evans blue werd geïnjecteerd om de opening van de BBB in het pontine gebied te valideren. Extravasatie van Evans blue-geconjugeerd albumine werd waargenomen op het niveau van de pons en het cerebellum bij de muis behandeld met FUS en microbubbels, wat een nauwkeurige targeting van het gebied van belang aantoonde.
De belangrijkste stappen van dit protocol zijn de juiste
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Deze studie presenteert een hoogdoorvoerprotocol voor de tijdelijke verstoring van de bloed-hersenbarrière (BBB) met behulp van een modulair gefocust ultrageluid (FUS) systeem. Door gebruik te maken van microbubbel-gemedieerde sonoporatie, maakt deze techniek de effectieve toediening van behandelingen mogelijk voor aandoeningen zoals gliomen die worden belemmerd door de BBB. De methodologie is ontworpen voor toegankelijkheid, waardoor niet-experts in vivo BBB-opening kunnen implementeren.
This high-throughput focused ultrasound system enables precise, reproducible blood-brain barrier opening in rodent models, directly supporting preclinical drug evaluation for CNS therapeutics. By integrating image-guided stereotactic navigation with automated cavitation monitoring, the system reduces variability and enhances data reliability in high-volume screening campaigns. Its cost-effective, modular design facilitates scalable implementation across discovery workflows targeting glioma and other brain diseases.
The system integrates into the discovery continuum from target validation through lead identification, enabling image-guided, reproducible blood-brain barrier disruption for therapeutic screening.